Nuestro método proporciona un modelo para investigar cómo se digieren las emociones simulando el proceso de digestión en una sola gota de agua, que está cubierta por un emulsionante y se sumerge en fase oleosa. Podemos evaluar el impacto de diferentes emulsionantes y la acción de diferentes componentes digestivos, y diseñar interfaces que puedan resistir o retardar la digestión en diferentes lugares dentro del tracto gastrointestinal. Podemos medir la tensión interfacial en C2 a lo largo de todo el proceso de digestión simulado, y la elasticidad y viscosidad de la capa interfacial al final de su paso de digestión.
Las concentraciones y las condiciones de la digestión se pueden ajustar a los requisitos del experimento, y esto se puede aplicar secuencialmente, o simultáneamente permitiendo evaluar el sinergismo y los efectos acumulativos. Y trabajamos con una sola gota, por lo que necesitamos una cantidad muy baja de muestra, y tenemos un control de alta precisión de las variables experimentales. Hemos aplicado esta técnica para diseñar una estrategia para hacernos cargo de esto.
Uno de esos enfoques es diseñar en la capa fósil que retira o recibe el proceso de lipólisis. Otro enfoque es el uso de innovadores de lipasa, y hemos investigado el mecanismo de acción interfacial de la lipasa. Este dispositivo fue desarrollado originalmente para estudiar la digestión in vitro.
Sin embargo, se puede utilizar para el estudio mono y la interacción con lípidos, y también se puede aplicar para estudiar automáticamente la micro concentración crítica. La técnica experimental es accesible. Un investigador manual ha sido entrenado para usarlo en una semana.
Debe limpiar el equipo a fondo y purificar las muestras y el aceite para evitar la presencia de contaminantes tensioactivos. Debe familiarizarse con la computadora de software, y aprender a controlar las luces y la posición de la capacidad, y deshacerse de pequeñas burbujas. Para comenzar, gota de agua formal para verificar la tensión superficial del agua a temperatura ambiente.
Ajuste la densidad diferencial al agua de aire en el diálogo de la izquierda y mida la tensión superficial en tiempo real. durante cinco minutos. Llene el cubretón limpio con al menos 0.002 litros de aceite vegetal limpio y colóquelo en el soporte del edredón en la celda termostática.
Ajuste la densidad diferencial al agua de aceite vegetal e inyecte 40 microlitros a una velocidad de 0,5 microlitros por segundo. Mida la tensión en tiempo real cada segundo hasta el final de la inyección. Este es un proceso dinámico simple.
A continuación, guarde los datos y trace la tensión interfacial en función del volumen de gotas y una hoja de datos. Compruebe que el rango de volumen de gotas proporciona un valor para la tensión interfacial independiente del volumen de gotas para agua limpia. Trazar el área interfacial en función del volumen de la gota.
Esta curva se utilizará más adelante para hacer coincidir el volumen con el área interfacial correspondiente. Con la jeringa izquierda, inyecte el volumen dentro del rango de tensión interfacial constante y registre la tensión interfacial durante cinco minutos. Esto es para verificar la ausencia de componentes tensioactivos en el sistema.
Para realizar el control inicial, inyecte alrededor de 10 microlitros de la solución emulsionante en el capilar para la formación de gotas, y registre la absorción en un área interfacial constante de alrededor de 20 milímetros cuadrados durante una hora. Los valores exactos de volumen y área se pueden obtener de la curva de calibración trazada anteriormente. Programe la reología dilucional ajustando la amplitud de oscilación a 1,25 microlitros en el período a 10 segundos.
Luego programe la absorción en el área interfacial seleccionada durante 10 segundos. A continuación, para registrar la digestión gástrica programa la absorción en el área interfacial seleccionada durante 10 segundos. Llene la jeringa izquierda con líquido de la válvula dos.
Inyecte 125 microlitros de la válvula dos a cinco microlitros por segundo con la jeringa izquierda y extraiga simultáneamente el mismo volumen a la misma velocidad con la jeringa derecha. Esta es una visualización del proceso de intercambio de subfases de agua con azul de metileno. Descargue la jeringa derecha para salir de la válvula ocho y cargue de nuevo la jeringa izquierda con líquido de la válvula dos.
Repita estos dos pasos 10 veces para asegurar el intercambio completo de subfases con líquido y válvula dos y enzimas gástricas. Luego, registre la absorción en el área interfacial seleccionada durante una hora y registre la reología dilucional como se mostró anteriormente. Para registrar la digestión intestinal después de registrar la absorción en el área interfacial seleccionada, llene la jeringa izquierda con líquido de la válvula tres y siga los mismos pasos mostrados anteriormente para registrar la digestión gástrica.
Del mismo modo, para registrar la desorción, después de registrar la absorción en el área interfacial seleccionada, llene la jeringa izquierda con líquido de la válvula cinco y repita el resto de los pasos utilizados para registrar la digestión gástrica. Llene los tubos de microcentrífuga con los medios de digestión artificiales y conecte cada uno de ellos a la válvula respectiva mediante el tubo correspondiente. Llene el tubo en las válvulas dos a ocho limpiando desde la válvula dos, la válvula tres, la válvula cuatro y la válvula cinco hasta la salida externa que es la válvula ocho.
Llene el tubo en la válvula uno limpiando de la válvula uno a la válvula seis capilares cinco veces. Coloque el capilar en la fase de aceite y cargue la jeringa izquierda con la válvula uno. Comience a procesar secuencialmente el control inicial de la digestión gástrica, la digestión intestinal y la desorción, guardando los datos al final de cada proceso.
Los resultados experimentales obtenidos para la digestión gástrica de emulsionantes se muestran en estas figuras. Aquí se presenta la proteólisis gástrica de la albúmina sérica humana. Los medios digestivos se aplican por intercambio de subfases con soluciones a 37 grados centígrados.
Aquí el azul representa el tampón inicial con proteína y el rojo representa SGF simplificado con pepsina. Durante el intercambio de subfases con SGF simplificado y pepsina, la tensión interfacial aumenta debido a la hidrólisis de la proteína, que diluye la capa inicial de proteína. La imagen gráfica representa la lipólisis gástrica de la pectina cítrica.
Aquí, el azul representa el tampón inicial con pectina cítrica, el amarillo representa el SGF simplificado con lipasa gástrica y el gris representa el SGF simplificado. El intercambio de subfases con lipasa gástrica disminuye la tensión superficial, mientras que el intercambio de subfases con SGF simplificado, proporciona una respuesta nula de la tensión interfacial. Aquí se muestra un ejemplo de los perfiles de digestión intestinal.
Aquí se presentan la absorción, la desorción, los perfiles de sales biológicas, lipasa y lipasa, además de sales biliares en SIF simplificado a 37 grados centígrados. La imagen gráfica muestra la evolución de la tensión interfacial tras la lipólisis de dos variantes de plueronic F127 y F68. Se puede observar una fuerte disminución en la tensión interfacial debido a la absorción de lipasa y sales biliares, y la producción de ácidos grasos libres en películas interfaciales previamente formadas de F68 y F127 en la interfaz de aceite y agua.
El paso de desorción muestra el intercambio de subfases con SIF simplificado de sales biliares, F68 y F127. Perfil de digestión in vitro de película absorbida de AS48 en la interfaz aire-agua en películas absorbidas de albúmina sérica humana y bovina en la interfaz agua-aceite de oliva. Las imágenes representativas muestran la tensión interfacial, la elasticidad de dilatación y la viscosidad de dilatación de la digestión in vitro de la película absorbida de beta lactoglobulina en la interfaz agua de aceite de oliva.
Los parámetros de dilatación se midieron a 1 hercio, 0,1 hercios y 0,01 hercios después de que la interfaz digerida se equilibró en cada paso. Es importante hacer coincidir las bolas al programar el proceso con los correspondientes tubos de centrífuga, capilar o eje, la evolución de la distribución del sitio de gota, luego, la movilidad electroforética establece un potencial de gotas, y el ácido graso libre amino produce en la lipólisis ofrecer información complementaria a la correspondiente con los hallazgos de la tensión interfacial. Esta técnica proporciona capas interfaciales con diferentes perfiles de digestibilidad para administrar nutrientes y medicamentos en diferentes lugares dentro del tracto gastrointestinal, y también para desarrollar nuevos sistemas de encapsulación.
