L’objectif de notre groupe de recherche est de développer un modèle préclinique d’embolie gazeuse artérielle cérébrale. Cela facilitera l’étude de sa physiopathologie et permettra d’optimiser les approches thérapeutiques, améliorant ainsi les connaissances et la prise en charge des patients. Les développements récents dans notre domaine se sont concentrés sur l’oxygénothérapie hyperbare.
De plus, des recherches sont en cours sur l’efficacité de différents mélanges de gaz pour l’utilisation de l’OHB. Nous avons identifié des défis pour la reproduction des modèles précédents en raison d’un manque de méthodologie détaillée pour la création de microbulles. Pour résoudre ce problème, nous avons développé un logiciel open-source permettant de mesurer les microbulles.
Nous avons également fourni un plan pour un générateur de bulles d’air afin d’améliorer la reproductibilité. Notre groupe se concentrera sur le développement de nouvelles thérapies pour traiter l’embolie gazeuse artérielle cérébrale en utilisant une thérapie hyperbare avec différents mélanges de gaz et pressions. Nous étudierons également comment la pression artérielle influence les résultats afin d’améliorer davantage le rétablissement des patients.
Pour commencer, préparez la zone chirurgicale avec un chiffon stérile placé sous le rat. Disposez tous les instruments chirurgicaux et les sutures sur un deuxième chiffon stérile. Préparez également les médicaments nécessaires.
Réglez le coussin chauffant avec un système de rétroaction à 37 degrés Celsius. Ajustez ensuite le microscope à la bonne hauteur pour la procédure. À l’aide des deux mains, retirez le rat de sa cage domestique.
Après avoir anesthésié le rat, pesez-le sur une balance électronique. Ensuite, appliquez des larmes artificielles sur les yeux du rat pour éviter le dessèchement. Lubrifiez la sonde de température et insérez-la par voie rectale.
Après avoir placé le rat en position couchée, placez une seringue de 10 millilitres sous le cou pour un accès facile à la zone chirurgicale. À l’aide de ruban adhésif, fixez les pattes avant du rat à la table d’opération. Après avoir pratiqué une incision sur la ligne médiane, utilisez deux pinces à épiler pour disséquer soigneusement le tissu conjonctif afin d’exposer les muscles sous-jacents.
Ensuite, séparez doucement les muscles sterno-hyoïdiens gauche et droit en déchirant le tissu conjonctif entre les deux. Identifier et rétracter les muscles sterno-mastoïdien droit et omohyoïdien droit caudalement et médialement. Le triangle carotidien droit devrait maintenant être visible.
Pour préparer l’artère carotide commune ou ACC, retirez le fascia et le tissu adipeux sus-jacents. Éloignez doucement le nerf vague de l’ACC pour les séparer sans causer de dommages. Assurez-vous de ne pas toucher ou appuyer contre la trachée pendant la préparation des vaisseaux.
Ensuite, à l’aide d’une pince à épiler incurvée, placez un fil 3-0 autour du CCA. Fixez le fil avec des hémostatiques pour élever le CCA dans une étape ultérieure. Localiser et exposer la bifurcation de la CEA et de l’ICA.
Dégagez tout fascia environnant et tout tissu adipeux si nécessaire, et ligaturez temporairement l’ECA à l’aide d’une suture 3-0. Après avoir localisé l’artère occipitale en se ramifiant du côté médial de l’ECA, ligaturez temporairement l’artère occipitale proximale avec une suture 3-0. Suivez l’ICA distalement jusqu’à ce que se trouve l’artère ptérygo-palatine, qui se ramifie latéralement.
Nettoyez le fascia et le tissu adipeux environnants tout en faisant attention de ne pas endommager le nerf vague. Ensuite, ligaturez temporairement l’artère ptérygo-palatine à l’aide d’une suture 3-0. Commencez le passage de solution saline à travers le cathéter du générateur de bulles d’air, mais ne générez pas encore de bulles d’air.
À l’aide des hémostats placés précédemment, augmentez doucement le CCA. Insérez l’aiguille fixée au cathéter à partir du générateur de bulles d’air dans la lumière de l’ACC. Une fois l’aiguille insérée, abaissez lentement les hémostats dans l’ACC pour permettre la reperfusion sanguine.
Vérifiez s’il y a une fuite de sang ou de solution saline au site d’insertion. Démarrez ensuite le processus d’embolisation en exécutant le code Python et en lançant la création de bulles d’air. Une fois l’embolisation terminée, à l’aide des hémostats, soulevez à nouveau l’ACC et rétractez soigneusement l’aiguille de l’ACC.
Appliquez une pression sur le site d’insertion avec un coton-tige tout en maintenant l’élévation de l’ACC pour arrêter tout saignement. Continuez à appliquer une pression sur le site de ponction. Ensuite, roulez doucement l’embout en coton vers l’arrière distalement le long de l’ACC en utilisant une pression minimale pour éviter de déranger le caillot.
Ensuite, récupérez soigneusement les sutures 3-0 de l’ECA, de l’OA, de l’APPA et de l’ACC pour permettre la reperfusion. Confirmez que le saignement s’est définitivement arrêté et nettoyez tout sang résiduel autour de la zone chirurgicale. À l’aide d’une aiguille incurvée et d’une suture 4-0, fermez la peau avec des sutures, puis administrez de la bupivacaïne sous-cutanée à une concentration de 2,5 milligrammes par millilitre autour du site d’incision pour soulager la douleur.
Transférez soigneusement le rat dans une cage de récupération réglée à 33 à 35 degrés Celsius pendant 30 à 120 minutes.
