Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

אנו מתארים שיטה להכין פרוסות בהיפוקמפוס organotypic כי ניתן להתאים בקלות לאזורים אחרים במוח. פרוסות המוח מוטלות על ממברנות נקבוביים התקשורת בתרבות מותר להקים ממשק. שיטה זו משמרת את הארכיטקטורה ברוטו של ההיפוקמפוס עד 2 שבועות בתרבות.

Abstract

ההיפוקמפוס, רכיב של המערכת הלימבית, משחק תפקידים חשובים בזיכרון לטווח ארוך וניווט מרחבי 1. נוירונים בהיפוקמפוס יכול לשנות את עוצמת הקשרים שלהם לאחר תקופות קצרות של הפעלה חזקה. תופעה זו, הידועה בשם potentiation לטווח ארוך (LTP) יכולה להימשך שעות או ימים הפך את המנגנון המועמד הטוב ביותר למידה וזיכרון 2. בנוסף, אנטומיה מוגדר היטב וקישוריות של ההיפוקמפוס 3 הפכה אותה מערכת מודל קלאסי ללמוד הילוכים הסינפטי ו 4 הפלסטיות הסינפטית.

כפי הבנתנו את הפיזיולוגיה של סינפסות בהיפוקמפוס גדל שחקנים מולקולריים הפך מזוהה, צורך לתמרן חלבונים סינפטיים הכרח. תרבויות בהיפוקמפוס Organotypic להציע את האפשרות למניפולציות הגן קל התערבות פרמקולוגית מדויק אבל לשמור על ארגון הסינפטי הוא קריטי להבנת תפקוד הסינפסה בהקשר נטורליסטי יותר בתרבות שיטות שגרתיות נוירונים ניתק.

כאן אנו מציגים שיטה להכין ותרבות פרוסות בהיפוקמפוס, כי ניתן להתאים בקלות לאזורים אחרים במוח. שיטה זו מאפשרת גישה קלה את פרוסות עבור מניפולציה גנטית באמצעות גישות שונות כמו זיהום ויראלי או 5,6 biolistics 7. בנוסף, פרוסות ניתן לשחזר בקלות עבור מבחני ביוכימיים 8, או להעביר מיקרוסקופים הדמיה 9 או בניסויים אלקטרו 10.

Protocol

1. לפני תחילת הכנת פרוסות בהיפוקמפוס.

  1. הכן את מבצעה רקמה על ידי הנחת פיסת סדין טפלון הרכבה להב חדש.
  2. נגבו את בתרבית רקמה (TC) ברדס עם אתנול 70% ולהגדיר את בתוך מיקרוסקופ לנתח. לעקר את מכסה המנוע, מיקרוסקופ, מבצעה רקמה וכל המכשירים לנתח במשך 15 דקות עם האור האולטרה סגול.
  3. הכן ושש צלחות גם TC. הוספת 750 μL תרבות פרוסה התקשורת (SCM) לכל מקום היטב בתרבות מוסיף התא בכל טוב. ודא הקרומים רטובים לחלוטין, ללא בועות מתחת. מקמי את הצלחות באינקובטור ב 35 מעלות צלזיוס בגז עם 5% CO 2 עד הצורך.
  4. יוצקים 50 מ"ל נמוך Na + ACSF (לנתח פתרון) לתוך כוס 100 מ"ל ומניחים אותו על תערובת קרח ומלח. הבועה נמוך Na + ACSF עם 5% CO 2 / 95% O 2 עד שינויים בצבע ACSF צורות תערובת slurry של פתרון קפואים נוזלי (10-20 דקות).
  5. קבל עכברוש P5-P7 הגור. עד שלושה גורים ניתן להשתמש.

2. הכנת פרוסות בהיפוקמפוס.

  1. חותכים את הראש של החיה במספריים חדים השירות. חותכים את העור ולחשוף את הגולגולת. פתח את הגולגולת על ידי חיתוך מצד לצד לאורך קו interaural ואז לאורך תפר sagittal במספריים קטנים. לחתוך אופציונלי מצד לצד בחזית ניתן להקל על הסרת העצמות החשיפה של המוח. סקופ את המוח במהירות עם מרית כף מעוגלות מיקרו למקם אותו slurry של ביתור פתרון צמרמורת במשך דקה 1 ~. יוצקים ~ 10 מ"ל של תמיסת קרים לנתח לצלחת 60 מ"מ ולהעביר את המוח מן הכוס אל הצלחת. המוח צריך להיות מכוסה לנתח פתרון.
  2. תחת מיקרוסקופ הניתוחים: מניחים את המוח להחזיק אותו קו האמצע עם מלקחיים לנתח נלחץ אל החלק התחתון של צלחת 60 מ"מ. השתמש בכלי ההיפוקמפוס לנתח כדי להפריד את האונות עוזב את המוח התיכון. Hippocampi חשופים אז על כל האונה. ואז בעדינות סקופ ההיפוקמפוס עם ההיפוקמפוס לנתח הכלי. השתמש איזמל המנתחים לחלוטין לבודד את ההיפוקמפוס לנקות אותו כמה שיותר.
  3. בעזרת קצה קיצצו של טיפ P1000 פיפטה לסנן, לשאוב בעדינות ההיפוקמפוס ולהעביר אותו גיליון טפלון על מבצעה את הרקמה. מקם את ההיפוקמפוס בצד הקעור שלה.
  4. יישר את בניצב hippocampi ללהב להשיג חלקים העטרה ומסננים עודפי נוזלים.
  5. פורסים את hippocampi כל 400 מיקרומטר.
  6. יוצקים ~ 10 מ"ל קר SCM לצלוחית 60 מ"מ ולהעביר פרוס hippocampi של מבצעה באמצעות אחר קיצצו P1000 קצה לסנן קר SCM. הימנע עושה בועות.
  7. בעזרת מרית איריס מרית ישר בעדינות להפריד את הפרוסות זו מזו.
  8. הפרד פרוסות מוגדר היטב ניזוק מן פרוסות פגום.

3. תרבות Slices בהיפוקמפוס

  1. תביאו את שש גם צלחות עם SCM ותרבות מוסיף התא מן החממה. בעזרת קצה אחר P1000 קיצצו לסנן, להעביר את פרוסות בודדות על הממברנה. מניחים פרוסות 4-5 לכל הממברנה. היזהר שלא במקום הפרוסות או קרוב לקיר להוסיף או קרובים זה לזה. בעת הצורך, להשתמש במרית בקשתית פרוסות נפרדות. הסר בינוני עודף. מגע פרוסות מעט ככל האפשר פעם הם על הממברנה.
  2. העברה צלחת חזרה חממה ותרבות ב 35 ° C ו 5% CO 2.
  3. שנה SCM כל 48 שעות בתוך מכסה המנוע על ידי TC aspirating SCM עם פיפטה פסטר. הוספת 750 μL של טרי מראש חימם SCM לכל טוב. ודא שאין בועות נוצרות תחת הממברנה.

4. פתרונות

  1. נמוכה Na + ACSF - פתרון הביתור עבור תרבויות פרוסה
    כדי deionized וסטרילי H 2 O להוסיף:
    עבור 500 מ"ל עבור מ"ל 1000 הריכוז הסופי
    CaCl 2 (1 ז) 0.5 מ"ל 1 מ"ל 1 mM
    D-גלוקוז 0.901 גרם 1.802 גרם 10 mM
    KCl 0.149 גרם 0.298 גרם 4 מ"מ
    MgCl 2 (1 ז) 2.5 מ"ל 5 מ"ל 5 מ"מ
    NaHCO 3 1.092 גרם 2.184 גרם 26 מ"מ
    סוכרוז 40 גרם 80 גרם 234 mM
    הפתרון האדום פנול 0.5% ב DPBS 0.5 מ"ל 1 מ"ל 0.1% v / v

    מערבבים ~ 30 דקות
    Sterilize על ידי מעבר דרך מסנן 0.22μm
    בצע 50 מ"ל aliquots ולאחסן ב 4 ° C לא יותר מ 2 חודשים.
  2. תרבות Slice בינוני (SCM)
    עבור 500 מ"ל עבור מ"ל 1000 הריכוז הסופי
    ממ הנשר בינוני 4.2 גרם 8.4 גרם 8.4 g / l
    סוס חום בסרום מומת 100 מ"ל 200 מ"ל 20%
    L-גלוטמין (200 מ"מ) 2.5 מ"ל 5 מ"ל 1 mM
    CaCl 2 (1 ז) 0.5 מ"ל 1 מ"ל 1 mM
    MgSO 4 (1 מ ') 1 מ"ל 2 מ"ל 2 מ"מ
    אינסולין (1 מ"ג / מ"ל), מומס HCl 0.01 N 0.5 מ"ל 1 מ"ל 1 מ"ג / ליטר
    חומצה אסקורבית, פתרון (25% w / v) .024 מ"ל .048 מ"ל 0.00125%
    D-גלוקוז 1.16g 2.32g 13 מ"מ
    NaHCO 3 0.22g 0.44g 5.2 mM
    Hepes 3.58g 7.16g 30 מ"מ

    מערבבים עד שהיא נמסה היטב ומביאים לטמפרטורת החדר.
    התאם את ה-pH 7.27-7.28 עם 1 N NaOH
    מדוד osmolarity. התאם עד 320 מילימול / ק"ג עם deionized ו מעוקרים H 2 O. מצפים להוסיף כ 25-40 מ"ל. בדוק osmolarity שוב.
    *** PH עשוי להשתנות מעט תוך התאמת osmolarity, זה בסדר, חשוב יותר כי osmolarity נמצאת בטווח הנכון (317-323).
    לעקר ע"י מעבר דרך מסנן 0.22 מיקרומטר.
    בצע 20 מ"ל aliquots ולאחסן עד 2-3 שבועות 4 ° C.
    מניות Gluatamine: להכין בריכוז של 200 מ"מ ולאחסן ב -20 מעלות צלזיוס aliquots של 2.5 מ"ל.
    חומצה אסקורבית המניות: להכין בריכוז של 25% (w / v) המאוחסן ב -20 מעלות צלזיוס aliquots של μL 100.

5. נציג תוצאות:

Slices צריך להיראות לבן תחת בהיקף לנתח בלי כתמים שחורים ומוגדרים היטב CA1 ניזוק, CA3, ואזורים gyrus משוננת. זיהום חיידקי נתפסת בקלות כמו כתמים שחורים נעים בטווח הבינוני או עכירות של SCM. כאשר הניח מתחת למיקרוסקופ, את פני השטח של הפרוסה צריך להיראות נקי אחרי 4 ימים בתרבות עם גופי התא ברורה ניכר בו. אם לא ברור גופי התא נראים ופסולת הרבה המכסה את פני השטח לאחר 4 ימים, אז לא פרוסה בריא.

Discussion

שיטה זו מבוססת על השיטה שתוארה לראשונה על ידי Stoppini et al. 11 ומציע בצורה מהירה פרוסות תרבות בהיפוקמפוס. ההיבט החשוב ביותר של פרוטוקול זה היא לשמור על פרוסות סטרילי ולכן זה קריטי להשתמש בטכניקות סטרילי המתאים כראוי לחיטוי לעקר את כל החומר במגע עם רקמות.

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

Acknowledgements

עבודה זו מומנה על ידי NINDS - NIH R01NS060756

Materials

Material NameTypeCompanyCatalogue NumberComment
NameCompanyCatalog NumberComments
Cell culture inserts MilliporePICM03050 
6 well plates BD Falcon353046 
Tissue Slicer Stoelting51425/51415 
Microscope OlympusSZX7-ILLD2-100 
Hippocampus dissecting tool F.S.T10099-15 
Large utility scissors. Perfection F.S.T37500-00/37000-00 Right/ Left handed 
Iris Spatula F.S.T10093-13 
Straight spatula F.S.T10094-13 
Rounded spoon micro spatula VWR57949-039 
Dissecting single cutting edge needle Electron Microscopy Science72946 
Dissecting tweezers Dummont#2 
Small dissecting scissors F.S.T14060-10 
MEM Eagle medium Cellgro50-019 PB 
Horse serum heat inactivated Invitrogen26050-88 
L-Glutamine (200 mM) Invitrogen25030081 
CaCl2 (1 M) SigmaC3881 
MgSO4 (1 M) SigmaM2773 
Insulin (1 mg/ml), dissolved in HCl 0.01 N SigmaI0516 
Ascorbic Acid, solution (25%) SigmaA4544 
D-Glucose SigmaG5767 
NaHCO3 SigmaS6014 
Hepes SigmaH7523 
Sucrose SigmaS5016 
Phenol Red Solution 0.5% in DPBS SigmaP0290 
KCl SigmaP3911 
MgCl2 (1 M) SigmaM9272 

References

  1. Martin, S. J., Grimwood, P. D., Morris, R. G. Synaptic plasticity and memory: an evaluation of the hypothesis. Annu Rev Neurosci. 23, 649-711 (2000).
  2. Bliss, T. V., Collingridge, G. L., Morris, R. G. I. n. t. r. o. d. u. c. t. i. o. n. Long-term potentiation and structure of the issue. Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. 358, 607-611 (2003).
  3. Shepherd, G. M. . The synaptic organization of the brain. , (2004).
  4. Malinow, R., Tsien, R. W. Presynaptic enhancement shown by whole-cell recordings of long-term potentiation in hippocampal slices. Nature. 346, 177-180 (1990).
  5. Malinow, R. Introduction of green fluorescent protein (GFP) into hippocampal neurons through viral infection. Cold Spring Harb Protoc. , (2010).
  6. Shi, S., Hayashi, Y., Esteban, J. A., Malinow, R. Subunit-specific rules governing AMPA receptor trafficking to synapses in hippocampal pyramidal neurons. Cell. 105, 331-343 (2001).
  7. Woods, G., Zito, K. Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture. J Vis Exp. , (2008).
  8. Esteban, J. A. PKA phosphorylation of AMPA receptor subunits controls synaptic trafficking underlying plasticity. Nat Neurosci. 6, 136-143 (2003).
  9. Mainen, Z. F. Two-photon imaging in living brain slices. Methods. 18, 231-239 (1999).
  10. Barria, A., Malinow, R. Subunit-specific NMDA receptor trafficking to synapses. Neuron. 35, 345-353 (2002).
  11. Stoppini, L., Buchs, P. A., Muller, D. A simple method for organotypic cultures of nervous tissue. J Neurosci Methods. 37, 173-182 (1991).
  12. Simoni, A. D. e., Griesinger, C. B., Edwards, F. A. Development of rat CA1 neurones in acute versus organotypic slices: role of experience in synaptic morphology and activity. J Physiol. 550, 135-147 (2003).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Neuroscience48OrganotypicSynapticSynaptic

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved