JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מטרת מחקר זה הייתה לגבש טכנולוגיות המאפשרות התמרה חושית מוצלחת גנים בתאים ראשי טבעי רוצח (NK). בתיווך לתוספי התמרה חושית lentiviral של האדם או העכבר הראשי NK תאים תוצאות יעילות גבוהה יותר של ביטוי ג'ין. שיטה זו של ג'ין התמרה חושית ישפר במידה רבה מניפולציה גנטית של תאי NK.

Abstract

התמרה חושית יעילה של גנים ספציפיים לתאי (NK) רוצח טבעי היה אתגר גדול. Transductions מוצלחת הם קריטיים באשר להגדרת תפקידו של הגן עניין בפיתוח, בידול, התפקוד של תאי NK. התפתחויות אחרונות הקשורות חיסוני סרטן אנטיגן chimeric רצפטורים (מכוניות) להדגיש את הצורך שיטה יעילה לספק גנים אקסוגני לימפוציטים. היעילות של transductions lentiviral בתיווך גנים לתוך האדם העיקרי או תאי NK בעכבר להישאר נמוך באופן משמעותי, וזה גורם מגביל הגדולות. התפתחויות אחרונות באמצעות פולימרים cationic, כגון polybrene, מראים יעילות התמרה חושית משופרת גנים בתאי T. עם זאת, מוצרים אלה נכשל לשפר את היעילות התמרה חושית של תאי NK. זה מצביעה לתוספי הזה, רב-סוכר קנים גלוקן, משפר באופן משמעותי את יעילות התמרה חושית של האדם ואת העכבר הראשי תאי NK. מתודולוגיה זו התמרה חושית מאוד לשחזור מספק כלי מוכשר transducing האנושי תאי NK העיקרי, אשר יכול מאוד לשפר את ג'ין קליניים מסירה יישומים ובכך חיסוני סרטן המבוסס על תאי NK.

Introduction

תאים (NK) רוצח טבעי הם האוכלוסייה לימפוציטית העיקריים של מערכת החיסון המולדת1. תאי NK לפעול המגינים השורה הראשונה של התגובה החיסונית מארח נגד גידולים ודלקות2,3,4. תאי NK גם לשחק תפקיד מרכזי בהתפתחות של סובלנות דרך ההפרשה של ציטוקינים חזק ונוגדנים5. בשל היכולת שלהם חזק כדי למקד לחסל תאים סרטניים, מתנהלים ניסויים קליניים מרובים כדי להעריך נגזר תורם תאי NK אדם כמו חיסוני המאמצת עבור סרטן6,7. בניגוד תאי T, ביולוגיה התפתחותית תאי NK טרם להיות מאופיין היטב8. חוסר ידע היא חלקית בשל העדר של טכניקות יעיל לספק הגנים של עניין מהעכבר או תאי NK ראשי אדם. מסיבות אלה, רוב תאי NK מחקרים נערכו שורות תאים, ולא בתאים הראשי. לכן, הצורך פרוטוקול אמין ויעיל מגלי תאי NK ראשי עם הגנים של עניין חיוני.

המטרה הכוללת של מחקר זה היה לגבש שיטה עקבית ומהימנה שבו תאי NK אנושית או מאתר ראשי יכול להיות transduced עם lenti - או רטרווירוסים.

מחקרים מוקדמים יותר לניסיון כדי לטפל בבעיה זו בוצעו, בעיקר באמצעות הטרנספורמציה ארעית של תאי NK העיקרי. זה כולל פלסמיד תרביות תאים9,10, וירוס אפשטיין בר (EBV) / היברידית retroviral וקטור11, vaccinia המומנט12,13, ו Ad5/F35 וקטורים adenoviral chimeric14. למרות היעילות צנוע של טכניקות אלה, הארעיות התמרה חושית גורם להם מתאים ניצול לטווח ארוך של תאי NK מהונדסים. מספר מחקרים שנערכו לאחרונה השתמשו וקטורים retroviral כדי מגלי תאי NK, הדורשות מספר מחזורים של זיהום להשגת רמת גן ביטוי11,15. בניגוד retroviral וקטורים, וקטורים lentiviral ניתן להשתמש מכונות ייבוא גרעיני התא המארח כדי translocate המתחם אינטגרציה קדם נגיפי לתוך הגרעין. זה גורם מרכזי הגבלת השכפול של הנגיף ללא חלוקת תאים, אשר כוללים תאי NK העיקרי.

אינטראקציות בין חלקיקים נגיפיים שונים התא קולטנים היתר ספיגת ויראלי לתוך התא. למשימות הראשונית בין החלבונים מעטפת נגיפית קולטנים cognate המארח שלהם יכולה להיות מוגבלת האישומים שלילית פוטנציאלית הקיימת בין השניים. הרציונל מאחורי טכניקות התמרה חושית רבים נמצא כי התוספת של פולימרים cationic, כגון polybrene (Pb), מה לעזאזל קרה סולפט (PS) או לתוספי, יכול לתת התא קולטנים מטען חיובי, ובכך להגדיל את הכריכה של מעטפת נגיפית חלבונים. זה יהיה להגדיל את היעילות פיוז'ן, תפיסה של חלקיקי נגיפי על ידי תאי ה-16. למרות דווח כי חמאת בוטנים או PS יכולים לשפר העברה גנטית בתאי T17, היישום שלהם לא היה כל השפעה יעילות התמרה חושית של תאי NK העיקרי. יתר על כן, ניתוח השוואתי בין אלה ריאגנטים באמצעות תאי NK הראשי לא בוצעה. במחקר זה, היעילות התמרה חושית פולימרים cationic שלושה הושוו. התוצאות מציגות, בין פולימרים cationic, שלושה אלה רק לתוספי מחזק באופן ניכר את התמרה חושית ויראלי יעיל לתוך גם העכבר וגם תאי NK ראשי אדם.

Protocol

כל הפרוטוקולים בעלי חיים עקב הטיפול הומאני ומוסרי של בעלי חיים, אושרו על ידי טיפול בעלי חיים מוסדיים ועל שימוש הוועדה (IACUC) בתוך ביו מחקר מרכז (BRC) של הרפואי של ויסקונסין (MCW), מילווקי, אינטרנט אלחוטי. השימוש של תאי תאי דם היקפיים אנושי (PBMCs) אושרה על-ידי המוסדיים סקירה לוח (IRB) של מכון המחקר דם של מרכז דם של ויסקונסין, מילווקי, אינטרנט אלחוטי.

1. עכברים, שורות תאים ווקטורים

  1. להשיג C57BL/6 עכברים של ספקים מסחריים. לשמור על המושבות העכבר בתנאים ללא הפתוגן ולהשתמש עכברים הנקביים והזכריים בין הגילאים 6 עד 12 שבועות. להשיג בטל מזוהה PBMCs האנושי ממקורות שאושרו על-ידי IRB.
  2. עזים ומתנגד החיות בתערובת של 20-30% איזופלוריין וי/v בפרופילן גליקול (1, 2-propanediol, כיתה USP) כדי עזים ומתנגד העכברים. החל הוטרינר משחה לעיניים למניעת יובש ואילו העכברים הם תחת הרדמה.
  3. להרדים את החיות, לבצע פריקה צוואר הרחם לאחר תנאי הגיוס של הרדמה.
    1. לרסן את העכברים מאת אוחז בחוזקה בבסיס הזנב עם יד אחת. הצב עט מקל חסון-סוג או את האגודל והאצבע הראשון של היד השנייה נגד האחורי של הצוואר, בבסיס הגולגולת.
    2. כדי לייצר את פריקה, לדחוף את היד הרחקה ראש החיה קדימה ויש לדחוף למטה תוך משיכת לאחור עם היד אוחזת בזנב הבסיס. לאמת את האפקטיביות של פריקה על ידי רגש כלפי הפרדה של רקמות צוואר הרחם.
  4. להרחיק את החיות הקאמרית/כלוב לפחות 5 דקות ולהסיר אותם רק כאשר פעילות הנשימה נעדר או כאשר יש חוסר דופק לזיהוי.
  5. לקבל K562 ותאי YAC-1 של ספקים מסחריים ולשמור אותם ב RPMI1640 בינוני המכיל 10% חום-לא פעיל FBS. מבחן שורות תאים אלו מעת לעת כדי לא לכלול את האפשרות לזיהום mycoplasma.

2. והכנה טיטור של וקטורים lentiviral

  1. תרבות 5 × 106 293T תאים לינה בקבוקון2 ס מ T75 המכיל פתרון של 20 מ של RPMI1640 בינוני עם 10% FBS, פניצילין U/mL 100, סטרפטומיצין µg/mL 100, 1 מ מ נתרן פירובט, 5% של 7.5% סודיום ביקרבונט פתרון ו- 0.001% Β-mercaptoethanol. מקם את הבקבוקון חממה 37 ° C עם 5.2% CO2.
  2. לקצור את התאים 293T באמצעות טריפסין (0.025%)/EDTA (1 מ מ) בתוך תמיסת מלח באגירה פוספט (PBS). הוסף 5 מ של טריפסין/EDTA ב- PBS, דגירה המבחנות 10 דקות ב 37 ° C אינקובטור כדי לאפשר התנתקות של תאים 293T T75 המבחנות2 ס מ.
    1. לאסוף את התאים מנותקת ולשטוף אותם פעמיים ב- PBS להסיר את עקבות של טריפסין, EDTA. לספור את התאים עם hemocytometer ולהתאים את המספר של התא מיליון תאים לכל mL.
  3. Transfect תאים 293T18 עם 3.95 µg של psPAX2, ב- 1.32 µg של pMD2G µg 5.26 של pLEP-GFP-פורו (נוצר בחברה ב BRI על-ידי שיבוט יזם EF1alpha מ- pWPI במקום מקדם CMV ב pLenti CMV-GFP-Puro)19.
    1. להכין 1 מ"ל של 150 מ מ NaCl פלוס µL 63 של 0.6 מ"ג/מ"ל polyethylenimine (פיי; 25,000 kD, לינארית). מערבבים היטב, ואז מוסיפים את פלסמידים ומערבבים. תקופת דגירה של 20 דקות בטמפרטורת החדר ולאחר מכן להוסיף זה לתאים.
    2. 16 h שלאחר תרביות תאים, החלף המדיום תרביות תאים עם טרי בינוני פלוס 4.5 מ מ נתרן butyrate. לקצור את תגובת שיקוע המכיל וירוס 48 שעות שלאחר תרביות תאים, להתרכז על ידי צנטריפוגה לילה ב 5,000 × g. עיין בטבלה חומרים.
  4. לקבוע את titers ויראלי באמצעות תאים 293T על-ידי ביצוע דילולים טורי ואת וזמינותו לזרום cytometry 72 h התמרה חושית שלאחר20. השתמש בביטוי של חלבון פלואורסצנטי ירוק (GFP) כאמצעי לכמת את titers ויראלי.

3. הרחבת תאי NK העיקרי מאתר וטיהור

  1. לטהר מאתר ראשי NK תאים21. בקצרה, עוברים מתא בודד הטחול המתלים באמצעות ניילון עמודות צמר כדי לרוקן את אוכלוסיות חסיד המורכב תאים B ו מקרופאגים.
  2. תרבות האוכלוסיות שאינם מחסידי eluted ניילון צמר עמודה המכילה תאי NK מאתר עם אינטרלוקין U/mL 1,000 (IL)-2 RPMI1640 בינוני עם 10% FBS, פניצילין U/mL 100, סטרפטומיצין µg/mL 100, 1 מ מ נתרן פירובט, 5% של 7.5% סודיום ביקרבונט הפתרון, 0.001% β-mercaptoethanol (בינוני מלא RPMI1640).
  3. לשנות את המדיום מן המבחנות ביום 4 של תרבות זו להסיר את הלא-חסיד T ואת NKT תאים; תאים אשר נותרו מודבקת על המבחנות הם בעיקר תאי NK. הוסף 20 מ של טרי RPMI1640 מלאה בינונית, 1,000 U/mL il-2 לחדש המבחנות.
  4. לבדוק את הטוהר של התרבויות התא NK מאתר ביום 7 עד cytometry זרימה עם סמנים ייחודיים תא NK20 באמצעות תכשירים עם יותר מ- 95% של CD3NK1.1+ האוכלוסיה.

4. טיהור והרחבה של תאי NK ראשי אדם

  1. לבודד PBMCs על ידי צפיפות הדרגתי של מעילים באפי של מתנדבים בני אדם בריאים. בקצרה, בזהירות שכבה 35 מ של תאים חצי-מדולל (עם HBSS) מעל 15 מ"ל של דחיסות צבע בשפופרת הקנוני 50-mL. צנטריפוגה ב g × 400 למשך 30 דקות ב- 20 ° C ברוטור דלי מתנדנדים ללא בלם.
  2. השתמש את ערכות הבחירה שלילי נוגדן מבוססי מסחרי לטהר את תאי NK ראשי אדם על פי הפרוטוקול של היצרן.
  3. בעקבות הבידוד, לקבוע את הטוהר של ההכנות התא NK על ידי ניתוחים immunofluorescence. כתם ההכנות התא NK עם 2 µg/mL אנטי CD3 ו- 2 µg/mL נוגדנים anti-CD56 ב 4 מעלות צלזיוס במשך 20 דקות לשטוף את התאים פעמיים עם אוכלוסיות התא PBS NK נקבע על ידי העדר של CD3 ואת נוכחותם של CD56 על פני התא.
  4. דגירה ההכנות תא עם נוגדנים במשך 20 דקות ב 4 ° C, לשטוף עם PBS, לנתח ב- cytometer זרימה. השתמש ההכנות התא NK עם יותר מ-85% טוהר עבור התמרה חושית ג'ין מבחני20.

5. התמרה חושית של מאתר אנושי ראשוני NK ותאי עם lentivirus

  1. להשעות את העכבר או תאי NK ראשי אדם לתוך צלחת 24-ובכן-0.5 × 105/mL של מדיום בנוכחות GFP lentivirus supernatant-5, 10 ו- 20 הריבוי של זיהום (MOI) ובפני Pb (8 µg/mL), PS (8 µg/mL) או לתוספי (8 µg/mL).
  2. Centrifuge הלוחות ב g × 1000 עבור 60 דקות.
  3. בלי decanting את תגובת שיקוע, התרבות התאים בין לילה (16-18 h) חממה 37 ° C עם 5.2% CO2-
  4. לשטוף עם 10 מ"ל של PBS ו resuspend ב 2 מ"ל של מדיום תרבות RPMI1640 מלא בנוכחות il-2 (300 U/mL).
  5. מבחן האדם ואת העכבר הראשי NK תאית cytotoxicity נגד K562, YAC-1, בהתאמה על-ידי ביצוע 51כרום (Cr)-שחרור מבחני-מגוונות אפקטור-כדי--תא היעד יחסי22.
    1. בקצרה, לתת מיליון היעד תאים 50 µCi של נתרן radiolabeled כרומט 51Cr. במהלך זמן הדגירה 4-h, הם ספיגת 51Cr לתוך החלבונים. בסוף הדגירה, לשטוף את התאים כדי להסיר כל תווית לא מעובדות.
    2. לחשב גידול ספציפי תא פירוק לפי כמות שחרור מוחלט, ספונטנית, ניסיוני של 51Cr תאי היעד.
      הערה: החישוב של אחוז מסוים פירוק של ניסויים pentaplicate נעשה באמצעות המשוואה הבאה: פירוק ספציפית % = ((51Cr אומר מהדורה ניסויית - 51Cr לשחרור ספונטני מרושע) / (51Cr אומר שחרור מקסימלי - 51Cr אומר לשחרור ספונטני)) х 100, כאשר "51Cr לשחרור ספונטני מרושע" הוא 51Cr שוחרר מן התאים היעד בהיעדרו של תאי NK ו- "51Cr שחרור מקסימלי רעה" היא 51Cr שוחרר מן התאים היעד בעת פירוק על ידי 2 N חומצת מימן כלורי (HCl).
  6. לקצור תאי NK transduced ביום 7 על-ידי בעדינות הקשה המבחנות.
    1. להפעיל את התאים שנקטפו עם ריכוזים, טיטרציה של mAb מאוגד-צלחת אנטי-NKG2D (A10) על ידי ציפוי לוחות פוליסטירן 96-ובכן, מאוד חלבון-כושר ספיגה עם µg/mL 2.5, ריכוזי mAb אנטי-NKG2D בן לילה.
    2. לשטוף כל טוב עם µL 100 ל- PBS שלוש פעמים לפני התוספת של תאי NK העיקרי.
  7. לאסוף את התרבות supernatants באמצעות פיפטה רב ערוצית של בין 16 ו 18 h אחר-הפעלה לכמת ציטוקינים כגון IFN-γ. ליצור עקומות רגיל באמצעות של ציטוקינים רקומביננטי סיפק מקושרים-אנזים immunosorbent assay (אליסה) ערכות.
  8. לבחון את הכדאיות התא NK באמצעות annexin-V/7-אמינו-ואקטינומיצין D (7-מ) צביעת23 ולקבוע את האחוזים של תאים עם נמק בין תאי NK טרנספורמציה באמצעות cytometer של זרימה.
    1. לביצוע הזה assay, קציר תאי NK מאתר והאנושי ארבעה ימים לאחר התמרה חושית, לשטוף פעמיים עם 10 מ"ל של PBS קר ב 500 g × למשך 5 דקות ולאחר דגירה עם Annexin-V (PE) / ערכת 7-מ.
  9. להשתמש בתוכנה cytometry זרימה המתאים כדי לנתח את הנתונים. בחר את האוכלוסייה לחיות תאים ולנתח את הביטוי של GFP (ערוץ FITC) כאמצעי של התמרה חושית ויראלי24.

תוצאות

לתוספי המניע את העברה גנטית יעיל של וקטור lentiviral תאי NK העיקרי של מאתר ואנושי

תאי NK אדם היו מבודדים מטוהרת מכל PBMC (עם טוהר של יותר מ-85%), מודגרות בין לילה עם rIL-2 300 U/mL. אלה בתאי NK העיקרי היו אז transduced עם lentivirus GFP-multiplicities מגוונת של זיהום (MOI; 3, 10, ו- 20 לכ?...

Discussion

מחקר זה מדגים את השימוש לתוספי כמו סוכן פולימר cationic משפר את היעילות התמרה חושית lentiviral של תאי NK מאתר והאדם העיקרי. בנוסף, cationic סוכנים אחרים, כגון חמאת בוטנים או PS, יש השפעה ניכרת על המסירה של וקטורים ויראלי לתוך תאי NK ראשי אדם. בעבר, זה הוכח כי Pb אפשר להגדיל התמרה חושית הגן האנושי T תאים

Disclosures

המחברים טוענים אין ניגוד אינטרסים כספיים.

Acknowledgements

אנו מודים לוסיה Sammarco, לולו שלה לימונדה לעמוד השראה, מוטיבציה, תמיכה. עבודה זו היה נתמך בחלקה על ידי NIH R01 AI102893 ו CA179363 R01 NCI (בארקדיה); NHLBI-HL087951 (ס. ר); NIH-CA151893-K08 (M.J.R.); NCI 1R01CA164225 (L.W); קרן דוכן לימונדה אלכס (בארקדיה); התוכנית HRHM של הקרן MACC (בארקדיה; ס. ר; M.S.T); הקרן המשפחתית על ניקולס (בארקדיה); משפחת Gardetto (בארקדיה); החוקרים יונדאי התוכנית (M.S.T.); יונדאי תקווה על גלגלים (ס. ר); הקרן MACC (M.S.T. וש. מ.); מכון המחקר של הילדים, MCW (ס. ר); ופרס קטי Duffey פוגרטי (M.J.R.).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
DextranSigma-Aldrich90-64-91-9
polybrene (Pb)Sigma-AldrichTR-1003
protamine sulfate (PS)Sigma-Aldrichp3369
TrypsinCorning25-052-CI
RPMI1640Corning10-040-CV
Fetal Bovine SerumATALANTAS11150
PenicillinCorning30-001-CI
B-mercaptoethanolSIGMAM3148
sodium pyruvateCorningMT25000CI
Interferon gamma (IFN-γ )eBioscience14-7311-85
Propidium lodding staining solutionBD51-66211E
Lipofectamine 3000Thermo FisherL3000015
IsofluranePHOENIXNDC 57319-559-05
NK cell negative selection kitStem Cell19855
Yac-1ATCCTIB-160
K562ATCCCCL-243
MiceJakson664
293T cellsATCCCRL-3216
T75 flasksCornnig430641U
antibody-based negative selection kitsStem Cell19055
51Chromium (Cr)-release assaysperkin elmer'sNEZ030
ELISA kitsEbioscience00-4201-56
Sodium ButyrateSigma5887-5G
Linear polyethyleniminepolysciences23966-2
FicollGE Life Science17-1440-03
HBSSCorning21-022-CV

References

  1. Vivier, E., Tomasello, E., Baratin, M., Walzer, T., Ugolini, S. Functions of natural killer cells. Nat. Immunol. 9, 503-510 (2008).
  2. Zitvogel, L., Tesniere, A., Kroemer, G. Cancer despite immunosurveillance: immunoselection and immunosubversion. Nat. Rev. Immunol. 6, 715-727 (2006).
  3. Arina, A., et al. Cellular liaisons of natural killer lymphocytes in immunology and immunotherapy of cancer. Expert. Opin. Biol. Ther. 7, 599-615 (2007).
  4. Manilay, J. O., Sykes, M. Natural killer cells and their role in graft rejection. Curr. Opin. Immunol. 10, 532-538 (1998).
  5. Raulet, D. H., Vance, R. E. Self-tolerance of natural killer cells. Nat. Rev. Immunol. 6, 520-531 (2006).
  6. Chouaib, S., et al. Improving the outcome of leukemia by natural killer cell-based immunotherapeutic strategies. Front Immunol. 5, 95 (2014).
  7. Dulphy, N., et al. Underground Adaptation to a Hostile Environment: Acute Myeloid Leukemia vs. Natural Killer Cells. Front Immunol. 7, 94 (2016).
  8. Tran, J., Kung, S. K. Lentiviral vectors mediate stable and efficient gene delivery into primary murine natural killer cells. Mol. Ther. 15, 1331-1339 (2007).
  9. Maasho, K., Marusina, A., Reynolds, N. M., Coligan, J. E., Borrego, F. Efficient gene transfer into the human natural killer cell line, NKL, using the Amaxa nucleofection system. J. Immunol. Methods. 284, 133-140 (2004).
  10. Trompeter, H. I., Weinhold, S., Thiel, C., Wernet, P., Uhrberg, M. Rapid and highly efficient gene transfer into natural killer cells by nucleofection. J. Immunol. Methods. 274, 245-256 (2003).
  11. Becknell, B., et al. Efficient infection of human natural killer cells with an EBV/retroviral hybrid vector. J. Immunol. Methods. 296, 115-123 (2005).
  12. Jiang, K., et al. Syk regulation of phosphoinositide 3-kinase-dependent NK cell function. J. Immunol. 168, 3155-3164 (2002).
  13. Burshtyn, D. N., et al. Conserved residues amino-terminal of cytoplasmic tyrosines contribute to the SHP-1-mediated inhibitory function of killer cell Ig-like receptors. J. Immunol. 162, 897-902 (1999).
  14. Schroers, R., et al. Gene transfer into human T lymphocytes and natural killer cells by Ad5/F35 chimeric adenoviral vectors. Exp. Hematol. 32, 536-546 (2004).
  15. Imai, C., Iwamoto, S., Campana, D. Genetic modification of primary natural killer cells overcomes inhibitory signals and induces specific killing of leukemic cells. Blood. 106, 376-383 (2005).
  16. Denning, W., et al. Optimization of the transductional efficiency of lentiviral vectors: effect of sera and polycations. Mol. Biotechnol. 53, 308-314 (2013).
  17. Lamers, C. H., Willemsen, R. A., Luider, B. A., Debets, R., Bolhuis, R. L. Protocol for gene transduction and expansion of human T lymphocytes for clinical immunogene therapy of cancer. Cancer Gene Ther. 9, 613-623 (2002).
  18. Campeau, E., et al. A versatile viral system for expression and depletion of proteins in mammalian cells. PLoS. ONE. 4, e6529 (2009).
  19. Segura, M. M., Garnier, A., Durocher, Y., Ansorge, S., Kamen, A. New protocol for lentiviral vector mass production. Methods Mol. Biol. 614, 39-52 (2010).
  20. Rajasekaran, K., et al. Signaling by Fyn-ADAP via the Carma1-Bcl-10-MAP3K7 signalosome exclusively regulates inflammatory cytokine production in NK cells. Nat. Immunol. 14, 1127-1136 (2013).
  21. Regunathan, J., Chen, Y., Wang, D., Malarkannan, S. NKG2D receptor-mediated NK cell function is regulated by inhibitory Ly49 receptors. Blood. 105, 233-240 (2005).
  22. Awasthi, A., et al. Rap1b facilitates NK cell functions via IQGAP1-mediated signalosomes. J. Exp. Med. 207, 1923-1938 (2010).
  23. Rajasekaran, K., et al. Transforming Growth Factor-{beta}-activated Kinase 1 Regulates Natural Killer Cell-mediated Cytotoxicity and Cytokine Production. J Biol. Chem. 286, 31213-31224 (2011).
  24. Wolkowicz, R., Nolan, G. P., Curran, M. A. Lentiviral vectors for the delivery of DNA into mammalian cells. Methods Mol. Biol. 246, 391-411 (2004).
  25. Sutlu, T., et al. Inhibition of intracellular antiviral defense mechanisms augments lentiviral transduction of human natural killer cells: implications for gene therapy. Hum. Gene Ther. 23, 1090-1100 (2012).
  26. Cornetta, K., Anderson, W. F. Protamine sulfate as an effective alternative to polybrene in retroviral-mediated gene-transfer: implications for human gene therapy. J. Virol. Methods. 23, 187-194 (1989).
  27. Toyoshima, K., Vogt, P. K. Enhancement and inhibition of avian sarcoma viruses by polycations and polyanions. Virology. 38, 414-426 (1969).
  28. Jensen, M., et al. The bi-specific CD3 x NCAM antibody: a model to preactivate T cells prior to tumour cell lysis. Clin. Exp. Immunol. 134, 253-263 (2003).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

131NKlentivirus

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved