JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

פרוטוקול כאן מתאר את האינטראקציות של מטוהרים hEAG1 יון ערוץ חלבון עם מולקולה קטנה השומנים ליגנד phosphatidylinositol 4, 5-bisphosphate (פיפ2). המדידה מדגים כי מתה על יכול להיות שיטה אפשרית להקרנה ליגנד ערוץ הרומן יון מולקולה קטנה.

Abstract

וזמינותו אינטרפרומטריה (בלי) ביו-שכבה הוא כלי רב ערך למדידת חלבון ואינטראקציות מולקולת חלבון-קטן. כאן, נתאר תחילה את היישום של טכניקה זו ללא תווית הרומן ' את האינטראקציה של האדם EAG1 (hEAG1) חלבונים ערוץ עם פיפ מולקולה קטנה2. hEAG1 ערוץ הוכר מטרה טיפולית פוטנציאל בגלל שלה ביטוי aberrant סרטן, מוטציות רווח-של-פונקציה מספר מעורבים בסוגים מסוימים של מחלות נוירולוגיות. אנו מטוהר hEAG1 חלבונים ערוץ ממערכת בתרבית של הביטוי יציב, מדדו את האינטראקציה עם פיפ2 מאת רבנות בלי. מדידת מוצלחת קינטיקה של האיגוד בין חלבון hEAG1 ו- PIP2 מדגים כי וזמינותו רבנות בלי היא גישה תפוקה גבוהה פוטנציאליות בשימוש להקרנה ליגנד מולקולה קטנה הרומן בפרמקולוגיה ערוץ יון.

Introduction

פילוח החלבונים ערוץ יון הנגיש על-פני התא עם מולקולות קטנות מציע פוטנציאל עצום ליגנד ההקרנה של תרופות ביולוגיות גילוי1,2,3. לפיכך, מתאימה לכלי יש צורך ללמוד את האינטראקציה בין תעלת יונים, מולקולות קטנות, תפקידם המתאימים. ההקלטה תיקון-קלאמפ הוכח להיות טכניקה ייחודית ובלתי ניתנים להחלפה ביון ערוץ assay פונקציונלי. עם זאת, קביעה אם מולקולות קטנות ישירות למטרה תעלות יונים לדרוש טכנולוגיות אחרות. באופן מסורתי, וזמינותו מחייבת ליגנד רדיואקטיבי שימש כדי לבחון את קינטיקה של האיגוד בין מולקולה קטנה שלה חלבון ערוץ יון היעד. עם זאת, השימוש בטכניקה זו הוא מוגבל בשל דרישה שלה ב תיוג רדיואקטיבי וזיהוי. יתר על כן, השלב מוקדם לה תווית של ליגנד קטן במחקר מונע שלה באמצעות בסוגים רבים של תעלות יונים ללא ידוע ליגנד מסוים. כמה טכניקות ללא תווית כגון NMR ספקטרוסקופיה, קרני רנטגן, microscale thermophoresis (MST)4 , משטח פלזמון תהודה (SPR) שימשו כדי למדוד את האינטראקציות מולקולת חלבון-קטן. אבל אלו סוגים של מבחני בד כ אינו יכול לספק מידע מספיק בגלל הקושי להשיג את החלבון באורך מלא, ברזולוציה נמוכה של dynamics, תפוקה נמוכה, עלות גבוהה5. לעומת שיטות אלה, ביו-שכבה אינטרפרומטריה (רבנות בלי) מתגלה כקבוצה מתודולוגיה הרומן ללא תווית להתגבר על החסרונות האלה לגילוי אינטראקציות חלבון-קטן מולקולה על ידי שיתק של כמויות זעירות של חלבון מדגם של משטחי ביוסנסור ומדידת השינויים אופטי אותות6,7. כפלטפורמה ביוסנסור מבטיח, מתה על הטכניקה מתבצעת כבר כדי לבחון את האינטראקציה של מולקולות קטנות עם מים טבעיים חלבונים מסיסים כגון נוגדן חד שבטי האדם CR80208 , ההליך assay מפורט ודווח ב במאמר הקודם9. למרות התפקיד של יון חלבון ערוץ עבור גילוי מטרות טיפולית חדש זוהה, יש יון ערוץ מולקולת חלבון-קטן אינטראקציה וזמינותו בהתבסס על רבנות בלי לא תוארו.

האדם ערוצי א' אתר גו-גו (hEAG1) באים לידי ביטוי בסוגים שונים של תאים סרטניים, מערכת העצבים המרכזית, מה שהופך את ערוץ פוטנציאל טיפולי היעד של רבים סרטן, הפרעות עצביים10,11, 12,13,14. המחקר אלקטרופיזיולוגיות במעבדה שלנו אישרה את ההשפעה המעכבת של phosphatidylinositol 4, 5-bisphosphate (פיפ2) ערוץ hEAG115. בהתבסס על התוצאות שלנו, בדיקות פיפ2 ישירות אינטראקציה עם hEAG1 על-ידי שימוש בטכניקה רבנות בלי יכול להיות כמודל עבור סוגים אחרים של יון ערוץ מולקולת חלבון-קטן אינטראקציה מורכבת במיוחד עבור ערוצים אלה חסר ליגנדים ספציפיים. בהתאם להנחיות של רבנות בלי assay, אנו מוכנים biotinylated hEAG1 חלבונים, ותשמרו אותם על פני השטח של streptavidin (SA) טיפים ביוסנסור ואחריו אינטראקציה עם אותם לפתרונות2 פיפס להתבונן שלהם קישור ישיר בין חלבון, את השומנים. לאחר מגדילה הקובץ המצורף של פיפ2 משטח מצופה hEAG1 חלבון, עובי השכבה על פני השטח, אשר ישירות מופיע משמרת רפאים, ולא ניתן למדוד בזמן אמת16. קינטיקה האיגוד יכול להיקבע בשל תפנית חיובית בשלב ההתאגדות ואת משמרת שלילית בשלב דיסוציאציה. לפי עיקרון זה, אנחנו מטוהרת החלבון ערוץ יון hEAG1 תפקודית ממערכת ביטוי יציב HEK-239T על-ידי בשיטת טיהור זיקה לשמור במבחנה למצב התפקודי, ואז למדוד את קינטיקה של איגוד של ריכוז שונים פיפ2, הניבו נתונים קינטי semblable כפי שנצפתה מדידות אלקטרופיזיולוגיות15. ההתכתבות קרוב בין תוצאות רבנות בלי מדידות אלקטרופיזיולוגיות להדגים בפעם הראשונה ההתאמה של רבנות בלי ככלי אנליטי המתאים לאינטראקציה יון ערוץ ממברנה מולקולת חלבון-קטן.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

הערה: שורת התאים HEK-293T ללא הרף ביטוי מתויג דגל hEAG1 ערוץ חלבון נבנה על ידי transfecting pCDH lentiviral פלסמיד המכיל רצף הדנ א של hEAG1 עם דגל-קרבוקסילי דיסטלי לתאים HEK-293T ואחריו הבחירה עמידים puromycin תיאר כאמור15.

1. זיקה טיהור של חלבון hEAG1 ערוץ מתויג דגל מתאי HEK-293T

  1. הפשרת תאים stably לבטא hEAG1 ערוצים מכל חנקן נוזלי לתוך המים החמים (37 מעלות צלזיוס) במהירות. זרע התאים (בערך 5 x 106 קפוא תאים) בקערה 10 ס מ. לגדול התא לילה ששינה הנשר של Dulbecco (DMEM) בינוני בתוספת 8 מ ל 10% עוברית שור סרום (FBS), 100 יחידות/mL פניצילין, סטרפטומיצין μg/mL 100, 4 מ מגלוטמין ושינה המדיום למחרת.
  2. לבדוק את ה-GFP זריחה של תאים אלה HEK-293T באמצעות מיקרוסקופ פלואורסצנטי כדי לוודא האחוז הגבוה של תאים stably אקספרס hEAG1 הערוצים למערכת culturing. אקספוננציאלית trypsinize התאים גדל עם 1 מ"ל של 0.25% טריפסין עבור 1 דקות בטמפרטורת החדר, thenadd 2 מ"ל של סרום המכיל נוזל תרבות לסיים את העיכול. העברת μL 400 של השעיה תא צלחת 15 ס מ המכיל 15 מ"ל של מדיום DMEM מלאה. הכינו ארבע המנות 15 ס מ סך הכל.
  3. קציר תאים אלה לאחר 2-3 ימים התרבות התאים מגיעות כ- 90% confluency.
    1. הסר את מדיום הגידול של התאים ולשטוף אותם פעמיים עם 4 מ"ל של פוספט buffered מלוחים (1 x PBS, pH = 7.4).
    2. להתעלם PBS לאחר הרחצה.
    3. לגרד את התאים לתוך 2 מ"ל PBS 1 x עבור כל מנה באמצעות תא פרק של העברת תאי שרוטים עם 1 מ"ל פיפטה לתוך צינור 15 מ"ל.
    4. Centrifuge התליה תא עבור 5 דקות ב 420 g x-4 מעלות צלזיוס.
    5. Decant ולמחוק את תגובת שיקוע.
    6. Resuspend בגדר תא ב הכולל 4 מ"ל של פירוק מאגר (10 מ מ HEPES, 1.5 mM MgCl2, 10 מ מ NaCl, 1% NP-40, pH 7.0, מעכבי פרוטאז המלא הכיל) במשך 30 דקות על קרח, ו מערבולת ביסודיות lysate כל 10 דקות.
    7. Centrifuge תא lysate 10 דקות ב g x 12,000-4 מעלות צלזיוס.
    8. להעביר את תגובת שיקוע שפופרת 5 מ ל ולשמור אותו בקרח לשימוש מיידי.
  4. הכנת אנטי-דגל M2 זיקה שרף.
    1. ביסודיות להשעות את השרף (שסופקו כמו השעיה 50% במאגר החנות) על-ידי היפוך עדין כדי לוודא שהבקבוק של אנטי-דגל M2 זיקה ג'ל הוא השעיה אחיד של חרוזי ג'ל.
    2. מיד העברה μL 400 של השעיה צינור mL 1.5 צוננת.
    3. Centrifuge התליה עבור 30 s-8, 000 x g ב 4 ° C וזורקים את תגובת שיקוע בקפידה כדי לשטוף את המאגר החנות.
    4. להוסיף 500 μL 1 x PBS שרף, להשעות את גלולה עם פיפטה 1 מ"ל. ואז centrifuge את המתלים עבור 30 s-8, 000 x g ב 4 ° C וזורקים את PBS supernatant בזהירות. חזור על אלה שטיפת צעד כדי לנקות את המאגר השמור.
  5. להוסיף 500 μL חלבון תמצית תגובת שיקוע מוכן בשלב 1.3.8 כדי בגדר שרף להשעות את צניפה ולהעביר את המתלים ל צינור מ ל צוננת. חזור על שלב זה שוב כדי לוודא אין חרוזי ג'ל שמאלה. להוסיף את תמצית חלבון השמאלי התערובת.
  6. דגירה את התערובת למשך הלילה על מטרף-סל ד 8-4 ° C כדי ללכוד את חלבון כימרי דגל.
  7. Centrifuge את התערובת לאחר 12 שעות הדגירה במשך 10 דקות ב- 1, 000 x ג'י ב- 4 מעלות צלזיוס.
  8. למחוק את תגובת שיקוע ולשטוף בגדר שלוש פעמים עם 500 μL ל- 1 x PBS. . לשמור את זה על הקרח לשימוש מיידי.
  9. • תנאי hEAG1 הדגל חלבונים עם 3 x דגל פפטיד.
    1. להכין פתרון • תנאי דגל X 3. להמיס פפטיד 3 X דגל בפתרון מניות μL 500 (0.5 מ' טריס-HCl, 1 M NaCl, pH = 7.5)-ריכוז של 8 μg/μL.
    2. להוסיף 10 μL 3 x דגל • תנאי פתרון μL 390 ל- PBS כפתרון הריכוז הסופי 200 ng/μL.
    3. להוסיף μL 400 בפתרון • תנאי דגל x 3 חרוזים ג'ל מוכן בשלב 1.8.
    4. דגירה המדגם-ניעור ב 8 rpm עבור 2 h-4 מעלות צלזיוס.
    5. Centrifuge השרף ב-30 s-8, 000 x g.
    6. להעביר את תגובת שיקוע צינור mL 1.5 טריים ואחסן אותו ב 4 ° C לשימוש מיידי.

2. ריכוז Assay ופיוז'ן אישור של דגל מטוהר hEAG1 על ידי BCA חלבון Assay ערכת המערבי סופג

  1. לקבוע את הריכוז של חלבון מטוהרים באמצעות ערכת assay חלבון BCA לפי ההוראה של הייצור.
  2. השתמש 30 מדגם μL עבור ניתוח המערבי כדי לאשר שהחלבון עניין היה מטוהר באמצעות נוגדן אנטי-דגל כמו שתואר לעיל15.

3. תיוג את החלבון ערוץ מטוהרים עם ביוטין עבור וזמינותו רבנות בלי

  1. להכין 5 מ"ג/מ"ל ביוטין פתרון מניות ב- PBS. עבור כל בדיקה (שני ביולוגיים), להוסיף את עודף טוחנת 3-fold של ביוטין חלבון 20 μg מטוהרים להשיג biotinylation N-מסוף עדיפה של החלבון מטוהרים ב- PBS.
  2. דגירה המדגם בחושך על קרח במשך לפחות 30 דקות.
  3. הכנת המאגר דילול (SD) לדוגמה: PBS עם 0.02% polysorbate 20 ו- 0.1% שור אלבומין (BSA, pH 7.4).
  4. לבצע אולטראפילטרציה לשנות את המאגר של החלבון ערוץ מטוהרים למאגר SD. להסיר את ביוטין לא מאוגד על-ידי שימוש בהתקן אולטראפילטרציה עם הפסקת משקל מולקולרי של 30 kDa, הוספת המאגר SD ו צריך שתוציאו את הדגימה-12,000 x g, 10 דקות ב 4 º C.
  5. להסיר את ultrafiltrate מהצינור צנטריפוגה של התקן אולטראפילטרציה, להוסיף 200 מאגר SD μL לתוך המכשיר מסנן, צריך שתוציאו את הדגימה ב g x 12,000, 10 דקות ב 4 º C. חזור על פעולה זו לפחות שלוש פעמים.
  6. כדי לאסוף את המאגר החליפו לדוגמה, הפוך הכנס את ההתקן מסנן לתוך צינור 1.5 mL צריך שתוציאו אותם ב- g 2,000 x, עבור 5 דקות ב 4 º C. שמור את הדגימה על הקרח לשימוש מיידי.

4. הכנה של פיפ2 פתרון Assay

  1. הכן את הפתרון מניות של פיפ2 (1 מ מ) יונים H2O על ידי sonicating במשך 30 דקות על קרח כפי שתואר לעיל17. לאחסן את הפתרון צלוחיות זכוכית ב-20 ° C, למהול אותו ריכוזי הסופי מיד לפני ניסויים על-ידי vortexing נמרצת.

5. מתה על Assay

  1. להפעיל את הציוד, לבדוק את החלון "מצב כלי" כדי לאשר שהמכונה הוא במצב "מוכן" כדי prewarm את הציוד לפחות למשך 30 דקות לפני המחקר רבנות בלי.
  2. תוודא שהדלת של המכשיר סגורה לפני פתיחת התוכנה רכישת נתונים ובחר "חדש קינטיקה הניסוי" אשף הניסוי.
  3. הגדר את הבארות כדי לשמש בצלחת 96-ובכן על ידי קליק ימני כדי לבחור מאגר העומס, לדוגמה. לדוגמה-וולס, היחידה של ריכוז biotinylated דגל חלבון כימרי hEAG1 צריך להיות קלט כמו טוחנת (10 μg, 0.09 μM).
  4. הגדר את השלבים assay כולל בסיסית, טעינה, דיסוציאציה וארגון. בחר שלב assay, לחץ פעמיים על העמודה המתאימה. עותק של הגדרת assay מוגדר עבור פקד חיישנים. הגדר את סל ד 1,000. לבחור 1 דקות עבור שלב בסיסי של 5 – 10 דקות טעינה, שיוך של דיסוציאציה, בהתאמה. לבצע את הבדיקה בטמפרטורת החדר (בערך 24 מעלות צלזיוס).
    הערה: ישנם שני הליכים הראשי: assaying את האינטראקציה עם תרכובות מולקולה קטנה וטעינה החלבון ערוץ biotinylated את החיישנים. הם יכולים להיות המשיך ברציפות (בסיסית, וטעינה, בסיסית, שיוך של דיסוציאציה). לחלופין, הם יכולים להיות המשיך בנפרד כדי שתימנעו מלבזבז את תרכובות הבדיקה כאשר ההעמסה הראשון חלק לא מוצלח.
  5. לחץ על העמודות אשר מכילים את החיישנים ולחץ על "מילוי" כדי לציין את מיקומם של חיישנים במגש חיישן.
  6. סקור כל המתוכנן צעדים כדי לבדוק טעויות וכדי לחזור לתקנם.
  7. להגדיר את המיקום של קבצי נתונים ולחץ על "לך" להתחיל וזמינותו.
    הערה: החיישנים צריכים prewetted לפחות 10 דקות במאגר SD, אם צעד זה נעשה, אז צריך ניתן לדלג את ההגדרה "ניסוי התחלה מושהית". אם לא, לקבוע השהיה s 600 לפני prewetting את החיישנים.
  8. לשים צלחת 96-ובכן השחור בתחתית המגש והכנס את הפינה A1 של הצלחת לתוך החריץ על המגש להושיב את הצלחת. בשביל הבארות לטעון את החיישנים, 200 μL assay מאגר לכל טוב להוסיף לתוך בארות 2 בשורה A ו- 2 וולס בשורה B של צלחת 96-ובכן.
  9. להכין עוד צלחת 96-ובכן שחור כמו הצלחת לדוגמה ולמלא הבארות באמצעות מאגר SD μL 200 בשורה B כפתרון שליטה או biotinylated hEAG1 חלבון (10 μg) בשורה A כפי שהוקצו במהלך תכנות בשלב 5.3.
    הערה: להימנע היכרות עם בועות.
  10. פתח את הדלת של המכשיר הכנס את המגש חיישן, לטעום את הצלחת לתוך בעל לוחית ימינה ושמאלה, בהתאמה. בדוק הצלחת מגש על מדגם של חיישן ממוקמות כהלכה המבוססת על הצורה של לוחית שמאל ו- the marker "A1" בפינה הימנית העליונה של לוחית נכון. . סגור את הדלת ולהתחיל וזמינותו.

6. ניתוח נתונים

  1. פתח את תוכנת ניתוח נתונים וטען את התיקייה המכילה את הנתונים וזמינותו. לחץ על "עיבוד" להיכנס לממשק תפריט עיבוד, אנו יכולים לראות. את עקומות קינטי raw צבעוני.
  2. תחת שלב 1: 'בחירת הנתונים', לחץ על "חיישן בחירה". על "חיישן מגש #1", לחץ על הבארות חיישן בלבד שנרטבו עם מאגר SD, קליק ימני על "שינוי סוג חיישן" "הפניה חיישן". על ' מפה צלחת לדוגמה ", לייעד את כל איגוד שאינם ספציפיים הבארות, לחץ לחיצה ימנית כדי"שינוי טוב סוג"כדי"הפניה טוב".
  3. סמן בתיבת לפני "חיסור" של שלב 2 והצבע "הפניה כפולה".
  4. בשלב3: "ליישר ציר Y", בחר "בסיסית" כשלב יישור. עבור "טווח הזמן", הזן 10 האחרונים s של הבסיס הזה (קרי מ: 0.1: 59.8).
  5. בשלב4: הבין-"שלב תיקון", בחר "יישר בסיסית" כדי למזער את האות משמרות בין השלבים דיסוציאציה וארגון.
  6. שלב5: "תהליך", בחר פונקציית סינון Savitzky-Golay ברוב המקרים והמשך "תהליך נתונים".
  7. שמירת נתונים גולמיים עבור ניתוח נתונים נוסף באמצעות תוכנות אחרות בשלב 7: "שמירת תוצאות".
  8. לחץ על "ניתוח | פריסטלטיות".
    1. "צעד כדי לנתח", בחרו "האגודה | דיסוציאציה". "מודל", בחר 1:1.
      הערה: אנו בוחרים דגם 1:1 כי הוא מצויד היטב על הנתונים המקורי שלנו, למנוע את האפשרות של מעל הולם תחת 1:2 או 2:1 מודל בשל החופש שלהם גבוהה. אך אפשרויות אחרות זמינים כאן ניתן לבחור כראוי לניתוח השני מתאים לדגמי קישור שונים של analyte.
    2. "התאמה", בחר עולמי (מלא). עבור "קבץ לפי", בחר "צבע". בחר "Rmax אינם מקושרים על ידי חיישן" כדי לאפשר התאמה עצמאית של התגובה האות מקסימלי (Rmax).
    3. לחץ על "התאם עקומות!" כדי להתחיל את ניתוח רגרסיה לא ליניארית. משוואת היל אקספוננט יחיד שימשו במחקר שלנו.
    4. לחץ על ' ייצוא נתונים | שמירת דוח"להציל את התאמת תוצאות. או לחץ על ' ייצוא נתונים | ייצוא תוצאות המדידה"כדי לשמור את הנתונים הגולמיים עבור יצירת גרפים נוספים וניתוח נתונים עם תוכנות אחרות.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

אנחנו טהור החלבון ערוץ דגל hEAG1 פיוז'ן מן hEAG1 stably overexpressed תאים HEK-293T. הפונקציה של חלבון כימרי זה הוכח באמצעות פעולת תיקון-קלאמפ, איכות וספציפיות של חלבון מטוהרים מאושרות על-ידי תספיג חלבון (איור 1). החלבון ערוץ מטוהרים היא biotinylated כדי לבצע וזמינותו של אינטראקצי?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

תעלות יונים ממברנה שאומתו כאתרי המטרות הטיפוליות העיקריות של למעלה מ- 13% של תרופות הידועות כרגע לטיפול במגוון מחלות אנושיות, כולל הפרעות נוירולוגיות וכלי דם18. תיקון-קלאמפ הקלטה, תקן הזהב למדידת עם פונקציונליות של תעלות יונים עם מולקולות קטנות, כבר בשימוש נרחב עבור יון ערוץ לי?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Disclosures

המחברים מצהירים כי יש להם אינטרסים כלכליים אין מתחרים.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי קרן מחקרים בין-תחומית SJTU ב רפואה, הנדסה (YG2016QN66), הלאומי מדעי הטבע קרן של סין (31271217) ו הלאומי בסיסי מחקר תוכנית של סין (2014CB910304) ומרכז ביו-ID.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
DMEM/High Glucose MediumHyCloneSH30243.01
Phosphate Buffered Saline (1x)HyCloneSH30256.01
Fetal Bovine SerumGibco10270
Penicillin/StreptomycinGibco1697550
Cell Culture DishCorning430599150 mm X 25 mm
Nonidet P-40 SubstituteAmrescoE109
Sodium chlorideBBI Life SciencesA610476
Potassium chlorideBBI Life SciencesA610440
Bovine Serum AlbuminBBI Life SciencesA600332
Polyoxyethylene-20-Sorbitan MonolaurateBBI Life SciencesA600560
ANTI-FLAG M2 Affinity GelSigmaA2220
3x FLAG peptideSigmaF4799
Octet-RED96Pall/FortéBio30-5048
Data Acquisition softwarePall/FortéBioVersion 7.1
Data Analysis softwarePall/FortéBioVersion 7.1
Biosensor/StreptavidinPall/FortéBio18-5019
Microtiter plateGreiner Bio-one655209
Sulfo-NHS-LC-LC-BiotinThermoFisher21338
Centrifugal MachineThermoFisher75004250
PageRuler Prestained Protein LadderThermoScientific318120
Ultrafiltration deviceMILLIPOREUFC503008NMWL of 30 kDa
phosphatidylinositol 4, 5-bisphosphate (PIP2)SigmaP9763
Monoclonal ANTI-FLAG M2 antibodySigmaF18041:2000 dilution
goat anti-mouse HRP-conjugated secondary antibodySanta Cruz Biotechnologysc-20051:5000 dilution
Enhanced BCA Protein Assay KitBeyotimeP0010
Protease Inhibitor Cocktail TabletsRoche04693159001
Amersham Imager 600 Imaging SystemGE Healthcare Bio-Sciences
Western blot systemBIO-RAD

References

  1. Peetla, C., Stine, A., Labhasetwar, V. Biophysical Interactions with Model Lipid Membranes: Applications in Drug Discovery and Drug Delivery. Mol. Pharm. 6 (5), 1264-1276 (2009).
  2. van de Waterbeemd, H., Smith, D. A., Beaumont, K., Walker, D. K. Property-based design: Optimization of drug absorption and pharmacokinetics. J. Med. Chem. 44 (9), 1313-1333 (2001).
  3. Papo, N., Shai, Y. Exploring peptide membrane interaction using surface plasmon resonance: Differentiation between pore formation versus membrane disruption by lytic peptides. Biochemistry. 42 (2), 458-466 (2003).
  4. Wienken, C. J., Baaske, P., Rothbauer, U., Braun, D., Duhr, S. Protein-binding assays in biological liquids using microscale thermophoresis. Nat. Commun. 1, 100-106 (2010).
  5. Fechner, P., et al. Size does matter! Label-free detection of small molecule-protein interaction. Anal. Bioanal. Chem. 406 (17), 4033-4051 (2014).
  6. Wallner, J., Lhota, G., Jeschek, D., Mader, A., Vorauer-Uhl, K. Application of Bio-Layer Interferometry for the analysis of protein/liposome interactions. J. Pharm. Biomed. Anal. 72, 150-154 (2013).
  7. Wartchow, C. A., et al. Biosensor-based small molecule fragment screening with biolayer interferometry. J. Comput. Aided Mol. Des. 25 (7), 669-676 (2011).
  8. Ekiert, D. C., et al. A Highly Conserved Neutralizing Epitope on Group 2 Influenza A Viruses. Science. 333 (6044), 843-850 (2011).
  9. Shah, N. B., Duncan, T. M. Bio-layer Interferometry for Measuring Kinetics of Protein-protein Interactions and Allosteric Ligand Effects. J. Vis. Exp. (84), e51383(2014).
  10. Occhiodoro, T., et al. Cloning of a human ether-a-go-go potassium channel expressed in myoblasts at the onset of fusion. Febs Lett. 434 (1-2), 177-182 (1988).
  11. Pardo, L. A., Stuhmer, W. Eag1: An emerging oncological target. Cancer. Res. 68 (6), 1611-1613 (2008).
  12. Simons, C., et al. Mutations in the voltage-gated potassium channel gene KCNH1 cause Temple-Baraitser syndrome and epilepsy. Nat. Genet. 47 (1), 73-77 (2015).
  13. Kortum, F., et al. Mutations in KCNH1 and ATP6V1B2 cause Zimmermann-Laband syndrome. Nat. Genet. 47 (6), 661-667 (2015).
  14. Han, B., Tokay, T., Zhang, G. M., Sun, P., Hou, S. Eag1 K+ Channel: Endogenous Regulation and Functions in Nervous System. Oxid. Med. Cell. Longev. 2017, (2017).
  15. Han, B., et al. Human EAG channels are directly modulated by PIP2 as revealed by electrophysiological and optical interference investigations. Sci. Rep. 6, (2016).
  16. Do, T., et al. A rapid method for determining dynamic binding capacity of resins for the purification of proteins. PREP. 60 (2), 147-150 (2008).
  17. Rohacs, T., Chen, J., Prestwich, G. D., Logothetis, D. E. Distinct specificities of inwardly rectifying K+ channels for phosphoinositides. J. Biol. Chem. 274 (51), 36065-36072 (1999).
  18. Overington, J. P., Al-Lazikani, B., Hopkins, A. L. How many drug targets are there? Nat. Rev. Drug Discov. 5 (12), 993-996 (2006).
  19. Suh, B. C., Hille, B. PIP2 is a necessary cofactor for ion channel function: How and why? Annu. Rev. Biophys. 37, 175-195 (2008).
  20. Yang, D., Singh, A., Wu, H., Kroe-Barrett, R. Determination of High-affinity Antibody-antigen Binding Kinetics Using Four Biosensor Platforms. J. Vis. Exp. (122), e55659(2017).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

133EAG1 hEAG1

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved