JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

מעקף יחיד anastomosis duodeno-ileal (SADI-S) הוא הליך בריאטרי מתפתח עם השפעות מטבוליות חשובות. במאמר זה, אנו מציגים מודל אמין וניתן לשחזור של SADI-S בעכברים.

Abstract

השמנת יתר היא בעיה בריאותית מרכזית ברחבי העולם. כתגובה, ניתוחים בריאטריים התפתחו לטיפול בהשמנת יתר ובתחלואה הנלווית אליה (למשל, סוכרת, דיסליפידמיה, סטיאטוהפטיטיס לא אלכוהולית, אירועים קרדיווסקולריים וסרטן) באמצעות מנגנונים מגבילים ומלבספטיביים. הבנת המנגנונים שבאמצעותם הליכים אלה מאפשרים שיפורים כאלה דורשת לעתים קרובות את העברתם לבעלי חיים, במיוחד בעכברים, בגלל הקלות של יצירת בעלי חיים מהונדסים גנטית. לאחרונה, מעקף יחיד anastomosis duodeno-ileal עם שרוול gastrectomy (SADI-S) התפתחה כהליך המשתמש הן השפעות מגבילות ו malabsorptive אפקט, אשר משמש כחלופה מעקף קיבה במקרה של השמנת יתר גדולה. עד כה, הליך זה היה קשור עם שיפורים מטבוליים חזקים, אשר הוביל לעלייה ניכרת בשימוש בו בפועל הקליני היומי. עם זאת, המנגנונים העומדים בבסיס השפעות מטבוליות אלה נחקרו בצורה גרועה כתוצאה ממחסור במודלים של בעלי חיים. במאמר זה, אנו מציגים מודל אמין וניתן לשחזור של SADI-S בעכברים, עם דגש מיוחד על ניהול perioperative . התיאור והשימוש במודל מכרסמים חדש זה יסייעו לקהילה המדעית להבין טוב יותר את השינויים המולקולריים, המטבוליים והמבניים הנגרמים על ידי SADI-S ולהגדיר טוב יותר את האינדיקציות הכירורגיות לפרקטיקה קלינית.

Introduction

השמנת יתר היא מצב מתפתח ואנדמי עם שכיחות הולכת וגוברת, המשפיעה על בערך 1 מתוך 20 מבוגרים ברחבי העולם1. ניתוח בריאטרי הפך לאפשרות הטיפול היעילה ביותר עבור המבוגרים המושפעים בשנים האחרונות, שיפור הן ירידה במשקל והפרעות מטבוליות2,3, עם תוצאות משתנות בהתאם לסוג ההליך הכירורגי בשימוש.

ישנם שני מנגנונים עיקריים המעורבים בהשפעות הפרוצדורות הבריאטריות: הגבלה שמטרתה להגביר את השובע (כמו בכריתת קיבה בשרוול (SG) שם מסירים 80% מהקיבה), ותת ספיגה. בין ההליכים המרמזים הן על הגבלה והן על תת-ספיגה, מעקף אנסטומוזיס דואודנו-איליאלי יחיד עם כריתת קיבה בשרוול (SADI-S) הוצע כחלופה למעקף קיבה Roux-en-Y (RYGB), שבו נצפתה עלייה חוזרת במשקל בכ -20% מהחולים 4,5. בשיטה זו, כריתת שרוול קיבה קשורה לסידור מחדש של המעי הדק, ומחלקת אותו לגפה מרה ולגפה משותפת קצרה (שליש מאורך המעי הדק הכולל) (איור 1A). מבחינה טכנית, ל- SADI-S יש יתרון על פני ה- RYGB בכך שהוא דורש אנסטומוזה אחת בלבד, מה שמקצר את זמן הפעולה בכ -30%. בנוסף, שיטה זו משמרת את הפילורוס, אשר מסייע להפחית את הסיכון למחלת כיב פפטי ומגביל דליפה אנסטומטית. SADI-S קשורה גם עם שיעור גבוה של שיפור מטבולי, מאוד מעדיף את השימוש בו במהלך השנים האחרונות 6,7.

מכיוון שההשפעות המטבוליות הפכו יותר ויותר בסיסיות להליכים בריאטריים, הבהרת המנגנונים שלהם נראית חיונית. לכן, השימוש במודלים של בעלי חיים עבור הליכים בריאטריים הוא בעל חשיבות עליונה כדי להבין טוב יותר את ההשפעות המטבוליות שלהם ואת המסלולים התאיים והמולקולריים המעורבים8. מודלים אלה תרמו, למשל, להבנה טובה יותר של השינוי בצריכת המזון לאחר SG או RYGB בסביבה מבוקרת9 ולחקר שטפי גלוקוז או כולסטרול דרך מחסום המעי10,11; מידע זה זמין לעתים רחוקות במחקרים קליניים. ידע זה יכול לסייע להגדיר את האינדיקציות הניתוחיות האופטימליות שלהם. תיארנו בעבר דגמי עכברים של SG ו- RYGB12. עם זאת, למרות התוצאות המבטיחות שלו בקליניקה, SADI-S פותח ותואר רק בחולדות13,14,15. עם זאת, בהתחשב בגמישות הגנטית שלו, מודל העכבר היה שימושי בעבר כדי לחקור את ההשפעות המטבוליות השונות של הליכים כאלה16,17,18, ומודל עכבר SADI-S יכול להיות שימושי להערכת ההשפעות של SADI-S למרות הקושי הטכני.

במאמר זה אנו מתארים את ההסתגלות של תהליך SADI-S בעכברים (איור 1B) באופן שניתן לשחזר. תשומת לב מיוחדת ניתנת לתיאור הטיפול הפריאופרטיבי.

Protocol

פרוטוקול זה אושר על ידי הוועדה האתית הצרפתית המקומית לניסויים בבעלי חיים (Comité d'éthique en expérimentation animale; reference CEEA-PdL n 06).

1. הכנה טרום ניתוחית

  1. הוסף מזון דיאטת ג'ל לתזונה הרגילה 3 ימים לפני הניתוח. צום העכברים 6 שעות לפני הניתוח.
  2. יש להשרות הרדמה עם איזופלורן 5% (1 ליטר/דקה) בתא ייעודי עם חמצן (1 ליטר/דקה). להזריק את העכברים תת עורית עם buprenorphine (0.1 מ"ג / ק"ג), amoxicillin (15 מ"ג / ק"ג), metoclopramide (1 מ"ג / ק"ג), meloxicam (1 מ"ג / ק"ג) וברזל (0.5 מ"ג / ק"ג).
  3. יש לגלח את 2/3 החלקים הראשונים של בטנו של העכבר החל מתהליך הקסיפואיד באמצעות סכין גילוח חשמלי. לחטא את בטנו של העכבר בשני שלבים באמצעות תמיסת יוד פוליוידון .
  4. הניחו את העכבר על משטח חימום ייעודי המכוסה בכרית תחתונה נקייה. יש להרדים באמצעות חרוט אף עם איזופלורן 2%-2.5% (0.4 ליטר/דקה) עם חמצן (0.4 ליטר/דקה). השתמש בבדיקת צביטת בוהן כדי לאשר את עומק ההרדמה.
  5. כסו את העכבר בניילון נצמד מעוקר. על מנת להחיל hyperextension על הבטן של העכבר, לתקן את הכף התחתונה ולהשתמש מזרק 1 מ"ל או שווה ערך ממוקם מאחורי הגב של העכבר. חותכים פתח בדחיסה סטרילית בגודל החתך העתידי, ומשתמשים בו כשדה ניתוח לכיסוי העכבר. ההתקנה הכללית מוצגת באיור 2A.
  6. לפני הניתוח יש להשתמש במסכת פנים, כובע קרצוף וכפפות מעוקרות. השתמש במכשירים מעוקרים לצורך הניתוח.

2. פרוטוקול SADI-S

  1. חציון לפרוטומיה
    1. תחת מיקרוסקופ דו-עיני (הגדלה של פי 8), בצעו לפרוטומיה חציונית עם מספריים או אזמל על ידי פתיחת עור הבטן מתהליך הקסיפואיד לאמצע הבטן. ודאו שהתהליך הקסיפואיד והשכבה השרירית נראים לעין (איור 2B).
      הערה: יש לתת bupivacaine (3 מ"ג/ק"ג) תת עורית באתר הניתוח 5 דקות לפני ביצוע החתך בעור.
    2. פתח את דופן הבטן לאורך linea alba עם מספריים בין שרירי הבטן. היזהרו לא להיכנס לחלל בית החזה (איור 2C).
  2. הרחקת תריסריון
    1. גייסו בעדינות את התריסריון מחלל הבטן באמצעות צמר גפן לח כדי לראות את הצדדים הקדמיים והאחוריים שלו. מקמו את צינור המרה הראשי, שנראה מיד מתחת למיקרוסקופ הדו-עיני בצד האחורי של האומנטום הקטן והתריסריון (איור 3A, חיצים שחורים).
    2. בסמיכות מצינור המרה הראשי, דמיינו אזור בין עורקי התריסריון מתחת למיקרוסקופ הדו-עיני (איור 3A,B, עיגולים מנוקדים כחולים). חדרו לאזור זה באמצעות מלקחיים זעירים מעוקלים מצד אחד של התריסריון לצד השני, ובצעו קשירת תריסריון בין העורקים באמצעות תפר 6-0 שאינו נספג (איור 3C-E). היזהר לא ligate את הענפים של עורקי התריסריון.
  3. שרוול קיבה
    1. לגייס את הבטן מחלל הבטן באמצעות צמר גפן לח ומהדק לא טראומטי. הפרידו את הקיבה מהאיברים הסובבים אותה באמצעות מיקרו מספריים: הפרידו את האומנטום הגדול יותר, חתכו את עורקי הקיבה הקצרים (ענף של עורק הטחול) בין הקיבה לטחול, ואת הליפומה המקשרת בין הקיבה לחלק התחתון של הוושט (איור 4A,B).
    2. באמצעות מיקרו מספריים, בצעו גסטרוטומיה בקוטר 5 מ"מ על-ידי פתיחת הפונדוס והוציאו את שאריות המזון באמצעות צמר גפן (איור 4C, חץ). יש לשטוף את אתר העיכול בתמיסת מלח סטרילית (37°C) כדי למנוע זיהום מתכולת הקיבה שהוסרה.
    3. יש למרוח קליפסים כירורגיים (בגודל בינוני, 5.6 מ"מ) לאורך העקמומיות הגדולה יותר של הקיבה כדי להוציא כ-80% מהקיבה. שני קליפים מספיקים. הסירו את הבטן המוחרגת על-ידי חיתוך שלה עם מספריים זעירים (איור 4D-G).
    4. עגנו את הקליפים הכירורגיים כדי לוודא אטימות על ידי ביצוע תפר ריצה (8-0) מתחילתה ועד סופה של כריתת הקיבה (איור 4H).
  4. אנסטומוזה Duodeno-ileal
    1. מתחת למיקרוסקופ הדו-עיני, דמיינו את הלולאה האיליאלית האחרונה, שנמצאת ממש לפני הצאקום (איור 5A). גייסו בעדינות את המעי הדק מחוץ לחלל הבטן מהלולאה האיליאלית האחרונה. הניחו את המעי הדק, כפי שמוצג באיור 5B, כך שלולאת האיליאל האחרונה תמוקם בצד שמאל. באמצעות חוט תפר בגודל קודם, למדוד 10 ס"מ (כ 1/3 מהאורך הכולל של המעי הדק) מן הלולאה ileal האחרון; זה יהיה האתר של אנסטומוזה בעתיד.
    2. על מנת להבטיח כי איבר המרה העתידי מגיע לאתר anastomosis מצדו השמאלי, לעשות לולאה גדולה של המעי הדק סביב האתר של אנסטומוזה בעתיד. באמצעות מיקרו מספריים, בצעו אנטרוטומיה בקוטר 4 מ"מ על-ידי פתיחת המעי הדק בשלב זה (איור 5C-E). שטפו את אתר האנטרוטומיה בתמיסת מלח סטרילית (37°C) כדי למנוע זיהום.
    3. בצעו אנטרוטומיה בקוטר 4 מ"מ בחלק המוחרג של התריסריון, מיד לאחר הפילורוס, בין הקיבה לבין הקשירה שבוצעה בשלב 2.2.2 (איור 5F). מניחים דחיסת קולגן המוסטטית נספגת בגודל 5 מ"מ x 5 מ"מ לטובת הומאוסטזיס.
    4. שימוש ב-8-0 שאינו נספג תפר, לבצע anastomosis duodeno-ileal מצד לצד. התחילו באנסטומוזה של הצד האחורי, ואחריה באנסטומוזה של הצד הקדמי (איור 5G-I).
  5. סגירת בטן
    1. הצג את המעי הדק בחלל הבטן כך שאיבר המרה מגיע לאנסטומוזה מהצד השמאלי העליון של הבטן והגפה המשותפת נופלת לחלק התחתון של הבטן.
      הערה: לשטוף את הבטן שלוש פעמים עם כ 5 מ"ל של תמיסת מלח סטרילית 0.9% (37 ° C). לאחר מכן, לשאוב את הנוזל מהבטן כדי להסיר שאריות נוזל העיכול ומזון מעוכל כדי למנוע זיהום חיידקי ודלקת בטן לאחר מכן.
    2. Rehydrate העכבר עם 500 μL של 37 ° C תמיסת מלח על ידי החלתו ישירות לתוך חלל הבטן באמצעות מזרק 1 מ"ל.
    3. סגור את שכבת השרירים באמצעות תפר ריצה יחיד 6-0 שאינו נספג. סגור את עור הבטן באמצעות 6-0 תפרים מופרדים שאינם נספגים (איור 5J,K).

3. טיפול כללי לאחר הניתוח

  1. לאחר הפסקת האיזופלורן, הניחו לעכבר להתעורר על כרית החום מתחת ל-0.4 ליטר/דקה O2 עם מסכת האף. כאשר מתעורר לחלוטין, אשר ניתן להבטיח על ידי התאוששות מנוע מלאה, לשים את העכבר לבד בכלוב באינקובטור 30 מעלות צלזיוס. השאר את העכבר באינקובטור 30 מעלות צלזיוס למשך 5 ימים (אין תנאי ספציפי לגז או לחות).
    הערה: יש לחמם את הכלוב מראש.
  2. לאפשר גישה חופשית למים מיד לאחר הניתוח. הוסף תוספי ויטמינים, כולל ויטמינים B1, B9, B12, וויטמינים liposoluble (A, D, E, K), למים (800 מ"ג / 180 מ"ל מים) עד סוף הפרוטוקול.
  3. לשמור על שיכוך כאבים על ידי זריקות buprenorphine תת עורית (0.1 מ"ג / ק"ג) פעמיים ביום מיום 1 עד יום 3, פעם ביום לאחר מכן עד יום 5. המשך amoxicillin (15 מ"ג / ק"ג), meloxicam (1 מ"ג / ק"ג) ו metoclopramide (1 מ"ג / ק"ג) זריקות תת עוריות פעם ביום עד יום 3. לספק זריקות תת עוריות של ברזל (0.5 מ"ג / ק"ג) פעם ביום עד סוף הפרוטוקול.

4. מדידות כלליות והמתת חסד

  1. שקלו את העכברים כל יום עד היום שלאחר הניתוח 5. לאחר מכן לשקול ביום 7, ולאחר מכן מדי שבוע.
  2. כדי למדוד את צריכת המזון היומית, הניחו עכבר אחד בכל כלוב. יש לקבוע משקל ידוע של תזונה מוצקה ולמדוד את משקל התזונה המוצקה שנותרה לאחר 24 שעות. מדדו את צריכת המזון ביום 3, 4, 5, 7 ולאחר מכן מדי שבוע.
  3. הרדימו את העכברים על ידי נקע צוואר הרחם בהרדמה כללית (5% איזופלורן (1 ליטר לדקה) עם חמצן (1 ליטר לדקה)) עם הזרקה תת עורית של בופרנורפין (0.1 מ"ג/ק"ג) לאחר חתך אטריום לבבי שמאלי לצורך דגימת דם (500 עד 600 מיקרוליטר דם).
  4. למדוד את ריכוז המוגלובין בדם באמצעות מנתח המטולוגי אוטומטי הדורש 20 μL של דם.

תוצאות

עקומת למידה
עקומת הלמידה של מודל זה מוצגת באיור 6. נצפתה ירידה הדרגתית בזמן הניתוח, המגיעה לכ-60 דקות של ניתוח לאחר 4 שבועות של אימונים אינטנסיביים (איור 6A). ההישרדות של 5 ימים לאחר הניתוח השתפרה גם היא עם הזמן, והגיעה ל-77% במהלך תרגול רגיל (...

Discussion

ניתוחים בריאטריים, שהטכניקות שלהם מתפתחות כל הזמן, נראים כיום כטיפול היעיל ביותר להשמנת יתר ולתחלואה מטבולית נלווית 3,19,20. הליך SADI-S, שתואר לראשונה בשנת 20074, הוא הליך מבטיח הקשור להשפעות מטבוליות גדולות יותר מאשר ניתוחים אחרים ...

Disclosures

קלייר בלנצ'רד קיבלה תשלום ממדטרוניק כדי לספק קורסים של טבילה קלינית.

Acknowledgements

אנו מודים ל-Ethicon (Johnson and Johnson surgical technologies) על אספקת חוט התפר והקליפסים הכירורגיים. עבודה זו נתמכה על ידי מענקים מפרויקט הכישרונות NExT, אוניברסיטת נאנט, CHU דה נאנט.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Agagani needle 26 GTerumo050101B26 G needle
Betadine dermique Pharma-gdd3300931499787Povidone solution
Betadine scrubPharma-gdd 3400931499787Povidone solution
Binocular microscopeOptika Microscopes ItalySZN-9Binocular stereomicroscope
BuprecareAnimalcare3760087151244Buprenorphin
Castroviejo, straight 9 cmF.S.T12060-02Micro scissors
Castroviejo, straight 9 cmF.S.T12060-02Needle holder
Chlorure de sodium Fresenius 0.9%Fresenius Kabi BE182743NaCl 0.9%
ClamoxylMed'vet5414736007496Amoxicilline
Cotton budsComed2510805Cotton swabs
Element HT5ScilvetElement HT5Automated hematology analyzer
EmepridCEVA3411111914365Metoclopramid
Extra Fine Graefe Forceps, curved (tip width: 0.5 mm)F.S.T11152-10Surgical forceps
Extra Fine Graefe Forceps, straight (tip width: 0.5 mm)F.S.T11150-10Surgical forceps
FercobsangVetopriceQB03AE04Iron, multivitamins and minerals 
ForaneBaxter1001936060Isoflurane
Graefe forceps, straight (tip width: 0.8 mm)F.S.T11050-10Forceps
Graphpad Prism version 8.0GraphPad Software, Inc.Version 8.0Software for statistical analysis
Heat padIntellibio innovationA-2101-00300Heat pad
IncubatorBioconcept TechnologiesManufactured on demandIncubator 
LightingOptika Microscopes ItalyCL-30Lighting for microscopy
OcrygelMed'vet3700454505621Carboptol 980 NF
Pangen 2.5 cm x 3.5 cmUrgovetA02978Haemostatic collagen compress
Prolene 6/0B.Braun3097915Optilene 6/0 (0.7 metric) 75 cm 2XDR13 CV2 RCP, suture cord
Prolene 8/0Ethicon87322 x BV175-6 MP, 3/8 Circle, 8 mm,  suture cord
ScissorsF.S.T146168-09Surgical scissors
Sterile compresses Laboartoire Sylamed211S05-50Non-woven sterile compressed
Terumo SyringeTerumo508281 mL syringe
Titanium hemostatic clipPéters SurgicalB2180-1Surgical clip
Vannas WolffF.S.T15009-08Micro scissors
Vita RongeurVirbac3597133087611Vitamin supplementation
Vitaltec stainlessPéters SurgicalPB 220-EB MediumSurgical clip applier

References

  1. Flegal, K. M., Carroll, M. D., Kit, B. K., Ogden, C. L. Prevalence of obesity and trends in the distribution of body mass index among US adults, 1999-2010. JAMA. 307 (5), 491-497 (2012).
  2. Sjöström, L., et al. Association of bariatric surgery with long-term remission of type 2 diabetes and with microvascular and macrovascular complications. JAMA. 311 (22), 2297-2304 (2014).
  3. Dyson, J., et al. Hepatocellular cancer: the impact of obesity, type 2 diabetes and a multidisciplinary team. Journal of Hepatology. 60 (1), 110-117 (2014).
  4. Sánchez-Pernaute, A., et al. Proximal duodenal-ileal end-to-side bypass with sleeve gastrectomy: proposed technique. Obesity Surgery. 17 (12), 1614-1618 (2007).
  5. Himpens, J., Verbrugghe, A., Cadière, G. B., Everaerts, W., Greve, J. W. Long-term results of laparoscopic Roux-en-Y Gastric bypass: evaluation after 9 years. Obesity Surgery. 22 (10), 1586-1593 (2012).
  6. Sánchez-Pernaute, A., et al. Long-term results of single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy (SADI-S). Obesity Surgery. 32 (3), 682-689 (2022).
  7. Shoar, S., Poliakin, L., Rubenstein, R., Saber, A. A. Single anastomosis duodeno-ileal switch (SADIS): A systematic review of efficacy and safety. Obesity Surgery. 28 (1), 104-113 (2018).
  8. Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery--a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obesity Surgery. 20 (9), 1293-1305 (2010).
  9. Lutz, T. A., Bueter, M. The use of rat and mouse models in bariatric surgery experiments. Frontiers in Nutrition. 3, 25 (2016).
  10. Baud, G., et al. Bile diversion in Roux-en-Y Gastric Bypass modulates sodium-dependent glucose intestinal uptake. Cell Metabolism. 23 (3), 547-553 (2016).
  11. Blanchard, C., et al. Sleeve gastrectomy alters intestinal permeability in diet-induced obese mice. Obesity Surgery. 27 (10), 2590-2598 (2017).
  12. Ayer, A., et al. Techniques of sleeve gastrectomy and modified Roux-en-Y Gastric Bypass in mice. Journal of Visualized Experiments. (121), e54905 (2017).
  13. Wang, T., et al. Comparison of diabetes remission and micronutrient deficiency in a mildly obese diabetic rat model undergoing SADI-S versus RYGB. Obesity Surgery. 29 (4), 1174-1184 (2019).
  14. Wu, W., et al. Comparison of the outcomes of single anastomosis duodeno-ileostomy with sleeve gastrectomy (SADI-S), single anastomosis sleeve ileal (SASI) bypass with sleeve gastrectomy, and sleeve gastrectomy using a rodent model with diabetes. Obesity Surgery. 32 (4), 1209-1215 (2022).
  15. Laura, M., et al. Establishing a reproducible murine animal model of single anastomosis duodenoileal bypass with sleeve gastrectomy (SADl-S). Obesity Surgery. 28 (7), 2122-2125 (2018).
  16. Meoli, L., et al. Intestine-specific overexpression of LDLR enhances cholesterol excretion and induces metabolic changes in male mice. Endocrinology. 160 (4), 744-758 (2019).
  17. Abu El Haija, M., et al. Toll-like receptor 4 and myeloid differentiation factor 88 are required for gastric bypass-induced metabolic effects. Surgery for Obesity and Related Diseases. 17 (12), 1996-2006 (2021).
  18. Kumar, S., et al. Lipocalin-type prostaglandin D2 synthase (L-PGDS) modulates beneficial metabolic effects of vertical sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (8), 1523-1531 (2016).
  19. Heffron, S. P., et al. Changes in lipid profile of obese patients following contemporary bariatric surgery: A meta-analysis. The American Journal of Medicine. 129 (9), 952-959 (2016).
  20. Carswell, K. A., Belgaumkar, A. P., Amiel, S. A., Patel, A. G. A systematic review and meta-analysis of the effect of gastric bypass surgery on plasma lipid levels. Obesity Surgery. 26 (4), 843-855 (2016).
  21. Surve, A., Zaveri, H., Cottam, D. Retrograde filling of the afferent limb as a cause of chronic nausea after single anastomosis loop duodenal switch. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (4), 39-42 (2016).
  22. Uysal, M., et al. Caecum location in laboratory rats and mice: an anatomical and radiological study. Laboratory Animals. 51 (3), 245-255 (2017).
  23. Sánchez-Pernaute, A., et al. Single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy: metabolic improvement and weight loss in first 100 patients. Surgery for Obesity and Related Diseases. 9 (5), 731-735 (2013).
  24. Wei, J. H., Yeh, C. H., Lee, W. J., Lin, S. J., Huang, P. H. Sleeve gastrectomy in mice using surgical clips. Journal of Visualized Experiments. (165), e60719 (2020).
  25. Ying, L. D., et al. Technical feasibility of a murine model of sleeve gastrectomy with ileal transposition. Obesity Surgery. 29 (2), 593-600 (2019).
  26. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

192

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved