JoVE Logo

登录

需要订阅 JoVE 才能查看此. 登录或开始免费试用。

本文内容

  • 摘要
  • 摘要
  • 引言
  • 研究方案
  • 结果
  • 讨论
  • 披露声明
  • 致谢
  • 材料
  • 参考文献
  • 转载和许可

摘要

单吻合十二指肠回肠旁路术 (SADI-S) 是一种新兴的减肥手术,具有重要的代谢作用。在本文中,我们提出了一种可靠且可重复的小鼠SADI-S模型。

摘要

肥胖是世界范围内的主要健康问题。作为应对措施,减肥手术已经出现,通过限制性和吸收不良机制治疗肥胖及其相关合并症(例如糖尿病、血脂异常、非酒精性脂肪性肝炎、心血管事件和癌症)。了解这些程序允许这种改进的机制通常需要将它们转移到动物身上,特别是在小鼠中,因为很容易产生转基因动物。最近,单吻合十二指肠回肠旁路术与袖状胃切除术(SADI-S)已成为一种同时使用限制性和吸收不良作用的手术,在严重肥胖的情况下被用作胃旁路术的替代方案。到目前为止,该程序与强大的代谢改善有关,这导致其在日常临床实践中的使用显着增加。然而,由于缺乏动物模型,这些代谢效应背后的机制研究得很少。在本文中,我们提出了一种可靠且可重复的小鼠SADI-S模型,特别关注围手术期管理。这种新的啮齿动物模型的描述和使用将有助于科学界更好地了解SADI-S诱导的分子,代谢和结构变化,并更好地确定临床实践的手术适应症。

引言

肥胖是一种新兴的流行情况,患病率日益增加,全世界每20名成年人中约有1人受到影响1。近年来,减肥手术已成为受影响成年人最有效的治疗选择,改善了体重减轻和代谢紊乱2,3结果因所用外科手术的类型而异。

减肥手术的效果主要有两种机制:旨在增加饱腹感的限制(例如在袖状胃切除术(SG)中,80%的胃被切除)和吸收不良。在暗示限制和吸收不良的手术中,单吻合十二指肠回肠旁路术联合袖状胃切除术 (SADI-S) 已被提出作为 Roux-en-Y 胃旁路术 (RYGB) 的替代方案,其中在大约 20% 的患者中观察到体重恢复45。在这种技术中,袖状胃切除术与小肠重新排列有关,将其分为胆道和短公共肢体(占小肠总长度的三分之一)(图1A)。从技术上讲,SADI-S 比 RYGB 具有仅需要一次吻合的优势,可将手术时间缩短约 30%。此外,这种方法保留了幽门,有助于降低消化性溃疡疾病的风险并限制吻合口渗漏。SADI-S还与高代谢改善率有关,在过去几年中强烈支持其使用67

由于代谢效应已成为减肥手术的基础,阐明其机制似乎至关重要。因此,使用动物模型进行减肥手术对于更好地了解其代谢作用以及所涉及的细胞和分子途径至关重要8。例如,这些模型有助于更好地了解SG或RYGB在受控环境中9后食物摄入量的变化,以及通过肠道屏障1011研究葡萄糖或胆固醇通量;这些信息在临床研究中很少可用。这些知识可以帮助确定他们的最佳手术适应症。我们之前描述了SG和RYGB12的小鼠模型。然而,尽管SADI-S在临床实践中取得了有希望的结果,但它仅在大鼠131415中开发和描述。然而,鉴于其遗传延展性,小鼠模型过去可用于研究此类程序的各种代谢效应161718,并且SADI-S小鼠模型可用于评估SADI-S的影响尽管技术困难。

在本文中,我们以可重复的方式描述了SADI-S程序在小鼠中的适应性(图1B)。特别注意围手术期护理的描述。

研究方案

该协议已获得当地法国动物实验伦理委员会的批准(Comité d'éthique en expérimentation animale;参考CEEA-PdL n 06)。

1.术前准备

  1. 手术前3天在正常饮食中添加凝胶饮食食品。手术前6小时禁食小鼠。
  2. 在带氧气(1 L / min)的专用腔室中用5%异氟醚(1L / min)诱导麻醉。皮下注射丁丙诺啡(0.1mg / kg),阿莫西林(15mg / kg),甲氧氯普胺(1mg / kg),美洛昔康(1mg / kg)和铁(0.5mg / kg)。
  3. 使用电动剃须刀从剑突开始剃除小鼠腹部的前 2/3 部分。使用碘聚维酮溶液分两步消毒小鼠的腹部。
  4. 将鼠标仰卧放在覆盖有干净垫子的专用加热垫上。使用含有2%-2.5%异氟醚(0.4升/分钟)和氧气(0.4升/分钟)的鼻锥维持麻醉。使用捏脚趾测试来确认麻醉深度。
  5. 用无菌保鲜膜盖住鼠标。为了在小鼠的腹部应用过度伸展,请固定下爪并使用放置在小鼠背后放置的 1 mL 注射器或等效物。用未来切口的大小在无菌敷料中切开一个开口,并将其用作覆盖小鼠的操作区域。一般安装如图 2A所示。
  6. 手术前,请使用口罩、磨砂帽和消毒手套。使用消毒器械进行手术。

2. SADI-S 协议

  1. 中位剖腹手术
    1. 在双目显微镜(8倍放大倍率)下,通过将腹部皮肤从剑突打开到腹部中部,用剪刀或手术刀进行正中剖腹手术。确保剑突和肌肉腱膜层可见(图2B)。
      注意:在做皮肤切口前5分钟在手术部位皮下注射布比卡因(3mg / kg)。
    2. 用剪刀在腹部肌肉之间沿着白线打开腹壁。小心不要进入胸腔(图2C)。
  2. 十二指肠排除
    1. 使用湿润的棉签轻轻地从腹腔中移动十二指肠,以查看其前侧和后侧。定位主胆管,在小网膜和十二指肠后侧的双目显微镜下立即可见(图3A,黑色箭头)。
    2. 在胆管主管近端,在双目显微镜下观察十二指肠动脉之间的区域(图3AB,蓝色虚线圆圈)。使用弯曲的微镊子从十二指肠的一侧到另一侧穿透该区域,并使用6-0不可吸收的缝合线在动脉之间进行十二指肠结扎(图3C-E)。注意不要结扎十二指肠动脉的分支。
  3. 袖状胃切除术
    1. 使用湿润的棉签和非创伤性钳夹从腹腔中动员胃。使用微型剪刀将胃与周围器官分开:分离大网膜,切开胃和脾之间的短胃动脉(脾动脉分支),以及连接胃和食道下部的脂肪瘤(图4A,B)。
    2. 使用微型剪刀,通过打开眼底进行5毫米的胃切开术,并使用棉签去除残留的食物(图4C,箭头)。用无菌盐水溶液(37°C)冲洗胃切开部位,以避免去除的胃内容物污染。
    3. 沿胃的较大曲率使用手术夹(中等大小,5.6 毫米),以排除大约 80% 的胃。两个剪辑就足够了。用微型剪刀剪掉排除的胃(图4D-G)。
    4. 通过从胃切除术的开始到结束进行运行缝合(8-0)来锚定手术夹以确定不渗透性(图4H)。
  4. 十二指肠回肠吻合术
    1. 在双目显微镜下,观察位于盲肠前的最后一个回肠环(图5A)。从最后一个回肠袢轻轻地将小肠从腹腔外移动。如图 5B所示布置小肠,使最后一个回肠袢位于左侧。使用先前尺寸的缝合绳,测量距最后一个回肠袢 10 cm(约为小肠总长度的 1/3);这将是未来吻合术的部位。
    2. 为了确保未来的胆道支从其左侧到达吻合部位,在未来吻合部位周围做一个大的小肠环。使用微型剪刀,在这一点上打开小肠进行4毫米的小肠切开术(图5C-E)。用无菌盐水溶液(37°C)冲洗肠切开部位以避免污染。
    3. 在幽门之后立即在胃和步骤2.2.2中进行的结扎术(图5F)之间对十二指肠的排除部分进行4mm肠切开术。放置可吸收的 5 mm x 5 mm 止血胶原蛋白敷料,以利于体内平衡。
    4. 使用不可吸收的8-0缝合,进行左右十二指肠回肠吻合术。从后侧吻合开始,然后是前侧吻合(图5G-I)。
  5. 腹腔闭合
    1. 显示腹腔内的小肠,使胆道支从腹部左上侧到达吻合口,总肢落到腹部下部。
      注意:用约5mL无菌0.9%盐水溶液(37°C)灌洗腹部三次。然后,从腹部抽出液体以去除残留的胃肠道液体和消化的食物,以避免细菌感染和随后的腹部炎症。
    2. 使用1mL注射器将其直接施用腹腔,用500μL37°C盐水溶液重新水化小鼠。
    3. 使用单根 6-0 不可吸收的跑步缝合线关闭肌肉腱膜层。使用6-0不可吸收的分离缝合线关闭腹部皮肤(图5J,K)。

3. 一般术后护理

  1. 停止异氟醚后,让小鼠在用鼻罩充气的0.4 L / min O2 下的加热垫上醒来。当完全唤醒时,可以通过完全的电机回收来确保,将小鼠单独放在30°C培养箱中的笼子中。将小鼠在30°C培养箱中放置5天(气体或湿度没有特定条件)。
    注意:笼子应事先加热。
  2. 允许手术后立即自由取水。将维生素补充剂,包括维生素B1,B9,B12和脂溶性维生素(A,D,E,K)添加到水(800mg / 180 mL水)中,直到方案结束。
  3. 从第 1 天到第 3 天,每天两次皮下注射丁丙诺啡 (0.1 mg/kg) 维持镇痛,之后每天一次直至第 5 天。继续每天一次皮下注射阿莫西林(15mg / kg),美洛昔康(1mg / kg)和甲氧氯普胺(1mg / kg),直到第3天。每天皮下注射一次铁(0.5 mg / kg),直到方案结束。

4. 一般测量和安乐死

  1. 每天称量小鼠,直到术后第5天。然后在第 7 天称重,然后每周称重。
  2. 要测量每日食物摄入量,每个笼子放置一只小鼠。放置已知重量的固体饮食,并测量24小时后剩余的固体饮食的重量。在第 3、4、5、7 天测量食物摄入量,然后每周测量一次。
  3. 在心脏左心房切口进行血液采样(500至600μL血液)后,在全身麻醉下(5%异氟醚(1L / min)与氧气(1L / min)皮下注射丁丙诺啡(0.1mg / kg)后,通过宫颈脱位对小鼠实施安乐死。
  4. 使用需要 20 μL 血液的自动血液学分析仪测量血红蛋白浓度。

结果

学习曲线
该模型的学习曲线如图 6 所示。观察到手术时间逐渐减少,在4周的强化训练后达到约60分钟的手术(图6A)。术后5天生存率也随着时间的推移而改善,在常规练习期间达到77%(图6B)。最常见的死亡原因是吻合口瘘和导致胆道腹膜炎的传入袢综合征。我们在第一个月晚些时候用本手稿中描述的技术观察到?...

讨论

减肥手术的技术不断发展,似乎是目前肥胖和相关代谢合并症最有效的治疗方法31920。SADI-S手术于2007年首次描述4,是一种有前途的手术,与其他吸收不良手术相比,具有更大的代谢作用。动物模型,特别是允许快速生成转基因模型的小鼠,迫切需要充分了解这些改进背后的机制。在这里,我们描述了小?...

披露声明

克莱尔·布兰查德(Claire Blanchard)已获得美敦力(Medtronic)的报酬,以提供临床浸入式课程。

致谢

我们感谢Ethicon(强生外科技术)慷慨地提供缝合线和手术夹。这项工作得到了NExT人才项目,南特大学,南特CHU的资助。

材料

NameCompanyCatalog NumberComments
Agagani needle 26 GTerumo050101B26 G needle
Betadine dermique Pharma-gdd3300931499787Povidone solution
Betadine scrubPharma-gdd 3400931499787Povidone solution
Binocular microscopeOptika Microscopes ItalySZN-9Binocular stereomicroscope
BuprecareAnimalcare3760087151244Buprenorphin
Castroviejo, straight 9 cmF.S.T12060-02Micro scissors
Castroviejo, straight 9 cmF.S.T12060-02Needle holder
Chlorure de sodium Fresenius 0.9%Fresenius Kabi BE182743NaCl 0.9%
ClamoxylMed'vet5414736007496Amoxicilline
Cotton budsComed2510805Cotton swabs
Element HT5ScilvetElement HT5Automated hematology analyzer
EmepridCEVA3411111914365Metoclopramid
Extra Fine Graefe Forceps, curved (tip width: 0.5 mm)F.S.T11152-10Surgical forceps
Extra Fine Graefe Forceps, straight (tip width: 0.5 mm)F.S.T11150-10Surgical forceps
FercobsangVetopriceQB03AE04Iron, multivitamins and minerals 
ForaneBaxter1001936060Isoflurane
Graefe forceps, straight (tip width: 0.8 mm)F.S.T11050-10Forceps
Graphpad Prism version 8.0GraphPad Software, Inc.Version 8.0Software for statistical analysis
Heat padIntellibio innovationA-2101-00300Heat pad
IncubatorBioconcept TechnologiesManufactured on demandIncubator 
LightingOptika Microscopes ItalyCL-30Lighting for microscopy
OcrygelMed'vet3700454505621Carboptol 980 NF
Pangen 2.5 cm x 3.5 cmUrgovetA02978Haemostatic collagen compress
Prolene 6/0B.Braun3097915Optilene 6/0 (0.7 metric) 75 cm 2XDR13 CV2 RCP, suture cord
Prolene 8/0Ethicon87322 x BV175-6 MP, 3/8 Circle, 8 mm,  suture cord
ScissorsF.S.T146168-09Surgical scissors
Sterile compresses Laboartoire Sylamed211S05-50Non-woven sterile compressed
Terumo SyringeTerumo508281 mL syringe
Titanium hemostatic clipPéters SurgicalB2180-1Surgical clip
Vannas WolffF.S.T15009-08Micro scissors
Vita RongeurVirbac3597133087611Vitamin supplementation
Vitaltec stainlessPéters SurgicalPB 220-EB MediumSurgical clip applier

参考文献

  1. Flegal, K. M., Carroll, M. D., Kit, B. K., Ogden, C. L. Prevalence of obesity and trends in the distribution of body mass index among US adults, 1999-2010. JAMA. 307 (5), 491-497 (2012).
  2. Sjöström, L., et al. Association of bariatric surgery with long-term remission of type 2 diabetes and with microvascular and macrovascular complications. JAMA. 311 (22), 2297-2304 (2014).
  3. Dyson, J., et al. Hepatocellular cancer: the impact of obesity, type 2 diabetes and a multidisciplinary team. Journal of Hepatology. 60 (1), 110-117 (2014).
  4. Sánchez-Pernaute, A., et al. Proximal duodenal-ileal end-to-side bypass with sleeve gastrectomy: proposed technique. Obesity Surgery. 17 (12), 1614-1618 (2007).
  5. Himpens, J., Verbrugghe, A., Cadière, G. B., Everaerts, W., Greve, J. W. Long-term results of laparoscopic Roux-en-Y Gastric bypass: evaluation after 9 years. Obesity Surgery. 22 (10), 1586-1593 (2012).
  6. Sánchez-Pernaute, A., et al. Long-term results of single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy (SADI-S). Obesity Surgery. 32 (3), 682-689 (2022).
  7. Shoar, S., Poliakin, L., Rubenstein, R., Saber, A. A. Single anastomosis duodeno-ileal switch (SADIS): A systematic review of efficacy and safety. Obesity Surgery. 28 (1), 104-113 (2018).
  8. Rao, R. S., Rao, V., Kini, S. Animal models in bariatric surgery--a review of the surgical techniques and postsurgical physiology. Obesity Surgery. 20 (9), 1293-1305 (2010).
  9. Lutz, T. A., Bueter, M. The use of rat and mouse models in bariatric surgery experiments. Frontiers in Nutrition. 3, 25 (2016).
  10. Baud, G., et al. Bile diversion in Roux-en-Y Gastric Bypass modulates sodium-dependent glucose intestinal uptake. Cell Metabolism. 23 (3), 547-553 (2016).
  11. Blanchard, C., et al. Sleeve gastrectomy alters intestinal permeability in diet-induced obese mice. Obesity Surgery. 27 (10), 2590-2598 (2017).
  12. Ayer, A., et al. Techniques of sleeve gastrectomy and modified Roux-en-Y Gastric Bypass in mice. Journal of Visualized Experiments. (121), e54905 (2017).
  13. Wang, T., et al. Comparison of diabetes remission and micronutrient deficiency in a mildly obese diabetic rat model undergoing SADI-S versus RYGB. Obesity Surgery. 29 (4), 1174-1184 (2019).
  14. Wu, W., et al. Comparison of the outcomes of single anastomosis duodeno-ileostomy with sleeve gastrectomy (SADI-S), single anastomosis sleeve ileal (SASI) bypass with sleeve gastrectomy, and sleeve gastrectomy using a rodent model with diabetes. Obesity Surgery. 32 (4), 1209-1215 (2022).
  15. Laura, M., et al. Establishing a reproducible murine animal model of single anastomosis duodenoileal bypass with sleeve gastrectomy (SADl-S). Obesity Surgery. 28 (7), 2122-2125 (2018).
  16. Meoli, L., et al. Intestine-specific overexpression of LDLR enhances cholesterol excretion and induces metabolic changes in male mice. Endocrinology. 160 (4), 744-758 (2019).
  17. Abu El Haija, M., et al. Toll-like receptor 4 and myeloid differentiation factor 88 are required for gastric bypass-induced metabolic effects. Surgery for Obesity and Related Diseases. 17 (12), 1996-2006 (2021).
  18. Kumar, S., et al. Lipocalin-type prostaglandin D2 synthase (L-PGDS) modulates beneficial metabolic effects of vertical sleeve gastrectomy. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (8), 1523-1531 (2016).
  19. Heffron, S. P., et al. Changes in lipid profile of obese patients following contemporary bariatric surgery: A meta-analysis. The American Journal of Medicine. 129 (9), 952-959 (2016).
  20. Carswell, K. A., Belgaumkar, A. P., Amiel, S. A., Patel, A. G. A systematic review and meta-analysis of the effect of gastric bypass surgery on plasma lipid levels. Obesity Surgery. 26 (4), 843-855 (2016).
  21. Surve, A., Zaveri, H., Cottam, D. Retrograde filling of the afferent limb as a cause of chronic nausea after single anastomosis loop duodenal switch. Surgery for Obesity and Related Diseases. 12 (4), 39-42 (2016).
  22. Uysal, M., et al. Caecum location in laboratory rats and mice: an anatomical and radiological study. Laboratory Animals. 51 (3), 245-255 (2017).
  23. Sánchez-Pernaute, A., et al. Single-anastomosis duodeno-ileal bypass with sleeve gastrectomy: metabolic improvement and weight loss in first 100 patients. Surgery for Obesity and Related Diseases. 9 (5), 731-735 (2013).
  24. Wei, J. H., Yeh, C. H., Lee, W. J., Lin, S. J., Huang, P. H. Sleeve gastrectomy in mice using surgical clips. Journal of Visualized Experiments. (165), e60719 (2020).
  25. Ying, L. D., et al. Technical feasibility of a murine model of sleeve gastrectomy with ileal transposition. Obesity Surgery. 29 (2), 593-600 (2019).
  26. Bruinsma, B. G., Uygun, K., Yarmush, M. L., Saeidi, N. Surgical models of Roux-en-Y gastric bypass surgery and sleeve gastrectomy in rats and mice. Nature Protocols. 10 (3), 495-507 (2015).

转载和许可

请求许可使用此 JoVE 文章的文本或图形

请求许可

探索更多文章

192

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

政策

使用条款

隐私

科研

教育

关于 JoVE

版权所属 © 2025 MyJoVE 公司版权所有,本公司不涉及任何医疗业务和医疗服务。