JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

במאמר זה אנו מתארים פרוטוקולים לאפיון ביופיזיקלי של היווצרות קומפלקס טרינרי המושרה על ידי פרוטאוליזה המכוונת לכימרות (PROTACS) המערבות את ליגאזות היוביקוויטין, Von Hippel-Lindau, E3 ligase (VHL) ו-Cereblon (CRBN). שיטות ביופיזיקליות המודגמות כאן כוללות תהודה פלסמונית פני השטח (SPR), אינטרפרומטריה ביו-שכבתית (BLI) וקלורימטריה טיטרציה איזותרמית (ITC).

Abstract

ליגאזות E3 וחלבונים המיועדים לפירוק יכולים להיווצר קומפלקסים על ידי מולקולות הטרוביפונקציונאליות בתהליך רב-שלבי. הקינטיקה והתרמודינמיקה של האינטראקציות המעורבות תורמות ליעילות היוביקוויטינציה וכתוצאה מכך לפירוק החלבון. טכניקות ביופיזיקליות כגון תהודה פלסמונית פני השטח (SPR), אינטרפרומטריה של שכבה ביולוגית (BLI) וקלורימטריית טיטרציה איזותרמית (ITC) מספקות מידע רב ערך שניתן להשתמש בו באופטימיזציה של אינטראקציות אלה. באמצעות שתי מערכות מודל, הוקמה ערכת כלים לבדיקה ביופיזית להבנת הקואופרטיביות של היווצרות מרוכבים טרינריים והשפעת "אפקט הוו" על קינטיקה קשירה. במקרה אחד, נבדקה מולקולת פרוטאוליזה המכוונת לכימרה (PROTAC) שגרמה להיווצרות קומפלקס טרינרי בין Brd4BD2 ו-VHL. למולקולה ההטרוביפונקציונלית, MZ1, יש זיקות nM הן לחלבון Brd4BD2 (SPR K D = 1 nM, ITC K D = 4 nM) והן לקומפלקס VHL (SPR KD = 29 nM, itc k d = 66 nM). עבור מערכת זו, פותחו מבחני SPR, BLI ו- ITC חזקים ששיחזרו תוצאות שפורסמו המדגימות את הקואופרטיביות של היווצרות מורכבת טרינרית. במקרה השני, נחקרה מולקולה שגרמה לקומפלקסים טרינריים בין חלבון 46.0 kDa PPM1D וצרבלון [CRBN (319-442)]. למולקולה ההטרוביפונקציונלית, BRD-5110, יש SPR K D = 1 ננומטר עבור PPM1D אך קשירה חלשה בהרבה כנגד קומפלקס CRBN קטוע (319-442) (SPR KD = ~ 3 μM). במקרה זה, הכריכה עבור CRBN ב- SPR לא הייתה רוויה, וכתוצאה מכך נוצר "אפקט וו". הוערכו דרישות התפוקה והמגיבים עבור SPR, BLI ו-ITC, וניתנו המלצות כלליות ליישומן בפרויקטים של PROTAC.

Introduction

polyubiquitination של חלבונים בתא הוא תהליך מווסת היטב המערב אנזימים ממשפחת Ubiquitin Ligase 1,2. האנזימים הסופיים במסלול הם ליגאזות יוביקוויטין E3 המצמידות באופן קוולנטי מולקולות יוביקוויטין לשותפיהן קושרי החלבונים3. הפוליוביקוויטינציה של אותם שותפים קושרי חלבונים מכוונת אותם לפירוק פרוטאוליטי על ידי פרוטאזום4. מערכת זו היא חלק מתהליך הומאוסטזיס חלבונים אשר מונף טיפולית כדי לגרום לפירוק של חלבונים המעורבים במחלה5. מולקולות קטנות הגורמות לאינטראקציה בין ליגאזות יוביקוויטין E3, כגון Von Hippel-Lindau E3 ligase (VHL) או cereblon (CRBN), מורכבות בדרך כלל מראש קרב קושר ליגאז E3 המחובר על ידי מקשר גמיש לראש קרב שנקשר לחלבון המיועד לפירוק. מולקולות הטרוביפונקציונאליות אלה מכונות בדרך כלל פרוטאוליזה המכוונת לכימרות או פרוטאקים6.

הפיתוח של PROTACS כרוך בהערכת היכולת של מולקולות לגרום לפירוק של חלבונים בתאים. פותחו מערכות בדיקה תאיות רבות המנטרות את האינטראקציה המושרה בין חלבון המטרה לבין רכיבי ליגאז E3, כגון VHL או CRBN, בעת הטיפול בתאים במולקולת PROTAC. ניסוי תאי אחד כזה, מערכת ננולוק-הלוטג7, כולל ליגאז E3 המאוחה למקבל ההלוטאג וחלבון מטרה המתויג עם תורם ננולוק. היווצרות מורכבת טרינרית מביאה את תורם ננולוק ומקבל הלוטג לקרבה ומאפשרת העברת אנרגיה מהתורם למקבל וכתוצאה מכך פליטת אור. ניתן להשתמש בווריאציות של מערכת זו כדי להעריך את החדירות התאית של מולקולות PROTACS8 או שינויים ברמה היחסית של יוביקוויטינציה של חלבון המטרה9. בעוד שמערכות תאיות אלה חיוניות להנעת אופטימיזציה של PROTACS, היווצרות קומפלקסים בין ליגאזות E3 וחלבונים המיועדים לפירוק היא תהליך רב-שלבי10,11. הקינטיקה והתרמודינמיקה של האינטראקציות הבינאריות והטרינריות המעורבות תורמות ליעילות יוביקוויטינציה וכתוצאה מכך לפירוק החלבון12,13,14.

להלן מתוארים פרוטוקולים שניתן להתאים לאפיון ביופיזי של היווצרות קומפלקס טרינרי המושרה על ידי PROTACS באמצעות תהודה פלסמונית פני השטח (SPR), אינטרפרומטריה ביו-שכבתית (BLI) וקלורימטריה טיטרציה איזותרמית (ITC). פרוטוקולי SPR ו-ITC עבור מולקולת MZ1 PROTAC הגורמת להיווצרות קומפלקס טרינרי בין Brd4BD2 ו-VHL שנגזרו מדוחות ספרות13,15 ומתוארים כאן הצליחו לשחזר את התוצאות המדווחות עם שינוי מסוים של ההליכים המדווחים, אשר יידונו. תיאור של בדיקת BLI המשמשת להערכת היווצרות מורכבת טרינרית בין MZI, Brd4BD2 ו- VHL נכלל בדוח זה. מדידות הזיקה מ-BLI היו עקביות עם אלה שנצפו ב-SPR וב-ITC. פרוטוקול שפורסם בעבר ובו פותחה בדיקת SPR להערכת היווצרות קומפלקס טרינרי המושרה על ידי PROTAC בין PPM1D, חלבון Ser/Thr פוספטאז שביטויו מושרה באופן תלוי p5316, לבין CRBN מתואר גם כן. במקרה זה, למולקולת PROTAC יש זיקה ננו-מולרית ל-PPM1D אך רק זיקה מיקרומולרית ל-CRBN. במקרה זה, הקישור של מולקולת PROTAC ל-CRBN אינו רווי, וכתוצאה מכך נוצר "אפקט הוו" הנפוץ. אפקט הקרס הוא תכונה של שלוש מערכות גוף שבהן ישנם שני מינים שיכולים ליצור קומפלקס הטרוטרימרי כאשר שניהם קשורים למולקולת גישור (איור 1)17. אפקט הקרס נצפה כאשר המין המגשר נמצא בריכוז עודף ביחס לשני המינים האחרים. המצב המתקבל הוא מצב שבו האינטראקציות הבינאריות עולות על האינטראקציות הטרינריות. המערכות שבהן נצפה אפקט הוו דורשות שיקולי תכנון ניסוייים ספציפיים שנדונו בדו"ח זה. מושגים כלליים ודרישות מגיב להערכת השימוש בבדיקות ביופיזיקליות להערכת היווצרות קומפלקס טרינרי המושרה על ידי PROTAC מסופקים.

Protocol

כל החלבונים בוטאו יתר על המידה ב- E.coli עם תפוקה טובה וטוהר (>80%) בהתאם לפרוטוקולי הספרות18. ביוטינילציה בוצעה באמצעות תגובה זרזי BirA18. כל המולקולות הקטנות הוכנו בתמיסות מלאי של 1 מילימטר ב-100% DMSO. הנהלים המתוארים כאן אינם דורשים ציוד בטיחות מיוחד במעבדה או אמצעי זהירות. יש להשתמש בציוד מגן אישי סטנדרטי למעבדה (PPE) (כלומר, מעיל מעבדה, משקפי מגן וכפפות).

חלבונים שיושמו במחקר זה מפורטים להלן:
VHL: קומפלקס VHL ביוטינילציה (53-213)/ElonginB (1-104)/ElonginC (17-112) עם Avi-tag במסוף C של ElonginB.
Brd4BD2: לא מתויג Brd4BD2(333-460)
CRBN: CRBN ביוטינילציה (319-442) עם תג Avi במסוף N
PPM1D: PPM1D ללא תיוג או עם תיוג כפול של His8(1-420) במסוף N

מולקולות קטנות שיושמו במחקר זה מפורטות להלן:
MZ1 (MW = 1002.6 Da): PROTAC שנקשר ל-VHL ול-Brd4BD2
BRD-2512 (MW = 841.4 Da): CRBN KD ~ 3 μM, אינו נקשר ל- PPM1D
BRD-5110 (MW = 872.0 Da): CRBN K D ~ 3 μM, PPM1D KD = 1-2 ננומטר
BRD-4761 (MW = 476.6 Da): אינו נקשר ל-CRBN, PPM1D KD = 1-2 ננומטר

1. שיטה 1: ITC (קלורימטריה טיטרציה איזותרמית)

הערה: הטיטרציות מבוצעות באמצעות מיקרו-קלורימטר עם הזרקה אוטומטית.

  1. הכנת חיץ: להכין 3 ליטר של חיץ המכיל 20 mM HEPES, 150 mM NaCl, 1 mM TCEP, pH 7.5.
  2. דיאליזה: Dialyze VHL ו- Brd4BD2 (~ 500 μL ב- 150 מיקרומטר כל אחד) כנגד 1 ליטר של החיץ שהוכן בשלב 1.1, 3 פעמים ב- 4 ° C, למשך 4 שעות, שעתיים וכ- 16 שעות, בהתאמה. שמור את המאגר לאחר הדיאליזה האחרונה לשימוש בשלבים הבאים.
  3. הכינו דוגמאות על צלחת 96 בארות עם כיסוי פלסטיק.
    1. עבור כל טיטרציה, להכין 400 μL של פתרון עבור התא, 125 μL עבור מזרק, ו 400 μL של חיץ לניקוי. מוסיפים דוגמאות לשלוש בארות רצופות בצלחת. מכיוון שמלאי התרכובת מוכן ב-1 מילימטר ב-100% DMSO, הוסיפו את אותו אחוז של DMSO לתמיסות החלבונים כדי להבטיח את החיץ התואם בתא ובמזרק. הוסף 2% DMSO לפתרונות הסופיים.
      1. דוגמה לטיטרציה של VHL לתוך MZ1: הכן תמיסת תאים המכילה 392 μL של חיץ, 4 μL של MZ1 ב 1 mM (ריכוז סופי של 10 μM), ו 4 μL של 100% DMSO. הכינו תמיסת מזרק המכילה 122.5 מיקרוליטר VHL ב-85.7 מיקרומטר, 2.5 מיקרוליטר של 100% DMSO (ריכוז סופי של 84 מיקרומטר).
      2. דוגמאות לטיטרציה של VHL לתוך המאגר (הנתונים ישמשו לחיסור רקע של נתונים שנוצרו מדגם 1.3.1.1): הכן תמיסת תא המכילה מאגר 392 μL, 8 μL 100% DMSO. הכינו תמיסת מזרק המכילה 122.5 מיקרוליטר VHL ב-85.7 מיקרו-מטר (ריכוז סופי של 84 מיקרומטר) והוסיפו 2.5 מיקרוליטר של 100% DMSO.
      3. דוגמאות לטיטרציה של VHL לתוך MZ1 ו- Brd4 BD2: הכן תמיסת תאים המכילה 392 μL של 17.1 μM Brd4BD2 (ריכוז סופי של 16.8 μM), 3.36 μL של MZ1 ב- 1 mM (ריכוז סופי של 8.4 μM) ו- 4.64 μL של 100% DMSO. הכינו תמיסת מזרק המכילה 122.5 מיקרוליטר VHL ב-85.7 מיקרומטר (ריכוז סופי של 84 מיקרומטר) ו-2.5 מיקרוליטר של 100% DMSO.
      4. דוגמאות לטיטרציה של VHL לתוך Brd4 BD2 (רקע של 1.3.1.3): הכן תמיסת תאים המכילה 392 μL של 17.1 μM Brd4BD2 (ריכוז סופי של 16.8 μM) ו- 8 μL של 100% DMSO. הכינו תמיסת מזרק המכילה 122.5 מיקרוליטר VHL ב-85.7 מיקרומטר (ריכוז סופי של 84 מיקרומטר) ו-2.5 מיקרוליטר של 100% DMSO.
  4. הפעל את כל ארבעת הטיטרציות על המיקרו-קלורימטר. כל אחת מהן מורכבת מ-19 זריקות של תמיסת מזרק 2 μL בקצב של 2 μL/s במרווחי זמן של 120 שניות. בצע הזרקה ראשונית של חלבון (0.4 μL) והשליך אותו במהלך ניתוח הנתונים. בצע את כל הניסויים ב 25 ° C, תוך ערבוב ב 600 סל"ד.
  5. ניתוח נתונים: התאימו את הנתונים למודל של אתר קשירה יחיד כדי לקבל את הסטויכיומטריה (n), קבוע הדיסוציאציה (KD) ואנתלפיה של קשירה (ΔH) באמצעות תוכנת הניתוח שסופקה על-ידי היצרן (איור 2).

2. שיטה 2: BLI (אינטרפרומטריה biolayer)

  1. בצע ניסויי BLI באמצעות חיישנים מצופים סטרפטווידין (SA) בטמפרטורת החדר (RT) עם קצב רכישה של 5 הרץ. במהלך ניסוי BLI אוטומטי, ודא שהחיישנים נייחים בתוך עמודה אחת ועוברים בין עמודות שונות של לוח שחור בעל 96 בארות, תחתית שטוחה, עם נפח באר מרבי של 392 μL. מלא כל באר של הצלחת ששימשה בניסוי עם 200 μL של תמיסה.
    הערה: BLI שימושי רק כדי לזהות אינטראקציות חלבון-חלבון (כלומר, היווצרות קומפלקס טרינרי). הוא אינו רגיש מספיק כדי לזהות אינטראקציות בין חלבונים ומולקולות קטנות.
    1. הכנת חיץ: להכין 100 מ"ל של חיץ המכיל 20 mM HEPES, 150 mM NaCl, 1 mM TCEP, 0.05% P20, pH 7.5.
    2. אופטימיזציה לשלב האימוביליזציה: טען את חיישן הבדיקה ל- 1-3 ננומטר, בהתאם להמלצת היצרן. טעינה של ~1.0 ננומטר משמשת להליכים המתוארים כאן. כדי להשיג זאת, טבלו את החיישן בתמיסה המכילה VHL ב-1.5 מיקרוגרם/מ"ל למשך 80 שניות.
    3. בצע מדידות קינטיות BLI על ידי הפעלת שבעה חיישני SA באמצעות הרצף הבא:
      1. בשלב הבסיס הראשון, יש לטבול במאגר למשך 60 שניות.
      2. לשלב האימוביליזציה, יש לטבול בתמיסה של VHL במינון של 1.5 מיקרוגרם/מ"ל למשך 80 שניות.
      3. בשלב הבסיס השני, יש לטבול במאגר למשך 60 שניות.
      4. עבור שלב האסוציאציה, יש לטבול בתמיסה של ריכוז קבוע של Brd4BD2 ב-2 מיקרומטר, ריכוז קבוע של DMSO ב-2%, וריכוזים משתנים של MZ1 ב-100 ננומטר, 50 ננומטר, 25 ננומטר, 12.5 ננומטר, 6.3 ננומטר, 3.1 ננומטר ו-0 ננומטר (חיישן ייחוס) למשך 300 שניות.
      5. עבור שלב הדיסוציאציה, לטבול לתוך חיץ במשך 600 שניות.
    4. בצע ניתוח נתונים באמצעות תוכנת היצרן. k on, koff ו-KD מדווחים לצורך התאמת נתונים (איור 3).

3. שיטה 3: SPR (תהודה פלסמונית פני השטח)

הערה: כל ניסויי SPR מתבצעים באמצעות שבבי חיישנים מצופים סטרפטאבידין (SA) ב- RT. למרות ששבב נת"ע משמש לזיהוי בין חלבון למולקולות קטנות, יש להשתמש בו בזהירות כאשר מיישמים אותו על המכלול הטרינרי, שכן נצפה רקע גבוה בהרבה משבב החומצה הסליצילית, אולי בשל אינטראקציות אלקטרוסטטיות בין משטח השבב הטעון לחלבון באנליט.

  1. SPR עבור אינטראקציה VHL-MZ1
    1. הכנת חיץ.
      1. הכינו חיץ 1 ליטר המכיל 20 mM HEPES, 150 mM NaCl, 1 mM TCEP, 0.005% P20, pH7.5, והעבירו אותו דרך יחידת סינון של 0.2 מיקרומטר.
      2. הסר 20 מ"ל של מאגר לשימוש עתידי (מאגר ללא DMSO) ומלא מחדש ב- 20 מ"ל DMSO (2% DMSO במאגר הפועל הסופי). שמור על DMSO בשיעור של 2% בכל הדגימות המתוארות להלן (שלבים 3.1 ו-3.2)
    2. הפעל את שבב SA בהתאם לפרוטוקול היצרן והשתק את VHL ל~2000 RU (הזרקת תמיסת חלבון של 5 מיקרוגרם/מ"ל ב-5 מיקרוליטר/דקה).
    3. הכינו את MZ1 בדילול טורי פי 3, 8 נקודות עם ריכוז עליון של 10 מיקרומטר על צלחת פוליפרופילן תחתונה חרוטית 384 באר, שקופה, עם נפח מרבי של 130 μL. כסו את הצלחת ברדידי פלסטיק שקופים ונצמדים מעצמם התואמים למיקרו-צלחות פוליפרופילן.
      1. הכן את הריכוז העליון עם מאגר ללא DMSO כדי להבטיח DMSO של 2% בריכוז הסופי. ל- 147 μL של מאגר ללא DMSO, הוסף 1.5 μL של מלאי MZ1 ב- 1 mM ו- 1.5 μL של 100% DMSO.
      2. הכן את הדילול הטורי פי 3 עם מאגר ריצה המכיל 2% DMSO. ל 100 μL של חיץ הריצה, להוסיף 50 μL של תמיסה בריכוז העליון מוכן בשלב 3.1.3.1, ולערבב היטב כדי להכין את הריכוזהשני הגבוה ביותר.
      3. לאחר מכן להעביר 50 μL של הפתרון מוכן בשלב 3.1.3.2 הבא 100 μL של חיץ ריצה, לערבב היטב כדי להכין את הריכוז הגבוה ביותר3 , וכן הלאה.
    4. הפעל SPR באמצעות ההגדרה מרובת המחזורים: מצב: ביצועים גבוהים; זמן יצירת קשר: 120 שניות; זמן דיסוציאציה: 300 שניות; קצב זרימה: 50 מיקרוליטר/דקה.
    5. בצע ניתוח נתונים באמצעות תוכנת ההערכה שסופקה על-ידי יצרן המכשיר. ניתוח מצב יציב הצביע על KD = 26 (± 3) nM ו- Rmax של ~91% (± 5%) קשירה שהושגה (איור 4A)
  2. SPR עבור VHL: MZ1: קומפלקס טרנרי Brd4BD2
    1. הכן את המאגר כמתואר בשלב 3.1.1.
    2. הפעל את שבב SA בהתאם לפרוטוקול היצרן והשתק את VHL ל~ 100 RU. הזריקו תמיסת חלבון של 0.5 מיקרוגרם/מ"ל VHL בקצב זרימה של 5 מיקרוליטר/דקה וזמן מגע בין 1-5 דקות עד להגעה לצפיפות פני השטח של ~100 RU.
    3. הכינו דגימות לשתי הזרקות חד-מחזוריות של 5 קפלים, 5 נקודות בפלטה תחתונה עגולה מפוליסטירן 96 באר, שקופה בנפח מרבי של 323 מיקרוליטר וכסו אותה ברדידי פלסטיק שקופים ונצמדים עצמיים התואמים למיקרו-צלחות פוליסטירן כמתואר בשלבים 3.2.3.1-3.2.3.2.
      1. שליטה שלילית: analyte מכיל Brd4BD2 בלבד.
        1. הכן ריכוז עליון של 25 מיקרומטר במאגר ריצה עם נפח של 200 μL (#A5)
        2. הוסף 160 μL כל אחד של Brd4BD2 ב 2 μM במאגר הריצה ל 4 הבארות הבאות משמאל (#A1-A4)
        3. העבר 40 μL של A5 ל- A4. מערבבים היטב.
        4. העבר 40 μL של A4 ל- A3. מערבבים היטב. המשך לעשות זאת עד A1.
      2. היווצרות מורכבת טרינרית: אנליט מכיל MZ1 ו- Brd4BD2.
        1. הכן את הריכוז העליון על ידי הוספת 4 μL של MZ1 ב- 20 μM בתמיסת 100%-DMSO ל- 196 μL המכילה 25.5 μM Brd4BD2 במאגר ללא DMSO (#B5). הריכוזים הסופיים הם 25 μM Brd4BD2, 100 nM MZ1 ו-2% DMSO.
        2. הוסף 160 μL כל אחד של Brd4BD2 ב 2 μM בחיץ ריצה ל 4 הבארות הבאות משמאל (#B1-B4)
        3. העבר 40 μL של B5 ל B4. מערבבים היטב.
        4. העבר 40 μL של B4 ל B3. מערבבים היטב. המשך לעשות זאת עד B1.
    4. הפעל SPR באמצעות הגדרת מחזור יחיד: זמן יצירת קשר: 100 שניות; זמן דיסוציאציה: 720 שניות; קצב זרימה: 50 מיקרוליטר/דקה. יש למרוח שלוש זריקות חיץ לפני כל דגימה כדי להבטיח רקע יציב.
    5. ניתוח נתונים: החל את ההזרקה השלישית של המאגר כרקע לחיסור. כבקרה שלילית, כאשר MZ1 אינו קיים, תגובת SPR בין VHL ו- Brd4BD2 היא זניחה. כאשר MZ1 קיים, התאמה קינטית מציינת את האינטראקציה בין VHL ו- MZ1-Brd4קומפלקס BD2 יש kעל = 7.9 (± 1.5) *107 /M/s, koff = 0.014 s-1, ו- KD = 1 nM. (איור 4B)
  3. SPR עבור אינטראקציות CRBN ומולקולות קטנות
    1. הכנת חיץ.
      1. הכינו מאגר 1 ליטר המכיל 50 mM Tris, 100 mM NaCl, 1 mM MgCl 2, 0.5 mM TCEP, 0.005% P20, pH 7.5, והעבירו אותו דרך יחידת מסנן0.2 מיקרומטר.
      2. הסר 20 מ"ל של מאגר ומלא מחדש 20 מ"ל של 100% DMSO (2% DMSO במאגר ההפעלה הסופי). חשוב לשמור על DMSO בשיעור של 2% בכל הדגימות המתוארות להלן (שלבים 3.3, 3.4 ו-3.5).
    2. הפעל את שבב SA בהתאם לפרוטוקול היצרן והשתק את CRBN ל~800 RU.
    3. הכינו תרכובות בדילול טורי פי 3, 6 נק' על צלחת 384 בארות עם ריכוז עליון של 30 מיקרומטר כמתואר ב-3.1.3.
    4. הפעל SPR באמצעות ההתקנה מרובת המחזורים: מצב: ביצועים גבוהים, זמן מגע: 60 שניות, זמן ניתוק: 90 שניות; קצב זרימה: 50 מיקרוליטר/דקה. עבור מערכת זו, שלוש זריקות חיץ מספיקות כדי לקבל רקע יציב. עבור מערכות בדיקה אחרות, ייתכן שיהיה צורך לבצע הזרקות מאגר נוספות.
    5. בצע ניתוח נתונים באמצעות תוכנת היצרן.
      הערה: ניתוח מצב יציב מצביע על KD של BRD-2512 ו- BRD-5110 שניהם סביב 3 מיקרומטר. עם זאת, הקשירה הגיעה רק ל~ 70% Rקשירה מקסימלית בריכוז העליון. הן הזיקה החלשה והן צורת החיישן מצביעות על כך שסביר להניח שתתרחש אי-מסיסות מורכבת בריכוזים גבוהים. לפיכך, KD בפועל עשוי להיות גבוה מ -3 מיקרומטר. BRD-4761, שאינו נקשר ל- CRBN, נכלל כבקרה שלילית.
  4. SPR עבור אינטראקציות PPM1D ומולקולות קטנות
    1. הכן מאגר כמתואר בשלב 3.3.1. השתמש בשבב חיישן חומצה ניטרילואצטית (NTA).
    2. החל מחזור יחיד מכיוון שלראש הקרב PPM1D יש k מופעל ו-kכבוי איטי. צור מחדש את שבב NTA באמצעות הגדרת ברירת המחדל של היצרן ושתק PPM1D ל~ 1000 RU לאחר כל הזרקת תרכובת (הזרקת תמיסת חלבון של 5 מיקרוגרם / מ"ל ב 5 מיקרוליטר / דקה).
    3. הכינו תרכובות בדילול טורי פי 3, 5 נקודות עם ריכוז עליון של 400 ננומטר כמתואר ב-3.1.3.
    4. הפעל SPR באמצעות הגדרת מחזור יחיד: מצב: ביצועים גבוהים; זמן יצירת קשר: 90 שניות; זמן דיסוציאציה: 600 שניות; קצב זרימה: 50 מיקרוליטר/דקה. יש למרוח שלוש זריקות חיץ לפני כל תרכובת כדי להבטיח רקע יציב.
    5. ניתוח נתונים. החל את הזריקה השלישית של המאגר כרקע לחיסור. כבקרה השלילית, BRD-2512 אינו מראה מחייב ל- PPM1D. עבור BRD-4761 ו- BRD-5110, התאמה קינטית הצביעה על KD עבור שניהם להיות 1-2 ננומטר.
  5. SPR עבור CRBN:PROTAC: קומפלקס טרנרי PPM1D
    1. הכן מאגר כמתואר בשלב 3.3.1.
    2. הפעל את שבב SA בהתאם לפרוטוקול היצרן והשתק את CRBN ל~35 RU (הזריק תמיסת חלבון של 0.5 מיקרוגרם/מ"ל ב-5 מיקרוליטר/דקה).
    3. הכן שלוש תרכובות בדילול טורי פי 3, 6 נקודות עם ריכוז עליון של 30 מיקרומטר תוך שמירה על [PPM1D] על 1 מיקרומטר בכל הדגימות, כולל ריקות, באמצעות השיטה המתוארת בשלב 3.2.3.
    4. הפעל SPR באמצעות ההגדרה מרובת המחזורים: מצב: ביצועים גבוהים; זמן יצירת קשר: 60 שניות; זמן דיסוציאציה: 90 שניות; קצב זרימה: 50 מיקרוליטר/דקה.
    5. בצע ניתוח נתונים באמצעות תוכנת היצרן.
      הערה: בעוד BRD-2512 ו-BRD-4761 מראים תגובה אפסית/זניחה, BRD-5110 מראה בבירור את "אפקט הוו" במצב יציב עם קינטיקה של הפעלה/כיבוי מהירים (איור 5A-C). תגובת הקישור הניסיונית מ-BRD-5110 (איור 5C) נמצאת בין התגובה החזויה מהסימולציה כאשר מניחים ש-KD (CRBN, cpd) הוא 3 או 10 מיקרומטר (איור 5E), מה שמרמז על כך ש-K D הטרינרי ו-KD הבינארי דומים מאוד. אין שיתוף פעולה נראה לעין של PPM1D: BRD-5110: היווצרות קומפלקס CRBN.

תוצאות

אפיון של VHL: קומפלקס בינארי MZ1 ו-VHL: MZ1: Brd4BD2 terary complex ניתן למצוא באיור 2 (ITC), איור 3 (BLI) ואיור 4 (SPR) באמצעות מאגר דומה מאוד. ה- KD המופק מבדיקות אורתוגונליות הוא עקבי. הקואופרטיביות יכולה להיות מחושבת על ידי K D (בינארי) / KD (טרינר...

Discussion

אפיון ביופיזי של יחסי הגומלין הבינאריים והטרינריים בין מולקולות פרוטאק לבין שותפיהן הקושרים חלבונים יכול לספק תובנות ייחודיות ומשלימות ביחס למערכות תאיות בשימוש נרחב. הבנת הזיקה בין כל ראש קרב של מולקולת PROTAC לבין שותפיה קושרי החלבונים יכולה לעזור להנחות את מאמצי הכימיה הרפואית לקראת או...

Disclosures

למחברים אין אינטרסים כלכליים מתחרים או ניגודי עניינים אחרים.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי פרס חדשנות ופיתוח טכנולוגיה מהמרכז לפיתוח טיפולים במכון ברוד של MIT והרווארד. המחברים מבקשים להודות לחברי צוות ההנהגה הבכירה ולוועדת הביקורת על תמיכתם בעבודה זו.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
96-plateGreiner655076flat-bottom, black plates used In BLI experiments
96-well plateNunc73520-120Plate use for ITC sample preparation
96-well plateGreiner650101Plate used to prepare samples for SPR experiments
Auto iTC200 micro-calorimeterMalvern PanalyticalInstrument used to perform ITC experiments. Product discontinued.
Biacore S200Cytiva29136649Instrument used to perform SPR experiments
MZ1ProbeChemPC-60099PROTAC that binds to VHL and Brd4BD2
NTA sensor chipCytivaBR100532SPR chip used to perform SPR experiments involving PPM1D
Octet Red-384SartoriusInstrument used to perform BLI experiments. Product discontinued.
Plate coverMalvernPQA0001Cover for Nunc 96-well plate (73520-120)
Plate coverCytiva28975816Plate cover for Greiner plate (650101)
Series S SA sensor chipCytivaBR100531SPR chip used to perform SPR experiments involving MZ1:VHL:BRD4
Streptavidin (SA) Dip and Read BiosensorsSartorius18-509Coated sensors used in BLI experiments

References

  1. Balaji, V., Hoppe, T. Regulation of E3 ubiquitin ligases by homotypic and heterotypic assembly. F1000Research. 9, (2020).
  2. Song, L., Luo, Z. -. Q. Post-translational regulation of ubiquitin signaling. Journal of Cell Biology. 218 (6), 1776-1786 (2019).
  3. Yang, Q., Zhao, J., Chen, D., Wang, Y. E3 ubiquitin ligases: styles, structures and functions. Molecular Biomedicine. 2 (1), 23 (2021).
  4. Grice, G. L., Nathan, J. A. The recognition of ubiquitinated proteins by the proteasome. Cellular and Molecular Life Sciences: CMLS. 73 (18), 3497-3506 (2016).
  5. Chirnomas, D., Hornberger, K. R., Crews, C. M. Protein degraders enter the clinic - a new approach to cancer therapy. Nature Reviews Clinical Oncology. 20 (4), 265-278 (2023).
  6. Toure, M., Crews, C. M. Small-molecule PROTACS: New approaches to protein degradation. Angewandte Chemie (International ed. In English). 55 (6), 1966-1973 (2016).
  7. Ottis, P., Toure, M., Cromm, P. M., Ko, E., Gustafson, J. L., Crews, C. M. Assessing different E3 ligases for small molecule induced protein ubiquitination and degradation. ACS Chemical Biology. 12 (10), 2570-2578 (2017).
  8. Riching, K. M., et al. Quantitative live-cell kinetic degradation and mechanistic profiling of PROTAC mode of action. ACS Chemical Biology. 13 (9), 2758-2770 (2018).
  9. Nabet, B., et al. The dTAG system for immediate and target-specific protein degradation. Nature Chemical Biology. 14 (5), 431-441 (2018).
  10. Paiva, S. -. L., Crews, C. M. Targeted protein degradation: elements of PROTAC design. Current Opinion in Chemical Biology. 50, 111-119 (2019).
  11. Hershko, A., Ciechanover, A. The ubiquitin system. Annual Review of Biochemistry. 67, 425-479 (1998).
  12. Chan, K. -. H., Zengerle, M., Testa, A., Ciulli, A. Impact of target warhead and linkage vector on inducing protein degradation: Comparison of bromodomain and extra-terminal (BET) degraders derived from triazolodiazepine (JQ1) and tetrahydroquinoline (I-BET726) BET inhibitor scaffolds. Journal of Medicinal Chemistry. 61 (2), 504-513 (2018).
  13. Roy, M. J., et al. SPR-measured dissociation kinetics of PROTAC ternary complexes influence target degradation rate. ACS Chemical Biology. 14 (3), 361-368 (2019).
  14. Pierce, N. W., Kleiger, G., Shan, S., Deshaies, R. J. Detection of sequential polyubiquitylation on a millisecond timescale. Nature. 462 (7273), 615-619 (2009).
  15. Gadd, M. S., et al. Structural basis of PROTAC cooperative recognition for selective protein degradation. Nature Chemical Biology. 13 (5), 514-521 (2017).
  16. Nahta, R., Castellino, R. C. Phosphatase magnesium-dependent 1 δ (PPM1D), serine/threonine protein phosphatase and novel pharmacological target in cancer. Biochemical Pharmacology. 184, 114362 (2021).
  17. Douglass, E. F., Miller, C. J., Sparer, G., Shapiro, H., Spiegel, D. A. A comprehensive mathematical model for three-body binding equilibria. Journal of the American Chemical Society. 135 (16), 6092-6099 (2013).
  18. Zorba, A., et al. Delineating the role of cooperativity in the design of potent PROTACs for BTK. Proceedings of the National Academy of Sciences. 115 (31), E7285-E7292 (2018).
  19. Fairhead, M., Howarth, M. Site-specific biotinylation of purified proteins using BirA. Methods in Molecular Biology. 1266, 171-184 (2015).
  20. Nowak, R. P., et al. Plasticity in binding confers selectivity in ligand-induced protein degradation. Nature Chemical Biology. 14 (7), 706-714 (2018).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

JoVE203

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved