JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

אנו מתארים את ההליכים הכירורגיים המפורטים של פגמים מרוכבים בתפרים קלבריאליים גרמיים בחולדות, לצד החקירות של הפרוגנוזות קצרות הטווח והארוכות של המודל. אנו שואפים לבנות מודל סטנדרטי לפיתוח טיפולים בתפרים-רגנרטיביים.

Abstract

פגמים קלווריאליים בקנה מידה גדול עולים לעתים קרובות בקנה אחד עם הפרעה בתפר הגולגולת, מה שמוביל לליקויים בשיקום פגם קלווריאלי ופיתוח גולגולת (האחרון מתרחש בגולגולת המתפתחת). עם זאת, היעדר מודל סטנדרטי מעכב את ההתקדמות בחקירת טיפולים רגנרטיביים בתפרים ומציב אתגרים לביצוע ניתוחים השוואתיים על פני מחקרים שונים. כדי לטפל בבעיה זו, הפרוטוקול הנוכחי מתאר את תהליך המידול המפורט של פגמים מרוכבים בתפר קלבריאלי גרמי בחולדות.

המודל נוצר על ידי קידוח חורים מלבניים בעובי מלא בגודל 4.5 מ"מ × 2 מ"מ על פני התפרים העטרתיים. החולדות עברו המתת חסד, ודגימות הגולגולת נלקחו לאחר הניתוח ביום 0, בשבוע 2, בשבוע 6 ובשבוע 12. תוצאות μCT מדגימות שנאספו מיד לאחר הניתוח אישרו את ההקמה המוצלחת של הפגם המרוכב התפר-גרמי, הכולל את הסרת התפר העטרתי ורקמות העצם הסמוכות.

נתונים מהשבועותה-6 וה-12 שלאחר הניתוח הדגימו נטיית ריפוי טבעית לסגירת הפגם. צביעה היסטולוגית אימתה מגמה זו עוד יותר על ידי הצגת סיבים מינרליים מוגברים ועצם חדשה במרכז הפגמים. ממצאים אלה מצביעים על איחוי תפרים מתקדם לאורך זמן בעקבות פגמים קלווריאליים, ומדגישים את חשיבות ההתערבויות הטיפוליות להתחדשות התפרים. אנו צופים כי פרוטוקול זה יקל על פיתוח טיפולים לחידוש התפרים, ויציע תובנות חדשות לגבי שיקום תפקודי של פגמים קלווריאליים והפחתת התוצאות השליליות הקשורות לאובדן תפרים.

Introduction

תפרים גולגולתיים הם קשרים סיביים צפופים בין עצמות הגולגולת, הפועלים כמפרקים כדי להקל על תנועת גולגולת קלה ומספקים כרית מגן למוח תחת לחץ1. בשנים האחרונות, מחקר מוגבר הדגיש את התפקיד המרכזי של תפרים גולגולתיים בהתפתחות הגולגולת, הומאוסטזיס גולגולתי, ופוטנציאל אוסטאו-תיקון מובנה 2,3,4,5,6,7,8. בתקופות של צמיחה והתפתחות, תפרים גולגולתיים משמשים כמרכזי הצמיחה העיקריים בגולגולת4. היווצרות עצם חדשה מתרחשת בחזיתות האוסטאוגניות משני צידי התפרים, בעוד התאים בתוך התפרים שומרים על מצב מזנכימלי בלתי ממוין, מה שמבטיח התרחבות מאוזנת של הגולגולת לצד צמיחת המוח1. אובדן התפרים הגולגולתיים בשלב זה גורם לפער בין צמיחת הגולגולת והמוח, מה שמוביל לבעיות חמורות כמו פגיעות מוחיות, הידרוצפלוס, לחץ תוך גולגולתי מוגבר ותפקוד קוגניטיבילקוי 3,9.

חוץ מזה, תפרים גולגולתיים לשחק תפקיד מכריע בקביעת הפרוגנוזה של פגמים calvarial 5,7,10. פוטנציאל ההתחדשות על פני השטח הקלוואריאלי מפוזר באופן לא אחיד, כאשר תפרים גולגולתיים מראים יכולות טובות להפליא בהשוואה לאזורים שאינם תפרים10,11. מחקר אחד מצביע על כך שמהירות ריפוי הפגם הקלוואריאלי נמצאת בקורלציה הפוכה עם המרחק בין תפר הגולגולת לאתר הפציעה10. באופן ספציפי, הסרת תפרים קורונליים ו sagittal מוביל לאי ריפוי של פגמים עצם קודקודית7, תוך הדגשת הצורך של התחדשות התפרים פגמים calvarial. עם זאת, ההתמקדות של המחקרים הנוכחיים היא בעיקר על שיקום של מבנה גלוסקמה גולגולתית תוך הזנחת התחדשות של mesenchyme התפרים.

באשר להתקדמות בהתחדשות התפרים, נצפו תוצאות מבטיחות עם השתלת דשי עצם המכילים תפרים, תאי גזע מזנכימליים (MSC) וביו-חומרים מלאכותיים. כאשר הושתלו דשי עצם עם תפרים בפגמים קלווריאליים, הם השתלבו בהצלחה והחלימו, בניגוד לאלה ללא תפרים המציגים חוסר איחוד וחוסר יכולת ליצור פריאוסטאום, דורה מאטר או אוסטיאוציטים5. כמו כן, השתלת MSCs שמקורם במח עצם לתוך פגמים מרוכבים של תפר גרמי קלת הקלה על היווצרות רווחים דמויי תפר12. יש לציין כי מחקר שנערך לאחרונה הדגיש את המימוש של התחדשות התפרים עם Gli1+ MSCs, המאפשר בקרת לחץ תוך גולגולתי, תיקון עיוות גולגולת ותפקוד נוירו-קוגניטיבי משופר13. ככל שהרפואה הרגנרטיבית וההנדסה הביו-רפואית מתפתחות, החוקרים מתמקדים יותר ויותר בביו-חומרים של הנדסת רקמות בשל תכונותיהם הניתנות להתאמה אישית14. יש לציין כי קרומי פוליטטרה-פלואוראתילן הוכחו כיעילים בשחזור עצם גולגולתית ותפר מזנכימה בו זמנית15,16.

עם זאת, במחקר הקרניופציאלי חסרים מודלים מבוססים לחקר טיפולים רגנרטיביים מזנכימליים בתפרים, בניגוד למודלים בוגרים יחסית בתיקון רקמות אחרות כגון עצם, עור, סחוס ושרירים17. היעדר מודל סטנדרטי מגביל את המחקר של טיפולים תפרים-רגנרטיביים ומקשה על ביצוע ניתוח השוואתי בין מחקרים שונים. לכן, המחקר שלנו קבע פגם מעשי וניתן לשחזור בתפר קלבריאלי-גרמי מרוכב של חולדה. באמצעות שיטה זו, אנו שואפים לפתח התערבויות קליניות מתאימות לשחזור תפר גולגולתי, תוך מתן נקודות מבט חדשות על תיקון פונקציונלי של פגמים קלווריאליים והפחתת תוצאות שליליות הנובעות מאובדן תפרים.

Protocol

כל ההליכים בבעלי חיים במחקר זה נבדקו ואושרו על ידי הוועדה האתית של בית הספר לסטומטולוגיה במערב סין, אוניברסיטת סצ'ואן (WCHSIRB-D-2021-597). בסך הכל התקבלו 12 (3 חולדות בכל אחת מארבע נקודות הזמן) חולדות Sprague-Dawley (SD) (זכר, 300 גרם, 8 שבועות) ממקור מסחרי (ראו טבלת חומרים).

1. הכנה טרום ניתוחית

  1. פריטים כירורגיים
    1. הכינו כלי ניתוח שמוצגים באיור 1A, כולל מלקחיים מעוקלים, אזמל סטרילי חד-פעמי, מעלית פריאוסטלית, מחט השקיה, כדורי צמר גפן, ידית במהירות נמוכה, מנוע כירורגי, בורות עגולות דנטליות במהירות נמוכה (איור 1B, קוטר 1.2 מ"מ ו-0.8 מ"מ, בהתאמה), מחזיק מחט, תפרים מונופילמנטיים 3-0 ומספריים ישרים.
  2. עיקור וחיטוי
    1. לעקר את המכשירים על ידי עיקור בקיטור (125-135 מעלות צלזיוס, 20-25 דקות) מראש.
    2. השתמש באתנול כדי לעקר ציוד רפואי רגיש לחום, כגון מכונות גילוח חשמליות.
    3. השתמש בבדים לא ארוגים רפואיים סטריליים כדי לכסות את פלטפורמת הניתוח ולחטא את הסביבה עם אתנול 75%.
  3. הרדמה
    1. הכינו בעלי חיים לניתוח עם תקופת התאקלמות של שבוע.
    2. הזריקו לחולדות קסילזין (10 מ"ג/ק"ג) וקטמין (100 מ"ג/ק"ג) 20 דקות לפני הניתוח להרדמה או השתמשו בכל פרוטוקול הרדמה מתאים להשגת הרדמה כללית.
      הערה: קוקטייל ההרדמה קטמין-קסילזין הניתן תוך צפקית בחולדות נכנס לתוקף בדרך כלל תוך 10-15 דקות, ומגיע לשיא ההרדמה בסביבות 35-40 דקות לאחר ההזרקה. כדי למנוע היפותרמיה במהלך ההרדמה, חולדות ממוקמות בצורה הטובה ביותר על כרית חימום.
    3. מתן זריקה תת עורית טרום ניתוחית של קרפרופן ב 5 מ"ג / ק"ג כדי לספק שיכוך כאבים.
    4. השתמשו ב"שיטת צביטת הבוהן" כדי לקבוע אם החולדות בהכרה ומגיבות.

2. תהליך כירורגי

  1. הכנת האתר
    1. הניחו את החולדה בתנוחה נוטה כשראשה נמשך באופן טבעי אנכית, מבלי להזדקק למכשירים מיוחדים או למעצורים כדי לשמור על התנוחה הזו (איור 2A).
    2. יש למרוח משחה וטרינרית, כלומר וזלין, על עיני החולדה כדי למנוע יובש בקרנית.
    3. הסירו את השיער מהקרקפת שבין גשר האף למפרק עמוד השדרה הצווארי בעזרת מכונת גילוח חשמלית (איור 2B). יש לחטא את אזור הניתוח בתנועות מעגליות המוקרנות מהמרכז בתמיסת יודופור 2% ואחריה 75% אתנול. השתמשו בוילון כירורגי כדי לכסות את החלק האחורי של בעל החיים ואת הפרווה המקיפה את החתך.
  2. פתיחת אתר כירורגי
    1. החל מנקודת האמצע של עצם האף, בצעו חתך עור אורכי בקוטר 2 ס"מ עם אזמל חד פעמי בעקבות קו האמצע של הגולגולת (איור 2C).
    2. בצעו חתך פריאוסטאלי בקו האמצע המשקף את הנקודה וההיקף הראשוניים של שכבת העור בעזרת אזמל (איור 2D). לאחר מכן, הרימו בעדינות את הפריאוסטאום משני צידי החתך באמצעות מעלית פריאוסטאלית (איור 2E1) כדי לחשוף עצמות קודקודיות, עצמות קדמיות ותפרים קורונליים (איור 2E2).
      הערה: בעת חיתוך periosteum, יש להקפיד שלא לפגוע בתפרים גולגולתיים כדי למנוע דימום מוגזם בעת החיתוך. חשיפה נאותה של תפר העטרה היא בעלת חשיבות עליונה עבור ההליכים הבאים.
    3. שוטפים את הפצע בתמיסת מלח ומייבשים את אזור הניתוח בכדורי צמר גפן.
  3. הקמת מודל פגם תפר-גרמי מרוכב
    1. כוונו את המנוע הכירורגי ל-35,000 סל"ד על-ידי סיבוב הידית (איור 1A, חץ צהוב), ואז הפעילו את המתג (איור 1A, חץ לבן).
    2. החל מכל נקודה בתפר העטרה, יש להפעיל כוח אנכי באמצעות בור עגול בקוטר 1.2 מ"מ עד לתחושת פריצת דרך.
      הערה: ממליץ על נקודת האמצע של תפר העטרה (מסומנת בחצים צהובים באיור 2E2) כנקודת ההתחלה לחדירה. בעת השחזה, מקדחות שיניים צריך להישמר בניצב למשטח הגולגולת. יש להיזהר שלא להמשיך בקידוח לאחר חדירה לעובי המלא של הגולגולת כדי למנוע פגיעה נוספת בחולדות, כולל נזק מוחי או דימום מוחי.
    3. מנקודת החדירה, הזיזו את הבור לרוחב לאורך תפר העטרה כדי ליצור חריץ מיקום באורך של כ-4 מ"מ (איור 2F1). הסירו את רקמת העצם עם הבור משני צידי חריץ המיקום כדי ליצור בתחילה פגם מלבני בעובי מלא (איור 2F2).
    4. השתמשו בבור עגול בקוטר 0.8 מ"מ כדי לעדן פרטים (איור 2G1), הכולל השחזה של זוויות ישרות והחלקה של שולי הפגמים, ובסופו של דבר להשיג פגם מלבני סטנדרטי ברוחב 2 מ"מ ובאורך 4.5 מ"מ (איור 2G2).
      הערה: כדי להשיג הסרה מלאה של התפר העטרתי תוך שמירה על התפרים הסגיטליים והקדמיים בחולדות SD של 300 גרם, אורך הפגם המרבי האפשרי הוא כ-4.5 מ"מ. בהתחשב ברוחב התפר העטרה בכיוון הקדמי-אחורי (איור משלים S1), רוחב הפגם נקבע כ-2 מ"מ.
    5. יצירת שני פגמים על פני החצי השמאלי והימני של תפר העטרה לצורך השוואה עצמית.
    6. שמור על השקיה רציפה של תמיסת מלח במהלך הליך הקידוח כדי להגן מפני פגיעה תרמית בגולגולת ובמוח. בינתיים, השתמשו בצמר גפן כדי לייבש את אזור הניתוח.
  4. אימות ממד לדוגמה
    1. ודאו באופן קבוע את אורך ורוחב הפגמים באמצעות קליפר ורנייה (איור 2H1, H2) כדי להבטיח עקביות בכל הדגימות.
  5. סגירת אתר כירורגי
    1. סגרו את העור עם 3-0 תפרי מונופילמנט (איור 2I).
  6. טומוגרפיה מיקרו-ממוחשבת מיידית in vivo (μCT)
    1. במידת האפשר, יש לבצע סריקות μCT in vivo על כל החולדות מיד לאחר הניתוח כדי לאשר את הצלחת ההליך הכירורגי ולעקוב אחר מגמות החלמת פגמים עבור כל אדם.

3. טיפול לאחר ניתוח

  1. על פי פרוטוקולים לטיפול בבעלי חיים, מתן משככי כאבים מבוססים לפי הצורך לאחר הניתוח, למשל, קרפרופן (5 מ"ג / ק"ג, שימוש תת עורי).
  2. העבירו את החולדות לכרית חימום קבועה (37°C) להתאוששות לאחר הניתוח.
  3. לאחר הכרה מלאה, העבירו את החולדות לכלוב הדיור שלהן המכיל מצעים נקיים.
    הערה: יש לעקוב ברציפות אחר החולדות לאחר הניתוח. אל תשאיר אותם ללא השגחה עד שהם יכולים לשמור על שכיבה עצם החזה. יש לשמור על חולדות מנותחות מבודדות מאחרות עד להחלמה מלאה.
  4. בצע ניהול משככי כאבים ומעקב לאחר הניתוח במשך 24 שעות, ולאחר מכן הערכות יומיות במהלך השבוע הראשון לאחר הניתוח. עקבו אחר החולדות לפחות 1-2 פעמים בשבוע לאחר מכן.

4. איסוף דגימות וניתוח נתונים

  1. הכנת דוגמאות
    1. יש לאסוף דגימות גולגולת ביום 0, בשבוע 2, בשבוע 6 ובשבוע 12 לאחר הניתוח. הרדימו את החולדות באמצעות שאיפתCO2 .
    2. תקן את הדגימות ב 4% paraformaldehyde ב 4 ° C במשך 24 שעות לפני ניתוח נוסף.
  2. הערכת μCT
    1. בצע סריקות μCT על עצמות גולגולת של יום 0, שבוע 6, שבוע 12 עם פרמטרי הסריקה הבאים: פוטנציאל צינור רנטגן, 70 kVp; עוצמת רנטגן, 0.2 mA; מסנן, AL 0.5 מ"מ; זמן אינטגרציה, 1 x 300 אלפיות השנייה; וגודל ווקסל, 10 מיקרומטר.
    2. קבל שחזור תלת-ממדי ותמונות חתך באמצעות תוכנה לעיבוד תמונה (ראה טבלת חומרים).
    3. מדוד נפח פגם שיורי ובצע ניתוח סטטיסטי עם התוכנה המתאימה (ראה טבלת חומרים).
  3. צביעה היסטולוגית
    1. בטל את הסתיידות עצמות הגולגולת בתמיסת חומצה טטראצטית אתילן דיאמין (pH = 7.2) ב -4 מעלות צלזיוס למשך 6 שבועות.
      הערה: בטל את ההסתיידות בדגימות עם שינויי תמיסה כל 3 ימים. השתמש בשייקר כדי לזרז את התהליך. ההשלמה מסומנת כאשר מחט 25 גרם חודרת בקלות לדגימה.
    2. המשך עם התייבשות, שיבוץ פרפין והכנת חתכים של 6 מיקרומטר באמצעות פרוטוקולים סטנדרטיים18.
    3. ביצוע ניתוח היסטולוגי באמצעות hematoxylin ו eosin (H&E) ואת צביעת trichrome של Masson בעקבות פרוטוקול ערכה18.

תוצאות

במחקר זה, פגם תפר קלבריאלי-גרמי מרוכב של חולדה נקבע על ידי קידוח חור מלבני בגודל 4.5 מ"מ x 2 מ"מ לרוחב התפר העטרתי. האיור הסכמטי הכירורגי ותרשים זרימת המחקר מתוארים באיור 3. התמונה התלת-ממדית ותצוגת החתך של דגימות 0 ימים לאחר הניתוח, כלומר דגימות שנאספו מיד לאח?...

Discussion

מודלים קונבנציונליים של פגם קלווריאלי, בין אם מעורבים בהם תפרים גולגולתיים ובין אם לאו, מתרכזים בעיקר בתיקון רקמות קשות, ולעתים קרובות מזניחים את ההתחדשות החיונית של מזנכימה של התפרים19,20. במחקר התחדשות תפרים, מודלים קודמים, כמו אלה של Mardas ...

Disclosures

למחברים אין ניגודי עניינים להצהיר.

Acknowledgements

מחקר זה נתמך על ידי הקרן הלאומית למדעי הטבע של סין 82100982 (F.L.), 82101000 (H.W.), 82001019 (B.Y.), מחלקת המדע והטכנולוגיה של מחוז סצ'ואן 2022NSFSC0598 (B.Y.), 2023NSFSC1499 (H.W.) ומימון מחקר מבית הספר / בית החולים לסטומטולוגיה של מערב סין אוניברסיטת סצ'ואן (RCDWJS2021-5). איור 3 נוצר באמצעות Biorender.com.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
4% paraformaldehydeBiosharpBL539A
2% Iodophor solutionChengdu Jinshan Chemical Reagent Co., Ltd.None
75% EthanolChengdu Jinshan Chemical Reagent Co., Ltd.None
Cotton ballsHaishi Hainuo Group Co., Ltd. None
Cotton swabsLakong Medical Devices Co., None
Curved forcepsChengdu Shifeng Co., Ltd.None
Dataviewer and Ctan software for residual defect volume assessmentsBrukerNone
Dental low-speed round bursDreybird Medical Equipment Co., Ltd.RA3-012
RA1-008
Disposable sterile scalpelHangzhou Huawei Medical Supplies Co., Ltd.None
Disposable syringes (22 G)Chengdu Shifeng Co., Ltd.SB1-089(IX)
Electric shaverJASEBM320210
Ethylene Diamine Tetraacetic Acid (EDTA)BioFroxx1340GR500
Hematoxylin and Eosin Stain KitBiosharpBL700B
Irrigation needle (23 G)Sichuan New Century Medical Polymer Products Co., Ltd.None
Low-speed handpieceGuangzhou Dental Guard Technology Co., Ltd.None
Masson’s Trichrome Stain KitSolarbioG1340
Medical non-woven fabricsHenan Yadu Industrial Co., Ltd. None
Micro-computed tomography (µCT) Scanco Medical AGµCT45
Mimics 20.0 for cross-sectional imagesMaterialiseNone
Needle holdersChengdu Shifeng Co., Ltd.None
Periosteal elevatorChengdu Shifeng Co., Ltd.None
Saline solutionSichuan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd.None
Scanco medical visualizer software for 3D image reconstructionScanco Medical AGNone
SPSS Statistics 20.0 for statistical analysisIBMNone
Sprague-Dawley rats Byrness Weil Biotech LtdNone
Straight ScissorsChengdu Shifeng Co., Ltd.None
Surgical MotorMARATHONN3-140232
Surgical sutures (3-0 monofilament)Hangzhou Huawei Medical Supplies Co., Ltd.None

References

  1. Li, B., et al. Cranial suture mesenchymal stem cells: insights and advances. Biomolecules. 11 (8), 1129 (2021).
  2. Opperman, L. A. Cranial sutures as intramembranous bone growth sites. Dev Dyn. 219 (4), 472-485 (2000).
  3. Lenton, K. A., Nacamuli, R. P., Wan, D. C., Helms, J. A., Longaker, M. T. Cranial suture biology. Curr Top Dev Biol. 66 (4), 287-328 (2005).
  4. Slater, B. J., et al. Cranial sutures: A brief review. Plast Reconstr Surg. 121 (4), 170-178 (2008).
  5. Zhao, H., et al. The suture provides a niche for mesenchymal stem cells of craniofacial bones. Nat Cell Biol. 17 (4), 386-396 (2015).
  6. Maruyama, T., Jeong, J., Sheu, T. -. J., Hsu, W. Stem cells of the suture mesenchyme in craniofacial bone development, repair and regeneration. Nat Commun. 7 (1), 10526 (2016).
  7. Wilk, K., et al. Postnatal calvarial skeletal stem cells expressing PRX1 reside exclusively in the calvarial sutures and are required for bone regeneration. Stem Cell Reports. 8 (4), 933-946 (2017).
  8. Doro, D. H., Grigoriadis, A. E., Liu, K. J. Calvarial suture-derived stem cells and their contribution to cranial bone repair. Front Physiol. 8, 956 (2017).
  9. Kajdic, N., Spazzapan, P., Velnar, T. Craniosynostosis-recognition, clinical characteristics, and treatment. Bosn J Basic Med Sci. 18 (2), 110-116 (2018).
  10. Park, S., Zhao, H., Urata, M., Chai, Y. Sutures possess strong regenerative capacity for calvarial bone injury. Stem Cells Dev. 25 (23), 1801-1807 (2016).
  11. Quarto, N., Behr, B., Longaker, M. T. Opposite spectrum of activity of canonical Wnt signaling in the osteogenic context of undifferentiated and differentiated mesenchymal cells: Implications for tissue engineering. Tissue Eng Part A. 16 (10), 3185-3197 (2010).
  12. Kaku, M., et al. Mesenchymal Stem Cell-Induced Cranial Suture-Like Gap in Rats. Plast Reconstr Surg. 127 (1), 69-77 (2011).
  13. Yu, M., et al. Cranial suture regeneration mitigates skull and neurocognitive defects in craniosynostosis. Cell. 184 (1), 243-256 (2021).
  14. Koons, G. L., Diba, M., Mikos, A. G. Materials design for bone-tissue engineering. Nat Rev Mater. 5 (8), 584-603 (2020).
  15. Mardas, N., Kostopoulos, L., Karring, T. Bone and suture regeneration in calvarial defects by e-PTFE-membranes and demineralized bone matrix and the impact on calvarial growth: an experimental study in the rat. J Craniofac Surg. 13 (3), 453-462 (2002).
  16. Kostopoulos, L., Karring, T. Regeneration of the sagittal suture by GTR and its impact on growth of the cranial vault. J Craniofac Surg. 11 (6), 553-561 (2000).
  17. Mosaddad, S. A., Hussain, A., Tebyaniyan, H. Exploring the use of animal models in craniofacial regenerative medicine: A narrative review. Tissue Eng Part B Rev. , (2023).
  18. Tan, X., et al. PgC3Mg metal-organic cages functionalized hydrogels with enhanced bioactive and ROS scavenging capabilities for accelerated bone regeneration. J Mater Chem B. 10 (28), 5375-5387 (2022).
  19. Yazdanian, M., et al. Fabrication and properties of βTCP/Zeolite/Gelatin scaffold as developed scaffold in bone regeneration: in vitro and in vivo studies. Biocybern Biomed Eng. 40 (4), 1626-1637 (2020).
  20. Soufdoost, R. S., et al. In vitro and in vivo evaluation of novel Tadalafil/β-TCP/Collagen scaffold for bone regeneration: A rabbit critical-size calvarial defect study. Biocybern Biomed Eng. 39 (3), 789-796 (2019).
  21. Russell, W. P., Russell, M. R. Anatomy, head and neck, coronal suture. StatPearls. , (2022).
  22. Menon, S., et al. Skeletal stem and progenitor cells maintain cranial suture patency and prevent craniosynostosis. Nat Commun. 12 (1), 4640 (2021).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

CT

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved