אנו מודים לחברי במעבדה Wingert לדיונים שימושי AKI ביולוגיה וטכניקות דג הזברה, ו-C Diep לשיתוף מתכון methylcellulose שלו. המחברים גם מבקשים להביע את תודתנו לחברי הצוות של נוטרדאם המרכז לחקר דג הזברה למתן בעלי מצוין טיפול שוטף עבור המושבה דג הזברה שלנו. מימון הפרס מענק NIH-NIDDK DK083512, מעבדה נדיב הזנק במימון מאוניברסיטת נוטר דאם, נתמך על העבודה הזאת.

1. הליך Microinjection לתווית דג הזברה כלית ראשית אפיתל אבובית הפרוקסימלי עבור הליך זה, אנו משתמשים במערכת microinjection (Appartus הרווארד, PLI90), עם אוויר דחוס המסופק על ידי מדחס אוויר (יוני-Air, דגם 6-4), וכן מנגנון micromanipulator (Narishege חלקים MN151, IP3 ו GJI) כי הם התאספו בתחנת stereomicroscope (ניקון, SMZ-Zoom 645), כמו לכל הוראות היצרן. Conjugates dextran הם endocytosed בקלות על ידי נפרון אבובית הפרוקסימלי, המאפשר תיוג מועדף של אוכלוסייה זו תא אפיתל 9. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חשיפה כחול מתילן יכול להדגיש את autofluorescence של שק החלמון ואת עושה ויזואליזציה של נפרון tubules קשה יותר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הרם את העוברים מופרית על 28.5 ° C עד timepoint התפתחותי הפריה בין 48-55 שעות שלאחר (hpf). זהו השלב האידיאלי לבצע microinjections הזחלים בגלל הקלות שבה microinjection לשריר יכול להתבצע, ובגלל תפקוד כלייתי מתחילה בשלב זה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את כל סיסית של דג הזברה שלא נתבקעה בעזרת זוג מלקחיים בסדר. יש לשטוף את הלכלוך סיסית מצלחת פטרי ולמלא את המנה עם 30 MLS של פתרון שונה E3. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנת מגש זריקה כלפי העובר. עובש הזרקת המועדפת שלנו מורכב של 1.5% agarose/E3, שבו נוצרות שקעים משולש כזה העובר יכול להיות ממוקם בתוך להזרקה. כדי להפוך את התבנית זריקה, אנו לצוף תבנית פלסטיק עם בליטות בצורת טריז (מתואר בפירוט בעבר 11) בצלחת פטרי מלאות בסיס agarose של 1.5%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן microinjection מחטים על ידי משיכת צינורות זכוכית נימי עם חולץ מחט, כפי שמתואר בספר דג הזברה 10. בקיצור, למשוך את צינורות זכוכית נימי ואז להשתמש במלקחיים מתכת דק לחתוך את קצה המחט microinjection לעשות עם נקודת קצה חד בעת הצגת קצה מחט תחת stereomicroscope. חנות מחטים לחתוך מכוסה בצלחת פטרי ואת מיקומו על פלסטלינה כדי להגן על קצה לחתוך למנוע הצטברות אבק. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכן את פתרון הזרקת לתווית אבובית הפרוקסימלי. ממיסים 40 KD-dextran והעמסת המצומד (Invitrogen, D1845) בריכוז של 1 מ&quot;ג / מ&quot;ל ​​במים מזוקקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להרדים את הדג, מוסיפים 5 MLS של 0.2% Tricaine pH 7.0 כדי בצלחת פטרי שמכילה את הזחלים דג הזברה ב 30 MLS של E3. הדגים מורדמים כאשר הם כבר לא מציגים את התגובה למגע. זה חיוני כי הדגים מורדמים לגמרי או שהם יהיו עווית על ניסיון להזריק אותם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את הדג על מגש הרדים זריקה עובש באמצעות pipet העברת פלסטיק. מקם את חיה עם ראשו בחלק העמוק ביותר של דיכאון המשולש היטב, ובצד כזה גזע נח בצד זווית הבאר שלו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בצע microinjection תוך שרירית. טען מחט לחתוך עם μL 2-3 של dextran והעמסת, ולהזריק את החיה somite גזע עם כ 1 NL של פתרון. כוון החלק העליון של somite, ולהימנע הרחבה שק החלמון. הדבר מבטיח כי tubules נפרון לא שיבשו באופן מכני על ידי תהליך microinjection. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העברת דג הזברה מוזרק כדי בצלחת פטרי נקי, ולהוסיף פתרון E3 שונה. יש לשטוף את החיות 3 פעמים עם E3 טרי כדי להסיר את כל עקבות של Tricaine. מכסים את מכסה צלחת פטרי עם רדיד אלומיניום על מנת לספק אור הגנה על dextran, ולהחזיר את החיות של 28 ° C חממה לילה. </li></ol> 2. אבלציה לייזר ממוקד של תאים אבובית הפרוקסימלי עבור הליך זה, אנו משתמשים stereomicroscope עם epifluorescence להבקיע חיות עם dextran והעמסת tubules הפרוקסימלי במאור שכותרתו ובחר אלה עבור אבלציה לייזר. לאחר מכן, אנו משתמשים micropoint פעמו לייזר המערכת (מכשירים פוטוניים, Inc), כי כבר מחוברת למיקרוסקופ מתחם (ניקון Eclipse 80i עם קובץ מצורף epifluorescent), ו מכויל לשימוש הוראות היצרן לכל, לבצע אבלציה נפרון התא. היו לנו את ההצלחה הרבה ביותר ב אבלציה התא באמצעות מסנן FITC המאפשר חוקר כדי לראות את האזורים אבובית ניאון תחת brightfield תאורה. לקראת הליך זה, להכין התקשורת immobilization עבור אבלציה ידי המסת methylcellulose 1.5% ב 0.02% tricaine/E3. Aliquots חנות של methylcellulose לשימוש מיידי בטמפרטורת החדר, או 4 ° C עבור אחסון לטווח ארוך. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים דג הזברה 72 hpf ידי הוספת 5 MLS של 7.0 Tricaine 0.2% pH כדי בצלחת פטרי שמכילה את הזחלים דג הזברה ב 30 MLS של E3. הדגים מורדמים כאשר הם כבר לא מציגים את התגובה למגע. זה חיוני כי הדגים מורדמים לגמרי או שהם יהיו עווית על ניסיון לבצע אבלציה לייזר. </li&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> בדוק את החיות מוזרק תחת ההגדרה פלורסנט המתאים ובחרו חיות שבו אתה יכול בקלות לדמיין את tubules הפרוקסימלי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> העברת עוברים שנבחרו צלחת נפרדת המכילה tricaine. בעלי חיים יכול להיות מורדם למשך עד 30 דקות לפני ביצוע אבלציה התא. אם הציון&gt; 15 החיות, להחזיר את צלחת נפרדת המכילה E3 שונה טריים בעודם ממתינים אבלציה כמו אבלציה כל תא לוקח כמה דקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי לבצע את אבלציה, העברה חד דג הזברה בהרדמה כדי בצלחת פטרי קטן המכיל 1.5% tricaine methylcellulose/0.02% למשך 2 דקות כדי לשטוף את העובר בתקשורת immobilization. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מכן, להעביר את העובר לשקופית זכוכית דיכאון המכיל ירידה של 1.5% methylcellulose/0.02% tricaine. בעדינות עמדת חיה עם בדיקה קנס כזה בצד הגחון שלה פונה שקופיות בצד הגבי הוא פונה כלפי מעלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את השקף על הבמה מיקרוסקופ compund, ולהתמקד בצד הגבי של החיה. ביצוע אבלציה של תאים נפרון תחת להתמקד מדכא את דוושת רגל. אתה תראה פיזור הקרינה כמו בתאי אפיתל הכליה הם ablated (איור 1A). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות להעביר את החיה ablated אל באר צלחת גם 12 עבור culturing הבאים. שוטפים את E3 2-3 פעמים כדי לשטוף את methylcellulose. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הזריקה, להעלות את החיה timepoint הרצוי ולבצע ניתוח הרצוי לפי טכניקות היסטולוגית מולקולרית הוקמה עבור עוברי דג הזברה הצעירה (איור 2). </li></ol> 3. נציג התוצאות: הנתונים מוצגים באיור 1 מצביעים על timecourse אבלציה. לאחר זריקה תוך שרירית עם dextran-conjugates, אבובית הפרוקסימלית מתויג מועדף. הזרקת dextran-FITC שימש התווית כליה עבור אבלציה לייזר, וחיות ablated היו reinjected עם dextran-rhodamine ב אבלציה one timepoint נוספים הבאים Reimage האוכלוסייה אבובית הפרוקסימלי. ניתוח טכניקות ביטוי כמו הכלאה באתרו ניתן להשתמש כדי לנתח את השינויים דגימות קבוע timepoints יחיד הבאים אבלציה התא, כפי שמוצג באיור 2. <img src="/files/ftp_upload/2845/2845fig1.jpg" alt="איור 1"/> איור 1: אבלציה הליך לייזר מלווה התחדשות מהירה של האפיתל אבובית (AC) Timecourse שינויים הסלולר במהלך ואחרי אבלציה לייזר של tubules הזחל דג הזברה הפרוקסימלית בזמן של אבלציה (יום 3, לוח א &#39;), או אחד או שלושה. בימים שלאחר אבלציה (יום 4, פאנל B; יום 7, פנל C). (למעלה) שרטוטים להראות המיקום של נפרון, עם dextran-FITC (ירוק) ו-dextran rhodamine (אדום), ו (התחתון) תמונות חיות של שליטה לייזר ablated (לוס אנג&#39;לס) nephrons. <img src="/files/ftp_upload/2845/2845fig2.jpg" alt="איור 2"/> איור 2:. ניתוח של ביטוי גנים לאחר אבלציה לייזר בעקבות אבלציה לייזר יום 3, עוברים נקבעו ועובדו על הר שלם הכלאה באתרו לזהות תעתיקי עבור slc20a1a, אשר סימן את הקטע הפרוקסימלי אבובית מפותלת של נפרון. (א) העובר לשלוט זה לא היה נתון אבלציה לייזר, (ב) העובר בו קטע גדול של האפיתל אבובית היה ablated, ו (ג) העובר בו הפסקה קצרה של האפיתל אבובית היה ablated. הקו השחור מציין את מידת אבובית הפרוקסימלית ב לספק התייחסות, קווים כחולים מציינים את מידת אבלציה לייזר לוחות לפני הספירה, * מציין את הביקורת (הלא ablated) נפרון הנגדי בפאנלים לפנה&quot;ס.

<ol>
	<li>Thadhani, R., Pascual, M., Bonventre, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+renal+failure.">Acute renal failure.</a> New Eng. J. Med. 334, 1448-1460 (1996).</li><li>Bonventre, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dedifferentiation+and+proliferation+of+surviving+epithelial+cells+in+acute+renal+failure.">Dedifferentiation and proliferation of surviving epithelial cells in acute renal failure.</a> J Am. Soc. Nephrol. 14, 55-61 (2003).</li><li>Dressler, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cellular+basis+of+kidney+development.">The cellular basis of kidney development.</a> Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 22, 509-529 (2006).</li><li>Wingert, R. A., Selleck, R., Yu, J., Song, H. D., Chen, Z., Song, A., Zhou, Y., Thisse, B., Thisse, C., McMahon, A. P., Davidson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+cdx+genes+and+retinoic+acid+control+the+positioning+and+segmentation+of+the+zebrafish+pronephros.">The cdx genes and retinoic acid control the positioning and segmentation of the zebrafish pronephros.</a> PLoS Genet. 3, 1922-1938 (2007).</li><li>Wingert, R. A., Davidson, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+zebrafish+pronephros:+a+model+to+study+nephron+segmentation.">The zebrafish pronephros: a model to study nephron segmentation.</a> Kidney Int. 73, 1120-117 (2008).</li><li>Lieschke, G. J., Currie, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+human+disease:+zebrafish+swim+into+view.">Animal models of human disease: zebrafish swim into view.</a> Nat. Rev. Genet. 8, 353-367 (2007).</li><li>Hentschel, D. M., Park, K. M., Cilenti, L., Zervos, A. S., Drummond, I. A., Bonventre, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Acute+renal+failure+in+zebrafish:+a+novel+system+to+study+a+complex+disease.">Acute renal failure in zebrafish: a novel system to study a complex disease.</a> Am. J. Physiol. Renal Physiol. 288, 923-9229 (2005).</li><li>Cosentino, C. i. a. n. c. i. o. l. o., Roman, C., Drummond, B. L., A, I., Hukriede, N. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intravenous+Microinjections+of+Zebrafish+Larvae+to+Study+Acute+Kidney+Injury.">Intravenous Microinjections of Zebrafish Larvae to Study Acute Kidney Injury.</a> J Vis Exp. (42), e2079-e2079 (2010).</li><li>Drummond, I. A., Majumdar, A., Hentschel, H., Elger, M., Solnica-Krezel, L., Schier, A. F., Neuhauss, S. C. F., Stemple, D. L., Zwartkruis, F., Rangini, Z., Driever, W., Fishman, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+development+of+the+zebrafish+pronephros+and+analysis+of+mutations+affecting+pronephric+function.">Early development of the zebrafish pronephros and analysis of mutations affecting pronephric function.</a> Development. 125, 4655-4657 (1998).</li><li>Westerfield, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Zebrafish Book. , (2000).</li><li>Kemp, H. A., Carmany-Rampey, A., Moens, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generating+chimeric+zebrafish+embryos+by+transplantation.">Generating chimeric zebrafish embryos by transplantation.</a> J. Vis. Exp. (29), e1394-e1394 (2009).</li><li>Humphreys, B. D., Valerius, M. T., Kobayashi, A., Mugford, J. W., Soeng, S., Duffield, J., McMahon, A. P., Bonventre, J. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intrinsic+epithelial+cells+repair+the+kidney+after+injury.">Intrinsic epithelial cells repair the kidney after injury.</a> Cell Stem Cell. 2, 284-291 (2008).</li><li>Bussolati, B., Hauser, P. V., Carvalhosa, R., Camussi, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contribution+of+stem+cells+to+kidney+repair.">Contribution of stem cells to kidney repair.</a> Curr. Stem Cell Res. Therapy. 4, 2-8 (2009).</li><li>Devarajan, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Update+on+mechanisms+of+ischemic+acute+kidney+injury.">Update on mechanisms of ischemic acute kidney injury.</a> J. Am. Soc. Nephrol. 17, 1503-1520 (2006).</li><li>Lopez-Novoa, J. M., Quiros, Y., Vicente, L., Morales, A. I., Lopez-Hernandez, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+insights+into+the+mechanism+of+aminoglycoside+nephrotoxicity:+an+integrative+point+of+view.">New insights into the mechanism of aminoglycoside nephrotoxicity: an integrative point of view.</a> Kid. Int. , (2010).</li><li>Diep, C. Q., Ma, D., Holm, T., Naylor, R., Arora, N., Wingert, R., Bollig, F., Djordjevic, G., Lichman, B., Zhu, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+adult+nephron+progenitors+capable+of+kidney+regeneration+in+zebrafish.">Identification of adult nephron progenitors capable of kidney regeneration in zebrafish.</a> Nature. 470, 95-100 (2011).</li></ol>

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

דג הזברה הוא אורגניזם מודל נפוץ ברחבי היבטים רבים של המדע, של יישומים אשר צומחות 6. התעסוקה של מערכת מודל דג הזברה במחקר של מחלות כליה כמו AKI הוביל תצפיות חשוב תמשיך להיות מודל טוב ללמוד פגיעה בכליות 7,8. עם הגנום כי כבר רצף ופרוטוקולים מולקולריים רבים במקום, זה הפך להיות קל יותר ויותר לבצע מחקר דג הזברה מתוחכם אשר מנצל מודלים מהונדס, מציאה גן ומחקרים misexpression. דג הזברה יש מחזור חיים קצר עם גדלים דור גדול מוגדרים היטב שלבי ההתפתחות. יתר על כן, דג הזברה בשלבים עובריים הזחל הם שקופים במידה רבה, מה שהופך בדיקות הדמיה אפשרי בלי דיסקציה של האורגניזם. לאורך שלבים עובריים הזחל, דג הזברה יש כליה pronephric מורכבת משני nephrons, אשר נשארים גלויים במהלך אלה timepoints התפתחותית. דג הזברה nephrons pronephric הם מקביל במבנה ותפקוד עמיתיהם יונקים שלהם, מה שהופך אותו מודל טוב אי ספיקת כליות חריפה מחקרים 4,5. כליות הוא קריטי להישרדות של בני אדם ובעלי חוליות אחרים, משמש איבר זה מנקה את הגוף של פסולת מטבולית נוזלי. פונקציה זו טיהור נשענת על היכולת של הכליות nephrons לסנן את הדם, ולאחר מכן לשנות את תסנין לאסוף פסולת חנקני להפרשת נוזל ובד בבד לשמור על איזון אלקטרוליטי. Nephrons מורכב מסנן דם, אבובית אפיתל, ומסננים לתוך צינור. שלמות מבניים ותפקודיים של כל שלושת החלקים הוא חלק בלתי נפרד פונקציה נפרון. עלבונות שונים לכליה, כולל חשיפה nephrotoxins, איסכמיה, או חסימה של דרכי השתן יצוא יכול לגרום AKI 1. פתולוגיה של AKI קשורה לעיתים קרובות עם 1,2 חריפה נמק צינורי. מחקרים קליניים הראו כי שהתפתח אי ספיקת כליות יש שיעור תמותה זה יכול לנוע בכל מקום בין 70-80% בהתאם לגורם והקשר של כישלון כליות. עם זאת, אבחנה היפוך מהיר של הגורם הבסיסי של AKI קשורה יותר ויותר עם התאוששות דרך התחדשות של tubules נפרון נמקי. מחקרים אחרונים מיפוי גורל הראו כי אוכלוסיית התאים העיקריים ומאכלס אותה מחדש tubules נפרון פגום בתאי האפיתל שמקורם, באזורים סמוכים וללא כל פגע 12. ממצאים אלה לא ביטלו את האפשרות כי כליות גזע / ובתאים יכול להשתתף בתהליך, דוחות עצמאיים הראו כי תאים שמקורם במוח העצם יכול לתרום כליה התחדשות 13. ברור כי יש צורך בחקירות המשיך בצורה טובה יותר לפתור מקורות הסלולר של התחדשות אפיתל הכליה. שניהם התחדשות נפרון ופיתוח לשתף את התופעה של מתגים במצב הסלולר בין פנוטיפים mesenchymal ו אפיתל. במהלך הפיתוח נפרון, ובתאים mesenchymal להתמיין פנוטיפ נייח, מצרף אל קרום במרתף כדי ליצור את האפיתל צינורי 3. תופעת הנדידה משערים של תאים אפיתל בעקבות אי ספיקת כליות חריפה מחייבת dedifferentiation לתוך פנוטיפ mesenchymal. מעניין לציין, כי מחקרים שנעשו לאחרונה מראים כי תאים mesenchymal בכליות פגום תערוכה פרופיל ביטוי דומה לתא mesenchymal במהלך הפיתוח 14. דיווחים שונים גילו שינויים במולקולות הדבקה התא, חלבונים מטריקס, ציטוקינים chemokines. בעקבות mesenchymal המוצע המעבר אפיתל, תאים מחדש על קרום המרתף reinitiate פעילויות אפיתל צינורי. קביעת הגנים חשוב בתהליך זה ממשיך להיות נושא מחקר במעבדה שלנו ואחרים. רוב העבודה על מנת להבהיר את גורמי מפתח בתהליך זה נותר להיעשות, אבל התקדמות משמעותית בתחום כבר בישרו על ידי חקר את ההשפעות של גנטמיצין. AKI ואי ספיקת כליות הנגרמת על ידי גנטמיצין רלוונטי בהתחשב בשכיחות של תרכובות nephrotoxic בשימוש ברפואה 15. משמש כטיפול גרם שליליים, זיהומים חיידקיים, הממשל של aminoglycosides מוביל לפגיעה חריפה 10-25% מהמקרים. התרופה גורמת שפע של השפעות שליליות הסלולר, יחד והתוצאה אפופטוזיס או נמק בתאי צינורי רבים. מחקרים מצאו את התרופה להיקשר מעדיפים לקומפלקס שנוצר על ידי megalin ו cubulin כי הוא מעורב אנדוציטוזה. מולקולות אלה נמצאים בשפע בתאי האפיתל של אבובית הפרוקסימלית, אם כי הם לא רק ביטוי בתאים אלה. באמצעות איתות הסלולר וכתוצאה מכך אינדוקציה של סטרס חמצוני, שחרור vasoconstrictors, דלדול הסלולר ATP, היפוקסיה, עיכוב phospholipases, אנטיביוטיקה גנטמיצין דומים לגרוםאפופטוזיס ו נמק בתאי האפיתל. בנוסף, אנטיביוטיקה ההדק התכווצות mesangial את הדם פילטר נפרון (glomerulus), וכתוצאה מכך ירידה בשיעור סינון גלומרולרי ו שלילי לשנות את היכולת של הכליות לסנן את הדם. הייצור של מינים החמצן מגיב, מולקולות immunostimulatory, והפעלה של phospholipases יש תופעות מפוזר בכל נפרון, יצירת פתולוגיה קטסטרופלי שמוביל אי ספיקת כליות חריפה. בעוד שמחקרים אנטיביוטיקה גנטמיצין ודומה היה וימשיך להיות כלי חשוב למחקר התחדשות בכליות, הם חוסר דיוק זה יכול להיות שימושי בהתמודדות עם שאלות מסוימות. המערכת שלנו באמצעות דג הזברה בשילוב עם שיטת לייזר אבלציה המתואר בפרוטוקול זה עונה על הצורך של כלי כזה מחקר מדויק. אבלציה לייזר מאפשר לחוקרים לגרום להרס תאים באזורים מוקד של אבובית הכליה, החל קטן (2-3) עד (&gt; 5-10) אוכלוסיות גדולות, עם דיוק ללא תחרות. בפרוטוקול זה, אנו מנצלים שיטה שפותחה בעבר החשיפה dextran-conjugates מעדיפים תווית אוכלוסיות אבובית הפרוקסימלי אפיתל. לחלופין, מהונדס קווי דג הזברה המבטאים חלבון פלואורסצנטי ירוק אחד או יותר אזורים של אבובית יכול לשמש. לדוגמה, cadherin17: eGFP מהונדס דג הזברה התערוכה הקרינה חזקה באזורים אבובית דיסטלי (אם כי באוכלוסיות חלשות הפרוקסימלי), ויכול להיות בעל ערך עבור מחקרים של התחדשות במגזרים אחרים אבובית 16. הנראות של נפרון יאפשר זמן לשגות הקלטת וידאו של שינויים הסלולר לאורך זמן. בשילוב עם ביטוי במחקרים הגן כגון הר שלם הכלאה באתרו או אימונוהיסטוכימיה, החוקרים יכולים לזהות שינויים מולקולריים נפרון לאורך זמן. יחדיו, אסטרטגיות כאלה יכולים להתחיל לנסח הבנה דינמית יותר של האירועים להתרחש כאשר תאים אפיתל הכליה נהרסים. החיסרון העיקרי של המודל שלנו לייזר אבלציה היא שזה יכול לשחזר היבטים חלקיים של התנאים הפיזיולוגיים להתברר בבית AKI האדם. מוות של תאים המושרה דרך נזק פיזי מיידי שונה מפל של אירועים שמובילה נמק של תאים, ובתור שכזה גורמי הלחות אלה microenvironments אחר לא יכול להיות זהה. בנוסף, קיימת עדות של אפופטוזיס המושרה במהלך פגיעה בכליות, והוא לא ידוע אם תוצאות כאלה להתרחש עלבון הבאה עם לייזר. עם זאת, בדיוק כמו התרבות תאים הוא כלי טוב יותר תשובות לכמה שאלות המחייבים סביבה מבוקרת מאוד, אבלציה לייזר ישמש מבוקר מאוד במודל vivo של AKI. ככזה, התובנות שליקטתי מתוך כליות מחקרים אבלציה אפיתל של דג הזברה צפוי לקדם את הגילוי של תובנות היסוד, כי ניתן להחיל על חקירות של פציעות כליות אחרים המשמשים פוטנציאל ליצור אבחון טוב יותר בבני אדם.

<table border="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><th> שם מגיב </th><th> חברה </th><th> מספר קטלוגי </th></tr><tr><td> העובר מנות </td><td> בז </td><td> 35-1005 </td></tr><tr><td> Dissection מלקחיים </td><td> Roboz </td><td> RS-5010 </td></tr><tr><td> הזרקת מחטים </td><td> סאטר Intruments </td><td> BF100-50-10 </td></tr><tr><td> Ultrapure agarose </td><td> Invitrogen </td><td> 16500-500 </td></tr><tr><td> 40 kilodalton (KD) dextran-והעמסת </td><td> Invitrogen </td><td> D1845 </td></tr><tr><td> העברת פלסטיק pipet </td><td> Samco מדעי, פישר </td><td> 204, 13-711-23 </td></tr><tr><td> Tricaine </td><td> סיגמא </td><td> E10521 </td></tr><tr><td> Methylcellulose </td><td> סיגמא </td><td> M0262 </td></tr><tr><td> דיכאון שקופית </td><td> דיג </td><td> S175201 </td></tr><tr><td> 12 גם צלחת </td><td> קורנינג </td><td> 3512 </td></tr></tbody></table>

laser ablation of the zebrafish pronephros to study renal epithelial regeneration

נזק כלייתי אקוטי (AKI) מאופיין בשיעורי התמותה גבוהים בתפקוד הכלייתי על פני תקופה של שעות או ימים, כי מגיע לשיאו אי ספיקת כליות 1. AKI יכולה להיגרם על ידי מספר גורמים ביניהם רעילות, תרופה המבוססת על איסכמיה, או פגיעה חסימתית 1. התוצאה היא חוסר יכולת לשמור על איזון נוזלים ואלקטרוליטים. בעוד AKI נצפתה במשך עשרות שנים, טיפולים קליניים יעילים טרם פיתחה. מסקרן, כמה חולים עם AKI להתאושש פונקציות כליות לאורך זמן, תופעה מסתורית התאפיינה רק rudimentally 1,2. מחקרים באמצעות מודלים של יונקים AKI הראו כי הכליות איסכמי או nephrotoxin-פצועים לחוות מוות של תאים אפיתל ב נפרון tubules 1,2, יחידות תפקודית של הכליה אשר מורכב מסדרה של אזורים מיוחדים (קטעים) של סוגי תאים אפיתל 3 . בתוך nephrons, מוות של תאים אפיתל היא הגבוהה ביותר בתאי אבובית הפרוקסימלי. יש ראיות לכך מציע הרס התא ואחריו dedifferentiation, התפשטות, הגירה של הסובבים לתאי האפיתל, אשר יכול לחדש את נפרון לחלוטין 1,2. עם זאת, ישנן שאלות רבות ללא מענה על מנגנוני התחדשות של האפיתל כליות, החל את האותות לווסת את האירועים הללו כדי סיבות וריאציה רחב של יכולות בקרב בני אדם להתחדש הכליות נפגע. דג הזברה הזחל מהווה מודל מצוין ללמוד התחדשות כליה אפיתל כמו כליות pronephric שלה מורכבת nephrons כי הם שמורים עם חוליות גבוהה כולל יונקים 4,5. Nephrons זחלים של דג הזברה ניתן דמיינו עם טכניקות הקרינה בגלל השקיפות היחסית של דג הזברה צעיר 6. זה מספק הזדמנות ייחודית לתא התמונה השינויים המולקולריים בזמן אמת, בניגוד מודלים יונקים שבו nephrons אינם נגישים בגלל הכליות הן מערכות מורכבות מבנית הפנימו בתוך החיה. מחקרים שנעשו לאחרונה המועסקים גנטמיצין aminoglycoside כסוכן סיבתי רעילים למחקר של AKI ואי ספיקת כליות הבאים: גנטמיצין ואנטיביוטיקה אחרים הוכחו לגרום AKI בבני אדם, החוקרים גיבשו שיטות להשתמש הסוכן לעורר נזק לכליות על דג הזברה 7 , 8. עם זאת, ההשפעות הרעילות aminoglycoside ב הזחלים דג הזברה הם קטסטרופלי וקטלני, אשר מציג קושי כאשר לומדים התחדשות אפיתל לתפקד לאורך זמן. השיטה שלנו מציג את השימוש אבלציה תא ממוקדים ככלי הרומן לחקר פציעה אפיתל של דג הזברה. אבלציה לייזר מעניקה לחוקרים את היכולת לגרום מוות של תאים באוכלוסייה מוגבלת של תאים. באזורים שונים של תאים יכולים להיות ממוקדים המבוססים על מיקום פונקציה מורפולוגיים, או אפילו הביטוי של פנוטיפ סלולרית בפרט. לפיכך, אבלציה לייזר יגדיל את הספציפיות של מה שהחוקרים יכולים ללמוד, והוא יכול להיות גישה חדשה חזק כדי לשפוך אור על מנגנוני התחדשות אפיתל הכליה. פרוטוקול זה יכול להיות מיושם באופן נרחב למקד אוכלוסיות תאים באיברים אחרים בעובר דג הזברה ללמוד פציעה והתחדשות בכל מספר בהקשרים של עניין.

Watch this Scientific Journal Video about Laser Ablation of the Zebrafish Pronephros to Study Renal Epithelial Regeneration at JoVE.com

Laser Ablation of the Zebrafish Pronephros to Study Renal Epithelial Regeneration

נזק כלייתי אקוטי (AKI) בבני אדם היא בעיה קלינית נפוצה נגרמת על ידי נזק לתאי האפיתל המרכיבים nephrons כליות, AKI קשור עם שיעורי תמותה גבוהים של 5-70% 1. לאחר חורבן תא אפיתל, nephrons יש יכולת מוגבלת להתחדש, אם כי המנגנונים והמגבלות המנחים את התופעה הזאת להישאר ממעטים להבין. במאמר זה וידאו, אנחנו מתארים את הטכניקה שלנו אבלציה לייזר ממוקד של תאים נפרון כליה כליות העובר דג הזברה, או כלית ראשית. השיטה החדשה שלנו יכול לשמש כדי להשלים nephrotoxicity-Induced דגמים של AKI ולהשיג הבנה ברזולוציה גבוהה של התא ואת השינויים המולקולריים הקשורים התחדשות אפיתל ב נפרון את הכליה.

אבלציה בלייזר של דג הזברה כלית ראשית לחקר התחדשות אפיתל הכליה

Acute kidney injury (AKI) is characterized by high mortality rates from deterioration of renal function over a period of hours or days that culminates in ...

laser-ablation-zebrafish-pronephros-to-study-renal-epithelial

Research

JoVE Journal

Biology

15.2K Views.  University of Notre Dame. נזק כלייתי אקוטי (AKI) בבני אדם היא בעיה קלינית נפוצה נגרמת על ידי נזק לתאי האפיתל המרכיבים nephrons כליות, AKI קשור עם שיעורי תמותה גבוהים של 5-70% 1. לאחר חורבן תא אפיתל, nephrons יש יכולת מוגבלת להתחדש, אם כי המנגנונים והמגבלות המנחים את התופעה הזאת להישאר ממעטים להבין. במאמר ...

Video: Laser Ablation of the Zebrafish Pronephros to Study Renal Epithelial Regeneration

Testing Visual Sensitivity to the Speed and Direction of Motion in Lizards

Testing visual sensitivity in any species provides basic information regarding behaviour, evolution, and ecology. However, testing specific features of the visual system provide more empirical evidence for functional applications. Investigation into the sensory system provides information about the sensory capacity, learning and memory ability, and establishes known baseline behaviour in which to gauge deviations (Burghardt, 1977). However, unlike mammalian or avian systems, testing for learning and memory in a reptile species is difficult. Furthermore, using an operant paradigm as a psychophysical measure of sensory ability is likewise as difficult. Historically, reptilian species have responded poorly to conditioning trials because of issues related to motivation, physiology, metabolism, and basic biological characteristics. Here, I demonstrate an operant paradigm used a novel model lizard species, the Jacky dragon (Amphibolurus muricatus) and describe how to test peripheral sensitivity to salient speed and motion characteristics. This method uses an innovative approach to assessing learning and sensory capacity in lizards. I employ the use of random-dot kinematograms (RDKs) to measure sensitivity to speed, and manipulate the level of signal strength by changing the proportion of dots moving in a coherent direction. RDKs do not represent a biologically meaningful stimulus, engages the visual system, and is a classic psychophysical tool used to measure sensitivity in humans and other animals. Here, RDKs are displayed to lizards using three video playback systems. Lizards are to select the direction (left or right) in which they perceive dots to be moving. Selection of the appropriate direction is reinforced by biologically important prey stimuli, simulated by computer-animated invertebrates.

Testing visual sensitivity in lizards using an operant conditioning paradigm that employs video playback of random-dot kinematograms and computer-generated invertebrates.

בדיקת רגישות חזותית על מהירות ועל כיוון התנועה של לטאות

Testing visual sensitivity in any species provides basic information regarding behaviour, evolution, and ecology. However, testing specific features of ...

Cortical Neurogenesis: Transitioning from Advances in the Laboratory to Cell-Based Therapies

Neurogenesis קליפתיים: מעבר מן ההתקדמות מעבדה כדי Cell טיפולים מבוססי

Computer-Generated Animal Model Stimuli

Communication between animals is diverse and complex. Animals may communicate using auditory, seismic, chemosensory, electrical, or visual signals. In particular, understanding the constraints on visual signal design for communication has been of great interest. Traditional methods for investigating animal interactions have used basic observational techniques, staged encounters, or physical manipulation of morphology. Less intrusive methods have tried to simulate conspecifics using crude playback tools, such as mirrors, still images, or models. As technology has become more advanced, video playback has emerged as another tool in which to examine visual communication (Rosenthal, 2000). However, to move one step further, the application of computer-animation now allows researchers to specifically isolate critical components necessary to elicit social responses from conspecifics, and manipulate these features to control interactions. Here, I provide detail on how to create an animation using the Jacky dragon as a model, but this process may be adaptable for other species. In building the animation, I elected to use Lightwave  3D to alter object morphology, add texture, install bones, and provide comparable weight shading that prevents exaggerated movement. The animation is then matched to select motor patterns to replicate critical movement features. Finally, the sequence must rendered into an individual clip for presentation. Although there are other adaptable techniques, this particular method had been demonstrated to be effective in eliciting both conspicuous and social responses in staged interactions.

Computer-generated stimuli using the Jacky dragon as a model.

מחשב שנוצר מודל החיה גירויים

Communication between animals is diverse and complex. Animals may communicate using auditory, seismic, chemosensory, electrical, or visual signals. In ...

Murine Renal Transplantation Procedure

Renal orthotopic transplantation in mice is a technically challenging procedure. Although the first kidney transplants in mice were performed by Russell et al over 30 years ago (1) and refined by Zhang et al years later (2), few people in the world have mastered this procedure. In our laboratory we have successfully performed 1200 orthotopic kidney transplantations with &gt; 90% survival rate. The key points for success include stringent control of reperfusion injury, bleeding and thrombosis, both during the procedure and post-transplantation, and use of 10-0 instead of 11-0 suture for anastomoses.
Post-operative care and treatment of the recipient is extremely important to transplant success and evaluation. All renal graft recipients receive antibiotics in the form of an injection of penicillin immediately post-transplant and sulfatrim in the drinking water continually. Overall animal health is evaluated daily and whole blood creatinine analyses are performed routinely with a portable I-STAT machine to assess graft function.

Renal transplantation in mice is a technically challenging procedure that requires careful post-operative care and treatment for success.

Murine נוהל השתלת כליה

Renal orthotopic transplantation in mice is a technically challenging procedure. Although the first kidney transplants in mice were performed by Russell ...

Methods for the Study of the Zebrafish Maxillary Barbel

Barbels are skin sensory appendages found in fishes, reptiles and amphibians. The zebrafish, Danio rerio, develops two pairs of barbels- a short nasal pair and a longer maxillary pair. Barbel tissue contains cells of ectodermal, mesodermal and neural crest origin, including skin cells, glands, taste buds, melanocytes, circulatory vessels and sensory nerves. Unlike most adult tissue, the maxillary barbel is optically clear, allowing us to visualize the development and maintenance of these tissue types throughout the life cycle. 
This video shows early development of the maxillary barbel (beginning approximately one month post-fertilization) and demonstrates a surgical protocol to induce regeneration in the adult appendage (&gt;3 months post-fertilization). Briefly, the left maxillary barbel of an anesthetized fish is elevated with sterile forceps just distal to the caudal edge of the maxilla. A fine, sterile spring scissors is positioned against the forceps to cut the barbel shaft at this level, establishing an anatomical landmark for the amputation plane. Regenerative growth can be measured with respect to this plane, and in comparison to the contralateral barbel. Barbel tissue regenerates rapidly, reaching maximal regrowth within 2 weeks of injury.
Techniques for analyzing the regenerated barbel include dissecting and embedding matched pairs of barbels (regenerate and control) in the wells of a standard DNA electrophoresis gel. Embedded specimens are conveniently photographed under a stereomicroscope for gross morphology and morphometry, and can be stored for weeks prior to downstream applications such as paraffin histology, cryosectioning, and/or whole mount immunohistochemistry. These methods establish the maxillary barbel as a novel in vivo tissue system for studying the regenerative capacity of multiple cell types within the genetic context of zebrafish.

The zebrafish maxillary barbel is an integumentary sense organ containing ectodermal, mesodermal and neural crest derivatives. Importantly, the adult barbel can regenerate after proximal amputation. This video introduces maxillary barbel development and demonstrates a surgical protocol to induce regeneration, followed by collection, embedding and downstream imaging of barbel specimens.

שיטות מחקר של דג הזברה לסתי בינית

Barbels are skin sensory appendages found in fishes, reptiles and amphibians.  The zebrafish, Danio rerio, develops two pairs of barbels- a short nasal ...

Using the optokinetic response to study visual function of zebrafish

Optokinetic response (OKR) is a behavior that an animal vibrates its eyes to follow a rotating grating around it. It has been widely used to assess the visual functions of larval zebrafish1-5. Nevertheless, the standard protocol for larval fish is not yet readily applicable in adult zabrafish. Here, we introduce how to measure the OKR of adult zebrafish with our simple custom-built apparatus using a new protocol which is established in our lab. Both our apparatus and step-by-step procedure of OKR in adult zebrafish are illustrated in this video. In addition, the measurements of the larval OKR, as well as the optomotor response (OMR) test of adult zebrafish, are also demonstrated in this video. This OKR assay of adult zebrafish in our experiment may last for up to 4 hours. Such OKR test applied in adult fish will benefit to visual function investigation more efficiently when the adult fish vision system is manipulated.
Su-Qi Zou and Wu Yin contributed equally to this paper.

Optokinetic response has been widely used to assess the visual functions of larval zebrafish. Nevertheless, the standard protocol for larval fish is not yet readily applicable in adults1-5. Here, we introduce how to measure the OKR of adult zebrafish using a new protocol which is established in our lab.

שימוש בתגובה optokinetic ללמוד לתפקד החזותי של דג הזברה

Optokinetic response (OKR) is a behavior that an animal vibrates its eyes to follow a rotating grating around it. It has been widely used to assess the ...

A System for Culturing Iris Pigment Epithelial Cells to Study Lens Regeneration in Newt

Salamanders like newt and axolotl possess the ability to regenerate many of its lost body parts such as limbs, the tail with spinal cord, eye, brain, heart, the jaw 1. Specifically, newts are unique for its lens regeneration capability. Upon lens removal, IPE cells of the dorsal iris transdifferentiate to lens cells and eventually form a new lens in about a month 2,3. This property of regeneration is never exhibited by the ventral iris cells. The regeneration potential of the iris cells can be studied by making transplants of the in vitro cultured IPE cells. For the culture, the dorsal and ventral iris cells are first isolated from the eye and cultured separately for a time period of 2 weeks (Figure 1). These cultured cells are reaggregated and implanted back to the newt eye. Past studies have shown that the dorsal reaggregate maintains its lens forming capacity whereas the ventral aggregate does not form a lens, recapitulating, thus the in vivo process (Figure 2) 4,5. This system of determining regeneration potential of dorsal and ventral iris cells is very useful in studying the role of genes and proteins involved in lens regeneration.

In newt, the lens regenerates always from the dorsal iris by transdifferentiation of the iris pigmented epithelial cells (IPEs). Here we describe a procedure to culture dorsal and ventral newt IPE cells and their implantation to the newt eye. The implanted cells are then studied by tissue sectioning and immunohistochemistry.

מערכת culturing איריס תאים פיגמנט אפיתל לחקר התחדשות עדשה של ניוט

Salamanders like newt and axolotl possess the ability to regenerate many of its lost body parts such as limbs, the tail with spinal cord, eye, brain, ...

Rapid Genetic Analysis of Epithelial-Mesenchymal Signaling During Hair Regeneration

Hair follicle morphogenesis, a complex process requiring interaction between epithelia-derived keratinocytes and the underlying mesenchyme, is an attractive model system to study organ development and tissue-specific signaling. Although hair follicle development is genetically tractable, fast and reproducible analysis of factors essential for this process remains a challenge. Here we describe a procedure to generate targeted overexpression or shRNA-mediated knockdown of factors using lentivirus in a tissue-specific manner. Using a modified version of a hair regeneration model 5, 6, 11, we can achieve robust gain- or loss-of-function analysis in primary mouse keratinocytes or dermal cells to facilitate study of epithelial-mesenchymal signaling pathways that lead to hair follicle morphogenesis. We describe how to isolate fresh primary mouse keratinocytes and dermal cells, which contain dermal papilla cells and their precursors, deliver lentivirus containing either shRNA or cDNA to one of the cell populations, and combine the cells to generate fully formed hair follicles on the backs of nude mice. This approach allows analysis of tissue-specific factors required to generate hair follicles within three weeks and provides a fast and convenient companion to existing genetic models.

Tissue-specific analysis of a hair follicle regeneration model using lentivirus to mediate gain- or loss-of-function.

ניתוח גנטי מהיר של איתות אפיתל-mesenchymal במהלך התחדשות שיער

Hair follicle morphogenesis, a complex process requiring interaction between epithelia-derived keratinocytes and the underlying mesenchyme, is an ...

Application of Retinoic Acid to Obtain Osteocytes Cultures from Primary Mouse Osteoblasts

The need for osteocyte cultures is well known to the community of bone researchers; isolation of primary osteocytes is difficult and produces low cell numbers. Therefore, the most widely used cellular system is the osteocyte-like MLO-Y4 cell line.
The method here described refers to the use of retinoic acid to generate a homogeneous population of ramified cells with morphological and molecular osteocyte features.
After isolation of osteoblasts from mouse calvaria, all-trans retinoic acid (ATRA) is added to cell medium, and cell monitoring is conducted daily under an inverted microscope. First morphological changes are detectable after 2 days of treatment and differentiation is generally complete in 5 days, with progressive development of dendrites, loss of the ability to produce extracellular matrix, down-regulation of osteoblast markers and up-regulation of osteocyte-specific molecules.
Daily cell monitoring is needed because of the inherent variability of primary cells, and the protocol can be adapted with minimal variation to cells obtained from different mouse strains and applied to transgenic models. 
The method is easy to perform and does not require special instrumentation, it is highly reproducible, and rapidly generates a mature osteocyte population in complete absence of extracellular matrix, allowing the use of these cells for unlimited biological applications.

Treatment of primary mouse osteoblasts with retinoic acid produces a homogeneous population of ramified cells bearing morphological and molecular features of osteocytes. The method overcomes the difficulty of obtaining and maintaining primary osteocytes in culture, and can be advantageous to study cells derived from transgenic models.&#160;

יישום של חומצה הרטינואית לקבל תרבויות Osteocytes מOsteoblasts העכבר העיקרי

The need for osteocyte cultures is well known to the community of bone researchers; isolation of primary osteocytes is difficult and produces low cell ...

Cytosolic Calcium Measurements in Renal Epithelial Cells by Flow Cytometry

A variety of cellular processes, both physiological and pathophysiological, require or are governed by calcium, including exocytosis, mitochondrial function, cell death, cell metabolism and cell migration to name but a few. Cytosolic calcium is normally maintained at low nanomolar concentrations; rather it is found in high micromolar to millimolar concentrations in the endoplasmic reticulum, mitochondrial matrix and the extracellular compartment. Upon stimulation, a transient increase in cytosolic calcium serves to signal downstream events. Detecting changes in cytosolic calcium is normally performed using a live cell imaging set up with calcium binding dyes that exhibit either an increase in fluorescence intensity or a shift in the emission wavelength upon calcium binding. However, a live cell imaging set up is not freely accessible to all researchers. Alternative detection methods have been optimized for immunological cells with flow cytometry and for non-immunological adherent cells with a fluorescence microplate reader. Here, we describe an optimized, simple method for detecting changes in epithelial cells with flow cytometry using a single wavelength calcium binding dye. Adherent renal proximal tubule epithelial cells, which are normally difficult to load with dyes, were loaded with a fluorescent cell permeable calcium binding dye in the presence of probenecid, brought into suspension and calcium signals were monitored before and after addition of thapsigargin, tunicamycin and ionomycin.

Calcium is involved in numerous physiological and pathophysiological signaling pathways. Live cell imaging requires specialized equipment and can be time consuming. A quick, simple method using a flow cytometer to determine relative changes in cytosolic calcium in adherent epithelial cells brought into suspension was optimized.

מדידות סידן cytosolic בתאי האפיתל כליות על ידי cytometry הזרימה

A variety of cellular processes, both physiological and pathophysiological, require or are governed by calcium, including exocytosis, mitochondrial ...