We would like to thank the entire Lazzaro lab, and especially Susan Rottschaefer, for their help in both reviewing and testing these protocols. This is a product of their cumulative expertise. Work in the Lazzaro lab is supported by grants R01 AI083932 and R01 AI064950 from the US National Institutes of Health.

<ol>
	<li>Lemaitre, B., Hoffmann, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+host+defense+of+Drosophila+melanogaster.">The host defense of Drosophila melanogaster.</a> Annual review of immunology. 25, 697-743 (2007).</li><li>Dionne, M. S., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Models+of+infectious+diseases+in+the+fruit+fly+Drosophila+melanogaster.">Models of infectious diseases in the fruit fly Drosophila melanogaster.</a> Disease models &amp; mechanisms. 1 (1), 43-9 (2008).</li><li>Rutschmann, S., Jung, A. C., Hetru, C., Reichhart, J. M., Hoffmann, J. A., Ferrandon, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Rel+protein+DIF+mediates+the+antifungal+but+not+the+antibacterial+host+defense+in+Drosophila.">The Rel protein DIF mediates the antifungal but not the antibacterial host defense in Drosophila.</a> Immunity. 12 (5), 569-580 (2000).</li><li>Ayres, J. S., Freitag, N., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+Drosophila+mutants+altering+defense+of+and+endurance+to+Listeria+monocytogenes+infection.">Identification of Drosophila mutants altering defense of and endurance to Listeria monocytogenes infection.</a> Genetics. 178 (3), 1807-1815 (2008).</li><li>Cronin, S. J. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genome-wide+RNAi+screen+identifies+genes+involved+in+intestinal+pathogenic+bacterial+infection.">Genome-wide RNAi screen identifies genes involved in intestinal pathogenic bacterial infection.</a> Science. 325 (5938), 340-343 (2009).</li><li>Neyen, C., Bretscher, A. J., Binggeli, O., Lemaitre, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Methods+to+study+Drosophila+immunity.">Methods to study Drosophila immunity.</a> Methods. , (2014).</li><li>Dionne, M. S., Pham, L. N., Shirasu-Hiza, M., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Akt+and+FOXO+dysregulation+contribute+to+infection-induced+wasting+in+Drosophila.">Akt and FOXO dysregulation contribute to infection-induced wasting in Drosophila.</a> Current biology CB. 16 (20), 1977-1985 (2006).</li><li>McKean, K. a., Yourth, C. P., Lazzaro, B. P., Clark, A. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+evolutionary+costs+of+immunological+maintenance+and+deployment.">The evolutionary costs of immunological maintenance and deployment.</a> BMC evolutionary biology. 8 (1), 76 (2008).</li><li>Kuo, T. -. H., Pike, D. H., Beizaeipour, Z., Williams, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sleep+triggered+by+an+immune+response+in+Drosophila+is+regulated+by+the+circadian+clock+and+requires+the+NFkappaB+Relish.">Sleep triggered by an immune response in Drosophila is regulated by the circadian clock and requires the NFkappaB Relish.</a> BMC neuroscience. 11, 17 (2010).</li><li>Panayidou, S., Ioannidou, E., Apidianakis, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+pathogenic+bacteria,+fungi,+and+viruses+in+Drosophila:+disease+modeling,+lessons,+and+shortcomings.">Human pathogenic bacteria, fungi, and viruses in Drosophila: disease modeling, lessons, and shortcomings.</a> Virulence. 5 (2), 253-269 (2014).</li><li>Keebaugh, E. S., Schlenke, T. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insights+from+natural+host&#8211;parasite+interactions:+The+Drosophila+model.">Insights from natural host&#8211;parasite interactions: The Drosophila model.</a> Developmental &amp; Comparative Immunology. 42 (1), 111-123 (2014).</li><li>Howick, V. M., Lazzaro, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genotype+and+diet+shape+resistance+and+tolerance+across+distinct+phases+of+bacterial+infection.">Genotype and diet shape resistance and tolerance across distinct phases of bacterial infection.</a> BMC evolutionary biology. 14 (1), 56 (2014).</li><li>Babin, A., Kolly, S., Kawecki, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Virulent+bacterial+infection+improves+aversive+learning+performance+in+Drosophila.">Virulent bacterial infection improves aversive learning performance in Drosophila.</a> Brain, behavior, and immunity. , (2014).</li><li>Chambers, M. C., Song, K. H., Schneider, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Listeria+monocytogenes+infection+causes+metabolic+shifts+in+Drosophila+melanogaster.">Listeria monocytogenes infection causes metabolic shifts in Drosophila melanogaster.</a> PLoS ONE. 7 (12), e50679 (2012).</li><li>Fellous, S., Lazzaro, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Larval+food+quality+affects+adult+(but+not+larval)+immune+gene+expression+independent+of+effects+on+general+condition.">Larval food quality affects adult (but not larval) immune gene expression independent of effects on general condition.</a> Molecular ecology. 19 (7), 1462-1468 (2010).</li><li>Stone, E. F., Fulton, B. O., Ayres, J. S., Pham, L. N., Ziauddin, J., Shirasu-Hiza, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+circadian+clock+protein+timeless+regulates+phagocytosis+of+bacteria+in+Drosophila.">The circadian clock protein timeless regulates phagocytosis of bacteria in Drosophila.</a> PLoS pathogens. 8 (1), e1002445 (2012).</li><li>Chambers, M. C., Jacobson, E., Khalil, S., Lazzaro, B. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Thorax+injury+lowers+resistance+to+infection+in+Drosophila+melanogaster.">Thorax injury lowers resistance to infection in Drosophila melanogaster.</a> Infection and immunity. , (2014).</li><li>Rich, J. T., Neely, J. G., Paniello, R. C., Voelker, C. C. J., Nussenbaum, B., Wang, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+practical+guide+to+understanding+Kaplan-Meier+curves.">A practical guide to understanding Kaplan-Meier curves.</a> Otolaryngology--head and neck surgery official journal of American Academy of Otolaryngology-Head and Neck Surgery. 143 (3), 331-336 (2010).</li><li>Sokal, R. R., Rohlf, F. J., Freeman, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biometry. , (1995).</li><li>Frydman, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Wolbachia+bacterial+infection+in+Drosophila.">Wolbachia bacterial infection in Drosophila.</a> Journal of visualized experiments JoVE. (2), 158 (2007).</li><li>Kuo, T. -. H., Handa, A., Williams, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Quantitative+measurement+of+the+immune+response+and+sleep+in+Drosophila.">Quantitative measurement of the immune response and sleep in Drosophila.</a> Journal of visualized experiments JoVE. (70), e4355 (2012).</li><li>Vodovar, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Drosophila+host+defense+after+oral+infection+by+an+entomopathogenic+Pseudomonas+species.">Drosophila host defense after oral infection by an entomopathogenic Pseudomonas species.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 102 (32), 11414-11419 (2005).</li><li>Nehme, N. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+model+of+bacterial+intestinal+infections+in+Drosophila+melanogaster.">A model of bacterial intestinal infections in Drosophila melanogaster.</a> PLoS pathogens. 3 (11), e173 (2007).</li><li>Jaenike, J., Polak, M., Fiskin, A., Helou, M., Minhas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Interspecific+transmission+of+endosymbiotic+Spiroplasma+by+mites.">Interspecific transmission of endosymbiotic Spiroplasma by mites.</a> Biology. 3 (1), 23-25 (2007).</li><li>Kanbar, G., Engels, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ultrastructure+and+bacterial+infection+of+wounds+in+honey+bee+(+Apis+mellifera)+pupae+punctured+by+Varroa+mites.">Ultrastructure and bacterial infection of wounds in honey bee ( Apis mellifera) pupae punctured by Varroa mites.</a> Parasitology research. 90 (5), 349-354 (2003).</li></ol>

None of the authors have competing interests or conflicting interests.

ההליך המתואר כאן מניב זיהום איכות קפדנית וגבוה של תסיסנית melanogaster. דוגמאות מאוירות התמקדו בעיקר בזיהום עם Providencia rettgeri וא coli, אך הפרוטוקול הוא ישים מאוד ויכול להיות מיושם לזיהומים בחיידקים שונים על פני טווח של תנאי גידול מארח ותחזוקה. הפרטים של גישה ניסויית אופטימלית יהיו תלויים בחיידק המשמש לזיהום, גנוטיפ של המארח, ותנאי ניסוי הכוללים. מומלץ מאוד למבחן טייס כל תנאי ניסוי חדשים לפני ביצוע פרויקטים שאפתניים יותר. נקודת התחלה טובה היא לבדוק שלוש מנות זיהום על פני טווח של פי 100. מאוד פתוגנים ארסיים לעתים קרובות הציגו הטוב ביותר במינונים נמוכים מאוד מדבקים, בסדר הגודל של 10-100 תאי חיידקים לזבוב. ניתן להזריק פתוגנים מתונים יותר במינונים גבוהים יותר של כ -1,000 חיידקים לfly, ולא פתוגנים ניתן להזריק במינונים גבוהים כמו 10,000 חיידקים לזבוב. זה לעתים קרובות מאלף להגדיר קינטיקה של זיהומי רומן על ידי מעקב עומס הפתוגן, תמותת מארח, ופעילות מערכת חיסונית על סדרת אורך זמן. בגלל מדידה של עומס הפתוגן וביטוי גני המארח הם מבחני הרסניים, יש צורך להדביק זבובים שונים בתחילת הניסוי עבור כל נקודת זמן שיימדד. כאשר מחליטים אם להשתמש בדקירת סיכה או הזרקה מבוססת microcapillary, חשוב לשים לב שיש יתרונות ומגבלות לכל גישה. הזרקת נימים מציגה נפח של נוזל לתוך הזבוב, ששניהם בצניעות מגביר לחצו טורגור ומציג מלחים או מולקולות אחרות שמושעות או מומסים במנשא. הזרקת נימים דורשת גם גישה למתקן הזרקה או רכישה של הציוד הנדרש. דקירת סיכה ספיגה לא דורשת ציוד מיוחד ומציגתקשורת זניחה לזבוב, והוא בדרך כלל יעילה יותר להדבקת מספר גדול של זבובים. עם זאת, זיהומי דקירת סיכה אינם מאפשרים שליטה המדויקת במינון זיהום שניתן להשיג עם הזרקת נימים. הפרוטוקול הנוכחי התמקד במנגנון הזרקה מכאנית שמסדיר עוצמת זריקה, אבל יש גם מערכות הזרקה מבוססת על פעימות של אוויר דחוס בדידות. 20,21 אלה הם בדרך כלל יקרים יותר מאשר מנגנון ההשתתפות כאן ודורשים כיול של דופק האוויר לכל מחט כדי להבטיח כרכי הזרקה עקביים. יש ויכוח רב אבל מעט מאוד נתונים על איך הזבובים להיות מערכתי נגועים בחיידקים בטבע. חוקרים אחדים להניח שרוב הזיהומים טבעיים להתרחש כאשר תסיסנית לבלוע חיידקים פתוגניים והחיידקים לאחר מכן הצליחו להימלט הבטן להקים זיהום מערכתי. עם זאת, יש פה מאודחיידקי w הידועים כדי להיות מסוגלים לחצות את בטנו של ד &#39; melanogaster, ואלה שיש לי יכולת זו שהם קטלני ביותר לזבובי 22,23. תאוריה חלופית היא שטס באופן קבוע לקיים פציעות cuticular דרך בריחה מניסיונות טריפה נכשלו או התקפה על ידי קרדית ectoparasitic. השערה זו נתמכת על ידי האוסף התכוף של ד הפראי melanogaster נושאות כתמי melanization שמעידים על פצעים הגלידו (תצפיות לא פורסמו). קרדית הוכח להעביר זיהומים חיידקיים בדרוזופילה 24 ופצעים שהותירו קרדית יכולים להיות נגועים באופן משני על ידי חיידקים בדבורים דבש 25. עם זאת, התדירות בטבע של זיהום מונע קרדית או אחר האופורטוניסטי של ד melanogaster דרך פרצות ציפורן אינו ידוע. הפרוטוקול המתואר כאן מאפשר הקדמה של חיידקים ישירות לתוך hemolymph באמצעות הזרקה כמותיים שעוקף כל מחסומי אפיתל או אימונוגלובולינ התנהגותאינסופיות. שיטות האכלה חיידקים פתוגניים לד melanogaster תוארו בVodovar et al. 22 וNehme et al. 23. חיידקי entomopathogenic רבים מהווים סיכון לבריאות אדם קטן או לא, מאפשרים לחוקרים לעבוד איתם בנוחות. יתר על כן, יש מעט מאוד חיידקים היכולת להדביק תסיסנית על קשר ללא התערבות ניסיונית, כך הסיכון של התפשטות &quot;מגיפה&quot; של זיהום חיידקים דרך מעבדה באמצעות משטחים מזוהמים או נמלטו זבובים הוא בדרך כלל נמוך מאוד. עם זאת, מומלץ לוודא שצעדי בלימה הולמים נמצאים במקום כדי למנוע זבובים נגועים לברוח ולתפוס מחדש לכל נמלט זבובים. המעבדה צריכה להיות לבוש ברמת בטיחות ביולוגית בקנה אחד עם זו של פתוגנים בשימוש, ושיטות עבודה מומלצות סטנדרטית במיקרוביולוגיה צריכה להיות מועסקות. Infecti הניסיוניבשיטה המתוארת כאן מאפשר זיהומים של דרוזופילה melanogaster עם כל מינון של כל חיידק שרירותי. ברגע שהזיהום כבר נקבע, זה פשוט למדוד את קינטיקה של התפשטות או אישור חיידקים, כדי לעקוב אחר תמותת מארח, וassay אינדוקציה של המערכת החיסונית המארח. בקלות יכולים להיות נתונה זבובים נגועים למבחני פנוטיפי אחרים, כוללים בדיקות של תפקודים פיסיולוגיים שעשויות לעצב או להיות מעוצב על ידי הזיהום. הנהלים המתוארים הם זולים, דורשים ציוד מיוחד קטן יחסית, והם בקלות למדו, מה שהופך אותם נוחים לשימוש בפרויקטים מגוונים ברחבי לרוחבה של מעבדות מחקר והוראה.

זבוב הפירות דרוזופילה melanogaster הוא אחד יצורים המודל המוביל ללימוד הפונקציה והאבולוציה של הגנה חיסונית. דרוזופילה הם זולים וקלים לאחוריים, הם נוחים מאוד למניפולציה ניסויית, ומגובים על ידי קהילה מדעית נרחבת שהתפתחה רחב מערך של כלי מחקר. היבטים של חסינות מולדת רבים נשמרים בין חרקים ויונקים, כוללים העברת אותות בתיווכו של קולטני-כמו אגרה וגורמי שעתוק משפחת NF-kB, איתות JAK / STAT, ותגובות מסלול JNK. 1,2 הפונקציה של גנים והמסלולים יכולים אלה תשאול בד melanogaster באמצעות מוטציות או RNAi knockdowns פעילויות עלייה או ירידת מסלול ש-- 3. 6 בנוסף, תסיסנית יכולה לשמש כדי לחקור את ההשלכות הפיזיולוגיות של זיהומים ומחלות, כולל בהקשר של תאוריה האבולוציונית היסטורית חיים 7.- 9 כל המחקרים כאלה, לעומת זאת, תלויים ביכולת להדביק באופן מהימן זבובים ניסיוניים בתנאי טיפול מוגדרים. ההליך המתואר כאן מציג מסגרת המתודולוגית להעברת זיהומים חיידקיים חזקים ודיר לתסיסנית melanogaster ולאחר מכן מדידת חומרת זיהום וכימותי התגובה החיסונית המארח. תסיסנית יכולה להיות נגועה באופן טבעי וניסיוני על ידי מגוון רחב של טפילים ופתוגנים, כוללים חיידקים, פטריות, וירוסים, נמטודות וצרעות טפילות. הפרוטוקול הנוכחי מתמקד באספקת זיהום חיידקים מערכתי. חיידקים רבים ושונים יכולים לשמש כדי להדביק זבובים, והבחירה של הנסיין צריכה להיות מבוססת על השאלות המדעיות המדויקות שבקשה. לדוגמא, המבודדים קלינית בבני אדם יכול להיות מועסק ללמוד מנגנוני אלימות של חיידקי 10, או מבחינה אקולוגית מבודדים רלוונטיים עשוי להיות preferreד למחקר האבולוציוני. 11 חיידקים חלקם פתוגנים המוסמכים של ד melanogaster, מתרבים על זיהום וגרימת מחלה מארח או מוות. חיידקים אחרים מנוהלים ביעילות על ידי המערכת החיסונית המארח ופינו תוך כמה ימים. בהפגנה זו, rettgeri Providencia ישמש כמחולל מחל שגשוג שיכול לגרום לתמותת מארח ונמשך במארחים ששרדו. Coli Escherichia ישמש כאינו פתוגן שאינו מסומנת על ידי המערכת החיסונית המארח. זיהום יוקם על ידי הקדמה של חיידקים ישירות לתוך חלל הגוף של הזבוב. גישה זו עוקפת מחסומי אפיתל והתנהגויות מגוננות, המאפשרת חקירה של זיהום מערכתי ללא קשר למצב הטבעי של שידור. קיימות שתי שיטות עיקריות לניסוי הקמת זיהום מערכתי. בתחילה, מחטי nanoinjector ונימי זכוכית משך משמשות להזריק מספרם מדויק שלחיידקים לזבוב. לשיטה זו היתרונות של מאפשר טווח דינמי גדול של מנות זיהום ולהיות כמותית הדיר מאוד. הגישה השנייה היא לספק זיהום עם דקירת סיכה ספיגה. גישה זו יש יתרונות של להיות מהירים ואינו דורשים ציוד מיוחד. ברגע שהזיהומים הוקמו, הוא הופך להיות אפשרי למדוד עומס מערכתי הפתוגן, תמותת מארח, ופעילות מערכת חיסון מושרה. כמובן, כל מספר של פנוטיפים נוספים יכול להעלות על הדעת להימדד בד הנגוע melanogaster, כולל פוריות 12, יכולת למידה לאחר זיהום 13, מצב המטבולי 14, או כמעט כל תכונה אחרת שאפשר להעלות על דעת.

<table><tbody><tr><td>Incubator</td><td>Powers Scientific, Inc</td><td>DROS52SD</td><td></td></tr><tr><td>Paintbrush</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt; Flypads</td><td>FlyStuff</td><td>59-114</td><td></td></tr><tr><td>CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Airgas</td><td>CD FG50</td><td></td></tr><tr><td>Drosophila rearing mix&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>6 oz Square Bottom Bottles, polypropylene</td><td>Genesee Scientific</td><td>32-130</td><td></td></tr><tr><td>Nosterile Extra Large Cotton Balls</td><td>Fisher brand</td><td>22-456-882</td><td></td></tr><tr><td>Microscope</td><td>Olympus Corporation</td><td>SZ51</td><td></td></tr><tr><td>Drosophila Vials polystyrene</td><td>VWR international</td><td>89092-720</td><td></td></tr><tr><td>Nosterile Large Cotton Balls</td><td>Fisher brand</td><td>22-456-883</td><td></td></tr><tr><td>2 L flask</td><td>VWR international</td><td>89000-370</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dishes with Clear Lids, Raised Ridge; 100 x 15 mm;</td><td>VWR international</td><td>25384-302</td><td></td></tr><tr><td>LB Agar, Miller</td><td>Difco</td><td>244520</td><td></td></tr><tr><td>Innoculing Loop</td><td>VWR international</td><td>80094-488</td><td></td></tr><tr><td>Rainin Clasic Pipettes in various sizes&lt;br/&gt; 0.1 &amp;micro;l to 2 &amp;micro;l,&lt;br/&gt; 2 &amp;micro;l to 20 &amp;micro;l,&lt;br/&gt; 20 &amp;micro;l to 200 &amp;micro;l,&lt;br/&gt; 100 &amp;micro;l to 1,000 &amp;micro;l</td><td>Rainin</td><td>PR-2&lt;br/&gt; PR-20&lt;br/&gt; PR-200&lt;br/&gt; PR-1000</td><td></td></tr><tr><td>Micropipette tips (assorted sizes)</td><td>VWR international</td><td>30128-376&lt;br/&gt; 53503-810&lt;br/&gt; 16466-008</td><td></td></tr><tr><td>Luria Broth Base, Miller</td><td>Difco</td><td>241420</td><td></td></tr><tr><td>Disposable Culture Tubes Borosilicate Glass</td><td>VWR international</td><td>47729-576</td><td></td></tr><tr><td>S-500 Orbital Shaker</td><td>VWR international</td><td>14005-830</td><td></td></tr><tr><td>Centrifuge</td><td>VWR international</td><td>37001-300</td><td></td></tr><tr><td>PBS pH 7.4 10X</td><td>Invitrogen</td><td>70011044</td><td></td></tr><tr><td>SmartSpec 3000 Spectrophotometer</td><td>Bio-Rad</td><td>170-2501</td><td></td></tr><tr><td>Semimicrovolume Cuvettes</td><td>Bio-Rad</td><td>223-9955</td><td></td></tr><tr><td>Vertical Capillary Puller</td><td>Kopf Needle Pipette Puller</td><td></td><td></td></tr><tr><td>3.5&#039;&#039; Replacement glass Capillaries for Nanojet II</td><td>Drummond Sientific Company</td><td>3-000-203-G/X</td><td></td></tr><tr><td>Nanoject II</td><td>Drummond Sientific Company</td><td>3-000-204</td><td></td></tr><tr><td>Forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11255-20</td><td></td></tr><tr><td>10 ml Syringe</td><td>BD</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>Mineral Oil, White, light</td><td>Macron Fine Chemicals</td><td>6358-10</td><td></td></tr><tr><td>Minutein pins</td><td>Fine Science Tools</td><td>26002-10</td><td></td></tr><tr><td>1.5 ml&amp;nbsp; Microcentrifuge tubes; Seal Rite</td><td>USA Scientific Inc.</td><td>1615-5500</td><td></td></tr><tr><td>Motorized Pestle; Talboys Laboratory Stirrer</td><td>Troemner</td><td>103</td><td></td></tr><tr><td>Talboys High Throughput Homogenizer</td><td>OPS Diagnostics</td><td>930145</td><td></td></tr><tr><td>5/32&#039;&#039; Grinding Balls</td><td>OPS Diagnostics</td><td>GBSS 156-5000-01</td><td></td></tr><tr><td>Vortex Genie</td><td>Scientific indurstries inc.</td><td>G560</td><td></td></tr><tr><td>Multichannel Pipettor (10 &amp;mu;l - 300 &amp;mu;l)</td><td>Sartorius</td><td>730360</td><td></td></tr><tr><td>WASP2 Whitley Automated Spiral Plater</td><td>Microbiology International</td><td></td><td></td></tr><tr><td>ProtoCOL automated colony counter / plate counter/ plate reader&amp;nbsp;</td><td>Microbiology International</td><td></td><td></td></tr><tr><td>TRIzol</td><td>Life Technologies</td><td>15596-026</td><td></td></tr><tr><td>qPCR tubes; Low-Profile 0.2 ml 8-Tube Strips</td><td>Bio-Rad</td><td>TLS0801</td><td></td></tr><tr><td>qPCR caps; Optical Flat 8-Cap Strips</td><td>Bio-Rad</td><td>TCS0803</td><td></td></tr><tr><td>RQ1 RNase-Free DNase</td><td>Promega</td><td>m610a</td><td></td></tr><tr><td>M-MLV Reverse Transcriptase</td><td>Promega</td><td>m170b</td><td></td></tr><tr><td>dNTPs</td><td>Promega</td><td>U1240</td><td></td></tr><tr><td>Oligo-dT</td><td>IDT</td><td></td><td></td></tr><tr><td>&amp;nbsp;SsoAdvanced SYBR Green Supermix</td><td>Bio-Rad</td><td>172-5260</td><td></td></tr><tr><td>CFX Connect Real-Time PCR Detection System</td><td>Bio-Rad</td><td>185-5200</td><td></td></tr><tr><td>RNasin Ribonuclease Inhibitor</td><td>Promega</td><td>N2115</td><td></td></tr></tbody></table>

systemic bacterial infection and immune defense phenotypes in drosophila melanogaster

זבוב הפירות דרוזופילה melanogaster הוא אחד יצורים המודל המוביל ללימוד הפונקציה והאבולוציה של הגנה חיסונית. היבטים של חסינות מולדת רבים נשמרים בין חרקים ויונקים, ומאז תסיסנית יכולה בקלות להיות מניפולציות גנטית וניסיוני, הם רבי עוצמה ללימוד תפקוד מערכת חיסונית ואת ההשלכות הפיזיולוגיות של מחלה. ההליך הפגין כאן מאפשר זיהום של זבובים על ידי הקדמה של חיידקים ישירות לתוך חלל הגוף, תוך עקיפת מחסומי אפיתל וצורות פסיביות יותר של הגנה ומאפשר התמקדות בזיהום מערכתי. ההליך כולל פרוטוקולים לשיעורי תמותה של מדידת מארח, עומס הפתוגן מערכתי, ותואר של אינדוקציה של המערכת החיסונית המארח. הליך זיהום זה הוא זול, חזק וכמותית הדיר, וניתן להשתמש בו במחקרי גנטיקה תפקודית, ההיסטוריה האבולוציונית חיים, ופיזיולוגיה.

סעיף זה ממחיש תוצאות שניתן להשיג לאחר זיהום חיידקים של תסיסנית melanogaster. איור 1 מראה כי מינון זיהום משתנה עם צפיפות אופטית של ההשעיה חיידקים המשמשת להזרקה, וכי המינון נמסר ניתן לאמוד באופן מהימן על ידי homogenizing וציפוי עף מייד לאחר הזרקה . כפי שמודגם באיור 2, פתוגנים שונים יכולים לגרום לרמות של תמותת מארח (איור 2 א) ותמותת מארח שונות יכול להיות תלוי מינון (איור 2). חשוב לציין, פרוטוקול זה מאפשר לסוגים שונים של זיהומים שיושגו: rettgeri Providencia יכול לגרום לזיהום כרוני, תת-קטלני שנמשך במשך 20 ימים או (איור 3 א) ארוכים יותר. עם זאת, חיידקים אחרים כמו coli Escerichia יהיו בעיקר להיות מסומנות על ידי זבוב המארח בתוך שש שעות לאחר פגיעה (איור 3). אינדוקציה של sys חיסוניTEM ניתן לאמוד באמצעות בידוד RNA וqRT-PCR הבא של תמלילי אנטיבקטריאלי פפטיד (איור 4 א &#39;וב&#39;). באנלוגיה אבל פחות כמותית, זבובים להביע GFP בשליטת יזמי גן פפטיד מיקרוביאלית יכול לשמש כדי לחזות אינדוקציה של המערכת החיסונית (איור 4C). <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/52613/52613fig1.jpg" /> . איור 1: זבובים קביעת זיהומיות מנה הוזרקו 50 NL של השעיות חיידקי מכסים מגוון של צפיפויות אופטיות (.0001-0.05). הזבובים היו הומוגני ומייד מצופים כדי לקבוע את מספר החיידקים שהוצג על ידי ההזרקה. עומס חיידקים ראשוני מאוד בקורלציה עם OD הראשוני מוזרק (r 2 = 0.96) <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/52613/52613fig2.jpg" /> <s<html> טרונג&gt; איור 2:. הישרדות לאחר הזרקה עם חיידקים פתוגנים חמישה לשבעה ישנים זכרים היום הוזרקו 50 NL של שתי השעיה חיידקים או מדיה סטרילית ופיקוח על הישרדות. (א) זבובי סוג בר הוזרקו כ -5,000 חיידקים משל אחד משלושה מינים שונים. שיעור תמותת מארח תלוי במידה רבה על מיני חיידקים המשמשים לזיהום. זבובי סוג (B) Wild הוזרקו שלושה מינונים שונים של faecalis Enterococcous - 50, 500, ו5,000 חיידקים לזבוב. זבובים למות מהר יותר כאשר נגועים במינונים גבוהים יותר זיהומיות (C) מוטציה מערכת חיסונית וקו שליטת isogenic הפראי-סוגה הוזרקו כ -500 cepacia Burkholderia. השוואה התחבר דרגה pairwise מראה כי זבוב wild-type שורד את הזיהום משמעותי יותר מאשר המוטציה (χ 2 = 59.02, df = 1, p &lt;0.0001). FO: לשמור-together.within עמודים = &quot;תמיד&quot;&gt; <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/52613/52613fig3.jpg" /> איור 3:. עומס חיידקים לאחר הזרקת זבובים הוזרק כ () 5,000 פ rettgeri (ב) 3,400 א coli. עומס חיידקים נקבע מייד לאחר הזרקה ובנקודתי זמן שלאחר מכן שונות. כל נקודת נתונים מייצגת את עומס החיידקים של זבוב אחד. א coli מנוקה במהירות ממארחים תיגר תוך פ rettgeri נמשך לשארית חייו של המארח ,. <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/52613/52613fig4.jpg" /> איור 4: אינדוקציה של ביטוי גני החיסון לאחר הזרקה. זבובים () הוזרקו 50 NL של פ PBS rettgeri או סטרילי באו הבטן או חזה, או נותרו unmanipulated מלבד CO <sUB&gt; 2 הרדמה. שש שעות לאחר ההדבקה, זבובים נאספו עבור בידוד RNA וביטוי של Diptericin גן נקבע באמצעות qRT-PCR. רמות ביטוי () הם בגרף כיחס Diptericin תמליל לתמליל rp49 וטפסו באופן שהשליטה CO 2 מוגדרת כבעל רמת ביטוי של 1. הברים מייצגים את הממוצע וסטיית התקן של יחסים מכל מצב (n = 4). רמות ביטוי (ארוחת בוקר) בגרף כΔΔCT 2 עם ערך C T הממוצע מזבובי שליטת 2 aesthesia CO משמשים כתנאי uninduced הסטנדרטי. הברים מייצגים את השגיאה הממוצעת וסטנדרטית של ΔΔC T מכל מצב (n = 4). אמנם אין הבדל באינדוקצית תמליל בשל אתר הזרקה, השוואה של לוחות A ו- B מראה כיצד שיטת ΔΔC T עלולה להפריז בהערכת רמות אינדוקציה. (C) זבובים להביע GFP בשליטה של Diptericin אמרגן הוזרק 50 NL של פ rettgeri (OD = 0.1) ולאחר מכן צילם 7 ימים לאחר מכן. פנל ה- GFP מראה ביטוי של ה- GFP בגוף שומן הבטן של זבובים נגועים, המצביע על הפעלה של Diptericin אמרגן בזבובי bacterially נגועים אך לא שולט מוזרק תקשורת. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td> גן </td><td> קדימה </td><td> הפוך </td></tr><tr><td> rp49 (המכונה גם rpL32) </td><td> 5 &#39;AGGCCCAAGATCGTGAAGAA 3&#39; </td><td> 5 &#39;GACGCACTCTGTTGTCGATACC 3&#39; </td></tr><tr><td> Diptericin </td><td> 5 &#39;GCGGCGATGGTTTTGG 3&#39; </td><td> 5 &#39;CGCTGGTCCACACCTTCTG 3&#39; </td></tr><tr><td> Drosomycin </td><td> 5 &#39;CTGCCTGTCCGGAAGATACAA 3 &#39; </td><td> 5 &#39;TCCCTCCTCCTTGCACACA 3&#39; </td></tr><tr><td> Defensin </td><td> 5 &#39;GAGGATCATGTCCTGGTGCAT 3&#39; </td><td> 5 &#39;TCGCTTCTGGCGGCTATG 3&#39; </td></tr><tr><td> Attacin </td><td> 5 &#39;CGTTTGGATCTGACCAAGG 3&#39; </td><td> 5 &#39;AAAGTTCCGCCAGGTGTGAC 3&#39; </td></tr><tr><td> Metchnikowan </td><td> 5 &#39;AACTTAATCTTGGAGCGATTTTTCTG 3&#39; </td><td> 5 &#39;ACGGCCTCGTATCGAAAATG 3&#39; </td></tr></tbody></table> טבלה 1: צבעי יסוד לqRT-PCR.

Watch this Scientific Journal Video about Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster at JoVE.com

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

Drosophila melanogaster is an outstanding model organism for studying innate immune systems and the physiological consequences of infection and disease. This protocol describes how to deliver robust and quantitatively repeatable bacterial infections to D. melanogaster, and how to subsequently measure infection severity and quantify the host immune response.

זיהום חיידקים מערכתי וחיסון ביטחון פנוטיפים ב<em&gt; דרוזופילה melanogaster</em

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the premier model organisms for studying the function and evolution of immune defense. Many aspects of ...

systemic-bacterial-infection-immune-defense-phenotypes-drosophila

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

24.5K Views.  Cornell University. Drosophila melanogaster is an outstanding model organism for studying innate immune systems and the physiological consequences of infection and disease. This protocol describes how to deliver robust and quantitatively repeatable bacterial infections to D. melanogaster, and how to subsequently measure infection severity and quantify the host immune response.

Video: Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

Most known parasitoid wasp species attack the larval or pupal stages of Drosophila. While Trichopria drosophilae infect the pupal stages of the host (Fig. 1A-C), females of the genus Leptopilina (Fig. 1D, 1F, 1G) and Ganaspis (Fig. 1E) attack the larval stages. We use these parasites to study the molecular basis of a biological arms race. Parasitic wasps have tremendous value as biocontrol agents. Most of them carry virulence and other factors that modify host physiology and immunity. Analysis of Drosophila wasps is providing insights into how species-specific interactions shape the genetic structures of natural communities. These studies also serve as a model for understanding the hosts' immune physiology and how coordinated immune reactions are thwarted by this class of parasites.
The larval/pupal cuticle serves as the first line of defense. The wasp ovipositor is a sharp needle-like structure that efficiently delivers eggs into the host hemocoel. Oviposition is followed by a wound healing reaction at the cuticle (Fig. 1C, arrowheads). Some wasps can insert two or more eggs into the same host, although the development of only one egg succeeds. Supernumerary eggs or developing larvae are eliminated by a process that is not yet understood. These wasps are therefore referred to as solitary parasitoids.
Depending on the fly strain and the wasp species, the wasp egg has one of two fates. It is either encapsulated, so that its development is blocked (host emerges; Fig. 2 left); or the wasp egg hatches, develops, molts, and grows into an adult (wasp emerges; Fig. 2 right). L. heterotoma is one of the best-studied species of Drosophila parasitic wasps. It is a "generalist," which means that it can utilize most Drosophila species as hosts1. L. heterotoma and L. victoriae are sister species and they produce virus-like particles that actively interfere with the encapsulation response2. Unlike L. heterotoma, L. boulardi is a specialist parasite and the range of Drosophila species it utilizes is relatively limited1. Strains of L. boulardi also produce virus-like particles3 although they differ significantly in their ability to succeed on D. melanogaster1. Some of these L. boulardi strains are difficult to grow on D. melanogaster1 as the fly host frequently succeeds in encapsulating their eggs. Thus, it is important to have the knowledge of both partners in specific experimental protocols.
In addition to barrier tissues (cuticle, gut and trachea), Drosophila larvae have systemic cellular and humoral immune responses that arise from functions of blood cells and the fat body, respectively. Oviposition by L. boulardi activates both immune arms1,4. Blood cells are found in circulation, in sessile populations under the segmented cuticle, and in the lymph gland. The lymph gland is a small hematopoietic organ on the dorsal side of the larva. Clusters of hematopoietic cells, called lobes, are arranged segmentally in pairs along the dorsal vessel that runs along the anterior-posterior axis of the animal (Fig. 3A). The fat body is a large multifunctional organ (Fig. 3B). It secretes antimicrobial peptides in response to microbial and metazoan infections.
Wasp infection activates immune signaling (Fig. 4)4. At the cellular level, it triggers division and differentiation of blood cells. In self defense, aggregates and capsules develop in the hemocoel of infected animals (Fig. 5)5,6. Activated blood cells migrate toward the wasp egg (or wasp larva) and begin to form a capsule around it (Fig. 5A-F). Some blood cells aggregate to form nodules (Fig. 5G-H). Careful analysis reveals that wasp infection induces the anterior-most lymph gland lobes to disperse at their peripheries (Fig. 6C, D).
We present representative data with Toll signal transduction pathway components Dorsal and Sp&auml;tzle (Figs. 4,5,7), and its target Drosomycin (Fig. 6), to illustrate how specific changes in the lymph gland and hemocoel can be studied after wasp infection. The dissection protocols described here also yield the wasp eggs (or developing stages of wasps) from the host hemolymph (Fig. 8).

An Introduction to Parasitic Wasps of Drosophila and the Antiparasite Immune Response

Parasitoid (parasitic) wasps constitute a major class of natural enemies of many insects including Drosophila melanogaster. We will introduce the techniques to propagate these parasites in Drosophila spp. and demonstrate how to analyze their effects on immune tissues of Drosophila larvae.

מבוא של צרעות טפיליות<em&gt; תסיסנית</em&gt; ואת התגובה החיסונית Antiparasite

Most known parasitoid wasp species attack the larval or pupal stages of Drosophila. While Trichopria drosophilae infect the pupal stages of the host (Fig. ...

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is a model for understanding microbial interactions with animal hosts, facilitated by approaches to rear large sample sizes of Drosophila under microorganism-free (axenic) conditions, or with defined microbial communities (gnotobiotic). This work outlines a method for collection of Drosophila embryos, hypochlorite dechorionation and sterilization, and transfer to sterile diet. Sterilized embryos are transferred to sterile diet in 50 ml centrifuge tubes, and developing larvae and adults remain free of any exogenous microbes until the vials are opened. Alternatively, flies with a defined microbiota can be reared by inoculating sterile diet and embryos with microbial species of interest. We describe the introduction of 4 bacterial species to establish a representative gnotobiotic microbiota in Drosophila. Finally, we describe approaches for confirming bacterial community composition, including testing if axenic Drosophila remain bacteria-free into adulthood.

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

A method for rearing Drosophila melanogaster under axenic and gnotobiotic conditions is presented. Fly embryos are dechorionated in sodium hypochlorite, transferred aseptically to sterile diet, and reared in closed containers. Inoculating diet and embryos with bacteria leads to gnotobiotic associations, and bacterial presence is confirmed by plating whole-body Drosophila homogenates.

גידול זבוב הפירות<em&gt; תסיסנית</em&gt; בתנאי Axenic ו Gnotobiotic

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is ...

Developmental Biology

Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila

A complex interaction between the immune response and host behavior has been described in a wide range of species. Excess sleep, in particular, is known to occur as a response to infection in mammals 1 and has also recently been described in Drosophila melanogaster2. It is generally accepted that sleep is beneficial to the host during an infection and that it is important for the maintenance of a robust immune system3,4. However, experimental evidence that supports this hypothesis is limited4, and the function of excess sleep during an immune response remains unclear. We have used a multidisciplinary approach to address this complex problem, and have conducted studies in the simple genetic model system, the fruitfly Drosophila melanogaster. We use a standard assay for measuring locomotor behavior and sleep in flies, and demonstrate how this assay is used to measure behavior in flies infected with a pathogenic strain of bacteria. This assay is also useful for monitoring the duration of survival in individual flies during an infection. Additional measures of immune function include the ability of flies to clear an infection and the activation of NF&kappa;B, a key transcription factor that is central to the innate immune response in Drosophila. Both survival outcome and bacterial clearance during infection together are indicators of resistance and tolerance to infection. Resistance refers to the ability of flies to clear an infection, while tolerance is defined as the ability of the host to limit damage from an infection and thereby survive despite high levels of pathogen within the system5. Real-time monitoring of NF&kappa;B activity during infection provides insight into a molecular mechanism of survival during infection. The use of Drosophila in these straightforward assays facilitates the genetic and molecular analyses of sleep and the immune response and how these two complex systems are reciprocally influenced.

Quantitative Measurement of the Immune Response and Sleep in Drosophila

To understand a link between the immune response and behavior, we describe a method to measure locomotor behavior in Drosophila during bacterial infection as well as the ability of flies to mount an immune response by monitoring survival, bacterial load, and real-time activity of a key regulator of innate immunity, NF&kappa;B.

מדידת כמותית של התגובה החיסונית ובשינה<em&gt; דרוזופילה</em

A complex interaction between the immune response and  host behavior has been described in a wide range of species. Excess sleep, in  particular, is known ...

Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis

During the pathogenic infection of Drosophila melanogaster, hemocytes play an important role in the immune response throughout the infection. Thus, the goal of this protocol is to develop a method to visualize the pathogen invasion in a specific immune compartment of flies, namely hemocytes. Using the method presented here, up to 3 &#215; 106 live hemocytes can be obtained from 200 Drosophila 3rd instar larvae in 30 min for ex vivo infection. Alternatively, hemocytes can be infected in vivo through injection of 3rd instar larvae followed by hemocyte extraction up to 24 h post-infection. These infected primary cells were fixed, stained, and imaged using confocal microscopy. Then, 3D representations were generated from the images to definitively show pathogen invasion. Additionally, high-quality RNA for qRT-PCR can be obtained for the detection of pathogen mRNA following infection, and sufficient protein can be extracted from these cells for Western blot analysis. Taken together, we present a method for definite reconciliation of pathogen invasion and confirmation of infection using bacterial and viral pathogen types and an efficient method for hemocyte extraction to obtain enough live hemocytes from Drosophila larvae for ex vivo and in vivo infection experiments.

Extraction of Hemocytes from Drosophila melanogaster Larvae for Microbial Infection and Analysis

This method demonstrates how to visualize pathogen invasion into insect cells with three-dimensional (3D) models. Hemocytes from Drosophila larvae were infected with viral or bacterial pathogens, either ex vivo or in vivo. Infected hemocytes were then fixed and stained for imaging with a confocal microscope and subsequent 3D cellular reconstruction.

החילוץ של Hemocytes של הזחלים דרוזופילה melanogaster זיהום מיקרוביאלי וניתוח

During the pathogenic infection of Drosophila melanogaster, hemocytes play an important role in the immune response throughout the infection. Thus, the ...

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our knowledge of prevention and treatment of viral infection. The fruit fly Drosophila melanogaster has proven to be one of the most efficient and productive model organisms to screen for antiviral factors and investigate virus-host interaction, due to powerful genetic tools and highly conserved innate immune signaling pathways. The procedure described here demonstrates a nano-injection method to establish viral infection and induce systemic antiviral responses in adult flies. The precise control of the viral injection dose in this method enables high experimental reproducibility. Protocols described in this study include the preparation of flies and the virus, the injection method, survival rate analysis, the virus load measurement, and an antiviral pathway assessment. The influence effects of viral infection by the flies' background were mentioned here. This infection method is easy to perform and quantitatively repeatable; it can be applied to screen for host/viral factors involved in virus-host interaction and to dissect the crosstalk between innate immune signaling and other biological pathways in response to viral infection.

Establishment of Viral Infection and Analysis of Host-Virus Interaction in Drosophila Melanogaster

This protocol describes how to establish viral infection in vivo in Drosophila melanogaster using the nano-injection method and basic techniques to analyze virus-host interaction.

הקמתה של זיהום נגיפי וניתוח של התערבות מארח-וירוס דרוזופילה Melanogaster

Virus spreading is a major cause of epidemic diseases. Thus, understanding the interaction between the virus and the host is very important to extend our ...

Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay

In all animals, innate immunity provides an immediate and robust defense against a broad spectrum of pathogens. Humoral and cellular immune responses are the main branches of innate immunity, and many of the factors regulating these responses are evolutionarily conserved between invertebrates and mammals. Phagocytosis, the central component of cellular innate immunity, is carried out by specialized blood cells of the immune system. The fruit fly, Drosophila melanogaster, has emerged as a powerful genetic model to investigate the molecular mechanisms and physiological impacts of phagocytosis in whole animals. Here we demonstrate an injection-based in vivo phagocytosis assay to quantify the particle uptake and destruction by Drosophila blood cells, hemocytes. The procedure allows researchers to precisely control the particle concentration and dose, making it possible to obtain highly reproducible results in a short amount of time. The experiment is quantitative, easy to perform, and can be applied to screen for host factors that influence pathogen recognition, uptake, and clearance.

Assessing the Cellular Immune Response of the Fruit Fly, Drosophila melanogaster, Using an In Vivo Phagocytosis Assay

This protocol describes an in vivo phagocytosis assay in adult Drosophila melanogaster to quantify phagocyte recognition and clearance of microbial infections.

הערכת התגובה החיסונית הסלולר של זבוב הפירות, דרוזופילה melanogaster, שימוש ב Vivo Phagocytosis Assay

In all animals, innate immunity provides an immediate and robust defense against a broad spectrum of pathogens. Humoral and cellular immune responses are ...

Drosophila melanogaster Larva Injection Protocol

The use of unconventional models to study innate immunity and pathogen virulence provides a valuable alternative to mammalian models, which can be costly and raise ethical issues. Unconventional models are notoriously cheap, easy to handle and culture, and do not take much space. They are genetically amenable and possess complete genome sequences, and their use presents no ethical considerations. The fruit fly Drosophila melanogaster, for instance, has provided great insights into a variety of behavior, development, metabolism, and immunity research. More specifically, D. melanogaster adult flies and larvae possess several innate defense reactions that are shared with vertebrate animals. The mechanisms regulating immune responses have been mostly revealed through genetic and molecular studies in the D. melanogaster model. Here a novel larval injection technique is provided, which will further promote investigations of innate immune processes in D. melanogaster larvae and explore the pathogenesis of a wide range of microbial infections.

Drosophila melanogaster Larva Injection Protocol

Drosophila melanogaster adult flies have been extensively utilized as model organisms to investigate the molecular mechanisms underlying host antimicrobial innate immune responses and microbial infection strategies. To promote the D. melanogaster larva stage as an additional or alternative model system, a larval injection technique is described.

Drosophila melanogaster פרוטוקול הזרקת זחלים

The use of unconventional models to study innate immunity and pathogen virulence provides a valuable alternative to mammalian models, which can be costly ...

Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the best developed model systems of infection and innate immunity. While most work has focused on systemic infections, there has been a recent increase of interest in the mechanisms of gut immunocompetence to pathogens, which require methods to orally infect flies. Here we present a protocol to orally expose individual flies to an opportunistic bacterial pathogen (Pseudomonas aeruginosa) and a natural bacterial pathogen of D. melanogaster (Pseudomonas entomophila). The goal of this protocol is to provide a robust method to expose male and female flies to these pathogens. We provide representative results showing survival phenotypes, microbe loads, and bacterial shedding, which is relevant for the study of heterogeneity in pathogen transmission. Finally, we confirm that Dcy mutants (lacking the protective peritrophic matrix in the gut epithelium) and Relish mutants (lacking a functional immune deficiency (IMD) pathway), show increased susceptibility to bacterial oral infection. This protocol, therefore, describes a robust method to infect flies using the oral route of infection, which can be extended to the study of a variety genetic and environmental sources of variation in gut infection outcomes and bacterial transmission.

Oral Bacterial Infection and Shedding in Drosophila melanogaster

This protocol describes methods to orally expose and infect the fruit fly Drosophila melanogaster with bacterial pathogens, and to measure the number of infectious bacteria shed following gut infection. We further describe the effect of immune mutants on fly survival following oral bacterial infection.

זיהום חיידקי הפה ו Shedding ב דרוזופילה melanogaster

The fruit fly Drosophila melanogaster is one of the best developed model systems of infection and innate immunity. While most work has focused on systemic ...

Biology

Assessing the Age-Specific Phagocytic Ability of Adult Drosophila melanogaster Hemocytes using an In Vivo Phagocytosis Assay

Phagocytosis is an essential function of the innate immune response. This process is carried out by phagocytic hemocytes whose primary function is to recognize a wide range of particles and destroy microbial pathogens. As organisms age, this process begins to decline, yet little is known about the underlying mechanisms or the genetic basis of immunosenescence. Here, an injection based in vivo phagocytosis assay is used to assess age related changes in different aspects of phagocytosis, such as binding, engulfment, and degradation of internalized particles, by quantifying phagocytic events in hemocytes in adult Drosophila. Drosophila melanogaster has become an ideal model to investigate age related changes in innate immune function for many reasons. For one, many genetic components and functions of the innate immune response, including phagocytosis, are evolutionarily conserved between Drosophila and mammals. Because of that, results obtained from using this protocol are likely to be widely relevant to understanding the age related changes in immune function in a variety of organisms. Additionally, we note that this method provides quantitative estimates of hemocyte phagocytic ability, which could be useful for a variety of research topics, and need not be limited to studies of aging.

Assessing the Age-Specific Phagocytic Ability of Adult Drosophila melanogaster Hemocytes using an In Vivo Phagocytosis Assay

This protocol describes an in vivo assay of phagocytosis used to assess and quantify the ability of young and aged Drosophila melanogaster hemocytes to phagocytose bacteria.

הערכת היכולת הייחודית ביותר לגיל מיוחד למבוגרים דרוזופילה מלאנוטציטים באמצעות שיטת בVivo פגוציטוזה

Phagocytosis is an essential function of the innate immune response. This process is carried out by phagocytic hemocytes whose primary function is to ...

Infecting Flies with Bacterial Suspension Using a Nanoinjector

Source: Khalil, S. et al., <a href="https://app.jove.com/v/52613">Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.</a>&#160;J. Vis. Exp.&#160; (2015)
This video demonstrates the nano-injection of bacterial suspension into the fly body cavity, resulting in bacterial multiplication and infection. The fly&#39;s immune response clears some bacteria, while others escape immune clearance and survive within the host causing an infection.

הדבקת זבובים בתרחיף חיידקי באמצעות ננו-מזרק

Source: Khalil, S. et al., Systemic Bacterial Infection and Immune Defense Phenotypes in Drosophila Melanogaster.&#160;J. Vis. Exp.&#160; (2015)
This ...

זיהום חיידקים מערכתי וחיסון ביטחון פנוטיפים ב

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

מבוא של צרעות טפיליות

גידול זבוב הפירות

מדידת כמותית של התגובה החיסונית ובשינה