Preparazione del Tumor Antigen-caricati mature cellule dendritiche per l&#39;immunoterapia

Rachel Lubong Sabado; Elizabeth Miller; Meredith Spadaccia; Isabelita Vengco; Farah Hasan; Nina Bhardwaj

doi:10.3791/50085

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In questo articolo

Riepilogo
Abstract
Protocollo
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Riferimenti
Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Il metodo più comunemente utilizzato per generare un elevato numero di cellule dendritiche autologhe (DC) per uso in immunoterapia tumore è descritto. Il metodo utilizza IL-4 e GM-CSF per differenziare DC da monociti. Le DC immature sono stimolati a maturo e poi caricato con antigeni prima di essere iniettati nel paziente.

Abstract

Mentre gli studi clinici hanno dimostrato che i vaccini DC antigene-caricati sono al sicuro e promettente terapia per i tumori ^1, la loro efficacia clinica rimane da stabilire. Il metodo descritto di seguito, redatto in conformità con buon processo di fabbricazione (GMP), è una ottimizzazione del metodo di preparazione ex vivo più comuni per la generazione di un gran numero di cellule dendritiche per gli studi clinici ^2.

Il nostro metodo utilizza il TLR sintetico 3 agonista Polyinosinic-policitidilico Carbossimetilcellulosa acido poli-L-lisina (Poly-ICLC) per stimolare i PVS. Nostro studio precedente stabilito che Poly-ICLC è il più potente stimolo maturazione individuale per DCs umane valutata da una sovraregolazione di CD83 e CD86, induzione di interleuchina-12 (IL-12), fattore di necrosi tumorale (TNF), interferone gamma-indotta proteina 10 (IP-10), interleukmin 1 (IL-1), e interferoni di tipo I (IFN), e minimale interleuchina 10 (IL-10) di produzione. DC sono differenziati da cellule mononucleate del sangue periferico (PBMC congelati) ottenuti da leucaferesi. PBMC vengono isolati mediante centrifugazione su gradiente Ficoll e congelati in aliquote. Il giorno 1, PBMC vengono scongelati e piastrate su fiasche di coltura tissutale di selezionare per i monociti che aderiscono alla superficie plastica dopo 1-2 ore di incubazione a 37 ° C in incubatore coltura tissutale. Dopo l'incubazione i linfociti vengono lavati via ed i monociti aderenti sono coltivate per 5 giorni in presenza di interleuchina-4 (IL-4) e granulociti macrofagi fattore stimolante le colonie (GM-CSF) per differenziare a DC immature. Il giorno 6, DC immature vengono pulsate con l'emocianina di patella (KLH) keyhole proteina che serve come un controllo per la qualità del vaccino e può aumentare l'immunogenicità del vaccino ^3. Le cellule dendritiche sono stimolati a maturare, caricati con antigeni peptidici, e incubate per una notte. Il giorno 7, le cellule vengono lavate, e congelati in aliquote da 1 ml contenente4 - 20 x 10 ⁶ cellule usando un congelatore a velocità controllata. Controllo del rilascio del lotto per i lotti di DCS viene eseguito e deve soddisfare requisiti minimi prima di essere iniettati nel paziente.

Protocollo

1. Isolamento e Crioconservazione di PBMC ⁴

Asetticamente Spike una delle porte di accesso nella borsa leucoaferesi utilizzando un set di trasferimento del plasma. Usando una siringa da 60 ml, trasferire il leucaferesi ottenute da pazienti in una bottiglia sterile da 500 ml.
Regolare il volume della leucaferesi a 2x il suo volume originale con temperatura ambiente RPMI. Mescolare accuratamente.
Mescolare delicatamente il flacone di Ficoll-Paque PLUS. Aggiungere 12 ml PLUS Ficoll-Paque in sterile da 50 ml tubo conico.
Strato delicatamente 30 ml di prodotto diluito leucaferesi per ogni tubo da 50 ml conica sterile contenente Ficoll. Fare attenzione a non disturbare l'interfaccia tra il Ficoll e la sospensione cellulare.
Ripetere i passi 1.3 e 1.4 fino a quando tutta la leucaferesi è stato stratificato.
Centrifugare le provette coniche da 50 ml a 1.000 xg per 20 min a temperatura ambiente senza freno.
Raccolta accuratamente lo strato nuvoloso di PBMC da ciascuna provetta e transfer per nuovi ml provette sterili 50.
Aggiungere a ciascun tubo RPMI ad un volume finale di 50 ml. Mescolare delicatamente per inversione.
Centrifugare le cellule a 500 xg per 10 min a 4 ° C con freno pieno.
Rimuovere il surnatante da ogni provetta. Risospendere il pellet di cellule provenienti da ogni provetta e aggiungere RPMI ad un volume finale di 50 ml. Mescolare delicatamente per inversione.
Centrifugare le cellule a 500 g per 6 minuti a 4 ° C.
Rimuovere il surnatante da ogni provetta. Risospendere e piscina insieme le sospensioni di cellule in una provetta da 50 ml.
Portare il volume delle PBMC aggregati fino a 50 ml con più RPMI. Mescolare delicatamente per inversione.
Centrifugare le cellule a 300 g per 6 minuti a 4 ° C.
Rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet di cellule in 50 ml di RPMI. Mescolare delicatamente per garantire la sospensione cellulare uniforme.
Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali.
Centrifugare le cellule a 300G per 6 minuti a 4 ° C. Preparare il supporto di congelamento. Congelamento dei media è costituito da 10% di dimetilsolfossido (DMSO; Miltenyi Biotec) in AB umana sierica (Valle Biomedica).
Rimuovere il surnatante. Risospendere le cellule ad una concentrazione finale di 2 x 10 ⁸ cellule / ml in mezzi congelamento fredde.
Fai aliquote da 1 ml a 1,8 ml cryovials.
Trasferire i cryovials nel congelatore a velocità controllata e iniziare la corsa di congelamento, Programma 1. Al termine della corsa, trasferire le cryovials congelati immediatamente nella fase vapore del congelatore azoto liquido.

2. Giorno 0: la differenziazione delle cellule dendritiche da monociti

Aggiungere 30 ml di RPMI / 1% di plasma autologo di una sterile 50 ml tubo conico.
Aliquote disgelo di PBMC congelati da parte di agitazione a 37 ° C bagnomaria. Quando completamente scongelati, trasferire il contenuto dei flaconi per la sterile da 50 ml tubo conico. Mescolare accuratamente.
Centrifugare le cellule per 6 mina 500 xg a temperatura ambiente. Rimuovere il surnatante e risospendere le cellule pellet in un piccolo volume di RPMI / 1% di plasma autologo. Poi aggiungere più RPMI / 1% di plasma autologo ad un volume finale di 50 ml. Mescolare accuratamente.
Centrifugare nuovamente le cellule per 6 min a 500 xg a temperatura ambiente. Aspirare il surnatante e risospendere il pellet in 50 ml di RPMI / 1% di plasma autologo. Mescolare accuratamente.
Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali.
Piastra 1,40 x 10 ⁸ cellule in 40 ml di RPMI / 1% di plasma autologo su 225 centimetri ² EasyFlask. Ripetere l'operazione fino a che tutte le celle sono stati placcati.
Incubare le EasyFlasks piatte sul suo lato per 1-2 ore a 37 ° C in coltura tissutale incubatore contenente il 5% di CO ₂ per permettere ai monociti di aderire al pallone.
Quando l'incubazione, rimuovere il EasyFlask dall'incubatore e lavare due volte per rimuovere le cellule non aderenti USIng 30 ml di RPMI preriscaldata.
Dopo il secondo lavaggio, aggiungere 40 ml di RPMI / 1% di plasma autologo con 400-1,000 IU / ml di IL-4 e 100-1.000 UI / ml di GM-CSF ^5-8. Per questo protocollo, stiamo utilizzando 400 UI / ml di IL-4 e 100 UI / ml di GM-CSF.
Incubare le EasyFlasks per 2 giorni a 37 ° C in incubatore coltura tissutale contenente il 5% di CO _2.

3. Giorno 2: Alimentazione delle cellule dendritiche con IL-4 e GM-CSF

Aggiungere 4 ml di RPMI / 1% di plasma autologo con 400-1,000 IU / ml di IL-4 e 100-1.000 UI / ml di GM-CSF per ciascun EasyFlask. Mescolare accuratamente e dondolo su un fianco.
Incubare le EasyFlasks per ulteriori 3 giorni (fino al giorno 5) a 37 ° C in incubatore coltura tissutale contenente il 5% di CO _2.

4. Giorno 5: Raccolta di cellule dendritiche immature

Raccogliere le culture vigorosamente vorticoso i palloni e pipettando su e giù per risospendere le cellule non aderenti e vagamente aderente. Trasferire ilcellule raccolte a nuove provette coniche da 50 ml.
Centrifugare le provette a 500 g per 6 minuti a temperatura ambiente. Rimuovere il surnatante e risospendere il pellet cellulare in 50 ml RPMI / 1% di plasma autologo. Mescolare accuratamente.
Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali.
Centrifugare le provette a 500 g per 6 minuti a temperatura ambiente. Piastra di 1-2 x 10 ⁶ cellule per pozzetto in 3 ml RPMI / 1% di plasma autologo con 400 IU / ml di IL-4 e 100 UI / ml di GM-CSF in piastre di coltura tissutale a 6 pozzetti.
Incubare le piastre a 37 ° C in coltura tissutale incubatore contenente il 5% di CO ₂ durante la notte.

5. Giorno 6: Maturazione e Antigen Caricamento delle cellule dendritiche

Aggiungere 10 mcg / ml KLH a 1/3 dei pozzetti nelle piastre di coltura a 6 pozzetti. Swirl le piastre per mescolare. KLH viene aggiunto solo a 1/3 dei pozzi perché KLH è usato solo per il primo vaccino DC. Successivamente DC vaccini conTain solo i peptidi antigeni tumorali.
DC può essere stimolato a maturare con stimoli diversi. Gli stimoli maturazione più comuni che è stato utilizzato in studi clinici è stato un cocktail di citochine (IL-1 β, TNFa e IL-6) e di prostaglandina E2 _(PGE2) ^9,10. Più di recente, l'uso di agonisti dei recettori Toll-like (TLR) hanno guadagnato popolarità ^11,12. In questo protocollo, aggiungere 2 mg / ml Polyinosinic-policitidilico Carbossimetilcellulosa acido poli-L-lisina (Poly-ICLC) ad ogni pozzetto e mescolare bene. Poli-ICLC è la formulazione clinico-grado di Poly-IC che viene stabilizzato con poli-L-lisina e *-carbossimetilcellulosa (fabbricato da Oncovir, Inc.).
Aggiungere 100 pg / ml antigeni peptidici lunghi (NY-ESO-1 e / o Melan-A/MART-1) nei pozzetti designati, ogni pozzetto riceve solo un singolo peptide per evitare la concorrenza ^13.
Incubare le piastre a 37 ° C in coltura tissutale incubatore contenente il 5% di CO _{2 O / N.}

6. Giorno 7: Crioconservazione delle cellule dendritiche

Preparare la soluzione di congelamento DC utilizzando plasma autologo e il 10% di DMSO. Centrifugare la soluzione di congelamento DC a 2.000 xg per 20 min a 4 ° C per rimuovere il materiale particolato. Trasferire il surnatante in una nuova etichetta da 15 ml tubo conico. Conservare a 4 ° C fino al momento dell'uso.
Quando la notte di incubazione è terminata, il raccolto e la piscina tutti i pozzetti contenenti DC pulsate con i peptidi in provette coniche da 50 ml.
Centrifugare le provette a 500 g per 6 min. Rimuovere il surnatante. Risospendere il pellet in 5 ml di RPMI / 1% di plasma autologo. Portare il volume totale fino a 50 ml con RPMI / 1% di plasma autologo. Mescolare accuratamente.
Contare il numero di cellule e determinare la vitalità cellulare. Calcolare il numero totale di cellule vitali.
Centrifugare le provette a 500 × g per 6 min a temperatura ambiente. Rimuovere il surnatante e risospendere ogni pellet in 5 ml steriLe 0,9% NaCl, USP e trasferimento in nuovi tubi da 15 ml. Portare ogni sospensione cellulare a 14 ml con più sterile di NaCl 0,9%, USP. Cap e mescolare per inversione.
Ripetere il passaggio precedente per due volte. Dopo l'ultima centrifugazione, rimuovere i surnatanti, ottenendo il più vicino possibile al pellet cellulari senza disturbare il pellet.
Risospendere il pellet di cellule in CC Solution congelamento a 4 - 20 x 10 ⁶ cellule / ml e 1 ml aliquota ad ogni flacone CryoTube 1,8 ml.
Utilizzare il congelatore a velocità regolata, Programma 1, di congelare le aliquote di vaccini DC e trasferire immediatamente nella fase vapore di un congelatore azoto liquido per la conservazione a lungo termine.

7. Lotto controllo del rilascio

Ogni lotto di vaccino DC deve essere valutato e rispettare determinati criteri di lotto specifico (Tabella 1) prima di essere rilasciato per iniezione in pazienti nello studio, in genere 5-6 settimane dopo la preparazione del vaccino.
Viabilità:Valutare la sostenibilità del vaccino DC utilizzando un contatore automatico di cellule. La specifica minima redditività accettabile è> 70%.
Identità: Valutare l'identità della DC mature (CD11c + CD14-CD83 +) in citometria a flusso. La percentuale di cellule + CD11c deve essere> 50%. La percentuale di CD11c + e CD14 + cellule dovrebbe essere <30% e la percentuale di CD11c +, CD14-, CD83 + e cellule devono essere> 50%.
Sterilità: test del vaccino DC per la presenza di batteri anaerobici e aerobici e funghi di cultura diretta e colorazione di Gram. Valutare la presenza di micoplasma utilizzando un sistema di coltura diretta e DNA fluorocromo Assay colorazione con indicatore Cell Line. Per queste prove, il set minimo specifica è alcuna crescita viene osservato da tutte le culture.
Endotossina: valutare il contenuto di endotossine con il Kinetic-QCL cinetico cromogenico LAL test e deve essere <50 EU / ml per soddisfare i criteri minimi.
Funzione: Valutare la funzione DC in una reazione linfocitaria mista mediante incubazione con cellule T allogeniche. La presenza di proliferazione rispetto alle DC non stimolate viene riportato (figura 3).