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Method Article
* Questi autori hanno contribuito in egual misura
We present a novel surgical procedure to implant electrodes in Manduca sexta during its early metamorphic stages. This technique allows mechanically stable and electrically reliable coupling with the neuromuscular tissue to study flight neurophysiology dynamics. We also present a novel magnetic levitation platform for tethered studies of insect yaw.
Early Metamorphosis Insertion Technology (EMIT) is a novel methodology for integrating microfabricated neuromuscular recording and actuation platforms on insects during their metamorphic development. Here, the implants are fused within the structure and function of the neuromuscular system as a result of metamorphic tissue remaking. The implants emerge with the insect where the development of tissue around the electronics during pupal development results in a bioelectrically and biomechanically enhanced tissue interface. This relatively more reliable and stable interface would be beneficial for many researchers exploring the neural basis of the insect locomotion with alleviated traumatic effects caused during adult stage insertions. In this article, we implant our electrodes into the indirect flight muscles of Manduca sexta. Located in the dorsal-thorax, these main flight powering dorsoventral and dorsolongitudinal muscles actuate the wings and supply the mechanical power for up and down strokes. Relative contraction of these two muscle groups has been under investigation to explore how the yaw maneuver is neurophysiologically coordinated. To characterize the flight dynamics, insects are often tethered with wires and their flight is recorded with digital cameras. We also developed a novel way to tether Manduca sexta on a magnetically levitating frame where the insect is connected to a commercially available wireless neural amplifier. This set up can be used to limit the degree of freedom to yawing “only” while transmitting the related electromyography signals from dorsoventral and dorsolongitudinal muscle groups.
Inserimento di elettrodi, anche con sistemi elettronici collegati a insetti per applicazioni di registrazione telemetrici, è stato un metodo importante per capire come funzionano i sistemi neurali durante il volo naturale 1. Collegamento o impiantare sistemi artificiali in insetti ha posto molte sfide che coinvolgono il potenziale per disturbare il volo naturale dell'insetto. Attaccamento superficiale o inserimento chirurgico di piattaforme artificiali sulla insetto adulto è inaffidabile a causa della possibile spostamento dei dispositivi inseriti causati da inerziali e lo stress le forze indotte corpo. Superficialmente attaccati o elettrodi inseriti chirurgicamente sono anche soggetti a essere riprovato dagli insetti come un corpo estraneo. Inoltre l'operazione di impianto richiede la rimozione di scale e pali intorno l'esoscheletro. Lo strato spessa cuticola ha anche bisogno di essere penetrato per innervazioni chirurgiche che potrebbero causare danni ai tessuti collaterali, interferendo così con il volo naturale dell'insetto. Tutte le tfattori ueste possono fare un chirurgico o superficiale operazione di impianto un compito impegnativo e delicato. Al fine di alleviare tali preoccupazioni coinvolti nel fissare esternamente sistemi di controllo e rilevazione per gli insetti, una nuova metodologia che coinvolge la crescita metamorfica sarà descritto in questo articolo.
Lo sviluppo metamorfico di insetti holometabolic inizia con la trasformazione della larva (o ninfa) in un adulto con uno stadio di pupa intermedia (Figura 1). Il processo di metamorfosi coinvolge una vasta riprogrammazione dei tessuti tra cui la degenerazione seguita da rimodellamento. Questa trasformazione trasforma una larva terrestre ad un adulto insetto dimostrando diversi comportamenti complessi 2,3.
La sopravvivenza degli insetti dopo interventi chirurgici parabiotic estreme è stata dimostrata, dove sono stati eseguiti interventi chirurgici durante le prime fasi metamorfiche 4,5. In questi interventi, i Caus istogenesi di sviluppoferite chirurgiche ED per essere riparati in durate più brevi. A seguito di queste osservazioni, una nuova tecnica è stata sviluppata in cui è stata eseguita l'impianto di elettrodi elettricamente conduttivi durante i primi stadi di crescita metamorfica (Figura 1). Ciò consente un fissaggio sicuro biomeccanicamente sulla insetto 6. Un'interfaccia estremamente affidabile è inoltre assicurata con neurale dell'insetto e sistemi neuromuscolari 7. Questa tecnica è conosciuta come "Early Metamorphosis inserimento Technology" (EMIT) 8.
Dopo la ricostruzione dell'intero sistema tessuto, strutture inserite nel pupa emergono con l'insetto adulto. Gruppi muscolari ponti rendono fino al 65% della massa totale del corpo toracica e, quindi, è un bersaglio relativamente conveniente per la procedura EMIT 9. Durante il battito delle ali di base, i cambiamenti nella morfologia del volo alimentare dorsolongitudinal (dl) e il dorsoventral (dv) muscoli causano il articulat alageometria ione per generare cremagliera 10. Pertanto, il coordinamento funzionale del dl e dv muscoli è stato un argomento di ricerca attiva in neurofisiologia volo. Insetti tethering in ambienti visivi programmati elettronicamente è stato il metodo più comune per lo studio della neurofisiologia di complessi comportamenti locomotore 11,12. Arene cilindrici composti da pannelli di diodi emettitori di luce sono stati utilizzati per questi ambienti di realtà virtuale, in cui gli insetti volanti sono legati al centro e il movimento è simulato attraverso l'aggiornamento dinamico la visualizzazione panoramica circostante. Nel caso di piccoli insetti, come frutta Drosophila, tethering sono ottenute applicando un perno metallico al torace dorsale dell'insetto e posizionando il perno sotto un magnete permanente 13,14. Questo metodo consente la quantificazione delle risposte motorie solo attraverso osservazioni visive con telecamere ad alta velocità, senza alcuna analisi elettrofisiologiche. Inoltre, questo metod è stata inefficiente a sospendere il corpo più grande e pesante di Manduca Sexta. Per risolvere questo problema, abbiamo beneficiato cornici magneticamente levitazione dove il peso leggero Cornici con i magneti attaccati al loro fondo rimangono sospesi attraverso le forze elettromagnetiche. Se combinato con disponibili in commercio amplificatori neurali e array di LED, questo fornisce una piattaforma per controllare l'output di volo a motore e registrare il relativo elettrofisiologia di Manduca Sexta.
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NOTA: L'origine dei materiali e reagenti necessari per seguire il protocollo è previsto nella tabella "reagenti" qui sotto.
1. Preparazione di circuiti stampati (PCB) per la registrazione elettrodo Connection
NOTA: Al fine di fornire una procedura pratica sperimentale, elettrodi a filo sono saldati ad un PCB di inserire questi elettrodi in un connettore FFC (cavo piatto flessibile).
2. Inserimento chirurgica per la Manduca Sexta Pupae
NOTA: Gli insetti saranno più attive durante le transizioni tra giorno e notte. Pertanto, un ciclo giorno / notte artificiale dovrebbe essere istituito all'interno di una camera di insetto con timer di uscita automatici. Questi dovrebbero essere impostati per simulare un oscuro 7 ore e 17 ciclo di luce hr.
3. Inserimento della terra elettrodo in Manduca Sexta
NOTA: Il terreno (vediza) elettrodo deve essere inserito nelle parti addome o distali del torace per evitare l'accoppiamento del segnale. Questo inserimento può essere fatto sia durante le fasi successive di sviluppo pupa o dopo l'insetto emerge. La finestra per l'elettrodo di massa deve essere preparato in fase di pupa sia per una pupa o la fase adulta inserimento elettrodo di massa.
4. Preparazione della scheda adattatore
ONTENUTO ">. NOTA: Una scheda adattatore è necessario per collegare la scheda elettrodo headstage di registrazione wireless attraverso un connettore FFC (Flat Flexible Cable) Per questo, una tavola simile alla scheda elettrodo deve essere preparato seguendo i passi da 1.1 a 1.7 .5. Preregistrazione con oscilloscopio (opzionale)
NOTA: Al fine di valutare l'affidabilità degli elettrodi e osservare il rapporto segnale-rumore, registrazioni frenati dell'oscilloscopio possono essere ottenuti prima di distribuire il wirelsistema di registrazione ess. I mini cavi di collegamento sulla scheda adattatore deve essere usato per questo.
6. Observing Insetto volo con il sistema di registrazione Wireless
NOTA: Una piattaforma levitazione elettromagnetica può essere costruito per la registrazione wireless di segnali EMG durante tethered volo sexta Manduca. La piattaforma levitazione costituita da un telaio progettato per bilanciare un meccanismo tethering. La levitazione consente al frame, e quindi l'insetto, di imbardata durante la prova senza la costrizione di fili di legatura. Il telaio può essere rapido prototipo utilizzando un Fused Deposition Modeling (FDM) macchina. Un magnete deve essere fissato alla base di questo telaio da sollevare da una serie di magneti nella piattaforma di base. L'insetto è collegato al connettore FFC sospeso dalla parte superiore del telaio. Questa piattaforma levitante si trova all'interno dell'Arena LED che è stato costruito using 60 pannelli composti da una serie di singoli LED 5x7. Questo sistema era basato su metodi stabiliti per lo sviluppo di un ambiente per la stimolazione visiva di frutta mosche 15, 16, 17. L'arena è controllato da un microcontrollore che permette di simulazione sia in senso orario che antiorario di rotazione e il controllo della velocità di rotazione.
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Uno schema della procedura complessiva EMIT è presentato nella figura 1, che mostra le fasi principali del ciclo metamorfico del hawkmoth e le fasi di inserimento dell'elettrodo corrispondenti. L'inserimento dell'elettrodo deve essere eseguita in fase avanzata di pupa 4 a 7 giorni prima della eclosion. Questo permette alle fibre muscolari di sviluppare attorno agli elettrodi e assicurare l'impianto in dell'insetto.
Il risultato tipico di una fase di inse...
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Ci sono diversi passaggi critici durante l'inserimento chirurgico degli elettrodi di registrazione che influenzano la capacità di registrare dati nelle fasi successive del protocollo. Gli elettrodi di registrazione devono essere inseriti pupa un giorno dopo esibendo macchie ala sul lato dorsale. Se l'inserimento viene effettuato due o più giorni dopo questo periodo, tessuto dell'insetto non avrà abbastanza tempo per sviluppare intorno e stabilizzare gli elettrodi inseriti. Questo potrebbe portare a movime...
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Authors have no conflict of interest in this study.
AB ringrazia la National Science Foundation per il finanziamento nell'ambito del programma Cyber sistemi fisici (1239243) e di divisione dei Undergraduate Education (1245680); e l'Agenzia della Difesa Advanced Research Progetto (DARPA) per sostenere le prime fasi di questo lavoro. Le tappe precedenti di questo lavoro è stata effettuata da AB nel laboratorio del Prof. Amit Lal presso la Cornell University. AB grazie Ayesa Sinha e il Prof. Lal di orientamento sperimentale e la generazione di idee in quella fase. Manduca Sexta (Linnaeus 1763) sono stati ottenuti da una colonia gestito dal Dipartimento di Biologia presso la Duke University, Durham, NC, USA. Falene sono stati utilizzati entro 5 giorni di eclosion. Vorremmo ringraziare Triangolo Biosystems internazionale, in particolare David Juranas e Katy Millay per la loro eccellente assistenza tecnica e l'uso del loro sistema Neuroware. Vorremmo anche ringraziare Will Caffey per il suo aiuto durante gli esperimenti.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Coated stainless steel wire | A-M Systems | 791900 | 0.008’’ bare, 0.011’’ coated, annealed |
Flexible electrode wire | Litz or inductor wire can be used. | ||
Surface-mount FFC connector | Hirose Connector | FH28E-20S-0.5SH(05) | |
Tweezers | Grobet USA | Clean with 70% alcohol before use on the insect. | |
Kim-Wipes | Kimberly-Clark Worldwide | 34155 | Any size delicate-wipe tissues can be used. |
Teflon tape | 5 mm width Teflon tape. | ||
Hypodermic Needle | Becton Dickinson & Co. | 30511 | 20-30 G hypodermic needle can be used. Video showed 30 G. |
Rigid fixation stick | Variety of materials can be used (e.g., coffee stirrers) | ||
Insect emergence cage | Plastic pet cage lined with packing paper or similar padding. Ventilation holes are needed. | ||
Thermal cauterizer | Advanced Meditech International | CH-HI CT2103 (tip) | Optional equipment used for application of dental wax. |
Dental wax | Orthomechanics LC., Broken Arrow, Oklahoma | Optional material used for stabilizing the electrodes on the insect. | |
Magnetic levitation platform | Custom designed frame fabricated in-house with 3D prototyping. |
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