Autori
Contattaci

Accedi

È necessario avere un abbonamento a JoVE per visualizzare questo. Accedi o inizia la tua prova gratuita.

In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

Questo protocollo descrive l'utilizzo coltivate Aorta-gonade-Mesonephros per analisi di espressione, unità formanti colonia in cultura e milza e ricostituzione a lungo termine per determinare l'effetto di fattori regolatori e vie di segnalazione su staminali ematopoietiche sviluppo delle cellule. Questo è stato dimostrato come un sistema efficace per lo studio della funzione e biologia delle cellule staminali ematopoietiche.

Abstract

La limitazione dell'utilizzo di embrioni di topo per studi di ematopoiesi è l'inconveniente aggiunto nelle operazioni, che è in gran parte dovuto lo sviluppo intrauterino dell'embrione. Anche se sono convincenti dati genetici da topi knockout (KO), non è realistico per generare topi KO per i geni tutti come necessario. Inoltre, esibendosi in vivo gli esperimenti di salvataggio per consolidare i dati ottenuti da topi KO non è conveniente. Per superare queste limitazioni, la cultura di espianto Aorta-gonade-Mesonephros (AGM) è stata sviluppata come un sistema appropriato per studiare lo sviluppo di cellule staminali ematopoietiche (HSC). Soprattutto per gli esperimenti di salvataggio, può essere utilizzato per recuperare l'ematopoiesi alterata in topi KO. Con l'aggiunta di prodotti chimici appropriati nel mezzo, la segnalazione alterata può essere riattivata o vie di up-regolato possono essere inibite. Con l'uso di questo metodo, molti esperimenti possono essere eseguite per identificare i regolatori critici dello sviluppo di HSC, compreso HSC correlati espressione genica a livelli di mRNA e proteina, capacità di formazione di Colonia e la capacità di ricostituzione. Questa serie di esperimenti sarebbe utile nel definire i meccanismi di fondo essenziali per lo sviluppo di HSC nei mammiferi.

Introduzione

Cellule staminali ematopoietiche (HSCs) sono cellule staminali adulte tessuto-specifici che possiedono multilineare potenziale compreso degli eritrociti, mieloidi e cellule linfoidi come pure la capacità di auto-rinnovarsi. Recenti studi hanno dimostrato che i primi HSCs è sorto da una popolazione endoteliale specializzata, nota come endotelio hemogenic (HE), attraverso l'endoteliale di transizione ematopoietico (EHT) presso la parete ventrale dell'aorta dorsale1,2 ,3,4. Una volta formato regione aorta-gonade-mesonephros (AGM) da embrionali (E) 10.5 a 12.5 in embrione di topo, HSCs migrare nel fegato fetale per espansione e infine colonizzare il midollo osseo per mantenere l'ematopoiesi adulto per tutta la vita di un individuo 5 , 6. anche se questo è stato studiato per molti anni, i meccanismi di fondo di HSC emersione e sviluppo rimangono in modo incompleto capiti.

A differenza di fecondazione in vitro e sviluppo di embrioni di zebrafish, lo sviluppo intrauterino degli embrioni del mouse rende lo studio dell'emopoiesi definitiva durante l'embriogenesi molto più scomodo. Anche se gli esperimenti genetici, utilizzando topi knockout (KO) sono comunemente utilizzati, la mancanza di alcuni topi KO anche limita il loro uso nel campo della ricerca ematopoietico. Inoltre, in vivo gli esperimenti di salvataggio non sono facilmente eseguiti nei topi KO. Dal 1996, la cultura di espianto AGM è stata sviluppata per gli studi ematopoietici dai pionieri nel campo7. Con l'aiuto di questo sistema di coltura, tessuti ventrale della regione AGM sono stati identificati per promuovere attività HSC, mentre tessuti dorsale esercitano un opposto effetto8,9. Il sistema di coltura explant AGM è stato applicato anche per determinare i ruoli di serotonina, Mpl, SCF, BMP e Hedgehog signaling in HSC sviluppo10,11,12,13, 14. la cosa importante, è anche un metodo popolare usato per salvare ematopoietici difetti in embrioni mutanti13,15.

Protocollo

tutte le procedure tra cui animali soggetti sono state approvate dal comitato etico di recensione all'Istituto di zoologia, Accademia delle scienze cinese, Beijing, China.

1. preparazione dei materiali

  1. sterilizzare il 0,65 µm filtri con raggi ultravioletti raggi prodotti sotto i raggi ultravioletti ray lampada sul banco pulito per 4 h e capovolgere i filtri dopo il segno di 2 h.
    Nota: Quando si lavora con luce UV, indossare una protezione appropriata.
  2. Sterilizzare le maglie in acciaio inox con la sterilizzatrice autoclave a 121 ° C per 30 min.
    Nota: Una certa altezza della maglia dell'acciaio inossidabile è necessaria per supportare i filtri all'interfaccia aria-liquido e questo può essere realizzato con il filo sulla mesh in acciaio ( Figura 1 A).
  3. Fluoxetine diluire ad una concentrazione finale di 10 µM nella M5300 a lungo termine cultura medio e mescolare in modo uniforme.
    Nota: Per una piastra a 6 pozzetti, terreno di coltura a lungo termine 2 mL M5300 è adatto per ogni pozzetto. Idrocortisone a 10 -6 M può essere diluito in modo selettivo nel medium.
  4. Trasferire supplementato con fluoxetina a 10 µM in piastre da 6 pozzetti o piatti e mettere le maglie in acciaio inossidabile sterilizzato nel medium.
  5. Lavare i 0,65 µm filtri con acqua bollente due volte per 3 minuti ogni volta nella piastra di coltura di cellule di vetro per la sterilizzazione. Dopo ogni lavaggio, inserire i filtri in tampone fosfato salino (PBS) per 2 minuti e posto sul bagnato filtri in acciaio inox maglie in piedi all'interfaccia aria-liquido come mostrato in Figura 1 A [schematica nel centro della].
    Nota: Acqua bollente può essere generato con la sterilizzatrice autoclave per raggiungere l'asepsi e l'apparecchiatura dovrebbe essere presa fuori dell'autoclave in modo tempestivo per evitare una diminuzione della temperatura.

2. AGM Explant Culture

  1. attentamente separare le regioni AGM da embrioni e 10.5 o E11 con il forcipe.
    1. Striscia uteri dai topi incinto con le forbici per dissezione e separare gli embrioni dagli uteri.
    2. Togliere il sacco vitellino, il cordone ombelicale e visceri dal corpo dell'embrione.
    3. Rimuovere con cautela il nervo dorsale tessuti e tessuti muscolari circostanti.
    4. Cut off i tessuti con il forcipe presso il sito degli arti anteriori e posteriori e separare la regione AGM dal corpo dell'embrione. figure 1 B-C Visualizza la rappresentazione schematica e la morfologia dell'AGM dissecata.
  2. Explant le assemblee dissecate separatamente sui filtri all'interfaccia aria-liquido ( Figura 1 A) e cultura 5% CO 2 a 37 ° C per 2-3 giorni.
    Nota: Non posizionare il AGM dissecata sul filo della maglia d'acciaio e assicurarsi che i filtri siano all'interfaccia aria-liquido durante la coltura. Oltre l'AGM, sacco vitellino e fegato fetale possono essere coltivate con questo sistema 7.

3. Analisi dell'espressione

  1. livello di mRNA
    1. raccogliere le assemblee coltivate in 1 mL di PBS e centrifugare a 4 ° C, 310 x g per 6 min.
    2. Dopo aver rimosso il supernatante, RNA totale è estratto dalle assemblee raccolte con una soluzione monofasica di fenolo, secondo il produttore ' istruzioni s.
    3. RNA totale (2 µ g) quindi è inverso trascritto usando il transcriptase di M-MLV per ottenere cDNA come modello. L'analisi di PCR quantitative in tempo reale sono eseguite con SYBR Green e Gapdh viene utilizzato come controllo interno.
  2. Livello della proteina
    1. raccogliere l'AGM coltivate come descritto sopra al punto 3.1.1.
    2. Preparare la proteina da AGM coltivate con il buffer di lisi delle cellule (10 mM Tris-HCl 10 mM NaCl e 0,5% NP-40) contenente l'inibitore della proteasi e uso per macchiarsi occidentale per rilevare il livello della proteina come precedentemente descritto 13.

4. Unità formanti colonie nell'analisi della cultura (CFU-C)

  1. dopo la coltura per 2-3 giorni, raccogliere le regioni AGM in salino di 1 mL tamponato fosfato (PBS) e centrifugare a 4 ° C, 310 x g per 6 minuti e dissociare con collagenasi 200 µ l (0,1% in PBS) 37 ° C.
    Nota: Il tempo necessario per collagenasi generare singole sospensioni di cellule è circa 20 minuti. Agitare il tubo contenente AGM ogni 5 minuti possono accelerare il processo di digestione. Collagenasi di 0,1% 200 µ l viene utilizzato per ogni AGM e 200 µ l di siero di 10% viene utilizzato per interrompere la reazione.
  2. Cultura singole sospensioni di cellule nel mezzo di M3434 in piastre da 24 pozzetti attacco ultra-basso.
    Nota: Per evitare contaminazioni, penicillina-streptomicina soluzione possa essere selettivamente aggiunta nel mezzo. Perché il mezzo di M3434 è viscoso, una 1,0 cc una siringa senza ago è usata per mischiare le cellule e le medie.
  3. Dopo 7 - 10 giorni la coltura a 37 ° C in 5% CO 2, il numero per ogni tipo di colonie compreso Burst forming unit--eritroidi (BFU-E), CFU-granulo-monocito (CFU-GM) e CFU-granulociti, eritrociti, macrofagi, megacariocita (CFU-GEMM) si distinguono basata sulla morfologia e ha segnato con un microscopio invertito ( Figura 2 C).

5. In Vivo Dosaggio di trapianto

  1. formanti colonie (CFU-S) unità-milza dosaggio
    1. dopo 2 - 3 giorni di coltura explant, raccogliere le assemblee e preparare sospensioni di cellule singole incubando con collagenasi 200 µ l (0,1% in PBS) per 20 min.
    2. Eseguire irradiazione letale (9 Gy di raggi x) di 8 - ai 10 - settimana-vecchi topi C57BL/6 maschi 4-5 ore prima dell'iniezione di cellule.
    3. Mettere il mouse irradiato in un dispositivo di ritenuta per limitare la sua attività.
    4. Pulire la coda usando un batuffolo di cotone intriso di alcool di 75% per promuovere la vasodilatazione della vena.
    5. Iniettare 0,5 embrione equivalente (ee) o sospensioni di cellule singole 1 ee di AGM per via endovenosa nella vena della coda di topo irradiato con una siringa da 1,0 cc.
      Nota: Le cellule sono sospesi con PBS e 0,5 mL di PBS per ogni destinatario è un volume adeguato. Un ago di calibro 25 o 26 gauge dimensione viene utilizzato per l'iniezione con una siringa cc 1,0. Aria non può essere introdotto nella siringa. Premere il sito di iniezione con un tampone antisettico per fermare l'emorragia.
    6. Undici giorni post trapianto, raccogliere e difficoltà le milze dei topi destinatari a Bouin ' s soluzione (soluzione acquosa di acido picrico 1,22% saturata 15 mL, 2 mL di metanolo al 40% e 1 mL di acido acetico) per 1-2 giorni e lavare con 80% di alcol per un altro 1-2 giorni. Contare le colonie visibili nella milza in modo macroscopico e determinare il numero di colonie per ee.
      ​ Nota: Bouin ' fissativo s, indossare una protezione appropriata.
  2. Analisi a lungo termine di trapianto
    1. dopo 2-3 giorni explant coltura, raccogliere le assemblee e preparare sospensioni di cellule singole incubando con collagenasi 200 µ l (0,1% in PBS) per 20 min.
    2. Eseguire irradiazione letale (9 Gy di raggi x) di 8 - ai 10 - settimana-vecchi topi C57BL/6 maschi 4-5 ore prima dell'iniezione di cellule.
    3. Mettere il mouse irradiato in un dispositivo di ritenuta per limitare la sua attività.
    4. Pulire la coda usando un batuffolo di cotone intriso di alcool di 75% per promuovere la vasodilatazione della vena.
      5. < lHo > iniettare 0,5 embrione equivalente (ee) o 1 ee singola cellula-sospensioni di AGM per via endovenosa nella vena della coda di un topo irradiato con una siringa cc 1,0. AGM sono iniettati ad una dose di 1 ee per ogni destinatario con 2 × 10 5 le cellule del midollo osseo (CD45.1 sfondo).
      Nota: L'aria non può essere introdotto nella siringa. Premere il sito di iniezione con un tampone antisettico per fermare l'emorragia.
    5. Quattro mesi post-trapianto, raccogliere il midollo osseo del destinatario e utilizzarlo per il dosaggio di ricostituzione di FACS. Solo i destinatari con ≥ 10% chimerismo donatore-derivati sono considerati ad esporre la ricostituzione successo.

Risultati

Una recente pubblicazione segnalata serotonina derivato da cellule endoteliale promuove la sopravvivenza di HSCs inibendo la via di pro-apoptotica del AGM13. Per confermare l'effetto di promozione della serotonina sullo sviluppo di HSC, Fluoxetine è stato inclusa. Come un inibitore della ricaptazione di serotonina (SSRI), Fluoxetine è stata dimostrata di inibire il riassorbimento di serotonina in tessuti periferici16,

Discussione

È noto che HSCs maturo nel midollo osseo può ripopolare il sistema sangue di destinatari irradiati. A differenza di questi HSCs funzionale, le HSCs emergenti in AGM degli embrioni del mouse sono immaturi. Risultati di trapianto diretto ha mostrato quel tipo mi (VE-cad+ CD45– CD41+) e tipo II (VE-cad+ CD45+) pre-HSCs possedere nessuna capacità di ricostituzione20. Sfruttando il sistema di coltura explant AGM, il nascente HSCs nella regione...

Divulgazioni

Gli autori non hanno nessun conflitto di interessi finanziario.

Riconoscimenti

Ringraziamo Suwei Gao per aiuto nella preparazione di figura. Questo lavoro è stato sostenuto da sovvenzioni dal National Foundation Natural Science of China (81530004, 31425016) e il Ministero della scienza e tecnologia della Cina (2016YFA0100500). J.L. eseguito gli esperimenti e redatto il manoscritto; F.L. modificato il manoscritto. Entrambi gli autori letto ed approvato il manoscritto finale.

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
durapore 0.65 µm filtersMilliporeR5BA63787AGM explant culture
M5300 long-term culture mediumStem Cell Technologies5300AGM explant culture
Trizol Tiangen5829RNA extration
M-MLV reverse transcriptasePromega90694reverse transcription
SYBR GreenQiagenA6002quantatitive real-time PCR
protease inhibitorRoche55622Protein extration
collagenaseSigmaC2674digestion of AGM tissues
MethoCult GF M3434 mediumStem Cell Technologies3434CFU-C assay
ultra-low attachment 24-well platesCostar3473CFU-C assay
C57BL/6 CD45.2 miceBeijing HFK Bioscience Co. LtdCFU-S assay
C57BL/6 CD45.1 miceBeijing HFK Bioscience Co. LtdLong-term transplantation
phosphate buffered salineLife Technologines8115284AGM Collection
Penicillin-Streptomycin solutionHyCloneSV30010AGM explant culture
anti-CD45.2-PE-CY7eBioscience25-0454-80Long-term transplantation
anti-CD45-FITCeBioscience11-0451-81Long-term transplantation
UV lampBeijing jiangmorning yuan bio-technology co., LTD039-14402power: 30W
stainless steel meshAS ONE SHANGHAI Corporation2-9817-10 aperture diameter: 2.5 mm
hydrocortisoneSigmaH0396selectively diluted into M5300 medium

Riferimenti

  1. Bertrand, J. Y., et al. Haematopoietic stem cells derive directly from aortic endothelium during development. Nature. 464, 108-111 (2010).
  2. Boisset, J. C., Robin, C. Imaging the founder of adult hematopoiesis in the mouse embryo aorta. Cell cycle. 9, 2489-2490 (2010).
  3. Kissa, K., Herbomel, P. Blood stem cells emerge from aortic endothelium by a novel type of cell transition. Nature. 464, 112-115 (2010).
  4. Zovein, A. C., et al. Fate tracing reveals the endothelial origin of hematopoietic stem cells. Cell Stem Cell. 3, 625-636 (2008).
  5. Kumaravelu, P., et al. Quantitative developmental anatomy of definitive haematopoietic stem cells long-term repopulating units (HSC/RUs): role of the aorta-gonad-mesonephros (AGM) region and the yolk sac in colonisation of the mouse embryonic liver. Development. 129, 4891-4899 (2002).
  6. Orkin, S. H., Zon, L. I. Hematopoiesis: an evolving paradigm for stem cell biology. Cell. 132, 631-644 (2008).
  7. Medvinsky, A., Dzierzak, E. Definitive hematopoiesis is autonomously initiated by the AGM region. Cell. 86, 897-906 (1996).
  8. Peeters, M., et al. Ventral embryonic tissues and Hedgehog proteins induce early AGM hematopoietic stem cell development. Development. 136, 2613-2621 (2009).
  9. Taoudi, S., Medvinsky, A. Functional identification of the hematopoietic stem cell niche in the ventral domain of the embryonic dorsal aorta. PNAS. 104, 9399-9403 (2007).
  10. Crisan, M., et al. BMP and Hedgehog Regulate Distinct AGM Hematopoietic Stem Cells Ex Vivo. Stem Cell Reports. 6, 383-395 (2016).
  11. Durand, C., et al. Embryonic stromal clones reveal developmental regulators of definitive hematopoietic stem cells. PNAS. 104, 20838-20843 (2007).
  12. Fleury, M., Petit-Cocault, L., Clay, D., Souyri, M. Mpl receptor defect leads to earlier appearance of hematopoietic cells/hematopoietic stem cells in the Aorta-Gonad-Mesonephros region, with increased apoptosis. Int J Dev Biol. 54, 1067-1074 (2010).
  13. Lv, J., Wang, L., Gao, Y., Ding, Y. Q., Liu, F. 5-hydroxytryptamine synthesized in the aorta-gonad-mesonephros regulates hematopoietic stem and progenitor cell survival. J Exp Med. 214, 529-545 (2017).
  14. Souilhol, C., et al. Inductive interactions mediated by interplay of asymmetric signalling underlie development of adult haematopoietic stem cells. Nature communications. 7, 10784 (2016).
  15. Fitch, S. R., et al. Signaling from the sympathetic nervous system regulates hematopoietic stem cell emergence during embryogenesis. Cell Stem Cell. 11, 554-566 (2012).
  16. Bianchi, M., Moser, C., Lazzarini, C., Vecchiato, E., Crespi, F. Forced swimming test and fluoxetine treatment: in vivo evidence that peripheral 5-HT in rat platelet-rich plasma mirrors cerebral extracellular 5-HT levels, whilst 5-HT in isolated platelets mirrors neuronal 5-HT changes. Exp Brain Res. 143, 191-197 (2002).
  17. Ortiz, J., Artigas, F. Effects of monoamine uptake inhibitors on extracellular and platelet 5-hydroxytryptamine in rat blood: different effects of clomipramine and fluoxetine. Br J Pharmacol. 105, 941-946 (1992).
  18. Wong, D. T., Horng, J. S., Bymaster, F. P., Hauser, K. L., Molloy, B. B. A selective inhibitor of serotonin uptake: Lilly 110140, 3-(p-trifluoromethylphenoxy)-N-methyl-3-phenylpropylamine. Life sciences. 15, 471-479 (1974).
  19. Chen, M. J., Yokomizo, T., Zeigler, B. M., Dzierzak, E., Speck, N. A. Runx1 is required for the endothelial to haematopoietic cell transition but not thereafter. Nature. 457, 887-891 (2009).
  20. Rybtsov, S., et al. Hierarchical organization and early hematopoietic specification of the developing HSC lineage in the AGM region. J Exp Med. 208, 1305-1315 (2011).
  21. Muthuswamy, S. K. Bringing together the organoid field: from early beginnings to the road ahead. Development. 144, 963-967 (2017).

Ristampe e Autorizzazioni

Richiedi autorizzazione per utilizzare il testo o le figure di questo articolo JoVE

Richiedi Autorizzazione

Esplora altri articoli

Biologia dello sviluppoproblema 129mouseematopoiesiAorta gonade Mesonephroscultura explantunit formanti colonia in culturamilza unit formanti colonietrapianto

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Riservatezza

Condizioni di utilizzo

Politiche

Contattaci

SUGGERISCI JOVE ALLA BIBLIOTECA

Newsletter di JoVE

Ricerca

Didattica

Autori

Personale delle biblioteche

CHI SIAMO

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Tutti i diritti riservati