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In questo articolo

  • Riepilogo
  • Abstract
  • Introduzione
  • Protocollo
  • Risultati
  • Discussione
  • Divulgazioni
  • Riconoscimenti
  • Materiali
  • Riferimenti
  • Ristampe e Autorizzazioni

Riepilogo

L'incisivo del topo contiene preziose cellule che conservano l'etichetta nella sua nicchia di cellule staminali. Abbiamo un nuovo modo per rilevare e quantificare in modo imparziale le celle che conservano l'etichetta; il nostro studio ha utilizzato l'etichettatura EdU e un approccio di ricostruzione 3D dopo la pulizia del tessuto PEGASOS della mandibola.

Abstract

L'incisivo murino è un organo che cresce continuamente per tutta la durata della vita del topo. Le cellule staminali epiteliali e mesenchimali che risiedono nei tessuti prossimali degli incisivi danno origine a progenie che si differenziano in ameloblasti, odontoblasti e fibroblasti della polpa. Queste cellule sono cruciali nel sostenere il turnover sostenuto dei tessuti incisivi, rendendo l'incisivo murino un modello eccellente per studiare l'omeostasi delle cellule staminali adulte. Si ritiene che le cellule staminali contengano cellule quiescenti di lunga durata che possono essere etichettate con analoghi nucleotidici come la 5-etinil-2'-deossiuridina (EdU). Le cellule mantengono questa etichetta nel tempo e sono di conseguenza chiamate cellule di conservazione dell'etichetta (LRC). Gli approcci per la visualizzazione di LRC in vivo forniscono uno strumento robusto per il monitoraggio dell'omeostasi delle cellule staminali. In questo studio, abbiamo descritto un metodo per visualizzare e analizzare gli LRC. Il nostro approccio innovativo prevede LRC negli incisivi di topo dopo la pulizia dei tessuti e la colorazione EdU a montaggio completo, seguita da microscopia confocale e ricostruzione tridimensionale (3D) con il software di imaging. Questo metodo consente l'acquisizione di immagini 3D e la quantificazione non distorta rispetto all'analisi LRC tradizionale su vetrini sezionati.

Introduzione

L'incisivo di topo in continua crescita è un modello eccellente per lo studio delle cellule staminali adulte1. Le cellule staminali epiteliali (ansa cervicale labiale e linguale) e mesenchimali (tra l'ansa cervicale labiale e linguale) che risiedono sul lato prossimale dell'incisivo si differenziano in ameloblasti, odontoblasti e cellule polpa dentali. Questo processo unico fornisce una fonte di cellule per la compensazione della perdita di tessuto e del turnover2. Anche se diversi marcatori di cellule staminali come Sox2, Gli1, Thy1 / CD90, Bmi1, ecc. sono stati identificati in vivo per i sottogruppi di cellule....

Protocollo

Tutti i metodi qui descritti sono stati approvati dall'Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) per il Texas A & M University College of Dentistry.

1. Preparazione del cocktail di etichettatura EdU

  1. Preparare le soluzioni di cocktail come descritto nella tabella 1.
  2. Preparare il cocktail di etichettatura EdU come descritto nella Tabella 1.

2. Preparazione dei topi e della soluzione EdU

  1. Preparare la soluzione EdU. Sciogliere EdU in DMSO a 20 mg/ml e conservare in un congelatore a -20 °C.
    ATTENZIONE: ....

Risultati

Dopo l'etichettatura EdU e il processo di eliminazione dei tessuti PEGASOS (Figura 2), la mandibola trasparente è stata ottenuta come mostrato nella nostra immagine (Figura 3B). Abbiamo confrontato il campione modificato con una mandibola normale senza un processo di pulizia dei tessuti (Figura 3A). La mandibola trasparente (Figura 3B) con etichettatura EdU è stata sottoposta a imaging confocale. Ci s.......

Discussione

Dosi multiple di iniezioni (BrdU, EdU) sono solitamente utilizzate su topi neonatali in crescita per etichettare il più possibile le cellule proliferanti 1,6,13. Il periodo di inseguimento è considerato un passo critico per quanto riguarda il tasso di rinnovamento dei tessuti 6,13. L'incisivo del topo si rinnova circa ogni mese. Questa caratteristica consente ai ricerc.......

Divulgazioni

Gli autori non hanno nulla da rivelare.

Riconoscimenti

Ringraziamo Meghann K. Holt per aver curato il manoscritto. Questo studio è stato supportato dalle sovvenzioni NIH / NIDCR DE026461 e DE028345 e dal finanziamento di avvio della Texas A & M School of Dentistry al Dr. Xiaofang Wang.

....

Materiali

NameCompanyCatalog NumberComments
0.5 M EDTASigma AldrcihE9884
20 × Objective/NA 0.9Leica507702
50 mL Falcon Centrifuge TubesFalcon352070
BD PrecisionGlide NeedleBDREF 305111
Bezyl benzoate (BB)Sigma Aldrcih409529
Bitplane 9.0.1Imaris
BRAND cavity slidesMillipore SigmaBR475505
C57BL/6J miceJackson LaboratoryStrain #:000664
Circulation PumpVWR23609-170
CuSO4Sigma Aldrcih451657
DMSOSigma AldrcihD8418
EdUCarboynthNE08701
HeparinMiiilipore SigmaH3149
Imaging SystemOlympusDP27
LAS X SoftwareLeica
Olympus Stereo MicroscopeOlympusSZX16
ParaformaldehyeSigma AldrichP6148
PBSSigma AldrichP4417
PEGMMA500Sigma Aldrich447943
QuadrolSigma Aldrich122262
Sodium AscorbateSigma Aldrich11140
Sulfa-Cyanine 3 AzideLumiprobeD1330
TBS-10XCell Signaling Technology12498
TCS SP8 Confocal MicroscopeLeica
tert-butanol (tB)Sigma Aldrich360538
Triton X-100Sigma AldrichX100

Riferimenti

  1. Seidel, K., et al. Resolving stem and progenitor cells in the adult mouse incisor through gene co-expression analysis. eLife. 6, 24712 (2017).
  2. Yu, T., Volponi, A. A., Babb, R., An, Z., Sharpe, P. T.

Ristampe e Autorizzazioni

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