Questo lavoro è stato sostenuto dal National Health and Medical Research Council, Australia (1008865), l&#39;Australian Research Council (LE110100125), il National Cancer Institute (CA138687-01), Erica Sloan è supportato da una carriera Fellowship precoce dal National Breast Cancer Fondazione, in Australia. Corina Kim-Fuchs è sostenuto da una borsa di studio della Lega Tumori svizzera e una borsa di studio HDR da Monash Institute di Scienze Farmaceutiche. Eliane Angst è supportata da una sovvenzione da parte di Berna Cancer League.

Il protocollo viene mostrato è eseguita sotto la guida e l&#39;approvazione di cura degli animali dell&#39;istituzione dell&#39;autore e comitato utilizzo. Tutti gli esperimenti sono eseguiti in conformità a tutte le direttive, i regolamenti e le agenzie di regolamentazione. 1. Trasduzione del pancreas Cancer Cell Lines <ol><li> Cellule tumorali pancreatiche transduce di esprimere luciferasi come precedentemente descritto. 12,13 Panc-1 e Capan-1 linee cellulari tumorali pancreatiche trasdotte con lucciola luciferasi sono usati qui. </li></ol> Nota: Renilla luciferasi o luciferasi batterica possono anche essere utilizzati. 2. Pancreas Cancer Cell Preparazione <ol><li> Cultura trasdotte cellule del tumore pancreatico fino al 70% confluenti. </li><li> Sollevare le cellule pancreatiche e garantire la redditività è superiore al 90%. </li><li> Risospendere in 2 x 10 7 cellule / ml in una miscela 03:02 di Matrigel refrigerate: tampone fosfato saline (PBS). </li><li> Mantenere la sospensione Matrigel cellule in ghiaccio prima di iniezione nel pancreas. </li></ol> Note: Per assicurare la rapida solidificazione di Matrigel, ridurre il volume di PBS considerazione per il volume del pellet. Maneggiare Matrigel con strumenti di ghiaccio freddo e siringhe in ogni momento per evitare la solidificazione prima dell&#39;iniezione. Il numero di cellule suggerito è una guida e dovrebbe essere determinata empiricamente per ciascuna linea cellulare. 3. Topo Preparazione <ol><li> Anestetizzare il mouse utilizzando inalato 2-3% isoflurano. Determinare la profondità dell&#39;anestesia dalla mancanza di pedale riflesso di un dito del piede pizzico delicato. </li><li> Applicare lubrificante per gli occhi per evitare l&#39;essiccamento. </li><li> Posizionare il mouse sul dorso su una 37 ° C rilievo di riscaldamento e ruotare leggermente il mouse per aumentare il lato sinistro dell&#39;addome. </li><li> Preparare l&#39;addome con una soluzione di iodio povidone al 10%. </li></ol> Note: InjectabLe anestesia può essere usato al posto di anestesia inalatoria. Digiuno pre-operatorio non è necessario. 4. Laparotomia <ol><li> Utilizzando strumenti chirurgici sterili fare una incisione 1,5 cm in pelle di circa 1 cm a sinistra laterale dalla linea mediana. </li><li> Fare un cm incisione nel muscolo addominale sottostante 1.5. </li><li> Individuare la milza usando la pinza e rimuovere delicatamente la milza dalla cavità addominale. Fissare la milza lungo un batuffolo di cotone sterile per esporre il pancreas sottostante. </li><li> Individuare la coda del pancreas adiacente alla milza. </li><li> Utilizzando un 29 G 0,3 ml siringa da insulina, iniettare 20 microlitri della sospensione Matrigel-cellula nel pancreas. </li><li> Dopo l&#39;iniezione, tenere la siringa nel pancreas per 30-60 secondi fino a quando il Matrigel è solidificato. Questo importante passo minimizza perdita cellulare. </li><li> Ispezionare il sito di iniezione per garantire nessuna perdita si è verificata. </li><li> Restituire la milza e pancreas alla cavità addominale. </li></ol> Nota: Fare attenzione a non pungere la parte dorsale del pancreas che può essere sottile. 5. Addominale Chiusura muro <ol><li> Chiudere la muscolatura addominale del mouse con una sutura assorbibile intrecciata 4-0 con un ago rotondo con un punto continuo. </li><li> Chiudere la pelle esterna con un monofilamento non assorbibile 6-0 sutura con ago di taglio con un punto continuo. </li><li> Rimuovere il mouse dalla inalazione anestetico e iniettato 0,05-0,1 mg / kg per via sottocutanea buprenorfina. </li><li> Lasciare il mouse per recuperare nella sua gabbia posta su un 37 ° C rilievo di riscaldamento con libero accesso a cibo e acqua. Se i topi mostrano segni di dolore, come incurvando o mobilità ridotta, la buprenorfina può essere somministrata ogni 12 ore per un periodo di 36 ore. </li><li> Dopo la guarigione delle ferite (7-10 giorni), anestetizzare il mouse e rimuovere i punti di sutura esterni. </li></ol> 6. Monitoraggio bioluminescente di pancreas Cancer Progressione <ol><li> Anestetizzare il mouse utilizzando inalato isoflurano. </li><li> Iniettare 150 mg / kg di D-luciferina via coda vena. </li><li> Posizionare il mouse nel sistema di imaging bioluminescente e catturare immagini a luce bianca e bioluminescenza come descritto in precedenza. 14,15 </li><li> Rimuovere il mouse dalla inalazione anestetico e permettono di recuperare nella sua gabbia casa. </li></ol> Nota: Bioluminescenti imaging è non invasiva e può essere condotta periodicamente per indagare cinetica di crescita del tumore. Per tumore immagine nella coda pancreatica è importante mettere il mouse sul lato sinistro, quindi i punti tumorali verso la telecamera. Noi imaged una volta a settimana con la frequenza aumenta fino a tre volte alla settimana prima del punto finale sperimentale utilizzando un sistema di imaging Lumina II (Perkin-Elmer, ex Caliper Life Sciences) in esecuzione Living software 4.3.1 Imaging con binning 4, FOV 12,5, F-stop 1, esposizione 1 - 60 sec (determinata dalla più alta exposure senza pixel di saturazione).

<ol>
	<li>American Cancer Society. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Facts and Figures. , (2013).</li><li>Hariharan, D., Saied, A., Kocher, H. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Analysis+of+mortality+rates+for+pancreatic+cancer+across+the+world.">Analysis of mortality rates for pancreatic cancer across the world.</a> HPB (Oxford). 10, 58-62 (2008).</li><li>Li, D., Xie, K., Wolff, R., Abbruzzese, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pancreatic+cancer.">Pancreatic cancer.</a> Lancet. 363, 1049-1057 (2004).</li><li>Oettle, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adjuvant+chemotherapy+with+gemcitabine+vs+observation+in+patients+undergoing+curative-intent+resection+of+pancreatic+cancer:+a+randomized+controlled+trial.">Adjuvant chemotherapy with gemcitabine vs observation in patients undergoing curative-intent resection of pancreatic cancer: a randomized controlled trial.</a> JAMA. 297, 267-277 (2007).</li><li>Andersson, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gemcitabine+chemoresistance+in+pancreatic+cancer:+molecular+mechanisms+and+potential+solutions.">Gemcitabine chemoresistance in pancreatic cancer: molecular mechanisms and potential solutions.</a> Scand. J. Gastroenterol. 44, 782-786 (2009).</li><li>Angst, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bioluminescence+imaging+of+angiogenesis+in+a+murine+orthotopic+pancreatic+cancer+model.">Bioluminescence imaging of angiogenesis in a murine orthotopic pancreatic cancer model.</a> Mol. Imaging Biol. 12, 570-575 (2010).</li><li>Angst, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=N-myc+downstream+regulated+gene-1+expression+correlates+with+reduced+pancreatic+cancer+growth+and+increased+apoptosis+in+vitro+and+in+vivo.">N-myc downstream regulated gene-1 expression correlates with reduced pancreatic cancer growth and increased apoptosis in vitro and in vivo.</a> Surgery. 149, 614-624 (2011).</li><li>Hotz, H. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+orthotopic+nude+mouse+model+for+evaluating+pathophysiology+and+therapy+of+pancreatic+cancer.">An orthotopic nude mouse model for evaluating pathophysiology and therapy of pancreatic cancer.</a> Pancreas. 26, 89-98 (2003).</li><li>Partecke, L. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+syngeneic+orthotopic+murine+model+of+pancreatic+adenocarcinoma+in+the+C57/BL6+mouse+using+the+Panc02+and+6606PDA+cell+lines.">A syngeneic orthotopic murine model of pancreatic adenocarcinoma in the C57/BL6 mouse using the Panc02 and 6606PDA cell lines.</a> Eur. Surg. Res. 47, 98-107 (2011).</li><li>Hingorani, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preinvasive+and+invasive+ductal+pancreatic+cancer+and+its+early+detection+in+the+mouse.">Preinvasive and invasive ductal pancreatic cancer and its early detection in the mouse.</a> Cancer Cell. 4, 437-450 (2003).</li><li>Sloan, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+sympathetic+nervous+system+induces+a+metastatic+switch+in+primary+breast+cancer.">The sympathetic nervous system induces a metastatic switch in primary breast cancer.</a> Cancer Res. 70, 7042-7052 (2010).</li><li>Wang, X., McManus, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lentivirus+production.">Lentivirus production.</a> J. Vis. Exp. (32), e1499 (2009).</li><li>Morizono, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lentiviral+vector+retargeting+to+P-glycoprotein+on+metastatic+melanoma+through+intravenous+injection.">Lentiviral vector retargeting to P-glycoprotein on metastatic melanoma through intravenous injection.</a> Nat. Med. 11, 346-352 (2005).</li><li>Saha, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+bioluminescence+imaging+of+tumor+hypoxia+dynamics+of+breast+cancer+brain+metastasis+in+a+mouse+model.">In vivo bioluminescence imaging of tumor hypoxia dynamics of breast cancer brain metastasis in a mouse model.</a> J. Vis. Exp. (56), e3175 (2011).</li><li>Lim, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+tumor+metastases+and+osteolytic+lesions+with+bioluminescence+and+micro+CT+imaging.">Monitoring tumor metastases and osteolytic lesions with bioluminescence and micro CT imaging.</a> J. Vis. Exp. (52), e2775 (2011).</li><li>Burton, J. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adenovirus-mediated+gene+expression+imaging+to+directly+detect+sentinel+lymph+node+metastasis+of+prostate+cancer.">Adenovirus-mediated gene expression imaging to directly detect sentinel lymph node metastasis of prostate cancer.</a> Nat Med. 14, 882-888 (2008).</li><li>Vezeridis, M. P., Doremus, C. M., Tibbetts, L. M., Tzanakakis, G., Jackson, B. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Invasion+and+metastasis+following+orthotopic+transplantation+of+human+pancreatic+cancer+in+the+nude+mouse.">Invasion and metastasis following orthotopic transplantation of human pancreatic cancer in the nude mouse.</a> J. Surg. Oncol. 40, 261-265 (1989).</li><li>Fu, X., Guadagni, F., Hoffman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+metastatic+nude-mouse+model+of+human+pancreatic+cancer+constructed+orthotopically+with+histologically+intact+patient+specimens.">A metastatic nude-mouse model of human pancreatic cancer constructed orthotopically with histologically intact patient specimens.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 89, 5645-5649 (1992).</li><li>Reyes, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Orthotopic+xenografts+of+human+pancreatic+carcinomas+acquire+genetic+aberrations+during+dissemination+in+nude+mice.">Orthotopic xenografts of human pancreatic carcinomas acquire genetic aberrations during dissemination in nude mice.</a> Cancer Res. 56, 5713-5719 (1996).</li><li>Kim, M. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Generation+of+orthotopic+and+heterotopic+human+pancreatic+cancer+xenografts+in+immunodeficient+mice.">Generation of orthotopic and heterotopic human pancreatic cancer xenografts in immunodeficient mice.</a> Nat Protoc. 4, 1670-1680 (2009).</li><li>Furukawa, T., Kubota, T., Watanabe, M., Kitajima, M., Hoffman, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+novel+"patient-like"+treatment+model+of+human+pancreatic+cancer+constructed+using+orthotopic+transplantation+of+histologically+intact+human+tumor+tissue+in+nude+mice.">A novel "patient-like" treatment model of human pancreatic cancer constructed using orthotopic transplantation of histologically intact human tumor tissue in nude mice.</a> Cancer Res. 53, 3070-3072 (1993).</li><li>Lewis, C. E., Pollard, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+role+of+macrophages+in+different+tumor+microenvironments.">Distinct role of macrophages in different tumor microenvironments.</a> Cancer Res. 66, 605-612 (2006).</li><li>Brembeck, F. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mutant+K-ras+oncogene+causes+pancreatic+periductal+lymphocytic+infiltration+and+gastric+mucous+neck+cell+hyperplasia+in+transgenic+mice.">The mutant K-ras oncogene causes pancreatic periductal lymphocytic infiltration and gastric mucous neck cell hyperplasia in transgenic mice.</a> Cancer Res. 63, 2005-2009 (2003).</li></ol>

Gli autori dichiarano di non avere interessi finanziari in competizione.

Qui si descrive un modello ortotopico per la valutazione longitudinale di sviluppo del tumore del pancreas e la progressione. Cinetica di crescita del tumore primario sono riproducibili (Figura 3) e possono essere non invasivo monitorato utilizzando bioluminescenza delle cellule luciferasi-tag, ad esempio, per le analisi di risposta del tumore alle nuove terapie anti-cancro del pancreas. Coerentemente con la malattia umana, il modello mostra invasione del pancreas locale (Figura 4A),</s...

Il tumore al pancreas è la quarta causa di morte per cancro, con un tasso di sopravvivenza a 5 anni del 4-6%. 1,2 Solo il 15% dei pazienti sono diagnosticati abbastanza presto nel corso della malattia per poter beneficiare di un intervento chirurgico, e tumori ricorrono in&gt; 80% dei pazienti. 3,4 La gemcitabina è usata per il trattamento di adenocarcinomi pancreatici, tuttavia, chemioresistenza è comune e spesso la droga ha poco impatto sulla sopravvivenza globale. 5 nuove strategie farmacologiche per curare il cancro al pancreas sono estremamente necessari. Il loro sviluppo dipende notevolmente migliorato la comprensione dei passaggi chiave della progressione di malattia che possono essere sensibili a un intervento terapeutico. Modelli ortotopico di cancro al pancreas emulare gli aspetti chiave della malattia umana, che li rende strumenti ideali per lo studio della biologia del cancro al pancreas. 6-9 In contrasto in vitro basati su cellule di pancreas comportamento delle cellule di cancro di und sottocutaneo in modelli in vivo di cancro al pancreas, modelli ortotopici consentire indagini su interazioni delle cellule tumorali con il microambiente del pancreas. La cinetica di progressione della malattia sono altamente riproducibili in modelli ortotopici e si verificano nel corso di un breve lasso di tempo (settimane), che li rende adatti per test pre-clinici di nuove terapie. Questo è in contrasto con i modelli transgenici in cui l&#39;esordio della malattia si verifica nel corso di un telaio più lungo e variabile tempo (mesi a 1 anno). Se utilizzato con 10 linee di cellule più aggressive, modelli ortotopico di cancro del pancreas hanno modelli di metastasi spontanee simili a quelle viste in pazienti. 8 Espressione di geni reporter bioluminescenti come la lucciola luciferasi facilita il monitoraggio longitudinale della crescita tumorale, la diffusione metastatica, la recidiva e la risposta alle terapie. 6,11 Qui si descrive un modello ortotopico di cancro al pancreas che utilizza Matrigel per la consegna cella localizzata e di imaging bioluminescenza in vivo per il monitoraggio non invasivo della progressione tumorale. Questo modello ortotopico di cancro al pancreas consente analisi non invasive di progressione della malattia e la risposta agli interventi terapeutici in modelli singenici o xenotrapianto.

<table border="1">
 <tbody>
 <tr>
 <td>Equipment</td>
 <td>Company</td>
 <td>Catalog Number</td>
 <td>Comments</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Clean Bench coat</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Heating pad</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td>Set to 37 &deg;C </td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Ivis Lumina ll Bioluminescent imager</td>
 <td>Caliper </td>
 <td></td>
 <td>Alternative bioluminescent imaging systems include In vivo F PRO (Carestream) and Photon Imager (Biospace Lab)</td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Dissecting scissors</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Iris forceps (serrated)</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>Needle holder</td>
 <td></td>
 <td></td>
 <td></td>
 </tr>
 <tr>
 <td>27 G 0.3 ml insulin syringe</td>
 <td>Terumo</td>
 <td>T35525M2913</td>
 <td></td>
 </tr>
 </tbody>
</table>

bioluminescent orthotopic model of pancreatic cancer progression

<p class="jove_content"&gt; Il tumore al pancreas è estremamente povero tasso di sopravvivenza a cinque anni del 4-6%. Nuove opzioni terapeutiche sono criticamente necessari e dipendono da una migliore comprensione della biologia del cancro al pancreas. Per meglio comprendere l&#39;interazione delle cellule tumorali con il microambiente pancreatico, dimostriamo un modello ortotopico di cancro pancreatico che consente il monitoraggio non invasivo della progressione del cancro. Cellule tumorali pancreatiche luciferasi-tag sono risospesi in Matrigel e consegnati nella coda del pancreas durante la laparotomia. Matrigel solidifica a temperatura corporea per evitare perdite di cellule tumorali durante l&#39;iniezione. La crescita del tumore primario e metastasi in organi distanti sono monitorati dopo l&#39;iniezione del substrato luciferina luciferasi, utilizzando<em&gt; In vivo</em&gt; Imaging bioluminescenza emissione dalle cellule tumorali.<em&gt; In vivo</em&gt; Immagini può anche essere utilizzato per monitorare recidiva del tumore primario dopo la resezione. Questo modello ortotopico è adatto per entrambi i modelli singenici xenotrapianto e può essere utilizzato in studi pre-clinici per studiare l&#39;impatto di nuove terapie anti-tumorali sulla crescita del tumore pancreatico primario e delle metastasi.</p&gt;

Il metodo descrive un modello ortotopico di cancro al pancreas con intervento chirurgico, compresa l&#39;induzione dell&#39;anestesia, laparotomia, l&#39;iniezione di cellule tumorali in chiusura Matrigel e addominale (Figura 1A). Le cellule iniettate formano una bolla nella superficie del pancreas (Figura 1B). La progressione del cancro del pancreas può essere non invasivo monitorati utilizzando l&#39;imaging bioluminescenza in vivo per monitorare la proliferazione delle cell...

Watch this Scientific Journal Video about Bioluminescent Orthotopic Model of Pancreatic Cancer Progression at JoVE.com

Bioluminescent Orthotopic Model of Pancreatic Cancer Progression

Migliore comprensione della biologia del cancro pancreatico è criticamente necessaria per consentire lo sviluppo di migliori opzioni terapeutiche per il trattamento di cancro al pancreas. Per rispondere a questa esigenza, abbiamo dimostrato un modello ortotopico di cancro al pancreas, che consente il monitoraggio non invasivo di progressione del cancro usando<em&gt; In vivo</em&gt; L&#39;imaging bioluminescenza.

Bioluminescente modello ortotopico di cancro al pancreas Progressione

Pancreatic cancer has an extremely poor five-year survival rate of 4-6%.  New therapeutic options are critically needed and depend on improved ...

bioluminescent-orthotopic-model-of-pancreatic-cancer-progression

Research

JoVE Journal

Medicine

26.7K Views.  Monash University. Migliore comprensione della biologia del cancro pancreatico è criticamente necessaria per consentire lo sviluppo di migliori opzioni terapeutiche per il trattamento di cancro al pancreas. Per rispondere a questa esigenza, abbiamo dimostrato un modello ortotopico di cancro al pancreas, che consente il monitoraggio non invasivo di progressione del cancro usando In vivo L'imaging bioluminescenza.