Vorrei ringraziare CL Richards-Zawacki aiuto concettualizzare il disegno sperimentale e l&#39;assistenza con materiali, A. Pessier aiuto che istituisce un regime di trattamento e di necroscopia analisi, MWH Chatfield, MJ Robak, K. Tasker e D. Lenger aiuto per la laboratorio e di supporto e M. McFadden e P. Harlow allo zoo di Taronga per l&#39;utilizzo del loro spazio durante le riprese. Il progetto è stato parzialmente finanziato dalla Louisiana Department of Wildlife and Fisheries attraverso la concessione Louisiana Environmental Education Commissione assegnato a Los Angeles Brannelly e Life Technologies.

Etica di omologazione: Questo studio e dei suoi metodi sono stati approvati da Usa e cura degli animali commissione di Tulane University (prot 0407.). 1. Test per Bd infezione <ol><li> Tamponamento per Bd <ol><li> Animali tampone con un tampone di cotone sterile cinque volte sul ventre, cinque volte su ogni coscia, ogni lato e ogni arto per un totale di 45 colpi. Swabbing è un metodo non invasivo di campionamento per Bd sulla pelle degli anfibi. </li><li> Ruotare delicatamente il tampone durante e tra i tratti di assicurare la maggiore quantità di DNA viene raccolto sul tampone. </li><li> Conservare tamponi in 1,5 ml microtubi a -20 ° C. </li></ol></li><li> Estrazione del DNA e analisi qPCR <ol><li> Estrarre DNA genomico dai tamponi utilizzando un kit di isolamento di DNA disponibile in commercio, in conformità con le istruzioni per tessuti animali. </li><li> Analizzare il DNA estratto utilizzando quantitativa in tempo reale PCR (qPCR) a seguito di Boyle <em&gt; et al 17, con le seguenti modifiche.: </li><li> Diluire i campioni di estrazione del DNA 01:10 con doppio acqua deionizzata. </li><li> Aggiungere 0,7 ml di sieroalbumina bovina (BSA) per impedire l&#39;inibizione PCR. </li><li> Includere un controllo interno positivo in ogni campione per garantire l&#39;inibizione della PCR non interessano i risultati. </li><li> Campioni familiare con un controllo positivo e negativo e una serie di norme di diluizione per stimare zoospore (infezione) di carico. </li></ol></li></ol> 2. Inoculazione <ol><li> Cultura Bd <ol><li> Preparare triptone brodo aggiungendo 10 g di triptone a 1 L osmosi inversa o acqua deionizzata, in autoclave (121 ° C per 40 min) e lasciato raffreddare. Una volta raffreddata a 23 ° C, aggiungere 1 ml di penicillina-streptomicina. </li><li> Grow ceppo Bd (JEL411 da J. Longcore, isolata dal Guabal, Panama da un Phyllomedusa lemure) in un brodo triptone per sette giorni a 23 ° C. </li></ol></li><li> Trasferire il broth cultura Triptone e piastre di agar. <ol><li> Per rendere piastre, si aggiungono 10 g di triptone e 10 g di agar per 1 L osmosi inversa o acqua deionizzata e autoclave (121 ° C per 40 min). </li><li> Una volta che l&#39;impasto autoclavato è abbastanza fresco al tatto, ma prima che si rapprende, versare in piastre di Petri, 1/4-1/3 pieno, in una cappa a flusso laminare. </li><li> Quando agar ha congelato e raffreddato completamente, aggiungere 0,5 ml Bd brodo per ogni piastra e diffondere uniformemente attorno alla piastra. Lasciare asciugare. </li><li> Una volta che le piastre vengono inoculate con zoospore Bd, piastre di tenuta con parafilm. </li><li> Lasciare le piastre a incubare a 23 ° C per 5-7 giorni. Controllare zoospore movimento per garantire la vitalità prima dell&#39;inoculazione. </li></ol></li><li> Piastre di inondazione per la soluzione di inoculazione zoospore <ol><li> Dopo i 5-7 giorni di Bd incubazione e di crescita, inondare ogni piatto con 5 ml di acqua di rubinetto invecchiata e permettono zoospore di entrare media per 10 min. </li><li> Versare il Sosp zoosporension in un contenitore portatile. </li><li> Stimare la concentrazione zoospore con un emocitometro. </li><li> Diluire miscela ad una concentrazione di 1 x 10 6 per 3 ml con acqua del rubinetto invecchiata. </li></ol></li><li> Seminare animali <ol><li> In singoli 50 ml contenitori, inoculare ogni animale versando 3 miscela inoculo ml sul suo ventre. Lasciare inoculo supplementare gocciolare nella base del contenitore inoculazione. </li><li> Ogni animale rimarrà in contenitore inoculazione per 24 ore per garantire infezione. </li><li> Dopo 24 ore di inoculazione, ritorno animali ai singoli terrari disinfettati. </li><li> Lasciare l&#39;infezione di costruire per due settimane. Confermare l&#39;infezione con tampone e risultati qPCR, e iniziare il trattamento. </li><li> Per i controlli Bd-negativi, alluvioni Bd-libero piastre di agar con 5 ml di età compresa tra acqua di rubinetto, e inoculare finto gli animali con le stesse modalità di cui sopra. </li></ol></li></ol> 3. Regime di trattamento <ol><li> Prepare bagno di trattamento <ol><li> Aggiungere 2,50 ml di itraconazolo acquosa (1% Sporanox soluzione orale) per 1 Soluzione L Anfibio Ringer (0,0025% itraconazolo - la concentrazione trattamento efficace più bassa). <ol><li> Anfibio di Ringer Soluzione ricetta: 1 L osmosi inversa o acqua deionizzata, cloruro 6,6 g di sodio, 0,15 g di cloruro di potassio, 0,15 g di cloruro di calcio, e 0,2 g di bicarbonato di sodio. Soluzione autoclave (121 ° C per 40 min) e lasciarla raffreddare fino a temperatura ambiente. </li><li> Per la concentrazione trattamento itraconazolo 0,01%, aggiungere 10,00 ml di itraconazolo acquosa (1% Sporanox soluzione orale) di Soluzione 1 L Anfibio Ringer </li><li> Per il 0,005% di concentrazione trattamento itraconazolo, aggiungere 5,00 ml di itraconazolo acquosa (1% Sporanox soluzione orale) di Soluzione 1 L Anfibio di Ringer. </li></ol></li><li> Per i controlli Bd-positivi e Bd-negativi, fare il bagno animali in soluzione di Ringer Anfibio senza itraconazolo. </li></ol></li><li> Trattamento &lt;ol&gt; <li> Mettere singoli anfibi in disinfettati 50 ml contenitori con 35 ml di soluzione di trattamento. </li><li> Assicurarsi che gli animali sono completamente coperti per cinque minuti agitando delicatamente il contenitore. </li><li> Animali Ritorno a terrari disinfettati. Ripetere l&#39;operazione per sei giorni. </li></ol></li><li> Assicurare il successo del trattamento <ol><li> Animali di laboratorio per l&#39;infezione Bd sul trattamento giorno comincia. </li><li> Animali di laboratorio per l&#39;infezione Bd una settimana dopo finiture di trattamento, e una volta a settimana per quattro settimane per assicurare scomparsa dell&#39;infezione. </li></ol></li></ol> 4. Bd come Biohazard <ol><li> Disinfettare individuale terrari settimanale. <ol><li> Fare il bagno terrari e trattamento contenitori in un bagno di candeggina soluzione al 10%. </li><li> Risciacquare ogni contenitore sbiancato due volte con acqua corrente. </li><li> Lasciare contenitori asciugare per 24 ore prima di riutilizzarli. </li></ol></li><li> Indossare guanti di nitrile per maneggiare gli animali per evitare la contaminazione incrociatadi Bd patogeno. Cambiare i guanti tra gestione di ogni animale. </li><li> Disinfettare tutti i rifiuti liquidi prima dello smaltimento portando la soluzione al 10% di candeggina. </li><li> Autoclave tutti i rifiuti solidi che è potenzialmente esposto a Bd prima dello smaltimento. </li></ol>

<ol>
	<li>Stuart, S. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Status+and+trends+of+amphibian+declines+and+extinctions+worldwide.">Status and trends of amphibian declines and extinctions worldwide.</a> Science. 306 (5702), 1783-1786 (2004).</li><li>Skerratt, L. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Spread+of+chytridiomycosis+has+caused+the+rapid+global+decline+and+extinction+of+frogs.">Spread of chytridiomycosis has caused the rapid global decline and extinction of frogs.</a> EcoHealth. 4, 125-134 (2007).</li><li>Wake, D. B., Vredenburg, V. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Colloquium+paper:+are+we+in+the+midst+of+the+sixth+mass+extinction?+A+view+from+the+world+of+amphibians.">Colloquium paper: are we in the midst of the sixth mass extinction? A view from the world of amphibians.</a> PNAS. 105, 11466-11473 (2008).</li><li>Voyles, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrolyte+depletion+and+osmotic+imbalance+in+amphibians+with+chytridiomycosis.">Electrolyte depletion and osmotic imbalance in amphibians with chytridiomycosis.</a> Dis. Aquat. Org. 77 (2), 113-118 (2007).</li><li>Ramsey, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amphibian+immune+defenses+against+Batrachochytrium+dendrobatidis:+A+war+between+host+and+pathogen.">Amphibian immune defenses against Batrachochytrium dendrobatidis: A war between host and pathogen.</a> , (2011).</li><li>McMahon, T. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chytrid+fungus+Batrachochytrium+dendrobatidis+has+nonamphibian+hosts+and+releases+chemicals+that+cause+pathology+in+the+absence+of+infection.">Chytrid fungus Batrachochytrium dendrobatidis has nonamphibian hosts and releases chemicals that cause pathology in the absence of infection.</a> PNAS. 110 (1), 210-215 (2013).</li><li>Berger, L., Speare, R., Pessier, A., Voyles, J., Skerratt, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+chytridiomycosis+requires+urgent+clinical+trials.">Treatment of chytridiomycosis requires urgent clinical trials.</a> Dis. Aquat. Org. 92, 165-174 (2010).</li><li>Chatfield, M. W. H., Richards-Zawacki, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elevated+temperature+as+a+treatment+for+Batrachochytrium+dendrobatidis+infection+in+captive+frogs.">Elevated temperature as a treatment for Batrachochytrium dendrobatidis infection in captive frogs.</a> Dis. Aquat. Org. 94 (3), 235-238 (2011).</li><li>Karbowski, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Free+radical-induced+megamitochondria+formation+and+apoptosis.">Free radical-induced megamitochondria formation and apoptosis.</a> Free Rad. Biol. Med. 26 (98), 396-409 (1999).</li><li>Bishop, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Elimination+of+the+amphibian+chytrid+fungus+Batrachochytrium+dendrobatidis+by+Archey's+frog+Leiopelma+archeyi.">Elimination of the amphibian chytrid fungus Batrachochytrium dendrobatidis by Archey's frog Leiopelma archeyi.</a> Dis. Aquat. Org. 84 (1), 9-15 (2009).</li><li>Pessier, A. P., Mendelson, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> A Manual For Control of Infectious Diseases in Amphibian Survival Assurance Colonies and Reintroduction Programs. , (2009).</li><li>Page, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chloramphenicol+1.+Hazards+of+use+and+the+current+regulatory+environment.">Chloramphenicol 1. Hazards of use and the current regulatory environment.</a> Aus. Vet. J. 68 (1), 1-2 (1991).</li><li>Yoon, H. -. J., Seo, M. H., Kim, J. -. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Pharmaceutical formulations for itraconazole. , (2005).</li><li>Garner, T. W. J., Garcia, G., Carroll, B., Fisher, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+itraconazole+to+clean+Batrachochytrium+dendrobatidis+infection,+and+subsequent+depigmentation+of+Alytes+muletensis+tadpoles.">Using itraconazole to clean Batrachochytrium dendrobatidis infection, and subsequent depigmentation of Alytes muletensis tadpoles.</a> Dis. Aquat. Org. 83, 257-260 (2009).</li><li>Brannelly, L. A., Richards-Zawacki, C. L., Pessier, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+trials+with+itraconazole+as+a+treatment+for+chytrid+fungal+infections+in+amphibians.">Clinical trials with itraconazole as a treatment for chytrid fungal infections in amphibians.</a> Dis. Aquat. Org. 101 (2), 95-104 (2012).</li><li>Jones, M. E. B., Paddock, D., Bender, L., Allen, J. L., Schrenzel, M. S., Pessier, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Treatment+of+chytridiomycosis+with+reduced-dose+itraconazole.">Treatment of chytridiomycosis with reduced-dose itraconazole.</a> Dis. Aquat. Org. 99 (3), 243-249 (2012).</li><li>Boyle, D. G., Boyle, D. B., Olsen, V., Morgan, J. A. T., Hyatt, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+quantitative+detection+of+chytridiomycosis+(Batrachochytrium+dendrobatidis)+in+amphibian+samples+using+real-time+Taqman+PCR+assay.">Rapid quantitative detection of chytridiomycosis (Batrachochytrium dendrobatidis) in amphibian samples using real-time Taqman PCR assay.</a> Dis. Aquat. Org. 60 (2), 141-148 (2004).</li><li>Martel, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developing+a+safe+antifungal+treatment+protocol+to+eliminate+Batrachochytrium+dendrobatidis+from+amphibians.">Developing a safe antifungal treatment protocol to eliminate Batrachochytrium dendrobatidis from amphibians.</a> Med. Mycol. 49 (2), 143-149 (2011).</li><li>Bowerman, J., Rombough, C., Weinstock, S. R., Padgett-Flohr, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Terbinafine+hydrochloride+in+ethanol+effectively+clears+Batrachochytrium+dendrobatidis+in+amphibians.">Terbinafine hydrochloride in ethanol effectively clears Batrachochytrium dendrobatidis in amphibians.</a> J. Herpetol. Med. Surg. 20 (1), 24-29 (2010).</li><li>Young, S., Speare, R., Berger, L., Skerratt, L. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chloramphenicol+with+fluid+and+electrolyte+therapy+cures+terminally+ill+green+tree+frogs+(Litoria+caerulea)+with+chytridiomycosis.">Chloramphenicol with fluid and electrolyte therapy cures terminally ill green tree frogs (Litoria caerulea) with chytridiomycosis.</a> J. Zoo Wildlife Med. 43 (2), 330-337 (2012).</li></ol>

L&#39;autore dichiara interessi finanziari concorrenti.

Usando questo protocollo siamo stati in grado di ridurre in modo sicuro ed efficace la dose di trattamento e il tempo di trattamento itraconazolo per Bd in anfibi. La dose di trattamento più basso e il tempo (0,0025% per sei giorni) è stato un trattamento efficace per I. subclinicamente infetti nebulifer. L&#39;efficacia di entrambi una dose più bassa e il tempo di trattamento dimostrare la necessità di studi clinici di trattamento per i trattamenti di infezione Bd, in quanto attu...

Gli anfibi sono attualmente vivendo la più grande diminuzione della biodiversità di tutti i taxa vertebrati 1. Chitridiomicosi, una malattia della pelle causata dai chytrid fungine dendrobatidis patogeno Batrachochytrium (BD), è una delle principali cause di questi cali drammatici 2 Bd è l&#39;agente patogeno peggior record per causare la perdita di biodiversità:. Che infetta oltre 600 specie di anfibi e ha causato cali oltre 300 specie, di cui ben 200 specie sono diventate in pericolo di estinzione o estinti 2,3. Il chytrid fungo anfibio non è ospite specifico e non è chiaro quali sono le qualità di accoglienza permettono di infezione Bd progredire causando gravi malattie. Chitridiomicosi provoca la morte interrompendo canali ionici nella pelle, con conseguente perdita di elettroliti e insufficienza cardiaca 4. Inoltre, Bd surnatante (contenente nessun zoospore BD) provoca una risposta immunitaria in girini 5 leading ricercatori a credere Bd produce un sottoprodotto tossico 6. Poiché molte specie sono in rapido declino, le colonie di garanzia e programmi di allevamento in cattività sono importanti misure di conservazione, e possono essere l&#39;unica ancora di salvezza per alcune specie. Stabilire e mantenere la malattia colonie liberi è una sfida per le strutture di gestione anfibi. Gli attuali metodi chemioterapici per il trattamento di infezioni Bd, anche se efficace, possono essere nocivi per gli animali in trattamento, e nessun metodo singolo trattamento ha avuto successo tra le specie e le classi di età di anfibi 7. Pochi studi clinici di trattamenti per l&#39;infezione Bd sono stati effettuati 7. I tre metodi più comunemente usati di trattamento sono la terapia del calore, cloramfenicolo e itraconazolo. Terapia del calore è un&#39;opzione di trattamento nonchemotherapeutic che sembra avere pochi effetti collaterali, possono essere utilizzati in più fasi della vita, ed è generalleato efficace. In uno studio di trattamento, Chatfield e Richards-Zawacki 8 hanno trovato che il 96% degli animali trattati aveva eliminato le infezioni dopo essere stato ospitato a 30 ° C per 10 giorni. Anche se questo studio non era al 100% di successo, fornisce una base per gli altri a valutare la terapia del calore per loro stessa specie. Terapia del calore, anche se efficace per molte specie, è impraticabile per molte specie alpina che non possono rimanere a temperature elevate per un periodo di tempo prolungato. Cloramfenicolo, un antibatterico, è stato usato con successo per trattare Bd in molte specie, e inibisce la crescita di funghi in vitro. Come antibatterico, il cloramfenicolo non attacca il fungo specificamente ma è stato conosciuto per causare apoptosi in cellule eucariotiche 9. È stato ipotizzato che la terapia cloramfenicolo provoca apoptosi nella pelle, uccidendo sporangi intracellulare, sebbene l&#39;esatto meccanismo di azione non è noto. Anche se nessuno studio clinico è stato condotto, e quindidose e la durata del trattamento non sono stati valutati i protocolli di trattamento correnti in genere richiedono l&#39;immersione per due a quattro settimane 10,11, rendendo questo trattamento impraticabile per gli anfibi terrestri. Cloramfenicolo è stato limitato in alcuni paesi per uso veterinario perché l&#39;esposizione umana è stata associata con una rara forma di anemia aplastica 12. Itraconazolo, un antimicotico azolici, è il più utilizzato per il trattamento di infezioni Bd in anfibi in cattività. Il protocollo più usato è animali balneazione in una soluzione itraconazolo 0,01% per cinque minuti al giorno per 11 giorni consecutivi. Questo protocollo è stato derivato dagli standard utilizzati per la somministrazione dei mammiferi, e, pur efficace per gli anfibi, non si basa su studi clinici in anfibi 11,13. Questo protocollo può causare effetti collaterali negativi in alcune specie, soprattutto nel genere Rana e in girini e recenti Metamorphs 11.Trattamento Tadpole ha avuto successo con una concentrazione molto più bassa (0,0005%) di itraconazolo, ma è stato associato alla depigmentazione 14. Questa stessa concentrazione è stata trialed sui recenti Metamorphs e trovato ad essere riuscita a trattare l&#39;infezione 15. Perché non vi è rischio di effetti collaterali negativi del trattamento con itraconazolo, alcuni praticanti hanno usato una metà la solita concentrazione (0,005%) per 11 giorni consecutivi e abbiamo trovato questo per avere successo nella cura delle infezioni Bd 16. Il presente studio è la sintesi di una sperimentazione clinica di trattamento con itraconazolo per trattare l&#39;infezione Bd 15. Il protocollo descrive un tentativo di trovare la dose e il tempo di trattamento più basso che sia sicuro ed efficace per il trattamento Bd animali infetti con itraconazolo. Animali utilizzati in questo studio sono stati recenti Metamorphs di rospi Gulf Coast, Incilius nebulifer.

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="503">
	<tbody>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:179px;">0.1% Aqueous Itraconazole, Sporonox</td>
			<td style="width:147px;">Janssen Pharmaceutica Inc.</td>
			<td style="width:177px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">NaCl</td>
			<td style="width:147px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:177px;">S640-500</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">KCl</td>
			<td style="width:147px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:177px;">BP366-1</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">CaCl2</td>
			<td style="width:147px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:177px;">BP510-100</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">NaHCO3</td>
			<td style="width:147px;">Fisher Scientific</td>
			<td style="width:177px;">BP328-500</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:179px;">Sterile cotton swabs</td>
			<td style="width:147px;">Medical and Wire Equipment</td>
			<td style="width:177px;">MW113</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">1.5 ml micro tubes</td>
			<td style="width:147px;">Sarstedt</td>
			<td style="width:177px;">73.703.217</td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:179px;">Qiagen DNEasy Blood and Tissue Kit</td>
			<td style="width:147px;">Qiagen</td>
			<td style="width:177px;">69581</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">7500 Real-time PCR</td>
			<td style="width:147px;">Applied Biosystems</td>
			<td style="width:177px;">4351104</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">VIC IPC</td>
			<td style="width:147px;">Applied Biosystems</td>
			<td style="width:177px;">4308323</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">BSA</td>
			<td style="width:147px;">Applied Biosystems</td>
			<td style="width:177px;">AM2618</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">Agar</td>
			<td style="width:147px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:177px;">30391023</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">Tryptone</td>
			<td style="width:147px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:177px;">Q10029</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">Penicillin-streptomycin</td>
			<td style="width:147px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:177px;">15070-063</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:179px;">Petri Dish</td>
			<td style="width:147px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:177px;">CLS430589</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

reduced itraconazole concentration and durations are successful in treating batrachochytrium dendrobatidis infection in amphibians

Anfibi stanno vivendo il più grande declino di qualsiasi classe vertebrati e una delle principali cause di questi cali è un patogeno fungino, Batrachochytrium dendrobatidis (Bd), che causa la malattia chytridiomycosis. Colonie di assicurazione in cattività sono importanti a livello mondiale per minacciate specie di anfibi e possono essere l&#39;unica ancora di salvezza per chi minaccia di critico di estinzione. Mantenere malattia colonie libere è una delle priorità di manager in cattività, non sono stati identificati ancora trattamenti sicuri ed efficaci per tutte le specie e in tutta le fasi della vita. Il trattamento chemioterapico più utilizzato è itraconazolo, sebbene il dosaggio comunemente utilizzato può essere dannoso per alcuni individui e specie. Abbiamo eseguito uno studio di trattamento clinico per valutare se una dose più bassa e più sicuro, ma efficace di itraconazolo potrebbe essere trovato per curare le infezioni Bd. Abbiamo trovato che riducendo la concentrazione trattamento ,01-,0025% e ridurre la durata del trattamento da 11Giorni -6 di 5 min bagni, rane potevano essere curate di infezione Bd con meno effetti collaterali e meno la mortalità associata al trattamento.

Trattamento Itraconazolo è stato considerato di successo se tutti gli animali fossero Bd-negativi quattro settimane dopo la fine del trattamento. Prima del trattamento iniziato, due settimane dopo l&#39;inoculazione, tutti gli animali Bd-inoculati sono stati infettati, con un carico zoospore media di 1,121.7 (± 17,34), mentre quattro settimane dopo la fine del trattamento, gli animali di controllo Bd-positivi avevano carico una media zoospore di 16,765.12 ( ± 14643,08). <p class="jove_c...

Watch this Scientific Journal Video about Reduced Itraconazole Concentration and Durations Are Successful in Treating Batrachochytrium dendrobatidis Infection in Amphibians at JoVE.com

Reduced Itraconazole Concentration and Durations Are Successful in Treating Batrachochytrium dendrobatidis Infection in Amphibians

Batrachochytrium dendrobatidis infezione anfibi può essere eliminato con una concentrazione ridotta (0,0025%) e di breve durata (bagni cinque minuti per sei giorni) di itraconazolo che viene generalmente utilizzato. Meno mortalità e meno effetti collaterali negativi sono stati osservati con questo protocollo di trattamento modificata.

Ridotta concentrazione Itraconazolo e Durata hanno successo nel trattamento<em&gt; Batrachochytrium dendrobatidis</em&gt; Infezione in Anfibi

Amphibians are experiencing the greatest decline of any vertebrate class and a leading cause of these declines is a fungal pathogen, Batrachochytrium ...

reduced-itraconazole-concentration-durations-are-successful-treating

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Reduced Itraconazole Concentration and Durations Are Successful in Treating Batrachochytrium dendrobatidis Infection in Amphibians

11.5K Views.  James Cook University.  Batrachochytrium dendrobatidis infezione anfibi può essere eliminato con una concentrazione ridotta (0,0025%) e di breve durata (bagni cinque minuti per sei giorni) di itraconazolo che viene generalmente utilizzato. Meno mortalità e meno effetti collaterali negativi sono stati osservati con questo protocollo di trattamento modificata. 