Questo lavoro è stato sostenuto dal Consiglio di Ricerca delle Scienze Naturali e di Ingegneria del Canada Discovery Grant RGPIN36481-08 a William G. Bendena.

1. Preparazione degli organismi sperimentali <ol><li> Prelevare 10 nematodi in scatola L4 per ceppo 24 h prima di iniziare il test per assicurare che gli organismi siano giovani adulti quando sono stati sottoposti a test. Per ogni mutato o nematodo di controllo sperimentato, scegliere 10 L4s (10 per il controllo e 10 per il saggio). <ol><li> Mantenere gli organismi L4 utilizzando metodi standard 26 , 27 per 24 ore su piatti standard di agar seminati con OP50 Escherichia coli . Se gli organismi si perdono durante i passi successivi di lavaggio, compensare aumentando la dimensione del campione iniziale ( cioè scegliere 20 worm più che 10). Nota: Il comportamento è un fenotipo variabile innaturale. Eseguire il metodo in triplice copia per ogni ceppo in tre giorni separati. Includere i ceppi di controllo aggiuntivi e le condizioni per i nuovi ceppi, come evidenziato nella sezione di discussione. </li></ol></li><li> Immediatamente prima del dosaggio, trasferire l&#39;organo sperimentaleIn un piatto di agar senza batteri e permettere ai nematodi di muoversi liberamente per 1 min per rimuovere batteri in eccesso. <ol><li> Se gli organismi sperimentali hanno sperimentato condizioni di contaminazione durante le 24 ore prima del dosaggio, scartarle. </li></ol></li><li> Pipettare 1 ml di M9 sulla piastra priva di batteri per lavare i vermi in un tubo di microcentrifuga. </li><li> Centrifugare a 3.000 xg per 1 min. I vermi dovrebbero formare un pellet nella parte inferiore del tubo. Aspirare la soluzione M9 senza interrompere il pellame di verme. Aggiungere 1 ml di M9 alla pellicola del verme, invertire il tubo per mescolare i vermi con la soluzione. </li><li> Ripetere i passaggi 1.4 ancora tre volte. <ol><li> Se i batteri in eccesso sono stati inizialmente trasferiti con i vermi, ripetere per un totale di 5 volte. Nessun batterio dovrebbe essere trasferito alle piastre di corsa alimentare in rame. Se il cibo viene trasferito sulla piastra di dosaggio, interferirà con una raccolta precisa dei dati. </li></ol></li><li> Dopo il lavaggio finale, aspirare il surnatante fino al 10081, L di M9 e il pellet verme rimane. Attenzione: i comportamenti legati alla fame risultano evidenti dopo 30 minuti. Di conseguenza, i vermi dovrebbero essere immediatamente trasferiti dalla soluzione una volta completati i passaggi di lavaggio. </li></ol> 2. Preparazione delle lastre di analisi <ol><li> Preparare le piastre standard di agar NGM due giorni prima del dosaggio. <ol><li> Se le lastre sono tenute in un ambiente umido, fare piastre agar 3 giorni prima del dosaggio. In alternativa, rimuovere il coperchio della piastra per 3 - 6 h per garantire una corretta secchezza (se in ambiente sterile). </li></ol></li><li> Con un marcatore permanente lungo, fare una linea sul lato inferiore della piastra lungo il bordo esterno e un altro per formare una barriera intermedia ( figura 1 ). La barriera intermedia dovrebbe essere equidistante da ogni bordo della piastra. Utilizzare un righello per garantire misurazioni precise. Queste linee serviranno come guida durante il trasferimento di batteri e la soluzione di rame. PurchéE. coli viene trasferito prima della soluzione di rame, queste linee serviranno come indicatori. </li><li> Piastra di semi con 50 μl di OP 50 E. coli su un solo lato della barriera di rame per creare un prato uniforme ( Figura 2 ). La concentrazione batterica dovrebbe rimanere coerente in tutti i dosaggi; Tuttavia, è stata osservata una piccola variabilità in risposta a lievi differenze di concentrazione. <ol><li> Utilizzare le linee contrassegnate sulla parte inferiore della piastra per assicurare che i batteri non vengano a contatto con la soluzione di rame. Fintanto che la soluzione di rame allinea il bordo della piastra e forma una barriera di media linea, trasferire i batteri in modo che la soluzione di rame non venga a contatto con la fonte alimentare. </li></ol></li><li> Segna un secondo set di piastre e non trasferisce OP50 E. coli a loro ( Figura 2 ). Queste lastre serviranno a valutare il controllo negativo. Queste piastre dovrebbero anche avere unMarcatura su una metà della piastra per indicare l&#39;origine di trasferimento iniziale. </li><li> Lasciare asciugare i batteri e incubare le piastre a 37 ° C per una notte. Assicurarsi che le patch batteriche non siano disturbate quando si trasferisce ad un incubatore oa una camera di 37 ° C. Il disturbo eccessivo potrebbe alterare la posizione o la forma della patch alimentare. </li></ol> 3. Analisi chimotassi <ol><li> Appena preparare una soluzione di solfato di rame (II) 0,5 M prima del tempo di inizio del test. A condizione che 125 μL di soluzione sia utilizzata per piastra, scalare questo volume in funzione del numero di piastre di dosaggio utilizzate ( ad es. 5 piastre di dosaggio, 625 μL). </li><li> Pipettare 100 μL della soluzione di solfato di rame (II) sul bordo dell&#39;agar per creare una barriera esterna in rame. Il contrassegno sottostante della piastra dovrebbe servire da guida. </li><li> Pipettare 25 μL della soluzione di solfato di rame (II) per creare una barriera di medie linee. <ol><li> Assicurarsi che la soluzione di solfato di rame (II)Non entrare in contatto con la patch batterica. Utilizzare una tecnica macchiata poiché le striature possono influenzare la locomozione a causa di indentazioni / graffi sull&#39;agar. </li></ol></li><li> Lasciare asciugare la soluzione di rame sulla lastra. Il periodo di tempo può variare a seconda delle piastre e delle condizioni del laboratorio. Controllare visivamente la secchezza ogni 5 min dopo il trasferimento. Nota: la soluzione di rame mostra una tonalità blu e facilmente identificabile. Utilizzare un tessuto di laboratorio per abbassare leggermente la soluzione vicino al bordo della piastra per discernere la secchezza. </li><li> Pipettare 20 μL di pellet di worm dal fondo del tubo sulla metà libera dal batterio della piastra di dosaggio. <ol><li> Assicurarsi che 10 vermi siano trasferiti alla piastra di dosaggio. Se i worm extra sono stati inclusi accidentalmente, rimuoverli raccogliendo con l&#39;olio di alogeno per assicurare che nessun batterio sia stato aggiunto alla piastra. Ogni dosaggio dovrebbe avere un numero consistente di nematodi durante il dosaggio. NOTA: se troppo pochi worm sono trasfErrato durante i test, incrementando la dimensione iniziale del campione, ridurrà le potenziali perdite durante le operazioni di lavaggio e trasferimento. </li></ol></li><li> Rimuovere l&#39;eccesso M9 dalla piastra con un tessuto di laboratorio. M9 non dovrebbe entrare in contatto con la soluzione di solfuro di rame (II). Attenzione: assicurarsi che i worm e la superficie del agar rimangano inalterati durante l&#39;esecuzione di questo passaggio. Se usato troppo duro, il tessuto di laboratorio può creare indentazioni sulla superficie del piatto agar e può rimuovere i vermi. I worms eliminati accidentalmente via KimWipe dovrebbero essere scartati. </li><li> Una volta che la soluzione M9 è stata rimossa e tutti i vermi hanno iniziato motivi locomotori non liquidi, avviare il cronometro del dosaggio. <ol><li> Ottimamente, rimuovere la soluzione M9 entro un min. Il parametro essenziale è l&#39;identificazione della locomozione sinusoidale. I worms si allontanano in modo diverso, ad esempio , se non liquido, piuttosto che sinusoidale. Avviare l&#39;orologio di stop di analisi una volta l&#39;organo sperimentaleGli ismi smettono di schiacciare. </li></ol></li><li> Controllare le lastre di dosaggio ogni 30 min. <ol><li> Per le piastre di analisi con patch batteriche, positivamente punteggio gli organismi se raggiungono la patch alimentare per un periodo di 4 h. Per le piastre di controllo negativo, organizzano positivamente gli organismi se hanno attraversato la barriera. </li></ol></li></ol>

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	<li>White, J. G., Southgate, E., Thomson, J. N., Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+structure+of+the+nervous+system+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans.">The structure of the nervous system of the nematode Caenorhabditis elegans.</a> Philos. Trans. R. Soc. Lond. B. Biol. Sci. 314 (1165), 1-340 (1986).</li><li>Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemosensation+in+C.+elegans+(October+25,+2006).">Chemosensation in C. elegans (October 25, 2006).</a> The C. elegans Research Community, WormBook. , (2006).</li><li>Bargmann, C. I., Hartwieg, E., Horvitz, H. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Odorant-selective+genes+and+neurons+mediate+olfaction+in+C.+elegans.">Odorant-selective genes and neurons mediate olfaction in C. elegans.</a> Cell. 74 (3), 515-527 (1993).</li><li>Ward, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Chemotaxis+by+the+nematode+Caenorhabditis+elegans:+identification+of+attractants+and+analysis+of+the+response+by+use+of+mutants.">Chemotaxis by the nematode Caenorhabditis elegans: identification of attractants and analysis of the response by use of mutants.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 70 (3), 817-821 (1973).</li><li>Ramot, D., MacInnis, B. L., Goodman, M. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bidirectional+temperature-sensing+by+a+single+thermosensory+neuron+in+C.+elegans.">Bidirectional temperature-sensing by a single thermosensory neuron in C. elegans.</a> Nat. Neurosci. 11 (8), 908-915 (2008).</li><li>Russell, J., Vidal-Gadea, A. G., Makay, A., Lanam, C., Pierce-Shimomura, J. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Humidity+sensation+requires+both+mechanosensory+and+thermosensory+pathways+in+Caenorhabditis+elegans.">Humidity sensation requires both mechanosensory and thermosensory pathways in Caenorhabditis elegans.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. 111 (22), 8269-8274 (2014).</li><li>van Campen, J. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+modulation+disorders+in+childhood+epilepsy.">Sensory modulation disorders in childhood epilepsy.</a> J. Neurodev. Disord. 7 (34), (2015).</li><li>Festa, E. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neocortical+disconnectivity+disrupts+sensory+integration+in+Alzheimer's+disease.">Neocortical disconnectivity disrupts sensory integration in Alzheimer's disease.</a> Neuropsych. 19 (6), 728-738 (2005).</li><li>Boecker, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensory+processing+in+Parkinson's+and+Huntington's+disease:+investigations+with+3D+H(2)(15)O-PET.">Sensory processing in Parkinson's and Huntington's disease: investigations with 3D H(2)(15)O-PET.</a> Brain. 122 (9), 1651-1665 (1999).</li><li>Markaki, M., Tavernarakis, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Modeling+human+disease+in+Caenorhabditis+elegans.">Modeling human disease in Caenorhabditis elegans.</a> Biotechnol. J. 5 (12), 1261-1276 (2010).</li><li>O'Reilly, L. P., Luke, C. J., Perlmutter, D. H., Silverman, G. A., Pak, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=C.+elegans+in+high-throughput+drug+discovery.">C. elegans in high-throughput drug discovery.</a> Adv. Drug Deliv. Rev. , 247-253 (2014).</li><li>Thompson, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+million+mutation+project:+a+new+approach+to+genetics+in+Caenorhabditis+elegans.">The million mutation project: a new approach to genetics in Caenorhabditis elegans.</a> Genome Res. 23 (10), 1749-1762 (2013).</li><li>Chao, M. Y., Komatsu, H., Fukuto, H. S., Dionne, H. M., Hart, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+status+and+serotonin+rapidly+and+reversibly+modulate+a+Caenorhabditis+elegans+chemosensory+circuit.">Feeding status and serotonin rapidly and reversibly modulate a Caenorhabditis elegans chemosensory circuit.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 101 (43), 15512-15517 (2004).</li><li>Maricq, A. V., Peckol, E., Driscoll, M., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanosensory+signaling+in+C.+elegans+mediated+by+the+GLR-1+glutamate+receptor.">Mechanosensory signaling in C. elegans mediated by the GLR-1 glutamate receptor.</a> Nat. 378 (6552), 78-81 (1995).</li><li>Chalasani, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissecting+a+circuit+for+olfactory+behaviour+in+Caenorhabditis+elegans.">Dissecting a circuit for olfactory behaviour in Caenorhabditis elegans.</a> Nat. 450 (7166), 63-70 (2007).</li><li>Hilliard, M. A., Bargmann, C. I., Bazzicalupo, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=C.+elegans+responds+to+chemical+repellents+by+integrating+sensory+inputs+from+the+head+and+the+tail.">C. elegans responds to chemical repellents by integrating sensory inputs from the head and the tail.</a> Curr. Biol. 12 (9), 730-734 (2002).</li><li>Hart, A. C., Kass, J., Shapiro, J. E., Kaplan, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+signaling+pathways+mediate+touch+and+osmosensory+responses+in+a+polymodal+sensory+neuron.">Distinct signaling pathways mediate touch and osmosensory responses in a polymodal sensory neuron.</a> J. Neurosci. 19 (6), 1952-1958 (1999).</li><li>Ishihara, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HEN-1,+a+secretory+protein+with+an+LDL+receptor+motif,+regulates+sensory+integration+and+learning+in+Caenorhabditis+elegans.">HEN-1, a secretory protein with an LDL receptor motif, regulates sensory integration and learning in Caenorhabditis elegans.</a> Cell. 109 (5), 639-649 (2002).</li><li>Saeki, S., Yamamoto, M., Iino, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Plasticity+of+chemotaxis+revealed+by+paired+presentation+of+a+chemoattractant+and+starvation+in+the+nematode+Caenorhabditis+elegans.">Plasticity of chemotaxis revealed by paired presentation of a chemoattractant and starvation in the nematode Caenorhabditis elegans.</a> J. Exp. Biol. 204 (10), 1757-1764 (2001).</li><li>Chao, M. Y., Komatsu, H., Fukuto, H. S., Dionne, H. M., Hart, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Feeding+status+and+serotonin+rapidly+and+reversibly+modulate+a+Caenorhabditis+elegans+chemosensory+circuit.">Feeding status and serotonin rapidly and reversibly modulate a Caenorhabditis elegans chemosensory circuit.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 101 (43), 15512-15517 (2004).</li><li>Campbell, J. C., Polan-Couillard, L. F., Chin-Sang, I. D., Bendena, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=NPR-9,+a+Galanin-Like+G-Protein+Coupled+Receptor,+and+GLR-1+Regulate+Interneuronal+Circuitry+Underlying+Multisensory+Integration+of+Environmental+Cues+in+Caenorhabdities+elegans.">NPR-9, a Galanin-Like G-Protein Coupled Receptor, and GLR-1 Regulate Interneuronal Circuitry Underlying Multisensory Integration of Environmental Cues in Caenorhabdities elegans.</a> PLoS Genet. 12 (5), (2016).</li><li>Harris, G. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Three+distinct+amine+receptors+operating+at+different+levels+within+the+locomotory+circuit+are+each+essential+for+the+serotonergic+modulation+of+chemosensation+in+Caenorhabditis+elegans.">Three distinct amine receptors operating at different levels within the locomotory circuit are each essential for the serotonergic modulation of chemosensation in Caenorhabditis elegans.</a> J. Neurosci. 29 (5), 1446-1456 (2009).</li><li>Harris, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissecting+the+serotonergic+food+signal+stimulating+sensory-mediated+aversive+behavior+in+C.+elegans.">Dissecting the serotonergic food signal stimulating sensory-mediated aversive behavior in C. elegans.</a> PLoS One. 6 (7), (2011).</li><li>Mitchell, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+differential+role+for+neuropeptides+in+acute+and+chronic+adaptive+responses+to+alcohol:+behavioural+and+genetic+analysis+in+Caenorhabditis+elegans.">A differential role for neuropeptides in acute and chronic adaptive responses to alcohol: behavioural and genetic analysis in Caenorhabditis elegans.</a> PLoS One. 5 (5), (2010).</li><li>Colbert, H. A., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Environmental+signals+modulate+olfactory+acuity,+discrimination,+and+memory+in+Caenorhabditis+elegans.">Environmental signals modulate olfactory acuity, discrimination, and memory in Caenorhabditis elegans.</a> Learn Mem. 4 (2), 179-191 (1997).</li><li>Brenner, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+genetics+of+Caenorhabditis+elegans.">The genetics of Caenorhabditis elegans.</a> Genet. 77 (1), 71-71 (1974).</li><li>Hart, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Behavior+(July+3,+2006).">Behavior (July 3, 2006).</a> The C. elegans Research Community, WormBook. , (2006).</li><li>Sambongi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sensing+of+cadmium+and+copper+ions+by+externally+exposed+ADL,+ASE,+ASH+neurons+elicits+avoidance+response+in+Caenorhabditis+elegans.">Sensing of cadmium and copper ions by externally exposed ADL, ASE, ASH neurons elicits avoidance response in Caenorhabditis elegans.</a> NeuroReport. 10 (4), 753-757 (1999).</li><li>Gray, J. M., Hill, J. J., Bargmann, C. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+circuit+for+navigation+in+Caenorhabditis+elegans.">A circuit for navigation in Caenorhabditis elegans.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 102 (9), 3184-3191 (2004).</li><li>Rechavi, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Starvation-Induced+Transgenerational+Inheritance+of+Small+RNAs+in+C.+elegans.">Starvation-Induced Transgenerational Inheritance of Small RNAs in C. elegans.</a> Cell. 158 (2), 277-287 (2014).</li><li>Gloria-Soria, A., Azevedo, R. B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=npr-1+Regulates+Foraging+and+Dispersal+Strategies+in+Caenorhabditis+elegans.">npr-1 Regulates Foraging and Dispersal Strategies in Caenorhabditis elegans.</a> Cell. 18 (21), 1694-1699 (2008).</li><li>Beron, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+burrowing+behavior+of+the+nematode+Caenorhabditis+elegans:+A+new+assay+for+the+study+of+neuromuscular+disorders.">The burrowing behavior of the nematode Caenorhabditis elegans: A new assay for the study of neuromuscular disorders.</a> Genes Brain Behav. 14 (4), 357-368 (2015).</li><li>Wang, S. J., Wang, Z. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Track-A-Worm,+An+Open-Source+System+for+Quantitative+Assessment+of+C.+elegans+Locomotory+and+Bending+Behavior.">Track-A-Worm, An Open-Source System for Quantitative Assessment of C. elegans Locomotory and Bending Behavior.</a> PLoS One. 8 (7), (2013).</li></ol>

Non abbiamo niente da divulgare.

Questo disegno del dosaggio modifica il test di corsa alimentare 24 per includere una soluzione di rame per creare una barriera media lineare avversa e intorno al bordo della piastra per evitare una perdita di nematodi. Gli organismi sono testati per la loro capacità di attraversare la barriera avversaria e raggiungere una patch di cibo per un periodo di 4 h. Nel contesto di npr-9 (GF) abbiamo utilizzato questo test per valutare come le condizioni di fame potrebbero influenzare le rispo...

Caenorhabditis elegans è stato usato come modello per lo studio della neurobiologia da decenni a causa della relativa facilità nell&#39;analisi della circuiteria di un sistema nervoso composto da soli 302 neuroni 1 . Fintanto che l&#39;organismo è affidato a rispondere alle indicazioni ambientali, gran parte del sistema nervoso è dedicato a regolare l&#39;integrazione dei segnali ambientali 2 . Nonostante la semplicità del suo sistema nervoso, C. elegans può rilevare e rispondere a diversi segnali ambientali, compresi repellenti 3 , attrattivi 4 , temperatura 5 e persino umidità 6 . Un fallimento per integrare correttamente i segnali ambientali è stato collegato a una serie di disturbi del comportamento e delle condizioni neurodegenerative in sistemi modello di mammiferi 7- 9. Con una gamma di modelli di malattie neurali disponibili<html> 10 in C. elegans e lo sviluppo di schermi farmaceutici nematodi 11 , questo organismo si è rivelato un utile sistema per lo studio della neurobiologia. Dato la disponibilità di un mappato connettorio 1 e mutazioni a quasi tutti i genomi del genoma nematode 12 , la nostra comprensione del sistema nervoso nematode, e per estensione la nostra, è parzialmente limitata dalla progettazione di test creativamente appropriati. Negli ultimi 40 anni sono stati sviluppati diversi test di chemotaxis per valutare la reattività del nematode a diversi stimoli avversi 3 , 4 , 13 , 14 , 15 . La sperimentazione iniziale ha comportato l&#39;introduzione di uno stimolo ambientale acuto, mentre un singolo worm ha percorso un piatto di agar= &quot;Xref&quot;&gt; 3 , 14 , 16 . Sono state registrate modifiche immediate alle risposte locomotorie. Ad esempio, l&#39;odorante volatile dell&#39;ottanolo può essere applicato a un capello e si è spostato di fronte a un naso di nematode per stimolare l&#39;inizio della locomozione all&#39;indietro nei vermi di tipo selvatico 17 . Sono stati inoltre sviluppati test più complessi per incorporare più variabili come mezzo per valutare la scelta comportamentale 18 . Una variante di questo dosaggio comporta l&#39;impiego di una soluzione di rame per creare una barriera avversaria della linea mediana 4 . Un attraente, vale a dire diacetilico, è stato posto su un lato della barriera chimica con vermi trasferiti lontani dalla fonte di diacetile. I vermi difettosi per le risposte aversive di rame immediatamente attraversarono la barriera per raggiungere il diacetil, mentre i vermi di tipo selvaggio furono inizialmente respinti dalla barriera. Le risposte sono state rilevate quando i vermi hanno avvicinato la barriera al rameSenza osservazioni a lungo termine. Quando i vermi vengono valutati dopo essere stati sottoposti a fame, la loro sensibilità agli stimoli ambientali diminuisce 19 . Quando l&#39;ottanolo chimico avversivo viene distrutto davanti al naso nematode, gli organismi di tipo selvatico stimolano il movimento all&#39;indietro entro 3 - 5 s quando sono al cibo. Dopo che questi organismi sono stati rimossi dal cibo per 10 minuti, presentano una risposta ritardata di 8-10 s 20 . Così, con una maggiore fame, i nematodi mostrano una diminuita risposta avversa a segnali ambientali nocivi, poiché la ricerca di cibo diventa più essenziale per la sopravvivenza. Viceversa, i nematodi che il recettore neuropeptidico 9 ( esim-9) eccessivamente esprimono, non rispondono all&#39;ottanolo in o fuori dal cibo e presentano un&#39;incapacità di rispondere ad un certo numero di stimoli avversi 21 . Questi organisms ego-9 (GF) non modulano anche la loro frequenza di inversione in presenza di cibo, ma possonoReverse in risposta a stimoli di tocco duro che indicano che sono in grado di una locomozione indietro 21 . Abbiamo anche valutato i Mutanti z1-9 (LF) dato che presentano una frequenza di inversione anormalmente ridotta al di fuori del cibo, ma possono modulare il loro comportamento in presenza di cibo 21 . Accoppiare lo stato nutrizionale del verme con l&#39;introduzione di stimoli esterni acuti ha contribuito a spiegare i meccanismi attraverso i quali un percorso alimentare può ampiamente modulare i percorsi sensoriali di segnalazione 22 , 23 . La presenza di cibo nell&#39;ambiente nematodi è stata utilizzata anche per valutare le risposte di prelievo di etanolo 24 . In questo esperimento, i vermi sono stati incubati in varie concentrazioni di etanolo e poi sono state poste su un piatto di agar con una patch di alimento conosciuto come un &quot;assaggio della corsa alimentare&quot;. La patch alimentare è stata posta su un bordo della piastra mentre i nematodi wEretta lontano dalla fonte alimentare. Il ritiro di etanolo è stato valutato misurando la durata del tempo necessario per i worm per raggiungere la zona di cibo. Questo test di avversione di rame basata sulla nutrizione si basa sul test sulla corsa alimentare per integrare ulteriori variabili ambientali, vale a dire cibo e rame, valutando nel contempo i cambiamenti comportamentali. Questo è un adattamento di un protocollo di uso comune in tutta la comunità C. elegans 4 . Questo protocollo è stato utilizzato per valutare le risposte avversarie e la rilevazione del cibo durante un periodo di quattro ore 21 . Poiché i vermi mostrano comportamenti di fame dopo 30 minuti di deprivazione alimentare 25 , siamo anche in grado di valutare come le modifiche allo stato nutrizionale possano influenzare le risposte ambientali. Le condizioni di questo dosaggio misurano come gli organismi sperimentali cambino la risposta a stimoli avversi nel tempo, quindi valuta i cambiamenti comportamentaliGli organismi avanzano verso uno stato affamato (e continue misurazioni di fame di lunga durata). Dal momento che gli animali da zo-9 (GF) non alterano il loro comportamento in risposta a cibo oa molti segnali avversi, abbiamo cercato di identificare se questi disfunzioni comportamentali continuerebbero a persistere nel contesto della fame. In definitiva, questo progetto di dosaggio è stato formulato per valutare in modo specifico i mutanti z1-9 (GF), ma può essere ulteriormente adattato anche a caratterizzare nuovi ceppi.

<table><tbody><tr><td>M9 Solution [3 g KH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;PO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, 6 g Na&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;HPO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, 5 g NaCl, 1 ml 1 M MgSO&lt;sub&gt;4&lt;/sub&gt;, H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O to 1 litre. Autoclave to sterilize before use.]</td><td></td><td></td><td>Produced in lab</td></tr><tr><td>Cupric Sulfate</td><td>Sigma</td><td>C-1297</td><td>Use water to appropriately suspend to a concentration of 0.5M</td></tr></tbody></table>

a caenorhabditis elegans nutritional-status based copper aversion assay

Per garantire la sopravvivenza, gli organismi devono essere in grado di evitare habitat sfavorevoli pur garantendo una fonte alimentare coerente. Caenorhabditis elegans altera i loro modelli locomotori sulla rilevazione di diversi stimoli ambientali e può modulare la loro suite di risposte comportamentali in risposta alle condizioni di fame. I nematodi presentano tipicamente una diminuzione della risposta avversa quando vengono rimossi da una fonte alimentare per oltre 30 minuti. L&#39;osservazione dei cambiamenti comportamentali in risposta a un cambiamento dello stato nutrizionale può fornire una visione dei meccanismi che regolano la transizione da uno stato ben nutrito allo stato affamato. Abbiamo sviluppato un saggio che misura una capacità del nematode di attraversare una barriera avversaria ( cioè rame) e quindi raggiungere una fonte di cibo per un lungo periodo di tempo. Questo protocollo si basa sul lavoro precedente integrando più variabili in modo tale da consentire una continua raccolta dei dati quando gli organismi si spostano verso unN condizioni sempre più affamate. Inoltre, questo esame consente una maggiore dimensione del campione in modo che le popolazioni più grandi di nematodi possano essere valutate simultaneamente. Gli organismi difettosi per la capacità di rilevare o reagire al rame attraversano immediatamente la barriera chimica, mentre i nematodi di tipo selvatico vengono inizialmente respinti. Poiché i vermi di tipo selvaggio sono sempre più affamati, iniziano a attraversare la barriera e raggiungere la fonte alimentare. Abbiamo progettato questo test per valutare un mutante incapace di rispondere a varie indicazioni ambientali, tra cui la sensazione di cibo o la rilevazione di sostanze chimiche avverse. Quando vengono valutati tramite questo protocollo, gli organismi difettosi hanno subito attraversato la barriera, ma sono stati anche incapaci di rilevare una fonte di cibo. Quindi, questi mutanti attraversano ripetutamente la barriera chimica nonostante temporaneamente raggiungono una fonte di cibo. Questo test può testare in modo diretto le popolazioni di vermi per valutare i possibili difetti di percorso correlati all&#39;avversione e alla fame.

Utilizziamo il tipo selvatico (N2), npr-9 (tm1652) e un ceppo di sovraespressione npr-9 , cioè npr-9 (GF) (IC836 - npr-9 :: npr-9; sur-5 :: gfp; -1 :: rfp), per valutare le risposte alla fame e all&#39;avversione di rame. Gli organismi di tipo selvatico sono in grado di rilevare e rispondere alla barriera di rame avversa, mentre i mutanti z-9 (GF) non iniziano una risposta avversaria al rame nel corso del test di 4 ore <sup class="xr...

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A Caenorhabditis elegans Nutritional-status Based Copper Aversion Assay

UN<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; Analisi di Aversione di rame basata sullo stato nutrizionale

Qui presentiamo un esame specifico di Caenorhabditis elegans progettato per valutare i cambiamenti nel comportamento avversione di rame e la capacità di individuare una fonte di cibo comune, in quanto l&#39;organismo progredisce da uno stato alimentare ben nutrito e affamato.

To ensure survival, organisms must be capable of avoiding unfavorable habitats while ensuring a consistent food source. Caenorhabditis elegans alter their ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

A Caenorhabditis elegans Nutritional-status Based Copper Aversion Assay

6.4K Views.  Queen's University.  Qui presentiamo un esame specifico di Caenorhabditis elegans progettato per valutare i cambiamenti nel comportamento avversione di rame e la capacità di individuare una fonte di cibo comune, in quanto l'organismo progredisce da uno stato alimentare ben nutrito e affamato. 

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Automated Analysis of a Nematode Population-based Chemosensory Preference Assay

The nematode, Caenorhabditis elegans' compact nervous system of only 302 neurons underlies a diverse repertoire of behaviors. To facilitate the dissection of the neural circuits underlying these behaviors, the development of robust and reproducible behavioral assays is necessary. Previous C. elegans behavioral studies have used variations of a "drop test", a "chemotaxis assay", and a "retention assay" to investigate the response of C. elegans to soluble compounds. The method described in this article seeks to combine the complementary strengths of the three aforementioned assays. Briefly, a small circle in the middle of each assay plate is divided into four quadrants with the control and experimental solutions alternately placed. After the addition of the worms, the assay plates are loaded into a behavior chamber where microscope cameras record the worms' encounters with the treated regions. Automated video analysis is then performed and a preference index (PI) value for each video is generated. The video acquisition and automated analysis features of this method minimizes the experimenter's involvement and any associated errors. Furthermore, minute amounts of the experimental compound are used per assay and the behavior chamber's multi-camera setup increases experimental throughput. This method is particularly useful for conducting behavioral screens of genetic mutants and novel chemical compounds. However, this method is not appropriate for studying stimulus gradient navigation due to the close proximity of the control and experimental solution regions. It should also not be used when only a small population of worms is available. While suitable for assaying responses only to soluble compounds in its current form, this method can be easily modified to accommodate multimodal sensory interaction and optogenetic studies. This method can also be adapted to assay the chemosensory responses of other nematode species.

We present a behavior recording setup and protocol that enables automated analysis of the nematode, Caenorhabditis elegans' preference for soluble compounds in a population-based assay. This article describes the construction of a behavior chamber, the behavioral assay protocol, and video analysis software usage.

Analisi automatizzata di un esame preferenziale di Chemosensory basato sulla popolazione di Nematode

The nematode, Caenorhabditis elegans' compact nervous system of only 302 neurons underlies a diverse repertoire of behaviors. To facilitate the dissection ...

Ricerca

Comportamento

A High-throughput Assay for the Prediction of Chemical Toxicity by Automated Phenotypic Profiling of Caenorhabditis elegans

Applying toxicity testing of chemicals in higher order organisms, such as mice or rats, is time-consuming and expensive, due to their long lifespan and maintenance issues. On the contrary, the nematode Caenorhabditis elegans (C. elegans) has advantages to make it an ideal choice for toxicity testing: a short lifespan, easy cultivation, and efficient reproduction. Here, we describe a protocol for the automatic phenotypic profiling of C. elegans in a 384-well plate. The nematode worms are cultured in a 384-well plate with liquid medium and chemical treatment, and videos are taken of each well to quantify the chemical influence on 33 worm features. Experimental results demonstrate that the quantified phenotype features can classify and predict the acute toxicity for different chemical compounds and establish a priority list for further traditional chemical toxicity assessment tests in a rodent model.

A High-throughput Assay for the Prediction of Chemical Toxicity by Automated Phenotypic Profiling of Caenorhabditis elegans

A quantitative method has been developed to identify and predict the acute toxicity of chemicals by automatically analyzing the phenotypic profiling of Caenorhabditis elegans. This protocol describes how to treat worms with chemicals in a 384-well plate, capture videos, and quantify toxicological related phenotypes.

Un saggio di High-throughput per la previsione di tossicità chimica di Automated fenotipica profilatura di Caenorhabditis elegans

Applying toxicity testing of chemicals in higher order organisms, such as mice or rats, is time-consuming and expensive, due to their long lifespan and ...

Ambiente

Dosaggio ad alto rendimento per misurare l'assunzione di cibo e la durata della vita di Caenorhabditis elegans

Quantifying Food Intake in Caenorhabditis elegans by Measuring Bacterial Clearance

Feeding is an essential biological process for an organism&#39;s growth, reproduction, and survival. This assay aims to measure the food intake of Caenorhabditis elegans&#160;(C. elegans), an important parameter when studying the genetics of aging or metabolism. In most species, feeding is determined by measuring the difference between the amount of food provided and the amount left after a given time interval. The method presented here uses the same strategy to determine the feeding of C. elegans. It measures the amount of bacteria, the food source of C. elegans, cleared within 72 h. This method uses 96-well microtiter plates and has allowed the screening of hundreds of drugs for their ability to modulate food intake at a speed and depth not possible in other animal models. The strength of this assay is that it allows to measure feeding and lifespan simultaneously and directly measures the disappearance of food and, thus, is based on the same principles used for other organisms, facilitating species-to-species comparison.

Autore in primo piano: Esplorare la relazione tra lipotossicità e HFpEF 

This protocol describes an assay to quantify Caenorhabditis elegans feeding rate based on measuring the clearance of bacteria in liquid culture.

Quantificazione dell'assunzione di cibo in Caenorhabditis elegans misurando la clearance batterica

Feeding is an essential biological process for an organism&#39;s growth, reproduction, and survival. This assay aims to measure the food intake of ...

An Assay for Measuring the Effects of Ethanol on the Locomotion Speed of Caenorhabditis elegans

Alcohol use disorders are a significant public health concern, for which there are few effective treatment strategies. One difficulty that has delayed the development of more effective treatments is the relative lack of understanding of the molecular underpinnings of the effects of ethanol on behavior. The nematode, Caenorhabditis elegans (C.&#160;elegans), provides a useful model in which to generate and test hypotheses about the molecular effects of ethanol. Here, we describe an assay that has been developed and used to examine the roles of particular genes and environmental factors in behavioral responses to ethanol, in which locomotion is the behavioral output. Ethanol dose-dependently causes an acute depression of crawling on an agar surface. The effects are dynamic; animals exposed to a high concentration demonstrate an initial strong depression of crawling, referred to here as initial sensitivity, and then partially recover locomotion speed despite the continued presence of the drug. This ethanol-induced behavioral plasticity is referred to here as the development of acute functional tolerance. This assay has been used to demonstrate that these two phenotypes are distinct and genetically separable. The straightforward locomotion assay described here is suitable for examining the effects of both genetic and environmental manipulations on these acute behavioral responses to ethanol in C.&#160;elegans.

An Assay for Measuring the Effects of Ethanol on the Locomotion Speed of Caenorhabditis elegans

C. elegans is a useful model for studying the effects of ethanol on behavior. We present a behavioral assay that quantifies the effects of ethanol on the locomotion speed of crawling worms; both initial sensitivity and the development of acute functional tolerance to ethanol can be measured with this assay.

Un test per misurare gli effetti di etanolo sulla velocità di Locomotion<em&gt; Caenorhabditis elegans</em

Alcohol use disorders are a significant public health concern, for which there are few effective treatment strategies. One difficulty that has delayed the ...

Neuroscienze

Using Caenorhabditis elegans as a Model System to Study Protein Homeostasis in a Multicellular Organism

The folding and assembly of proteins is essential for protein function, the long-term health of the cell, and longevity of the organism. Historically, the function and regulation of protein folding was studied in vitro, in isolated tissue culture cells and in unicellular organisms. Recent studies have uncovered links between protein homeostasis (proteostasis), metabolism, development, aging, and temperature-sensing. These findings have led to the development of new tools for monitoring protein folding in the model metazoan organism Caenorhabditis elegans. In our laboratory, we combine behavioral assays, imaging and biochemical approaches using temperature-sensitive or naturally occurring metastable proteins as sensors of the folding environment to monitor protein misfolding. Behavioral assays that are associated with the misfolding of a specific protein provide a simple and powerful readout for protein folding, allowing for the fast screening of genes and conditions that modulate folding. Likewise, such misfolding can be associated with protein mislocalization in the cell. Monitoring protein localization can, therefore, highlight changes in cellular folding capacity occurring in different tissues, at various stages of development and in the face of changing conditions. Finally, using biochemical tools ex vivo, we can directly monitor protein stability and conformation. Thus, by combining behavioral assays, imaging and biochemical techniques, we are able to monitor protein misfolding at the resolution of the organism, the cell, and the protein, respectively.

Using Caenorhabditis elegans as a Model System to Study Protein Homeostasis in a Multicellular Organism

To study the relationship between protein homeostasis, stress and aging, we monitored changes in protein folding by following protein dysfunction, protein localization in the cell and protein stability at the organismal, cellular and protein levels, using the genetically tractable metazoan Caenorhabditis elegans as a model system.

The folding and assembly of proteins is essential for protein function, the long-term health of the cell, and longevity of the organism. Historically, the ...

Biologia

Caenorhabditis elegans as a Model System for Discovering Bioactive Compounds Against Polyglutamine-Mediated Neurotoxicity

Age-related misfolding and aggregation of pathogenic proteins are responsible for several neurodegenerative diseases. For example, Huntington&#39;s disease (HD) is principally driven by a CAG nucleotide repeat that encodes an expanded glutamine tract in huntingtin protein. Thus, the inhibition of polyglutamine (polyQ) aggregation and, in particular, aggregation-associated neurotoxicity is a useful strategy for the prevention of HD and other polyQ-associated conditions. This paper introduces generalized experimental protocols to assess the neuroprotective capacity of test compounds against HD using established polyQ transgenic Caenorhabditis elegans models. The AM141 strain is chosen for the polyQ aggregation assay as an age-associated phenotype of discrete fluorescent aggregates can be easily observed in its body wall at the adult stage due to muscle-specific expression of polyQ::YFP fusion proteins. In contrast, the HA759 model with strong expression of polyQ-expanded tracts in ASH neurons is used to examine neuronal death and chemoavoidance behavior. To comprehensively evaluate the neuroprotective capacity of target compounds, the above test results are ultimately presented as a radar chart with profiling of multiple phenotypes in a manner of direct comparison and direct viewing.

Caenorhabditis elegans as a Model System for Discovering Bioactive Compounds Against Polyglutamine-Mediated Neurotoxicity

Here, we present a protocol to assess the neuroprotective activities of test compounds in Caenorhabditis elegans, including polyglutamine aggregation, neuronal death, and chemoavoidance behavior, as well as an exemplary integration of multiple phenotypes.

Caenorhabditis elegans come sistema modello per la scoperta di composti bioattivi contro la neurotossicità mediata dalla poliglutammina

Age-related misfolding and aggregation of pathogenic proteins are responsible for several neurodegenerative diseases. For example, Huntington&#39;s ...

Measuring Oxidative Stress Resistance of Caenorhabditis elegans in 96-well Microtiter Plates

Oxidative stress, which is the result of an imbalance between production and detoxification of reactive oxygen species, is a major contributor to chronic human disorders, including cardiovascular and neurodegenerative diseases, diabetes, aging, and cancer. Therefore, it is important to study oxidative stress not only in cell systems but also using whole organisms. C. elegans is an attractive model organism to study the genetics of oxidative stress signal transduction pathways, which are highly evolutionarily conserved.
Here, we provide a protocol to measure oxidative stress resistance in C. elegans in liquid. Briefly, ROS-inducing reagents such as paraquat (PQ) and H2O2 are dissolved in M9 buffer, and solutions are aliquoted in the wells of a 96 well microtiter plate. Synchronized L4/young adult C. elegans animals are transferred to the wells (5-8 animals/well) and survival is measured every hour until most worms are dead. When performing an oxidative stress resistance assay using a low concentration of stressors in plates, aging might influence the behavior of animals upon oxidative stress, which could lead to an incorrect interpretation of the data. However, in the assay described herein, this problem is unlikely to occur since only L4/young adult animals are being used. Moreover, this protocol is inexpensive and results are obtained in one day, which renders this technique attractive for genetic screens. Overall, this will help to understand oxidative stress signal transduction pathways, which could be translated into better characterization of oxidative stress-associated human disorders.

Measuring Oxidative Stress Resistance of Caenorhabditis elegans in 96-well Microtiter Plates

C. elegans is an attractive model organism to study signal transduction pathways involved in oxidative stress resistance. Here we provide a protocol to measure oxidative stress resistance of C. elegans animals in liquid phase, using several oxidizing agents in 96 well plates.

Misura Stress ossidativo Resistenza<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; In 96 pozzetti micropiastre

Oxidative stress, which is the result of an imbalance between production and detoxification of reactive oxygen species, is a major contributor to chronic ...

Long-Term Culture of Individual Caenorhabditis elegans on Solid Media for Longitudinal Fluorescence Monitoring and Aversive Interventions

Caenorhabditis elegans are widely used to study aging biology. The standard practice in C. elegans aging studies is to culture groups of worms on solid nematode growth media (NGM), allowing the efficient collection of population-level data for survival and other physiological phenotypes, and periodic sampling of subpopulations for fluorescent biomarker quantification. Limitations to this approach are the inability to (1) follow individual worms over time to develop age trajectories for phenotypes of interest and (2) monitor fluorescent biomarkers directly in the context of the culture environment. Alternative culture approaches use liquid culture or microfluidics to monitor individual animals over time, in some cases including fluorescence quantification, with the tradeoff that the culture environment is contextually distinct from solid NGM. The WorMotel is a previously described microfabricated multi-well device for culturing isolated worms on solid NGM. Each worm is maintained in a well containing solid NGM surrounded by a moat filled with copper sulfate, a contact repellent for C. elegans, allowing longitudinal monitoring of individual animals. We find copper sulfate insufficient to prevent worms from fleeing when subjected to aversive interventions common in aging research, including dietary restriction, pathogenic bacteria, and chemical agents that induce cellular stress. The multi-well devices are also molded from polydimethylsiloxane, which produces high background artifacts in fluorescence imaging. This protocol describes a new approach for culturing isolated roundworms on solid NGM using commercially available polystyrene microtrays, originally designed for human leukocyte antigen (HLA) typing, allowing the measurement of survival, physiological phenotypes, and fluorescence across the lifespan. A palmitic acid barrier prevents worms from fleeing, even in the presence of aversive conditions. Each plate can culture up to 96 animals and easily adapts to a variety of conditions, including dietary restriction, RNAi, and chemical additives, and is compatible with automated systems for collecting lifespan and activity data.

Long-Term Culture of Individual Caenorhabditis elegans on Solid Media for Longitudinal Fluorescence Monitoring and Aversive Interventions

Here, we present a protocol to culture isolated individual nematodes on solid media for lifelong physiological parameter tracking and fluorescence quantification. This culture system includes a palmitic acid barrier around single-worm wells to prevent animals from fleeing, allowing the use of aversive interventions, including pathogenic bacteria and chemical stressors.

Coltura a lungo termine di singoli Caenorhabditis elegans su terreni solidi per il monitoraggio longitudinale della fluorescenza e interventi avversivi

Caenorhabditis elegans are widely used to study aging biology. The standard practice in C. elegans aging studies is to culture groups of worms on solid ...

UN

Riepilogo

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Capitoli in questo video

Analisi automatizzata di un esame preferenziale di Chemosensory basato sulla popolazione di Nematode

Un saggio di High-throughput per la previsione di tossicità chimica di Automated fenotipica profilatura di Caenorhabditis elegans

Quantificazione dell'assunzione di cibo in Caenorhabditis elegans misurando la clearance batterica

Quantificazione dell'assunzione di cibo in Caenorhabditis elegans misurando la clearance batterica

Quantificazione dell'assunzione di cibo in Caenorhabditis elegans misurando la clearance batterica

Un test per misurare gli effetti di etanolo sulla velocità di Locomotion

Using Caenorhabditis elegans as a Model System to Study Protein Homeostasis in a Multicellular Organism

Caenorhabditis elegans come sistema modello per la scoperta di composti bioattivi contro la neurotossicità mediata dalla poliglutammina

Misura Stress ossidativo Resistenza

Coltura a lungo termine di singoli Caenorhabditis elegans su terreni solidi per il monitoraggio longitudinale della fluorescenza e interventi avversivi