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Method Article
高品質の単離は、インタクトなRNAは、多くの実験室のプロトコルで必須の工程である。ここで、我々は全体のゼブラフィッシュの胚と遺伝子発現のマイクロアレイ解析を含む様々な実験手順で、後続のアプリケーションのためのcDNA合成からのRNA抽出を示しています。
多くの重要かつ複雑な実験手順は、高品質でインタクトなRNAの入力が必要です。劣化したサンプルや不純物の存在は、下流の実験的なアプリケーションでは悲惨な結果につながることができます。それは、優れたサンプルを確保するために多数の保護及び品質管理チェックと固体のテクニックを使用するために最も重要なこと、それゆえです。ここで、我々詳細商用RNA単離キットを用いてDNAと不純物の痕跡を除去するために市販の化学変性剤とそれに続くクリーンアップを使用して全体のゼブラフィッシュの胚からトータルRNAを分離するためのプロトコル。としてRNAは、直接RNA鋳型から合成されたcDNA産物を使用するほとんどのプロトコルはアッセイの遺伝子の発現は比較的不安定で、RNアーゼによる切断を容易に発生しやすくなります。我々は、詳細手順を市販のキットを使用して、より安定したcDNA産物にRNAに変換する。これらの手順を通して、サンプルは劣化や汚染がないことを保証するために数多くの品質管理チェックがあります。これらのプロトコルの最終製品は、マイクロアレイ解析、RT - PCRまたは長期保存に適しているcDNAである。
パート1:TRIzol試薬を用いてトータルRNAの抽出
RNAを扱うときには、RNaseのない環境で動作するように非常に重要です。このようなRNAの手順でのみ使用するために予約されたピペットを持つと手順を開始する前に除染装置試薬(例えば、RNアーゼアウェイ)で作業領域をスプレーのような単純な予防策は非常に有用です。
パート2:キアゲンRNeasyミニキットを使用してRNAクリーンアップ
キアゲン社RNeasyミニキット2は、他のメソッドから単離したRNAサンプルから汚染物質や不純物を除去するのに便利です。この手順では、β-メルカプトエタノール、エタノール、およびヌクレアーゼフリー水はキットに含まれるコンポーネントに加えて必要とされる。オプションのDNase処理は、この手順の実行中に推奨されます。
パート3:インビトロジェンのSuperScriptファーストストランドシステムを使用してcDNAを合成
RNAが分解につながるアーゼによる切断を容易に発生しやすくなります。その結果、多くの遺伝子発現のプロトコルは、直接RNAから合成され、より安定したcDNA産物を使用するために開発されている。ここでは詳細インビトロジェンのSuperScriptファーストストランド合成システム3を使用して第一鎖cDNAの合成を。それぞれのcDNA合成反応は、5μgのRNAを収容することができます。
パート4:cDNAの単離と降水量
代表的な結果
RNAのクリーンアップの後、高品質のトータルRNAの約15μgのは50ゼブラフィッシュの胚から期待できる。トータルRNAの品質、分光光度計、ゲル電気泳動、およびAgilent 2100バイオアナライザを評価するために使用することができます。光度計ND - 1000分光光度計は280nm(図1)の吸光度と比較して260nmの吸光度を評価するために使用することができます。 280分の260の比率は、汚染物質の存在を明らかにし、可能な限り劣化の証拠を与えることができます。 260 / 1.9から2.0までの280比率は許容範囲とみなされます。さらに、それは非常にRNAの変性ゲルはRNAの完全性を評価するために実行することをお勧めします。 RNA鎖は小さい鎖はゲルさらに下に移行して、そのサイズに基づいて分離します。非分解サンプルでは、2つの強力なバンドとの塗抹標本として表示されます。塗抹標本は、サイズの異なるmRNAの鎖と28Sと18SのrRNAのに対応するバンドの人口の結果である。 28Sのバンドは、18Sのバンド(図2)などの約二倍強にする必要があります。また、トータルRNAの完全性は、Agilent 2100バイオアナライザを用いて評価することができる。 28Sと18SのrRNAを表す2つの明確なピークは(図3)期待されています。 28Sのピークはそれぞれ、約2:1のピーク下の面積と18Sのピークよりも大きくする必要があります。二つの異なるピークが低下した試料では観察されません。劣化を示すRNAサンプルは、その後の実験的な手続きを経て実施されるべきではない。
分光光度分析は、cDNA産物の品質(図4)を評価するために使用することができます。 280分の260は、1.8前後となるはずです。トータルRNAの5μgの入力を有するcDNA反応が日常的に我々の研究室ではcDNA産物の1〜2μgのをもたらす。
図1。 RNAサンプルの光度計のスペクトル。RNAのクリーンアップの後、RNAの量と質は、光度計ND - 1000分光光度計を用いて評価することができる。高品質のトータルRNAの約15μgのは、日常的に1.9から2.0前後280分の260比で50ゼブラフィッシュ胚から得られたれる。
図2 RNAの変性ゲル。トータルRNAの分離の整合性を評価するために、RNAの変性ゲルを実行することができます。 28Sと18SのrRNAに対応する2つの明るいバンドとスミアが期待されている。 28Sのバンドは、18Sのバンドの約2倍強にする必要があります。
図3。バイオアナライザによるRNAサンプルのトレース。トータルRNAの分離の整合性を評価するために、サンプルも、Agilent 2100バイオアナライザで分析することができる。 28Sと18SのrRNAのに対応する2つのシャープなピークが、、目に見えるはずです。 28Sのピークはそれぞれ、約2:1のピーク下の面積と18Sのピークよりも大きくする必要があります。
図4。 cDNAサンプルの光度計のスペクトル。光度分析光度計ND - 1000とは、cDNA産物の量と質を評価するために使用することができます。 280分の260の比は、1.8前後となるはずです。トータルRNAの5 UGの入力を有するcDNA反応が日常的に我々の研究室のcDNA 1-2 UGをもたらす。
表1は、。部品cDNA合成のステップ2でRNA /プライマー混合物について追加する。
コンポーネント | ボリューム |
トータルRNA(最大5μgの) | 10μlの |
の10mM dNTPミックス | 1μL |
オリゴ(dT)12-18(0.5μg/μLの) | 1μL |
DEPC処理水 | μL のn |
合計ボリューム | 10μlの |
cDNA合成のステップ5の表2。反応混合物。記載されているボリュームは、反応毎にあります。反応の総数については、各成分の量を増やします。
コンポーネント | ボリューム |
10X RTバッファー | 2μlの |
25 mMのMgCl2を | 4μlの |
0.1 mMのDTT | 2μlの |
RNAseOUT | 1μL |
RNA分子の脆弱性は、このプロトコルを通じて忘れてはならない最も重要な考慮事項です。 RNaseフリーである滅菌装置は、常に研究室のRNaseフリーゾーンで使用する必要があります。 RNAのみの手続きに使用する実験室の一部を確保しておくと便利です。この領域は頻繁にアウェイなどRNaseなどRNアーゼ除去製品、を散布してください。 RNAサンプルは常に手袋を使用して処理し、劣化を防ぐため?...
The authors have nothing to disclose.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Glycogen (5 mg/ml) | Ambion | 9510 | |
NanoDrop ND-100 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | ND-1000 | |
Pellet Pestles with Microfuge Tube | VWR international | KT749520-0090 | |
Phase Lock Gel Light, 1.5 ml | Eppendorf | 2302800 | |
Phenol, Tris-saturated | Roche Group | 3117944001 | |
RNAse Away | VWR international | 17810-491 | |
RNAse-Free DNase Set | Qiagen | 79254 | |
RNEasy Mini Kit | Qiagen | 74104 | |
SuperScript® First-Strand Synthesis System for RT-PCR | Invitrogen | 11904-018 | |
TRIzol | Invitrogen | 15596-026 |
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