サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

マウス全層皮膚移植は同種免疫設定で拒絶反応を研究するために、十分に確立されたモデルです。 > C57BL / 6全層皮膚移植 - ここでは、BALB / cと実行に関与し、各ステップのチュートリアルを提供しています。

要約

マウスの全層皮膚移植は、同種免疫反応および移植片拒絶を研究するためのインビボモデル十分に確立されています。ヒトへのその限られた用途にもかかわらず、マウスでは皮膚移植が広く移植研究のために採用されています。手順は、学び、実行することが容易であり、それは繊細な顕微技術も広範囲の訓練を必要としません。また、このモデルにおける移植片拒絶は、非常に再現性の免疫反応で発生しやすい直接検査や触診によって監視されます。また、ドナーをマッチさせた、またはサードパーティの皮膚移植片を有する二次皮膚移植はドナー特異的寛容を評価するための代替と合併症のない方法として、より複雑な移植モデル上で実行することができます。合併症は低く、一般的に手順の後、麻酔の過剰摂取や呼吸困難に限定されています。移植の失敗は、他の一方で、GRの準備不足の結果として、一般的に発生します移植床における後方、不正確な位置決め、または包帯の不適切な配置。この記事では、我々は、マウスの全層皮膚移植のためのプロトコルを提示し、成功した手順のために必要な重要な手順を説明します。

概要

臓器移植は、末期の臓器不全を有する患者のための選択の治療法である、と結果は外科的手順および免疫抑制プロトコルの進歩と飛躍的に向上しています。しかし、長期的な免疫抑制は、重大な副作用に関連付けられている、と寛容を促進する新たな戦略の開発は、現代の移植研究の目標のままです。

多数の動物モデルが、移植片拒絶反応を予防するため、長期的な耐性1-3を促進するため接近同種移植片拒絶反応のメカニズムを研究するために、および免疫抑制を試験するために、移植における基礎研究のために開発されています。マウスモデルは、原因、診断と治療用抗体の排他的で広大な可用性と明確に定義された近交系およびトランスジェニック株と免疫学研究の主力となっています。皮膚移植は特別な顕微スキルや缶を必要としない簡単な手順であります簡単に術後監視されます。まとめると、マウスの皮膚移植は、移植片拒絶4,5中の抗原送達、細胞輸送、および組織破壊を含む同種免疫応答に関与する多くの側面を研究するための例外的なツールとなっています。

ここでは、マウスモデルを用いた全層皮膚移植のためのステップバイステップの手順を示し、我々は移植皮膚の生着の成功のために必要な重要な手順を説明します。

プロトコル

すべての手順は、国立衛生研究所の実験動物の管理と使用に関する指針(NIH)に従って行ったし、ジョンズ・ホプキンス大学動物実験委員会(JHUACUC)によって承認されました。具体的な手順は、承認されたACUCプロトコルMO13M292とMO13M370下で行いました。

1.ドナー皮膚の収穫

  1. イソフルラン( - マウスコーンを介して、2%、4%で誘導気化器、1でのメンテナンス)でドナーマウスを麻酔。麻酔深度を監視するために、つま先のピンチ引っ込め反射を使用してください。
  2. 電気かみそりを使用して、動物の背中を剃る、10%ポビドンヨード( 例えば 、ベタジン)でそれを消毒します。
  3. 疎性結合組織のレベルで鈍的切開して、滅菌はさみ、手袋、無菌技術、収穫ドナー首の後ろに腰から皮膚を使用しました。
  4. 収穫後に頸椎脱臼により動物を安楽死させます皮膚移植。
  5. 顕微鏡下で、微細な腱切除はさみを使用して、背中の皮膚からの結合組織、脂肪組織、および皮筋層を分離します。皮筋層は、皮膚のけいれんの動きに責任薄い透明筋肉です。
  6. 無菌の楽器の技術を用いて、15ミリメートル×15 mmの移植床に10ミリメートル×10ミリメートルのための背中の皮膚から15ミリメートル×15 mmの移植片を切り出します。
  7. 氷上のペトリ皿中の滅菌リン酸緩衝生理食塩水(PBS)に浸したガーゼに移植片を保管してください。
    注:8 - 10の移植片は、1つのドナーマウスから得ることができます。

2.受信者の皮膚移植

  1. イソフルラン( - マウスコーンを介して、2%、4%で誘導気化器、1でメンテナンス)とレシピエントマウスを麻酔。麻酔深度を監視するために、つま先のピンチ引っ込め反射を使用してください。
  2. 術後の疼痛緩和のためのブプレノルフィンの0.02ミリグラム/ kg体重を管理します。
  3. グラフトのWi動物の背中側を剃ります挿入され、10%ポビドンヨードで消毒することでしょう。
  4. はさみを使用して、皮膚の15ミリメートル×15ミリメートル四方に10ミリメートル×10ミリメートルを切りました。欠陥サイズは、グラフトより(10%)、わずかに大きくする必要があります。表面的に可能な限りカットします。皮筋層および血管を維持するために注意してください。皮筋層は、その移動性によって、根底にある筋膜およびそれに表面的な実行の血管と区別することができます。
  5. エッジに沿って折り目を避け、移植床に移植片を配置します。
  6. 四隅と各辺の中央に8縫合糸を配置します。各縫合糸のために、移植片を通過し、その後、周囲のレシピエントの皮膚下の移植床の皮筋層を介して針を渡します。
  7. 麻酔マスクを外し、動物が粘着包帯を適用する前に麻酔から部分的に回復してみましょう。
  8. グラフト折り重ねガーゼ絆創膏でレシピエントマウスをラップします。切断、2包帯を組み合わせることにより、包帯を作ります接着剤の1の部分と一緒に2吸収パッドを配置します。
  9. 包帯は、胸部の遠足と呼吸を制限しないことを確実にするためにリカバリ時に密接にマウスを監視します。呼吸数が減少または動物が浅く息をのむか、息を開始した場合に包帯を外します。

3.術後ケア

  1. 感染予防のための手術後のエンロフロキサシン5ミリグラム/キログラムを管理します。
  2. それは完全に麻酔から回復するまで電子レンジで加熱パッドの上にきれいなケージに移植したマウスを置きます。
  3. 術後の前の住宅施設に戻すに1時間、マウスを観察します。
  4. 七日手術後、ステップ2.1のように、マウスを麻酔。包帯の腹側を介してのみ切断することにより包帯を外します。
  5. 観察し、痂皮形成、収縮、または硬さの兆候が次の日に移植片を触診します。存在する場合、移植片は、適切vascularizaを達成していない可能性がありますションとは、技術的な失敗とみなされるべきです。
  6. 拒絶反応の徴候について毎日監視します。移植片組織の≥90%が壊死性になったときに拒否された移植片を考えてみましょう。
  7. 拒否された動物を安楽死させると分析のためにそれらを収穫。

結果

レシピエントマウスに包帯の配置は、手順の重要なステップです。皮膚移植は、肩、腰、及び背骨( 図1)との間で、受信者の胴体上に配置されます。包帯は、折り畳まれたガーゼと2プラスチック絆創膏の組み合わせで作られています。レシピエントマウスは、包帯の中心にガーゼの上にダウン移植片で配置されています。 2つの湾曲マイクロ鉗子を用い...

ディスカッション

メダウォアによるその導入されて以来、最初のヒトの研究で、その後、ウサギおよびマウスで、皮膚移植、同種免疫応答6,7の研究のための貴重なモデルとなっています。この原稿では、上下の背中の皮膚を用いた大規模な、非血管新生化、全層皮膚移植のモデルを提示します。移植組織の供給源として、マウスの尾の皮膚又は耳の皮膚を使用することを含む様々な代替方法は、8,9...

開示事項

著者らは、開示することは何もありません。

謝辞

この作品は、NIHの助成金R01AI077610によって賄われていました。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Straight micro forceps SigmaF4017
Curved micro forceps AesculapBD333R
Curved Stevens tenotomy scissors AesculapBC905R
Mayo dissecting  scissorsSigmaS3146
Micro needle holderAesculapBM563R
Sterile gauzeCovidien441218
6-0 Nylon suture MWI31849
Plastic Strips Band-AidJohnson & JohnsonObtained from pharmacy
10 cm Petri dishFisherbrandFB0875712
PBSQuality Biological119069131
BuprenorphineDEA Number required; Obtained from hospital pharmacy
EnrofloxacinBayer Health Care186599

参考文献

  1. Furtmuller, G. J., et al. Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse. J Vis Exp. , (2016).
  2. Oh, B., et al. A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice. J Vis Exp. , (2016).
  3. Oberhuber, R., et al. Murine cervical heart transplantation model using a modified cuff technique. J Vis Exp. , e50753 (2014).
  4. Jones, T. R., Shirasugi, N., Adams, A. B., Pearson, T. C., Larsen, C. P. Intravital microscopy identifies selectins that regulate T cell traffic into allografts. J Clin Invest. 112, 1714-1723 (2003).
  5. Celli, S., Albert, M. L., Bousso, P. Visualizing the innate and adaptive immune responses underlying allograft rejection by two-photon microscopy. Nat Med. 17, 744-749 (2011).
  6. Medawar, P. B. The behaviour and fate of skin autografts and skin homografts in rabbits: A report to the War Wounds Committee of the Medical Research Council. J Anat. 78, 176-199 (1944).
  7. Billingham, R. E., Brent, L., Medawar, P. B., Sparrow, E. M. Quantitative studies on tissue transplantation immunity. I. The survival times of skin homografts exchanged between members of different inbred strains of mice. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 143, 43-58 (1954).
  8. Garrod, K. R., Cahalan, M. D. Murine skin transplantation. J Vis Exp. , (2008).
  9. Schmaler, M., Broggi, M. A., Rossi, S. W. Transplantation of tail skin to study allogeneic CD4 T cell responses in mice. J Vis Exp. , e51724 (2014).
  10. Bergstresser, P. R., Toews, G. B., Gilliam, J. N., Streilein, J. W. Unusual numbers and distribution of Langerhans cells in skin with unique immunologic properties. J Invest Dermatol. 74, 312-314 (1980).
  11. Chen, H. D., Silvers, W. K. Influence of Langerhans cells on the survival of H-Y incompatible skin grafts in rats. J Invest Dermatol. 81, 20-23 (1983).
  12. Chong, A. S., Alegre, M. L., Miller, M. L., Fairchild, R. L. Lessons and limits of mouse models. Cold Spring Harb Perspect Med. 3, a015495 (2013).
  13. Mayumi, H., Nomoto, K., Good, R. A. A surgical technique for experimental free skin grafting in mice. Jpn J Surg. 18, 548-557 (1988).
  14. McFarland, H. I., Rosenberg, A. S. Skin allograft rejection. Curr Protoc Immunol. Chapter 4, (2009).
  15. Lee, C. F., et al. Preventing Allograft Rejection by Targeting Immune Metabolism. Cell reports. 13, 760-770 (2015).
  16. Pollizzi, K. N., Powell, J. D. Integrating canonical and metabolic signalling programmes in the regulation of T cell responses. Nat Rev Immunol. 14, 435-446 (2014).
  17. Pearce, E. L., Poffenberger, M. C., Chang, C. H., Jones, R. G. Fueling immunity: insights into metabolism and lymphocyte function. Science. 342, 1242454 (2013).

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

119 in vivo

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

研究

教育

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved