JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

Мышиные полная толщина трансплантация кожи является хорошо известной моделью для изучения отказа в установке аллоиммунная. Здесь мы предоставляем учебник каждого шага, участвующих в выполнении / с BALB -> C57BL / 6 всю толщину трансплантата кожи.

Аннотация

Мышиные полная толщина трансплантация кожи является хорошо создана в естественных условиях модель для изучения аллоиммунная реакции и отторжения трансплантата. Несмотря на ограниченное применение для человека, трансплантация кожи у мышей широко применяется для исследования трансплантации. Процедура проста в освоении и выполнять, и это не требует тонких методов микрохирургических, ни интенсивное обучение. Кроме того, отторжение трансплантата в этой модели имеет место в очень воспроизводимым иммунологической реакции и легко контролировать путем непосредственного осмотра и пальпации. Кроме того, вторичная трансплантация кожи с донорскими соответствием или третьей стороной кожи трансплантаты могут быть выполнены на более сложные модели трансплантации в качестве альтернативы и несложный метод оценки донорского-специфической толерантности. Осложнения низкие, и в общем случае ограничено анестезии передозировки или респираторного дистресс-синдрома после процедуры. отказ привитые, с другой стороны, происходит обычно в результате плохой подготовки гркормовой части, неправильное положение в привитой постели, или несоответствующее размещение повязки. В этой статье мы приводим протокол для полной толщины пересадки кожи у мышей и описывают важные шаги, необходимые для успешной процедуры.

Введение

Трансплантация органов является методом выбора при лечении больных с недостаточностью терминальной стадии органов, а также исходы значительно улучшилось с прогрессом в области хирургических процедур и протоколов иммуносупрессии. Тем не менее, длительное подавление иммунитета связано со значительными побочными эффектами, а также разработка новых стратегий, способствующих толерантности остается целью современных исследований трансплантации.

Многочисленные животные модели были разработаны для фундаментальных исследований в области трансплантации, чтобы изучить механизмы отторжения трансплантата и испытать иммуносупрессии подходы для предотвращения отторжения трансплантата и для содействия долгосрочному толерантности 1-3. Мышиные модели стали основой иммунологического исследований в связи с исключительной и обширной доступности диагностических и терапевтических антител и четко определенных инбредных и трансгенных линий. Пересадка кожи является простая процедура, которая не требует специальных навыков микрохирургических и можетлегко контролировать в послеоперационном периоде. Взятые вместе, трансплантация кожи мыши была исключительным инструментом для изучения многих аспектов , участвующих в реакции аллоиммунная, включая доставку антигена, незаконный оборот клеток и разрушения тканей во время отторжения трансплантата 4,5.

Здесь мы покажем процедуру шаг за шагом для полной толщины пересадки кожи с использованием модели мыши, и мы опишем важные шаги, необходимые для успешного приживления пересаженного кожи.

протокол

Все процедуры были проведены в соответствии с Руководством по уходу и использованию лабораторных животных Национального института здоровья (NIH) и были одобрены Университета животных по уходу и использованию комитета Джона Хопкинса (JHUACUC) путем. Конкретные процедуры были выполнены в соответствии с утвержденными протоколами ACUC MO13M292 и MO13M370.

1. Донор Урожай кожи

  1. Обезболить мыши-донора с изофлуран (индукционным испарителем на уровне 4%, обслуживание на 1 - 2% через конус мыши). Используйте носок вывода пинч рефлекс контролировать глубину анестезии.
  2. Используя электрическую бритву, брить спину животного и дезинфицировать его с 10% повидон йода (например, Бетадин).
  3. Используя стерильные ножницы, перчатки и асептики, донорские урожай кожи спины от бедра до шеи, с тупым на уровне рыхлой соединительной ткани.
  4. Усыпить животное шейки дислокации после сбора урожаякожа трансплантат.
  5. Под микроскопом, отделить соединительной ткани, жировой ткани, и panniculus carnosus из кожи спины с помощью тонких ножниц тенотомию. Panniculus carnosus представляет собой тонкий, прозрачный мышцы отвечают за подергивание движений кожи.
  6. Использование стерильных инструментов, вырезать 15-мм х 15-мм трансплантаты из кожи спины для 10-мм х 10 мм до 15 мм х 15 мм привитого кровати.
  7. Хранить трансплантатов на марли, смоченными стерильным фосфатно-солевом буфере (PBS) в чашке Петри на льду.
    Примечание: 8 - 10 трансплантаты могут быть получены из одной мыши-донора.

2. Получатель Пересадка кожи

  1. Обезболить мышь получателя с изофлуран (индукционным испарителем на уровне 4%, обслуживание на 1 - 2% через конус мыши). Используйте носок вывода пинч рефлекс контролировать глубину анестезии.
  2. Администрирование 0,02 мг / кг веса тела бупренорфина для послеоперационного обезболивания.
  3. Бритье сторону задней части животного, где трансплантат WiLL быть вставлена ​​и дезинфицируют 10% повидон-йод.
  4. Используя ножницы, вырезать 10 мм х 10 мм до 15 мм-х 15-мм квадратной кожи. Размер дефекта должен быть немного больше (10%), чем трансплантата. Вырезать так же поверхностно, насколько это возможно. Позаботьтесь, чтобы сохранить panniculus carnosus и сосуды. Panniculus carnosus можно отличить от основной лицевой панели его подвижности и кровеносных сосудов, которые работают поверхностные к нему.
  5. Поместите трансплантат на привитой постели, избегая складок по краям.
  6. Поместите 8 швов на углах и на середине каждого края. Для каждого шва, проходят через иглу трансплантата, а затем через panniculus carnosus трансплантата дну ниже окружающей кожи реципиента.
  7. Снимите маску обезболивающий и пусть животное частично восстановиться после анестезии перед нанесением клеевой повязку.
  8. Оберните мышь получателя в клеевой повязка с сложенную марлю над трансплантатом. Повязка путем объединения двух бинты, резкаклеевой состав одного и размещения двух впитывающие прокладки вместе.
  9. Монитор мыши тесно во время восстановления, чтобы убедиться, что повязка не ограничивая грудную клетку экскурсии и дыхания. Снимите повязку, если частота дыхания снижается или животное начинает задыхаться или дыхание неглубоко.

3. Послеоперационный

  1. Администрирование Энрофлоксацин 5 мг / кг после операции по поводу инфекции профилактики.
  2. Поместите пересаженных мышь в чистой клетке над Microwavable грелку, пока она полностью не оправится от анестезии.
  3. Соблюдайте мыши в течение 1 часа после операции до возвращения его к жилому объекту.
  4. Через семь дней после операции, анестезию мыши, как на шаге 2.1. Снимите повязку путем разрезания только через брюшную сторону повязки.
  5. Наблюдайте и ощупывать трансплантата на следующий день на наличие признаков струпьев, сокращения или твердости. Если он присутствует, трансплантат не может быть достигнуто надлежащее vascularizaции и следует рассматривать как технический сбой.
  6. ежедневно контролировать на наличие признаков отторжения. Рассмотрим трансплантатов отвергнута при ≥90% от трансплантата ткани становится некротической.
  7. Эвтаназии отклоненные животных и собирать их для анализа.

Результаты

Размещение повязкой на мыши-реципиента является важным шагом процедуры. Кожный трансплантат позиционируется на стволе получателя, между плеча, бедра и позвоночника (рисунок 1). Бандаж выполнен со сложенным марлю и сочетание двух пластиковых пластырей. Мышь п...

Обсуждение

С момента своего появления по Medawar, во- первых , в исследованиях на людях , а затем у кроликов и мышей, трансплантация кожи была бесценным моделью для изучения аллогенных иммунных ответов 6,7. В этой рукописи, мы представляем модель крупномасштабного, не кровоснабжением, полную толщи...

Раскрытие информации

Авторы не имеют ничего раскрывать.

Благодарности

Эта работа финансировалась грантом NIH R01AI077610.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Straight micro forcepsSigmaF4017
Curved micro forcepsAesculapBD333R
Curved Stevens tenotomy scissorsAesculapBC905R
Mayo dissecting scissorsSigmaS3146
Micro needle holderAesculapBM563R
Sterile gauzeCovidien441218
6-0 Nylon sutureMWI31849
Plastic Strips Band-AidJohnson & JohnsonObtained from pharmacy
10 cm Petri dishFisherbrandFB0875712
PBSQuality Biological119069131
BuprenorphineDEA Number required; Obtained from hospital pharmacy
EnrofloxacinBayer Health Care186599

Ссылки

  1. Furtmuller, G. J., et al. Orthotopic Hind Limb Transplantation in the Mouse. J Vis Exp. , (2016).
  2. Oh, B., et al. A Novel Microsurgical Model for Heterotopic, En Bloc Chest Wall, Thymus, and Heart Transplantation in Mice. J Vis Exp. , (2016).
  3. Oberhuber, R., et al. Murine cervical heart transplantation model using a modified cuff technique. J Vis Exp. , e50753 (2014).
  4. Jones, T. R., Shirasugi, N., Adams, A. B., Pearson, T. C., Larsen, C. P. Intravital microscopy identifies selectins that regulate T cell traffic into allografts. J Clin Invest. 112, 1714-1723 (2003).
  5. Celli, S., Albert, M. L., Bousso, P. Visualizing the innate and adaptive immune responses underlying allograft rejection by two-photon microscopy. Nat Med. 17, 744-749 (2011).
  6. Medawar, P. B. The behaviour and fate of skin autografts and skin homografts in rabbits: A report to the War Wounds Committee of the Medical Research Council. J Anat. 78, 176-199 (1944).
  7. Billingham, R. E., Brent, L., Medawar, P. B., Sparrow, E. M. Quantitative studies on tissue transplantation immunity. I. The survival times of skin homografts exchanged between members of different inbred strains of mice. Proc R Soc Lond B Biol Sci. 143, 43-58 (1954).
  8. Garrod, K. R., Cahalan, M. D. Murine skin transplantation. J Vis Exp. , (2008).
  9. Schmaler, M., Broggi, M. A., Rossi, S. W. Transplantation of tail skin to study allogeneic CD4 T cell responses in mice. J Vis Exp. , e51724 (2014).
  10. Bergstresser, P. R., Toews, G. B., Gilliam, J. N., Streilein, J. W. Unusual numbers and distribution of Langerhans cells in skin with unique immunologic properties. J Invest Dermatol. 74, 312-314 (1980).
  11. Chen, H. D., Silvers, W. K. Influence of Langerhans cells on the survival of H-Y incompatible skin grafts in rats. J Invest Dermatol. 81, 20-23 (1983).
  12. Chong, A. S., Alegre, M. L., Miller, M. L., Fairchild, R. L. Lessons and limits of mouse models. Cold Spring Harb Perspect Med. 3, a015495 (2013).
  13. Mayumi, H., Nomoto, K., Good, R. A. A surgical technique for experimental free skin grafting in mice. Jpn J Surg. 18, 548-557 (1988).
  14. McFarland, H. I., Rosenberg, A. S. Skin allograft rejection. Curr Protoc Immunol. Chapter 4, (2009).
  15. Lee, C. F., et al. Preventing Allograft Rejection by Targeting Immune Metabolism. Cell reports. 13, 760-770 (2015).
  16. Pollizzi, K. N., Powell, J. D. Integrating canonical and metabolic signalling programmes in the regulation of T cell responses. Nat Rev Immunol. 14, 435-446 (2014).
  17. Pearce, E. L., Poffenberger, M. C., Chang, C. H., Jones, R. G. Fueling immunity: insights into metabolism and lymphocyte function. Science. 342, 1242454 (2013).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Immunology119

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены