JoVE Logo
著者
お問い合わせ

サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

この記事では、X染色体異常のある女性の非移植および移植卵巣皮質組織における卵巣細胞のX染色体含有量を決定するための蛍光 in situ ハイブリダイゼーションに基づく2つの方法を紹介します。

要約

世界中の何百万人もの人々が出生力に関する問題に取り組んでいます。生殖能力の低下、あるいは不妊症でさえ、染色体異常が最も一般的である遺伝性疾患を含む多くの異なる原因が原因である可能性があります。蛍光 in situ ハイブリダイゼーション(FISH)は、ヒトの染色体異常を検出するためによく知られ、頻繁に使用される方法です。FISHは主に、数値的または構造的な染色体異常を有する雄の精子の染色体異常の解析に使用されます。さらに、この技術は、卵巣発育異常を引き起こすことが知られているX染色体異常を検出するために女性にも頻繁に適用されます。しかし、リンパ球および/または頬細胞にX染色体異常を有する雌の卵巣細胞のX染色体含量に関する情報はまだ不足しています。

本研究の目的は、卵巣細胞のX染色体含量を特定するためのFISHに基づく2つの方法を提示することにより、女性のX染色体異常に関する基礎研究を進めることです。まず、X染色体異常を有する雌から移植されていない卵巣皮質組織中の単離卵巣細胞(卵母細胞、顆粒膜細胞、間質細胞)のX染色体含量を測定する方法について説明する。第2の方法は、免疫不全マウスへの長期移植後のX染色体異常を有する雌から、卵巣組織において新たに形成された二次卵胞および胞状卵胞の卵巣細胞のX染色体含有量を決定することによって、卵胞形成に対する染色体異常の影響を評価することに向けられている。どちらの方法も、X染色体異常のある女性の生殖能力についての洞察を得るための将来の研究に役立つ可能性があります。

概要

不妊症は男性または女性の生殖器系の健康問題であり、世界中で約1億8600万人の生殖年齢の個人が罹患しています1。不妊症のカップルの少なくとも35%で、不妊症は女性の生殖器系の障害によって引き起こされます2。遺伝的要因、生殖管異常、内分泌機能障害、炎症性疾患、医原性治療など、女性の不妊症を引き起こす可能性のある多くの要因があります3。

遺伝的異常は、不妊症の女性の約10%に存在します4,5。すべての遺伝的異常の中で、X染色体異常は卵巣発育不全の最も一般的な原因です2。いくつかの研究では、ターナー症候群(TS)またはトリプルX症候群の女性のX染色体異常は、生殖細胞の喪失の加速または卵形成障害による早期卵巣不全に関連していることが報告されています6,7,8。

X染色体の異常は、1)X染色体の数が異なっているがX染色体が損なわれていない数値異常に分けることができます。2)X染色体が遺伝物質を獲得または失った構造異常3,9。X染色体の数値異常は、構造異常よりも一般的であり、細胞分裂中の自発的なエラーによって引き起こされることがよくあります3,9。減数分裂中にこのようなエラーが発生すると、異数性配偶子につながり、最終的にはすべての細胞に染色体異常を伴う子孫につながる可能性があります。個体発生の初期段階の有糸分裂中に発生するエラーの結果として染色体細胞に染色体欠損が生じると、モザイク現象につながる可能性があります。これらの個体では、X染色体含有量が正常な細胞とX染色体異常を有する細胞の両方が存在する。

1980年代には、中期および間期の染色体上の特定の核酸配列を視覚化して位置を特定するために、蛍光in situハイブリダイゼーション(FISH)と呼ばれる細胞遺伝学的手法が開発されました10,11。この手法では、蛍光標識されたDNAプローブを使用して染色体内の特定の配列に結合し、蛍光顕微鏡を使用して視覚化できます。

現在、FISHは臨床診断ツールとして広く使用されており、染色体異常を検出する際のゴールドスタンダードと見なされています10。生殖医療の分野では、精子に関するFISH分析を使用して、体細胞に数値的または構造的な染色体異常がある男性の精子のX染色体含有量に関する洞察を得ています12,13,14。これらの研究は、染色体異常のある男性は、正常な核型の男性と比較して、精液中に存在する異数性精子の頻度が高い可能性が高いことを示しました12,13,14。

精子とは対照的に、染色体異常を有する個体における卵巣細胞(卵母細胞、顆粒膜/テカ細胞、および間質細胞を含む)のX染色体含有量、およびこれらの細胞の異数性が生殖能力に及ぼす可能性のある結果についてはほとんど知られていない。精子と比較して卵巣細胞の核型に関する情報が不足している重要な理由は、女性が卵母細胞または卵巣皮質組織を得るために卵胞穿刺または手術などの侵襲的処置を受けなければならないという事実である。したがって、女性の配偶子は研究目的で入手することは困難です。

現在、TS15の若い女性における卵巣組織凍結保存の有効性を調査するために、オランダで観察介入研究が行われています。患者の卵巣皮質組織の1つの断片は、卵巣細胞のX染色体含量を同定するために利用可能であった16、17。研究の一環として、解離した卵巣皮質組織のFISHに基づいて、リンパ球や頬細胞などの非卵巣体細胞に染色体異常がある女性の卵巣細胞に染色体異常が存在するかどうかを判断する新しい方法が開発されました。さらに、卵胞形成に対する卵巣細胞の異数性の影響も決定されました。この目的のために、確立されたFISHプロトコルが変更され、免疫不全マウスの長期異種移植中に人為的に誘導された卵胞形成後の卵巣皮質組織の組織学的切片の分析が可能になりました。本研究では、X染色体異常を有する雌の非移植および移植卵巣皮質組織の卵巣細胞におけるX染色体含量を決定するためのFISHに基づく2つの方法を提示し、このトピックに関する基礎科学の向上を目指します。

プロトコル

ターナー出生力研究プロトコルは、人間を対象とする研究に関する中央委員会(NL57738.000.16)によって承認されています。この研究では、TSの女性93人の卵巣皮質組織が得られた。安全上の注意が必要な材料を 表1に示します。

表1:安全上のご注意。

材料ハザード
酢酸重度の皮膚火傷と呼吸器系の刺激
コラゲナーゼ目、呼吸器系および皮膚を刺激する
ダピ目、呼吸器系および皮膚を刺激する
ドナーゼ I目、呼吸器系および皮膚を刺激する
エタノール引火性が高い
ホルムアルデヒド吸入、摂取および皮膚接触後に有毒
ホルムアミド
(蛍光プローブ内)		胎児に害を及ぼす可能性があります
リベラーゼ目、呼吸器系および皮膚を刺激する
メタノール引火性が高く、吸入、摂取、皮膚接触による毒性
ノニデットP40皮膚や目を刺激する
ペプシン目、呼吸器系および皮膚を刺激する
プロテイナーゼK吸入後の呼吸困難
キシレン非常に可燃性で、吸入および皮膚接触後に有毒です。目との接触を避けてください。

表1:安全上の注意が必要な材料。

1.単離された個々の卵巣皮質細胞上のFISHは

  1. 個々の細胞を得るための卵巣皮質組織の解離
    1. 凍結保存/解凍した卵巣皮質組織をメスで約1mm x 1mm x 1mmの小片に切断します。
    2. 組織断片を、0.1 mg/mLの組織解離酵素ミックス、10 μg/mLのDNase I、および C.ヒストリカム 由来の1 mg/mLのコラゲナーゼIを含む4 mLの予温(37°C)L15培地で、37°Cで最大75分間酵素的に消化します。 消化ミックスを15分ごとに上下にピペットします。
    3. 10%ウシ胎児血清(FBS)を添加した4 mLの冷たいL15を加えて、酵素消化を停止します。解離した組織を500 x g の遠心分離により8 mLの冷たいL15培地で1回洗浄し、細胞への損傷を避けるためにボルテックスせずに500 μLのL15培地に再懸濁します。
    4. 主に個々の間質細胞と小さな卵胞(単層の顆粒膜細胞に囲まれた卵母細胞)を含む細胞懸濁液をプラスチック製のシャーレに移し、実体顕微鏡(倍率100倍)で細胞懸濁液を調べます。
    5. 75 μmのプラスチックピペットを使用して小さな卵胞(<50 μm)を手動でピックアップし、卵胞の凝集を防ぐために4°Cで10%FBSを添加したL15培地の液滴に卵胞を移します。卵胞ピックアップを最大30分間実行します。FISH分析の前に卵胞細胞の広がりを改善するには、精製した卵胞を0.06%トリプシン、1 mg/mLエチレンジアミン四酢酸(EDTA)、および1 mg/mLグルコースの溶液に移し、37°Cで20分間インキュベートします。
    6. 75 μmのプラスチックピペットを使用して皮質細胞懸濁液から卵巣間質細胞を取得し、小さな卵胞による汚染を避けるために特別な注意を払います。
  2. 個々の卵巣細胞のFISH分析
    1. トリプシン/EDTA/グルコースまたは間質細胞(n > 1,000)を含む処理した卵巣卵胞(推奨n = 5-20)を、0.15 mM KCl/15 μLのダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)の5 μLの液滴に移し、37°Cで20分間インキュベートします。
    2. スライドを乾燥させ、300 μLの0.05 mM KCl/7.5%酢酸/22.5%メタノール中で室温(RT)で2分間プレフィケーションします。スライドをメタノール/酢酸(3:1)でRTで2分間覆い、固定を完了します。
    3. 5 Lの蒸留水に876 gの塩化ナトリウムと441 gのクエン酸三ナトリウム二水和物を加えて、20倍の標準クエン酸ナトリウム(SSC)を作ります。次に、20x SSC100 mLを900 mLの脱塩(デミ)水に加えて、2x SSCを取得します。サンプルを73°Cの2x SSCで洗浄し、100 μLの2%プロテイナーゼKで覆い、カバーガラスで密封します。ハイブリダイゼーションステーションで37°Cで10分間スライドをインキュベートします。
    4. カバーガラスを取り外し、RTのDPBSでスライドを5分間洗浄します。 RTで1%ホルムアルデヒドでサンプルを5分間固定します。この段階では、材料はまだスライドガラスに完全に取り付けられていないため、振とうプラットフォームに置かないでください。
    5. スライドをRTのDPBSで5分間洗浄し、続いて70%、80%、90%、および100%エタノールでそれぞれ2分間脱水します。脱水したサンプルを風乾し、蛍光標識プローブとハイブリダイズします。
    6. X染色体用のセントロメア特異的プローブと別の染色体特異的セントロメアプローブをコントロールとして選択し、卵巣細胞のX染色体含量を測定します。この場合、X染色体(CEP X [DXZ1])を蛍光色素スペクトラムグリーンで直接標識したセントロメア特異的プローブと、蛍光色素スペクトラムオレンジで直接標識した18番染色体(CEP 18[D18Z1])を用いる。
    7. 1 μLのCEP X、1 μLのCEP 18、および18 μLのハイブリダイゼーションバッファーをサンプルに加え、ハイブリダイゼーション中のプローブの蒸発を防ぐためにスライドに接着されたカバーガラスで密封します。スライドをハイブリダイゼーションステーションに移して73°Cで3分間変性させ、続いて37°Cで一晩インキュベーションしながらハイブリダイゼーションを行った。
    8. ハイブリダイゼーション後にカバーガラスと残っている接着剤をスライドから取り除きます。スライドを0.4x SSC/0.3% Tween-20 72°Cで 2 分間洗浄した後、室温で 2x SSC/0.1% Tween-20 中で 1 分間インキュベートします。
    9. その後、70%、80%、90%、および100%エタノール中で2分間インキュベーションしてスライドを脱水し、暗所で風乾します。スライドを4′,6-ジアミジノ-2-フェニルインドール(DAPI)を含む封入剤で覆います。蛍光顕微鏡による分析の前に、少なくとも10分間-20°Cに保ってください。
  3. イメージング
    1. 画像処理ソフトウェアにリンクされた蛍光顕微鏡でX染色体のシグナルを調べます。
      1. まず、 蛍光色素DAPIを選択します。
        1. 630倍の倍率で ライブ>キャプチャ>新規セル を選択して画像を取得します。しきい値を含む新しいウィンドウが表示されます。しきい値の青いバーを0に設定するとバックグラウンドが最小になり、赤いバーが最大(255)に設定されて信号が明るくなります。[ 同意する]をクリックします。
        2. 拡張された新しいウィンドウが表示され、暗い/明るい(12)、半径(3)、および深さ(1)の提案が表示されます。推奨値を使用するか、満足できない場合は調整してください。
      2. 次に、蛍光色素スペクトラムオレンジを選択し、[キャプチャ]をクリックします。
        1. しきい値の青いバーを0に設定するとバックグラウンドが最小になり、赤いバーが最大(255)に設定されて信号が明るくなります。[ 同意する]をクリックします。
        2. 拡張されたウィンドウが表示され、暗い/明るい(-11)、半径(2.7)、および深さ(0.6)の提案が表示されます。推奨値を使用するか、満足できない場合は調整してください。
      3. 最後に、 蛍光色素スペクトラムグリーン を選択し、[ キャプチャ]をクリックします。
        1. しきい値の青いバーを0に設定するとバックグラウンドが最小になり、赤いバーが最大(255)に設定されて信号が明るくなります。[ 同意する]をクリックします。
        2. 強調されたウィンドウが表示され、暗い/明るい(0)、半径(3)、および深さ(0)の提案が表示されます。推奨値を使用するか、満足できない場合は調整してください。新しく作成したファイルに画像を保存します。
          注:体細胞は、対照染色体18の2つのシグナルが見える場合にのみ評価されました。ほとんどの卵母細胞では、染色体ごとに1つのシグナルしか検出できませんでした。
    2. 解析後は、信号の損失を防ぐために、スライドを4°Cの暗所に保管してください。

2.移植卵巣皮質組織のパラフィン切片上のFISHは

注:TSの18人の女性の凍結保存/解凍された卵巣皮質組織の1つの断片を、重度の複合免疫不全(SCID)マウスに5か月間異種移植しました。異種移植の手順は以前に説明されており、動物福祉に関する動物研究委員会の現地ガイドライン(参考文献2014 / UCL / MD / 007)18,19に従って、ルーヴァンカトリック大学(ベルギー、ブリュッセル)で実施されました。

  1. 卵胞を含む異種移植卵巣皮質組織の切片の選択
    1. 異種移植卵巣皮質組織を4%ホルムアルデヒドで固定し、その組織をパラフィンに埋め込みます。メスでブロックをトリミングして余分なパラフィンを取り除き、回転ミクロトームでパラフィンブロックを4μmの厚さにカットします。
    2. ヘマトキシリンおよびエオジン(HE)染色用のパラフィンリボンの7番目のセクションごとに選択して、どのセクションに卵胞が含まれているかを判断します。切片を40〜45°Cの水浴に入れ、免疫組織化学顕微鏡スライドに取り付けます。
  2. 脱パラフィンとHE染色
    1. スライドを60°Cで10分間ストーブに置き、その後スライドを100%キシレンに5分間浸します。スライドをストーブの上に直接置く必要はありません。切片を100%エタノール中で15秒間水和させ、続いて96%エタノール中で2 x 15秒間水和させる。スライドを水道水で2分間すすぎます。
    2. スライドをヘマトキシリンで10分間染色し、その後水道水でスライドを短時間すすいでください。スライドを重炭酸塩溶液(5 Lの蒸留水に100 gの硫酸マグネシウムと10 gの重炭酸ナトリウム)に短時間浸します。スライドを水道水で5分間すすぎます。
    3. スライドをエオジンで4分間対比染色し、100%エタノール、続いてキシレンでスライドを3回脱水します。スライド上のHE染色をカバースリップし、光学顕微鏡でHE切片を評価して、卵胞のある切片を選択します(倍率100倍)。
  3. DNA FISHのためのパラフィン切片の前処理とハイブリダイゼーション
    1. パラフィンリボンから卵胞を含むセクションの前または後にある新しいセクションを選択します。スライドガラスに1つのセクションを取り付けます。パラフィン切片を56°Cのストーブで少なくとも45分間乾燥させます。 スライドをストーブの上に直接置く必要はありません。
    2. 切片をキシレン中で10分間脱パラフィンします。スライドを99.5%エタノールに浸し、水道水で5分間すすぎます。スライドをターゲット回収溶液(低pH)で96°Cで10分間前処理します。 冷却後、スライドを蒸留水ですすいでください。
    3. スライドを0.01 M塩酸で5分間処理した後、ペプシン消化(200 U/mL)を37°Cで15分間処理します。 スライドを0.01 M塩酸で再度すすぎ、続いてPBSですすいでください。
    4. スライドを1%ホルムアルデヒド/ PBSで5分間固定します。スライドをPBSで簡単にすすぎ、次にデミ水で再度すすぎます。スライドを99.5%エタノールで脱水し、風乾させます。
    5. コントロールとしてX染色体用のセントロメア特異的プローブと別の染色体特異的セントロメアプローブを選択して、顆粒膜細胞のX染色体含量を測定した。ここでは、18番染色体が対照として用いられる。
    6. 前処理されたスライドに、蛍光色素スペクトラムグリーンで直接標識されたプローブCEP 18(D18Z1)と蛍光色素スペクトラムレッドで直接標識されたプローブCEP X(DXZ1)を5 μL塗布します。カバーガラスを貼り、写真のりでその領域をシールします。スライドをハイブリダイザーに入れ、80°Cで10分間変性し、37°Cで一晩ハイブリダイゼーションを行います。
    7. 翌日、スライドを42°Cの2x SSCで5分間すすぎ、続いて73°Cの0.3%ノニデットP40で2分間と1分間すすぎます。 2x SSCを更新し、室温で5分間スライドを再度すすぎます。切片が暗所に保たれるようにキュベットを覆います。
    8. スライドを蒸留水で短時間すすいでください。スライドを99.5%エタノールで脱水し、再び風乾させます。最後に、DAPIと封入剤を含む溶液でスライドをマウントします。
  4. イメージング
    1. 630倍の倍率で蛍光顕微鏡で結果を分析します。パソコンで画像処理ソフトウェアを開きます。プロファイルとして FISH を選択します。
    2. DAPI発光が431 nm、励起が359 nm、テキサスレッド発光が613 nm、励起が595 nm、FITC発光が519 nm、励起が495 nmに設定されているかどうかを確認します。
    3. [ライブ] > [単一イメージをキャプチャ] を選択してイメージを取得します。左側の画像メニューの露出スライダーとゲインスライダーを動かして、露出とゲインを調整して画質を最適化します(例:露出:212ミリ秒、ゲイン:7.9)。必要な露出とゲインは画像ごとに異なる場合があります。このプロセス中の変化を観察して、最適化された画像を取得します。新しく作成したファイルに画像を保存します。
    4. 解析後は、信号の損失を防ぐために、スライドを4°Cの暗所に保管してください。

結果

移植前の単離卵巣細胞に対するFISH
45,X/46,XX(患者A)または45,X/46,XX/47,XXX(患者B)TSの女性からの凍結保存された卵巣皮質組織を使用して、このプロトコルを使用した結果を説明しました。患者Aでは、リンパ球の50%が45,X核型を有し、50%が46,XXを有していた。患者Bではリンパ球の38%が45,X、28%が46,XX、34%が47,XXであった。コントロールとしてX染色体(緑)と18番染色体(赤)のセントロメア特?...

ディスカッション

FISH分析は、男性と女性の両方のリンパ球または頬側細胞のX染色体異常を検出するためのよく知られた技術です10。いくつかの研究では、X染色体異常のある男性の配偶子に関するFISHが説明されていますが、X染色体異常のある女性の卵巣細胞に関するFISHによって得られた詳細な情報はまだ不足しています14。この記事では、X染色体異常の女性の非移植およ?...

開示事項

著者は開示するものは何もありません。

謝辞

著者らは、マルジョ・ヴァン・ブラーケル、ドミニク・スミーツ、ギヨーム・ファン・デ・ザンデ、パトリシア・ファン・クリーフ、ミラン・インテザールの専門知識と技術支援を認めています。資金源:メルクセローノ(A16-1395)、グッドライフ、フェリング。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Acetic acidBiosolve BV0001070602BS
Centrifuge 1200Hettich Universal4140
Collagenase ISigma131470
CoverslipVWR0631-0146
DAPIVectorH-1200
DNase IRoche10104159001
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline LonzaBE17-513Q
EDTAMerck108421
Eosin-YSigma1159350100
EthanolEMSURE1009832500
Fetal Bovine Serum (FBS)Life technology10100147
Fluorescence microscope for sections DM4 BLeica Microsystems 
Fluorescence microscope scope A1Zeiss AXIO
Fluorescent labeled probes for dissociated cellsAbbott DiagnosticsCEPX (DXZ1) 05J1023
CEP18 (D18Z1) 05J0818
Fluorescent labeled probes for tissue sectionsAbbott DiagnosticsCEP X (DXZ1 05J08-023
CEP 18 (D18Z1)  05J10-028
FormaldehydeSigma252549
GlucoseMerck108337
Glue (Fixogum)Leica MicrosystemsLK071A
HematoxylinSigma1159380025
Hybridization bufferAbott Diagnostics32-804826/06J67-001
Hybridization Station DakoS2451
Hydrochloric acidMerck1003171000
Image processing software individual ovarian cortex cells (Cytovision 7.7)Leica Biosystems
Image processing software on paraffine sections Leica Application Suitex (3.7.5.24914)
Immunohitochemistry microscope slidesDakoK802021-2
L15Lonza12-700Q
Liberase DHRoche05 401 151 001
Light microscopeZeiss West Germany
Magnesium sulphateMerckA335586
MethanolHoneywell14262-1L
Mounting mediumVectashield, VectorH-1000
Nonidet P40Sigma7385-1L
ParaffinPoth Hile2712.20.10
PepsinSigmaP7000-25G
Phosphate-Buffered Saline (PBS)Gibco11530546
Plastic pipetteCooperSurgical7-72-4075/1
Potassium chloride Merck1049361000
Proteinase KQiagen19131
Rotation microtome HM 355SThermo sceintific
ScalpelDahlhausen11.000.00.515
Slide for FISH on dissociated cellsThermo scientificJ1810AM1JZ
Sodium bicarbonateSigma55761-500G
Standard Sodium Citrate (SSC)Fisher Scientific, Invitrogen10515203
Stereomicroscope IX 70Olympus
Target Retrieval Solution   DakoGV80511-2
TrypsinSigmaT4799
Tween-20ThermoFisher85113
XyleneBOOM760518191000

参考文献

  1. Vander Borght, M., Wyns, C. Fertility and infertility: Definition and epidemiology. Clinical Biochemistry. 62, 2-10 (2018).
  2. Yatsenko, S. A., Rajkovic, A. Genetics of human female infertility. Biology of Reproduction. 101 (3), 549-566 (2019).
  3. Yahaya, T. O., et al. Chromosomal abnormalities predisposing to infertility, testing, and management: a narrative review. Bulletin of the National Research Centre. 45 (1), 65 (2021).
  4. Foresta, C., Ferlin, A., Gianaroli, L., Dallapiccola, B. Guidelines for the appropriate use of genetic tests in infertile couples. European Journal of Human Genetics. 10 (5), 303-312 (2002).
  5. Heard, E., Turner, J. Function of the sex chromosomes in mammalian fertility. Cold Spring Harbor Perspectives in Biology. 3 (10), 002675 (2011).
  6. Reynaud, K., et al. Number of ovarian follicles in human fetuses with the 45,X karyotype. Fertility and Sterility. 81 (4), 1112-1119 (2004).
  7. Otter, M., Schrander-Stumpel, C. T., Curfs, L. M. Triple X syndrome: a review of the literature. European Journal of Human Genetics. 18 (3), 265-271 (2010).
  8. Modi, D. N., Sane, S., Bhartiya, D. Accelerated germ cell apoptosis in sex chromosome aneuploid fetal human gonads. Molecular Human Reproduction. 9 (4), 219-225 (2003).
  9. Hassold, T., Hunt, P. To err (meiotically) is human: the genesis of human aneuploidy. Nature Reviews Genetics. 2 (4), 280-291 (2001).
  10. Huber, D., von Voithenberg, L. V., Kaigala, G. V. Fluorescence in situ hybridization (FISH): History, limitations and what to expect from micro-scale FISH. Micro and Nano Engineering. 1, 15-24 (2018).
  11. Hu, L., et al. Fluorescence in situ hybridization (FISH): an increasingly demanded tool for biomarker research and personalized medicine. Biomarker Research. 2 (1), 3 (2014).
  12. Hwang, K., Weedin, J. W., Lamb, D. J. The use of fluorescent in situ hybridization in male infertility. Therapeutic Advances in Urology. 2 (4), 157-169 (2010).
  13. Ramasamy, R., Besada, S., Lamb, D. J. Fluorescent in situ hybridization of human sperm: diagnostics, indications, and therapeutic implications. Fertility and Sterility. 102 (6), 1534-1539 (2014).
  14. Chatziparasidou, A., Christoforidis, N., Samolada, G., Nijs, M. Sperm aneuploidy in infertile male patients: a systematic review of the literature. Andrologia. 47 (8), 847-860 (2015).
  15. Schleedoorn, M., et al. TurnerFertility trial: PROTOCOL for an observational cohort study to describe the efficacy of ovarian tissue cryopreservation for fertility preservation in females with Turner syndrome. BMJ Open. 9 (12), 030855 (2019).
  16. Peek, R., et al. Ovarian follicles of young patients with Turner's syndrome contain normal oocytes but monosomic 45,X granulosa cells. Human Reproduction. 34 (9), 1686-1696 (2019).
  17. Nadesapillai, S., et al. Why are some patients with 45,X Turner syndrome fertile? A young girl with classical 45,X Turner syndrome and a cryptic mosaicism in the ovary. Fertility and Sterility. 115 (5), 1280-1287 (2021).
  18. Dolmans, M. M., et al. Reimplantation of cryopreserved ovarian tissue from patients with acute lymphoblastic leukemia is potentially unsafe. Blood. 116 (16), 2908-2914 (2010).
  19. Dath, C., et al. Xenotransplantation of human ovarian tissue to nude mice: comparison between four grafting sites. Human Reproduction. 25 (7), 1734-1743 (2010).
  20. Cacciottola, L., Donnez, J., Dolmans, M. M. Ovarian tissue damage after grafting: systematic review of strategies to improve follicle outcomes. Reproductive BioMedicine Online. 43 (3), 351-369 (2021).
  21. Bishop, R. Applications of fluorescence in situ hybridization (FISH) in detecting genetic aberrations of medical significance. Bioscience Horizons. 3 (1), 85-95 (2010).
  22. Burgoyne, P. S., Mahadevaiah, S. K., Turner, J. M. The consequences of asynapsis for mammalian meiosis. Nature Reviews Genetics. 10 (3), 207-216 (2009).

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

194

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

お問い合わせ

図書館への推薦

JoVE ニュースレター

研究

教育

著者

図書館員

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved