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要約

この記事では、ニワトリGSDMEのN末端フラグメント(chGSDME-NT)およびヨウ化プロピジウム(PI)に対する抗体による二重染色後のフローサイトメトリーを使用したピロトーシス細胞の同定について説明します。

要約

ピロトーシスは、主に切断されたガスデルミン(GSDM)ファミリータンパク質から生成されるN末端による原形質膜細孔の形成によって引き起こされる炎症性のプログラム細胞死です。ウェスタンブロットによるメンブレン付着GSDM-NTの検査は、ピロトーシスの評価に最も一般的に使用される方法です。しかし、この方法を用いてピロトーシスを有する細胞を他の形態の細胞死と鑑別することは困難です。本研究では、Infectious Bursal Disease Virus(IBDV)に感染したDF-1細胞をモデルとして、ニワトリGSDMEのN末端フラグメントに対する特異的抗体(chGSDME-NT)およびヨウ化プロピジウム(PI)染色を用いて、フローサイトメトリーによるピロトーシスを受ける細胞の割合を定量化しました。chGSDME-NT陽性細胞は、Alexa Fluor 647標識抗chGSDME-NT抗体を用いたフローサイトメトリーで容易に検出できました。さらに、IBDV感染細胞におけるchGSDME-NT/PI二重陽性細胞の割合(約33%)は、模擬感染対照群よりも有意に高かった(P < 0.001)。これらの知見は、フローサイトメトリーによる膜結合chGSDME-NTの検討が、細胞死を経験した細胞のうちピロトーシス細胞を決定するための有効なアプローチであることを示しています。

概要

ピロトーシスは、主に哺乳類のガスダーミン(GSDM)Dによる原形質膜細孔の形成に依存する炎症性のプログラム細胞死です1,2,3。ニワトリのGSDMDの遺伝的欠損4,5のために、ニワトリのピロトーシスのメカニズムはとらえどころのないままです。ガスデルミンファミリーは、GSDMA、GSDMB、GSDMC、GSDMD、GSDME、およびDFNB59 3,6などの保存されたタンパク質で構成されています。研究によると、魚類やアヒル由来のGSDMEは、カスパーゼ-1/3/7またはカスパーゼ-3/7によって切断され、ピロトーシス細胞死を誘導することが報告されています7,8。しかし、ニワトリの病原性感染症に対する宿主応答におけるGSDME媒介性ピロトーシスの役割は、まだ解明されていません。

感染性滑液包疾患(IBD)は、IBDV9によって引き起こされる急性で感染力が強く、免疫抑制性の家禽疾患です。IBDVは、非エンベロープ二分節二本鎖(ds)RNAウイルスで、ビルナウイルス科のアビビルナウイルス属に属します10。他の研究者や当研究室によるこれまでの研究では、IBDV感染は異なる経路11,12,13,14を介して宿主細胞の細胞死を誘導することが分かっています。これまでの知見では、IBDV感染が溶解性細胞死の指標である乳酸デヒドロゲナーゼ(LDH)の放出を引き起こすことが実証されており6,15、IBDV感染が宿主細胞の溶解性細胞死を誘導することが示唆されています。さらに、IBDVに感染した細胞は、原形質膜から大きな気泡が吹き出される細胞腫脹やヨウ化プロピジウム(PI)染色陽性など、ピロトーシス細胞死の形態学的特徴を示すことが示されており、IBDV感染が細胞内のピロトーシスを誘導することを示唆しています。

切断されたGSDMのN末端フラグメント(GSDM-NT)によるピロトーシス細胞の膜孔の形成がピロトーシスの特徴であることを考えると、理論的には、特異的抗体を用いて細胞膜上のGSDM-NTを調べることにより、ピロトーシス細胞をフローサイトメトリーで検出できると考えられます。鳥類のピロトーシス細胞では、ニワトリガスデルミンE(chGSDME-NT)のN末端断片が膜孔を形成し、ヨウ化プロピジウム(PI)がDNAを通過して結合することを可能にします。したがって、ピロトーシス細胞の割合はフローサイトメトリーを用いて検出することができ、それによりピロトーシスを他の形態の細胞死、例えばアポトーシスおよび壊死と区別することができる。しかし、フローサイトメトリーによるピロトーシス細胞の検査法は報告されていません。本研究では、DF-1細胞にIBDVを感染させ、chGSDME-NTフラグメント(膜結合)に対するモノクローナル抗体(MCAB)を用いたピロトーシス細胞の検討とPI染色を行った。驚くべきことに、ピロトーシス細胞はフローサイトメトリーによって効果的に検出されました。さらに、ピロトーシス細胞の割合を定量化することができました。これらの知見は、発熱症を判定するための強力で効果的な手段を提供します。

本稿では、IBDV感染細胞のピロトーシスをフローサイトメトリーにより、抗chGSDME-NT McAbおよびPI染色を用いて検討する方法について述べます。この方法は、他の病原体感染細胞にも拡張でき、ピロトーシスを呈するさまざまな細胞タイプを調べるために適用でき、他の形態の細胞死と区別できます。

プロトコル

本試験で使用した試薬および機器の詳細は、 資料表に記載されています。

1. サンプル細胞の調製

  1. DF-1(不死身のニワトリ胚線維芽細胞)細胞を6ウェルプレート(ウェルあたり5 x 105 細胞)で培養し、ダルベッコのModified Eagle Medium(DMEM)に10%ウシ胎児血清(FBS)を添加し、38°Cの5%CO2 インキュベーターで培養します。
  2. 細胞が80%のコンフルエントに達したら、血清含有細胞培養培地を廃棄し、細胞をリン酸緩衝生理食塩水(PBS)で3回洗浄し、各ウェルに2 mLの無血清細胞培養培地を添加します。
  3. IBDV ウイルス溶液(計算された MOI を含む)を各ウェルに追加し、ウイルス溶液と等しい量の DMEM を添加して模擬感染コントロールを設定します。
  4. ウイルス吸着の1時間後、培地を廃棄し、PBSで細胞を3回洗浄し、各ウェルに2%FBSを添加したDMEMを2mL加え、細胞培養を24時間継続します。
  5. IBDV 感染の 24 時間後に、トリプシン処理 (ウェルあたり 500 μL) を 1 分間行い、その後、10% FBS (ウェルあたり 2 mL) を添加した DMEM で中和します。その後、細胞を回収して、フローサイトメトリー用の単一細胞懸濁液を調製する必要があります。
  6. 細胞を400 x g で2〜8°Cで5分間遠心分離します。 ピペットを使用して上清を捨てます。
  7. 細胞ペレットをPBSに再懸濁し、チューブを3秒間穏やかにボルテックスします。
  8. ステップ1.6で説明したように細胞を遠心分離します(400 x g 、2〜8°Cで5分間)。
  9. ステップ1.7およびステップ1.8で説明したように、細胞の洗浄を繰り返します。
  10. 顕微鏡下で血球計算盤を使用して細胞カウントを行います。次に、細胞を適切な量のフローサイトメトリー染色バッファーに再懸濁します(最終細胞濃度が1 x 107 細胞/mLになるように)。サスペンションを静かに渦巻きます。

2. フローサイトメトリーのための細胞染色

  1. ステップ1.10のシングルセル懸濁液100μLを5mLの丸底ポリスチレンチューブ(12 mm×75 mm)に加えます。抗chGSDME-NT/CT 抗体染色用の模擬細胞およびIBDV感染細胞を調製し、アイソタイプコントロールとして正常なマウスIgGを使用します。その間、ブランクコントロールとIBDV感染細胞で染色したシングルチューブを調製します。
  2. Alexa Fluor 647標識抗chGSDME-NT McAb、抗chGSDME-CT MCAB、または正常マウスIgG(アイソタイプコントロールとして)のいずれかを、IBDV感染チューブおよび模擬コントロールチューブにそれぞれ1 μg加えます。その後、チューブを3秒間静かにボルテックスします。
  3. 染色した細胞を2〜8°Cで、または氷上で暗所で30分間インキュベートします。10分ごとにチューブを優しくボルテックスします。
  4. 1 mLのフローサイトメトリー染色バッファーで、400 x g 、2-8°C、5分間遠心分離して細胞を洗浄します。 ピペットを使用して上清を捨てます。
  5. ステップ2.4で説明したように、細胞の洗浄を繰り返します。
  6. ペレットを100 μLのフローサイトメトリー染色バッファーに再懸濁します。
  7. IBDV感染群と模擬感染群の細胞、およびPIシングル染色チューブを10 μg/mLのPIで室温で10分間染色し、続いてフローサイトメトリーアッセイ用のフローサイトメトリー染色バッファー400 μLを添加します。

3. フローサイトメトリーアッセイの実施

  1. フローサイトメーターの電源を入れて装置を初期化し、ソフトウェアを起動します。
  2. まず、ブランクコントロールチューブを動かし、次に1本の染色チューブを動かして、フローサイトメーターの電圧と補正パラメータを調整します。635 nm で発光する FL3 および FL4 蛍光チャネルを使用して、PI および Alexa Fluor 647 蛍光色素をそれぞれ検出します。
  3. すべてのパラメーターを構成したら、すべてのサンプルを順番に実行します。

4. フローサイトメトリーデータの解析

  1. FL4チャンネルヒストグラムで各サンプルのAlexa Fluor 647染色を解析します。
  2. 各サンプル中のダブルポジティブセルの割合を評価するには、FL3/FL4の4象限ドットプロットを利用します。
  3. アイソタイプコントロールのIgG/PIデュアル染色サンプルに基づいて陽性の閾値を設定し、ダブルポジティブ細胞の割合が1%未満に保たれるようにします。このアプローチにより、すべてのサンプル中のダブルポジティブ細胞の割合の測定が容易になります。

結果

IBDV感染したDF-1細胞の膜上のchGSDME-NTは、フローサイトメトリーで容易に検出できる
ピロトーシス細胞の最も重要な特徴の一つは、ガスダーミン切断から生成されるGSDM-NTフラグメントによる膜孔の形成です。したがって、ピロトーシス細胞は、特異的抗体を用いて細胞膜上のGSDM-NTを調べることにより、理論的にはフローサイトメトリーによって?...

ディスカッション

この記事では、Alexa Fluor 647 標識抗 chGSDME-NT MCAB と PI による感染細胞の二重染色により、フローサイトメトリーを使用してピロトーシスを調べる効果的な方法について説明します。このアプローチは、ピロトーシスをアポトーシスや壊死などの他のタイプの細胞死と区別するために、さまざまな細胞タイプにも適用できます。

ピロトーシスは、哺乳類

開示事項

著者は何も開示していません。

謝辞

ジュエ・リュウ博士のご協力に感謝いたします。本研究は、中国国家重点研究開発プログラム(No.2022YFD1800300)、中国国家自然科学基金会(No.32130105)、現代農工業技術研究システム予算基金(No.CARS-40)、中国。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
5 mL round-bottom polystyrene tube (12 × 75 mm)Corning Falcon352052
6 Well Cell Culture PlateCorning3516
Alexa Fluor 647 antibody labeling kitsThermo Fisher ScientificA20186
Anti-chGSDME-CT McAbSAE Biomedical Tech Company (Zhongshan, China)EU0228
Anti-chGSDME-NT McAbSAE Biomedical Tech Company (Zhongshan, China)EU0227
CellQuest softwareBD Biosciences
CO2 incubatorThermo Fisher Scientific3100
Cryogenic Freezing CentrifugeEppendorf5810R
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Gibco by Life TechnologiesC11995500BT
Fetal Bovine Serum (FBS)Sigma-AldrichF0193-500ML
Flow CytometerBD BiosciencesFACSCalibur
Flow Cytometry Staining BufferThermo Fisher Scientific00-4222-26
HemocytometerQiu-jing Biochemical Reagent & Instrument Company (Shanghai, China)YX-JSB52
IBDV Lx strainIBDV Lx strain was kindly provided by Dr. Jue Liu, Beijing Academy of Agriculture and Forestry, Beijing, China
Inverted MicroscopeChongqing Photoelectric Instrument CompanyXDS-1B
Normal Mouse IgGSanta Cruz Biotechnologysc-2025
Phosphate Buffer Saline (PBS)M&C  Gene TechnologyCC017
Propidium Iodide(PI)Sigma-AldrichP4170
Trypsin-EDTA, 0.25%M&C  Gene TechnologyCC008
Vortex OscillatorMIULABMIX-28+

参考文献

  1. He, W. T., et al. Gasdermin D is an executor of pyroptosis and is required for interleukin-1β secretion. Cell Res. 25 (12), 1285-1298 (2015).
  2. Kayagaki, N., et al. Caspase-11 cleaves Gasdermin D for non-canonical inflammasome signalling. Nature. 526 (7575), 666-671 (2015).
  3. Shi, J., et al. Cleavage of GSDMD by inflammatory caspases determines pyroptotic cell death. Nature. 526 (7575), 660-665 (2015).
  4. Angosto-Bazarra, D., et al. Evolutionary analyses of the Dasdermin family suggest conserved roles in infection response despite loss of pore-forming functionality. BMC Biol. 20 (1), 9 (2022).
  5. De Schutter, E., et al. Punching holes in cellular membranes: Biology and evolution of gasdermins. Trends Cell Biol. 31 (6), 500-513 (2021).
  6. Kovacs, S. B., Miao, E. A. Gasdermins: Effectors of pyroptosis. Trends Cell Biol. 27 (9), 673-684 (2017).
  7. Jiang, S., Gu, H., Zhao, Y., Sun, L. Teleost gasdermin E is cleaved by caspase 1, 3, and 7 and induces pyroptosis. J Immunol. 203 (5), 1369-1382 (2019).
  8. Li, H., et al. Duck gasdermin E is a substrate of caspase-3/-7 and an executioner of pyroptosis. Front Immunol. 13, 1078526 (2022).
  9. Müller, H., Islam, M. R., Raue, R. Research on infectious bursal disease-the past, the present and the future. Vet Microbiol. 97 (1), 153-165 (2003).
  10. Müller, H., Scholtissek, C., Becht, H. The genome of infectious bursal disease virus consists of two segments of double-stranded RNA. J Virol. 31 (3), 584-589 (1979).
  11. Cubas-Gaona, L. L., Diaz-Beneitez, E., Ciscar, M., Rodríguez, J. F., Rodríguez, D. Exacerbated apoptosis of cells infected with infectious bursal disease virus upon exposure to interferon alpha. J Virol. 92 (11), (2018).
  12. Duan, X., et al. Epigenetic upregulation of chicken microRNA-16-5p expression in DF-1 cells following infection with infectious bursal disease virus (IBDV) enhances IBDV-induced apoptosis and viral replication. J Virol. 94 (2), e01724 (2020).
  13. Li, Z., et al. Critical role for voltage-dependent anion channel 2 in infectious bursal disease virus-induced apoptosis in host cells via interaction with VP5. J Virol. 86 (3), 1328-1338 (2012).
  14. Rodríguez-Lecompte, J. C., Niño-Fong, R., Lopez, A., Frederick Markham, R. J., Kibenge, F. S. Infectious bursal disease virus (IBDV) induces apoptosis in chicken B cells. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 28 (4), 321-337 (2005).
  15. Wang, S., Liu, Y., Zhang, L., Sun, Z. Methods for monitoring cancer cell pyroptosis. Cancer Biol Med. 19 (4), 398-414 (2021).
  16. Zhang, Y., Chen, X., Gueydan, C., Han, J. Plasma membrane changes during programmed cell deaths. Cell Research. 28 (1), 9-21 (2018).
  17. Chen, X., et al. Pyroptosis is driven by non-selective gasdermin-d pore and its morphology is different from mlkl channel-mediated necroptosis. Cell Research. 26 (9), 1007-1020 (2016).

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