저자
연락처

로그인

JoVE 비디오를 활용하시려면 도서관을 통한 기관 구독이 필요합니다. 전체 비디오를 보시려면 로그인하거나 무료 트라이얼을 시작하세요.

기사 소개

  • 요약
  • 초록
  • 서문
  • 프로토콜
  • 결과
  • 토론
  • 공개
  • 감사의 말
  • 자료
  • 참고문헌
  • 재인쇄 및 허가

요약

이 논문에서는 닭 GSDME(chGSDME-NT) 및 요오드화 프로피듐(PI)의 N 말단 단편에 대한 항체로 이중 염색 후 유세포 분석을 사용하여 발열 세포를 식별하는 방법에 대해 설명합니다.

초록

Pyroptosis는 주로 GSDM(cleaved Gasdermin) 계열 단백질에서 생성된 N-말단에 의한 원형질막 공극의 형성에 의해 유발되는 염증성 유형의 프로그램된 세포 사멸입니다. 웨스턴 블롯(Western Blot)에 의한 멤브레인 부착 GSDM-NT 검사는 발톱증을 평가하는 데 가장 일반적으로 사용되는 방법입니다. 그러나 이 방법을 사용하여 pyroptosis가 있는 세포를 다른 형태의 세포 사멸과 구별하는 것은 어렵습니다. 이 연구에서는 감염성 점액낭 질환 바이러스(IBDV)에 감염된 DF-1 세포를 모델로 사용하여 닭 GSDME(chGSDME-NT)의 N-말단 단편에 대한 특이 항체 및 요오드화 프로피듐(PI) 염색에 대한 특이 항체를 활용하여 유세포 분석을 통해 pyroptosis를 겪는 세포의 비율을 정량화했습니다. chGSDME-NT 양성 세포는 Alexa Fluor 647 표지된 항-chGSDME-NT 항체를 사용하여 유세포 분석으로 쉽게 검출할 수 있었습니다. 또한, IBDV에 감염된 세포에서 chGSDME-NT/PI 이중 양성 세포의 비율(약 33%)은 모의 감염 대조군(P < 0.001)보다 유의하게 높았습니다. 이러한 결과는 유세포 분석에 의한 막 결합 chGSDME-NT의 검사가 세포 사멸을 겪고 있는 세포 중에서 발열 세포를 결정하는 효과적인 접근법임을 나타냅니다.

서문

Pyroptosis는 주로 포유류 1,2,3에서 Gasdermin (GSDM) D에 의한 원형질막 기공의 형성에 의존하는 프로그램된 세포 사멸의 염증성 유형입니다. 닭 4,5에서 GSDMD의 유전적 결핍으로 인해 닭에서 pyroptosis의 메커니즘은 파악하기 어려운 상태로 남아 있습니다. Gasdermin 계열은 GSDMA, GSDMB, GSDMC, GSDMD, GSDME 및 DFNB59 3,6을 포함한 보존 단백질로 구성됩니다. 연구에 따르면 teleost 물고기와 오리의 GSDME는 caspase-1/3/7 또는 caspase-3/7에 의해 절단되어 발열 세포 사멸을 유도합니다 7,8. 그러나 닭의 병원성 감염에 대한 숙주 반응에서 GSDME 매개 pyroptosis의 역할은 아직 밝혀지지 않았습니다.

전염성 점액낭 질환(IBD)은 IBDV9에 의해 유발되는 급성, 전염성이 높은 면역 억제성 가금류 질병입니다. IBDV는 비외피(non-enveloped bi-segmented double-stranded, ds) RNA 바이러스로, Birnaviridae과(10)에 속하는 Avibirnavirus 속에 속합니다. 다른 연구자들과 우리 실험실의 이전 연구에 따르면 IBDV 감염은 다른 경로를 통해 숙주 세포에서 세포 사멸을 유도합니다 11,12,13,14. 이전 연구 결과는 IBDV 감염이 용해 세포 사멸의 지표인 젖산 탈수소효소(LDH)의 방출을 유발한다는 것을 보여주었으며 6,15, 이는 IBDV 감염이 숙주 세포에서 용해 세포 사멸을 유도한다는 것을 시사합니다. 또한, 이 데이터는 IBDV에 감염된 세포가 원형질막에서 불어오는 큰 기포를 동반한 세포 팽창 및 프로피듐 요오드화물(PI) 양성 염색을 포함하여 발열성 세포 사멸의 형태학적 특징을 나타내며, 이는 IBDV 감염이 세포에서 발열증을 유발한다는 것을 시사합니다.

절단된 GSDM(GSDM-NT)의 N-말단 단편에 의한 발열세포 내 막의 형성이 발화증의 특징이라는 점을 고려할 때, 이론적으로는 특정 항체를 사용하여 세포막의 GSDM-NT를 검사하여 유세포법으로 발열세포를 검출할 수 있습니다. 조류 발열 세포에서 닭 Gasdermin E(chGSDME-NT)의 N-말단 단편은 막 공극을 형성하여 프로피듐 요오드화물(PI)이 DNA를 통과하여 결합할 수 있도록 합니다. 따라서, 유세포 분석을 사용하여 pyroptotic cell의 비율을 검출할 수 있으며, 이에 따라 pyroptosis를 apoptosis 및 necrosis와 같은 다른 형태의 세포 사멸과 구별할 수 있습니다. 그러나 유세포 분석에 의한 발열 세포를 검사하는 방법은 보고되지 않았습니다. 이 연구에서는 DF-1 세포를 IBDV에 감염시키고 유세포 분석을 수행하여 chGSDME-NT 단편(막 결합) 및 PI 염색에 대해 단클론 항체(McAb)를 사용하여 열세포 세포를 검사했습니다. 놀랍게도, pyroptotic cell은 유세포 분석에 의해 효과적으로 검출되었습니다. 또한, pyroptotic cell의 비율을 정량화할 수 있었습니다. 이러한 발견은 pyroptosis를 결정하는 강력하고 효과적인 수단을 제공합니다.

이 글에서는 anti-chGSDME-NT McAb 및 PI 염색을 사용하여 유세포 분석으로 IBDV에 감염된 세포의 pyroptosis를 검사하는 방법에 대해 설명합니다. 이 방법은 또한 다른 병원체에 감염된 세포로 확장될 수 있으며 pyroptosis가 있는 다양한 세포 유형을 검사하는 데 적용되어 다른 형태의 세포 사멸과 구별할 수 있습니다.

프로토콜

연구에 사용된 시약 및 장비의 세부 사항은 재료 표에 나열되어 있습니다.

1. 시료 세포의 준비

  1. 38°C의 5% CO2 인큐베이터에서 10% 소 태아 혈청(FBS)이 보충된 Dulbecco의 DMEM(Modified Eagle Medium)을 사용하여 6웰 플레이트(웰당 5 x 10,5개 세포)에서 DF-1(불멸의 닭 배아 섬유아세포) 세포를 배양합니다.
  2. 세포가 80% 합류에 도달하면 혈청 함유 세포 배양 배지를 버리고 인산염 완충 식염수(PBS)로 세포를 세 번 세척한 다음 각 웰에 무혈청 세포 배양 배지 2mL를 추가합니다.
  3. IBDV 바이러스 용액(계산된 MOI 포함)을 각 웰에 추가하고, 바이러스 용액과 동일한 DMEM의 부피를 추가하여 모의 감염 대조군을 설정합니다.
  4. 바이러스 흡착 1시간 후 배양 배지를 버리고 PBS로 세포를 세 번 세척한 다음 2% FBS가 보충된 DMEM 2mL를 각 웰에 추가하고 24시간 동안 세포 배양을 계속합니다.
  5. IBDV 감염 후 24시간 동안 트립신 처리(웰당 500μL)를 1분 동안 수행한 후 10% FBS(웰당 2mL)가 보충된 DMEM으로 중화합니다. 그 후, 세포를 수확하여 유세포 분석을 위한 단일 세포 현탁액을 준비해야 합니다.
  6. 400 x g 에서 2-8 °C에서 5분 동안 세포를 원심분리합니다. 피펫을 사용하여 상층액을 폐기하십시오.
  7. 세포 펠릿을 PBS에 재현탁시키고 튜브를 3초 동안 부드럽게 소용돌이칩니다.
  8. 1.6 단계 (2-8 ° C에서 5 분 동안 400 x g )에 설명 된대로 세포를 원심 분리합니다.
  9. 1.7단계 및 1.8단계에 설명된 대로 세포 세척을 반복합니다.
  10. 현미경으로 혈구계를 사용하여 세포 계수를 수행합니다. 그런 다음 적절한 부피의 유세포 염색 완충액에 세포를 재현탁시킵니다(최종 세포 농도가 1 x 107 cells/mL가 되도록). 서스펜션을 부드럽게 소용돌이치십시오.

2. 유세포 분석을 위한 세포 염색

  1. 1.10단계에서 채취한 단일 세포 현탁액 100μL를 5mL 둥근 바닥 폴리스티렌 튜브(12mm × 75mm)에 추가합니다. 항-chGSDME-NT/CT 항체 염색을 위해 모의 및 IBDV 감염 세포를 준비하고 정상 마우스 IgG를 동형 대조군으로 사용합니다. 한편, IBDV에 감염된 세포가 있는 빈 대조군 및 단일 염색 튜브를 준비합니다.
  2. IBDV 감염 및 모의 대조 튜브에 각각 Alexa Fluor 647 라벨링 anti-chGSDME-NT McAb, anti-chGSDME-CT McAb 또는 정상 마우스 IgG(isotype control)를 1μg을 추가합니다. 그런 다음 튜브를 3초 동안 부드럽게 소용돌이칩니다.
  3. 염색된 세포를 2-8 °C 또는 어두운 곳에서 30분 동안 얼음 위에서 배양합니다. 10분마다 튜브를 부드럽게 소용돌이칩니다.
  4. 400 x g 에서 2-8 °C에서 5분 동안 원심분리하여 1mL의 유세포 분석 염색 완충액으로 세포를 세척합니다. 피펫을 사용하여 상층액을 폐기하십시오.
  5. 2.4단계에서 설명한 대로 세포 세척을 반복합니다.
  6. 펠릿을 100μL의 유세포 분석 염색 완충액에 재현탁시킵니다.
  7. IBDV 감염 그룹 및 모의 감염 그룹 및 PI 단일 염색 튜브의 세포를 실온에서 10분 동안 10μg/mL의 PI로 염색한 다음 유세포 분석을 위해 400μL의 유세포 염색 완충액을 추가합니다.

3. 유세포 분석 수행

  1. 유세포분석기를 켜서 기기를 초기화하고 소프트웨어를 실행합니다.
  2. 먼저 blank control tube를 실행한 다음 단일 stained tube를 실행하여 유세포분석기의 전압 및 보상 매개변수를 조정합니다. 635nm에서 방출하는 FL3 및 FL4 형광 채널을 활용하여 각각 PI 및 Alexa Fluor 647 형광단을 검출합니다.
  3. 모든 매개 변수를 구성한 후 모든 샘플을 순차적으로 실행합니다.

4. 유세포 분석 데이터 분석

  1. FL4 채널 히스토그램에서 각 샘플의 Alexa Fluor 647 염색을 분석합니다.
  2. 각 샘플에서 이중 양성 세포의 비율을 평가하려면 FL3/FL4의 4사분면 점 플롯을 활용하십시오.
  3. isotype control IgG/PI 이중 염색 샘플을 기반으로 양성 임계값을 설정하여 이중 양성 세포의 비율이 1% 미만으로 유지되도록 합니다. 이 접근법은 모든 샘플에서 이중 양성 세포의 비율을 쉽게 측정할 수 있습니다.

결과

IBDV에 감염된 DF-1 세포의 막에 있는 chGSDME-NT는 유세포 분석으로 쉽게 검출할 수 있습니다.
pyroptotic cell의 가장 중요한 특징 중 하나는 Gasdermin 절단에서 생성된 GSDM-NT 단편에 의한 막 기공의 형성입니다. 따라서 pyroptotic cell은 특정 항체를 사용하여 세포막에서 GSDM-NT를 검사하여 유세포 분석으로 이론적으로 검출 할 수 있습니다. 따라서 DF-1 세포를 IBDV에...

토론

이 글에서는 Alexa Fluor 647 표지된 anti-chGSDME-NT McAb 및 PI로 감염된 세포를 이중 염색하여 얻은 유세포 분석을 사용하여 pyroptosis를 검사하는 효과적인 방법에 대해 설명합니다. 이 접근법은 또한 pyroptosis를 apoptosis 및 necrosis와 같은 다른 유형의 세포 사멸과 구별하기 위해 다양한 세포 유형에 적용될 수 있습니다.

포유류 1,2,3...

공개

저자는 밝힐 것이 없습니다.

감사의 말

친절한 도움을 주신 Jue Liu 박사님께 감사드립니다. 이 연구는 중국 국가중점연구개발프로그램(No. 2022YFD1800300), 중국국가자연과학재단(No. 32130105), 현대농업산업기술연구시스템(No. CARS-40), 중국.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
5 mL round-bottom polystyrene tube (12 × 75 mm)Corning Falcon352052
6 Well Cell Culture PlateCorning3516
Alexa Fluor 647 antibody labeling kitsThermo Fisher ScientificA20186
Anti-chGSDME-CT McAbSAE Biomedical Tech Company (Zhongshan, China)EU0228
Anti-chGSDME-NT McAbSAE Biomedical Tech Company (Zhongshan, China)EU0227
CellQuest softwareBD Biosciences
CO2 incubatorThermo Fisher Scientific3100
Cryogenic Freezing CentrifugeEppendorf5810R
Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM) Gibco by Life TechnologiesC11995500BT
Fetal Bovine Serum (FBS)Sigma-AldrichF0193-500ML
Flow CytometerBD BiosciencesFACSCalibur
Flow Cytometry Staining BufferThermo Fisher Scientific00-4222-26
HemocytometerQiu-jing Biochemical Reagent & Instrument Company (Shanghai, China)YX-JSB52
IBDV Lx strainIBDV Lx strain was kindly provided by Dr. Jue Liu, Beijing Academy of Agriculture and Forestry, Beijing, China
Inverted MicroscopeChongqing Photoelectric Instrument CompanyXDS-1B
Normal Mouse IgGSanta Cruz Biotechnologysc-2025
Phosphate Buffer Saline (PBS)M&C  Gene TechnologyCC017
Propidium Iodide(PI)Sigma-AldrichP4170
Trypsin-EDTA, 0.25%M&C  Gene TechnologyCC008
Vortex OscillatorMIULABMIX-28+

참고문헌

  1. He, W. T., et al. Gasdermin D is an executor of pyroptosis and is required for interleukin-1β secretion. Cell Res. 25 (12), 1285-1298 (2015).
  2. Kayagaki, N., et al. Caspase-11 cleaves Gasdermin D for non-canonical inflammasome signalling. Nature. 526 (7575), 666-671 (2015).
  3. Shi, J., et al. Cleavage of GSDMD by inflammatory caspases determines pyroptotic cell death. Nature. 526 (7575), 660-665 (2015).
  4. Angosto-Bazarra, D., et al. Evolutionary analyses of the Dasdermin family suggest conserved roles in infection response despite loss of pore-forming functionality. BMC Biol. 20 (1), 9 (2022).
  5. De Schutter, E., et al. Punching holes in cellular membranes: Biology and evolution of gasdermins. Trends Cell Biol. 31 (6), 500-513 (2021).
  6. Kovacs, S. B., Miao, E. A. Gasdermins: Effectors of pyroptosis. Trends Cell Biol. 27 (9), 673-684 (2017).
  7. Jiang, S., Gu, H., Zhao, Y., Sun, L. Teleost gasdermin E is cleaved by caspase 1, 3, and 7 and induces pyroptosis. J Immunol. 203 (5), 1369-1382 (2019).
  8. Li, H., et al. Duck gasdermin E is a substrate of caspase-3/-7 and an executioner of pyroptosis. Front Immunol. 13, 1078526 (2022).
  9. Müller, H., Islam, M. R., Raue, R. Research on infectious bursal disease-the past, the present and the future. Vet Microbiol. 97 (1), 153-165 (2003).
  10. Müller, H., Scholtissek, C., Becht, H. The genome of infectious bursal disease virus consists of two segments of double-stranded RNA. J Virol. 31 (3), 584-589 (1979).
  11. Cubas-Gaona, L. L., Diaz-Beneitez, E., Ciscar, M., Rodríguez, J. F., Rodríguez, D. Exacerbated apoptosis of cells infected with infectious bursal disease virus upon exposure to interferon alpha. J Virol. 92 (11), (2018).
  12. Duan, X., et al. Epigenetic upregulation of chicken microRNA-16-5p expression in DF-1 cells following infection with infectious bursal disease virus (IBDV) enhances IBDV-induced apoptosis and viral replication. J Virol. 94 (2), e01724 (2020).
  13. Li, Z., et al. Critical role for voltage-dependent anion channel 2 in infectious bursal disease virus-induced apoptosis in host cells via interaction with VP5. J Virol. 86 (3), 1328-1338 (2012).
  14. Rodríguez-Lecompte, J. C., Niño-Fong, R., Lopez, A., Frederick Markham, R. J., Kibenge, F. S. Infectious bursal disease virus (IBDV) induces apoptosis in chicken B cells. Comp Immunol Microbiol Infect Dis. 28 (4), 321-337 (2005).
  15. Wang, S., Liu, Y., Zhang, L., Sun, Z. Methods for monitoring cancer cell pyroptosis. Cancer Biol Med. 19 (4), 398-414 (2021).
  16. Zhang, Y., Chen, X., Gueydan, C., Han, J. Plasma membrane changes during programmed cell deaths. Cell Research. 28 (1), 9-21 (2018).
  17. Chen, X., et al. Pyroptosis is driven by non-selective gasdermin-d pore and its morphology is different from mlkl channel-mediated necroptosis. Cell Research. 26 (9), 1007-1020 (2016).

재인쇄 및 허가

JoVE'article의 텍스트 или 그림을 다시 사용하시려면 허가 살펴보기

허가 살펴보기

더 많은 기사 탐색

PyroptosisGSDMIBDVDF 1ChGSDME NT

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

개인 정보 보호

이용 약관

정책

연락처

사서에게 추천하기

JoVE 뉴스레터

연구

교육

저자

사서

JoVE 소개

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. 판권 소유