私たちは、プロトコルを編集助けマリアーニ研究室のメンバーに感謝。この作品はCIRMポスドクトレーニンググラント（JLF）、CIRM BRIDGESのインターンシップ（TZTT）、ロバート·Eと5月R.ライト財団（FVM）と、南カリフォルニア大学（FVM）によって賄われていた。

1。マウス胚のLysoTracker染色<ol><li>男性のスタッドケージに若い（5-6週齢）の雌を配置することによって、マウスの胚を生成します。その交配を示す膣栓の外観については、次の朝にはモニタが発生しました。女性が妊娠している場合は、その日の正午は0.5 DPC（日後に性交）と呼ばれています。ここで紹介する手順は、胚7月13日DPCに最適です。 </li><li>興味のある胚当日は、承認されたプロトコルに従って女性を安楽死させると子宮を取り除く。ハンクスBSS（フェノールレッドなし）10cmペトリ皿の中の脱落膜から胚を取り出します。胚外膜を取り出して、少なくとも一つは無関係な組織や血液を除去するためにハンクスBSSとすすぎん。 </li><li> LysoTracker胚の染色液（ハンクスBSS内の5mM LysoTracker）を準備します。 1から2リットルのための便利な音量は5ミリリットルです。優しく均等に染料を支払うために混ぜる。 </li><li> LysoTracker胚の染色solutをに胚を追加45分間微量遠心チューブまたは37℃でインキュベートしたバイアル内のイオン。 </li><li>ハンクスBSSに非常に穏やかに4回、各5分間洗浄をすすぐ。 </li><li>一晩4％パラホルムアルデヒドで固定してください。 </li><li>修正プログラムを削除するには、ハンクスBSS、10分に一回すすいでください。 </li><li>バックグラウンド染色を排除するためにメタノールシリーズ（50％、75％、80％、100％、5分間の各ステップ）を介して脱水する。これは、撮像時に良好な信号対雑音比を達成するために重要です。 </li><li>この時点で、光から保護し、-20℃でメタノールで無期限胚サンプルを格納することができます。 </li></ol> 注：組織サンプルをDNAタイピングのための任意のステップで撮影することができます、しかし、それはここまでのステップに全てのサンプルをバッチ処理できるように単に保存する前に、サンプルを取るために最も便利なことができます。各胚から尾、四肢、あるいは頭部から組織のサンプルを採取し、別のチューブにすべて置く。組織サンプルを再水和するとgenotyための準備pingを実行します。 2。 ESの文化を差別化LysoTracker染色<ol><li> 20μlのドロップあたり500細胞の密度で始まるハンギングドロップ法15を介して胚様体を準備します。 </li><li> 3日後、非接着ペトリ皿（細菌学的仕事のために使用されているもの、 すなわち ）10 CMに懸濁培養に胚様体を転送します。 2日ごとにメディアを変え5日間培養し、。 </li><li> 7日目に、糊化8ウェルチャンバースライドに胚様体を転送（チャンバーに0.1％ゼラチンを加え、5分待ってから削除して、メディアを追加します）。室あたり1-2胚様体を転送します。 </li><li>一日おきにメディアを変える10日間培養。ガラス表面に付着した胚様体を乱さないようにするようにチャンバースライドの隅にピペットを置くように注意してください。また、新鮮な培地を追加するときにはまた、室内の隅にピペットを置き、徐々にメディアを解放します。 </li><li>カルトの10日後UREは、ポジティブコントロールとしてアポトーシスを誘導するために、0.1 mMおよび1.0mMのH 2 O 2を用いた井戸のいくつかを扱う60分間（新鮮なメディア、ミックスにH 2 O 2を追加して、セルに追加します）。 D-PBSと通常のメディアで一晩培養した培養液で二回すすぎ。 </li><li>優しく、既存のメディアを吸引し、LysoTracker細胞染色液（メディアで500nMのLysoTracker（最終濃度）、チャンバーあたり300μl）を追加します。 </li><li> 15分間37℃でインキュベートする。 </li><li> D-PBSで2回、各5分間で二回すすぎ。 </li><li>室温で15分間、4％パラホルムアルデヒドで固定してください。 </li><li> D-PBS、5分で二回すすぎ。 </li></ol> 3。 LysoTrackerのステンド胚またはES文化の表示<ol><li>空気は、約5分間乾燥させ;;スライドオフ室を除去する工程; D-PBSを吸引することにより顕微鏡用細胞サンプルを準備してから、水性封入剤（DAPIでVectashieldまたは類似の）を加える。 dryinながら箔障壁を置き蛍光色素の漂白減少するグラム。 Vectashieldまたは類似の深いうつ病のガラス皿や小さなシャーレに胚をマウントします。 </li><li>ローダミンまたはテキサスレッドフィルター（：590分の577 nmのLysoTrackerレッドDND-99、励起/発光）を装備解剖または化合物を顕微鏡で可視化する。染色は、一般的にかなり明るいですので、長時間露光は通常必要ありません。 </li></ol> 4。イメージング技術を使用した結果の定量化<ol><li>マニュアルモードで同じ露光条件の下であなたのサンプルのデジタル写真を撮る。 </li><li> Adobe Photoshopまたは類似のイメージングプログラムで画像を開きます。 LysoTracker染色の量を調べるには、赤チャンネルおよびしきい値を選択し、赤い染色が今、白いピクセルで表されるようなイメージ（白黒に画像を変換します）。白のピクセルを選択し、合計カウントを取得するためにヒストグラム関数を使用します。 </li><li>カウントする青色チャネルを使用フィールド内の核の数。これは、画像に注釈を付けることにより、カウントの記録を保管しておくことができます。 </li><li>値を記録した後、セル当たりの平均染色レベルを計算します。サンプルを取りたいすべての画像に同じしきい値設定でこの分析を繰り返します。 </li></ol> 5。代表的な結果そのようなソニックヘッジホッグ（Shh）などの増殖因子遺伝子は、16,17を削除されたときに変更することができます胚の発生過程で、PCDの正常なパターンがあります。 LysoTrackerは非常に拡散性のある小分子色素であるため、全胚は、間葉12,13の奥深くにあってもPCDエリアを評価することが可視化することができる図1は正常と ShhのためLysoTracker染色パターンを示している- / -変異マウス胚で10.5dpc。特に四肢及び体節レジオで、変異胚- / -この段階では、PCDは大幅に増加さシーッNS。胚の部分が全体のパターンを評価するために、高倍率（1B）でホールマウントで撮像することができる。切開部分も振動ミクロトーム（1C）以上詳細にPCDの領域を明らかにするクライオスタット（DF）との区分けすることができます。 TUNEL分析は最高のターミナルトランスフェラーゼの浸透が少ない問題がある薄いセクションで行われます。 LysoTracker染色とTUNELアッセイは、同じ組織（ 図1D-G）で行うことができます。これらの結果は、LysoTrackerとTUNEL染色、かなりPCDの重なりの一般的な領域の間の厳密な1時01分の相関関係がありませんが。高倍率で、それはLysoTracker染料のみで染色することpuncta、TUNELアッセイとなくLysoTracker染料で陽性に染色することpunctaを参照することが可能となり、puncta染色が重複していること。 EBは、ゼラチンでコーティングされた表面上にメッキされると、分化細胞がmigratますeが外側。培養10日後に、細胞を神経細胞、筋肉細胞、心筋細胞を含む種々の細胞型に分化しているでしょう。 図2に示されている文化はこれらの細胞型の混合集団を含んで、しかし1は、関心のある特定の細胞型のPCD研究する我々のプロトコルを適応させることができます。例えば、EBは19ニューロンの分化を促進するためにレチノイン酸で処理することができ、その後LysoTrackerアッセイは異なる条件下で神経細胞死を評価するために使用することができる。分化したES細胞の正常な文化では、PCDを受け、これらがLysoTracker及び/又はTUNELアッセイ（ 図2A）を用いて検出することができる少数の細胞があります。 PCDは、そのような酸化的損傷を誘導し、アポトーシス経路20,21を開始過酸化水素（H 2 O 2）などの異なる細胞毒性薬の数によって誘導することができる。 H 2 O 2の低用量の両方を増加させるLysoTrackerとTUNEL染色では、無治療と比較して、細胞収縮と広範LysoTrackerおよびTUNEL陽性で高用量の結果ながら。胚における結果と同様に、それはLysoTracker染料のみで染色することpuncta、TUNELアッセイとなくLysoTracker染料で陽性に染色することpunctaを参照することが可能となり、puncta染色が重複していること。 apopotosisを誘導する細胞毒性剤の適用の結果は、オートファジー（ 図2D）を誘発血清飢餓状態と比較されます。血清飢餓の期間（1時間）を受けた細胞がLysoTrackerとTUNEL染色は非常に相関していない別のパターンを示す。 LysoTracker染色は非常にしかし、TUNEL陽性が正常なレベルであり、未治療の文化と比較して増加しています。 Adobe Photoshopで利用できる標準的なツール採用、LysoTracker染色は、単純なしきい値法で定量化することができるそれは、1つの細胞集団の平均染色レベルを計算することができます。 図3A-Bは 、サンプル画像が定量化プロセスの間にどのように見えるかを示しています。 LysoTrackerの赤チャンネルの染色および青チャネル（パネル3A）において、DAPI染色された核を持つベースラインイメージを皮切りに、この画像の赤チャンネルが白黒に画像を変換するためにしきい値処理と白のピクセルがあった次に、選択した（ 図3A &#39;）カウント。しきい値レベルはLysoTrackerの染色パターンを表していることを選ばれました。画像を使用する任意の定量法と同様に、これは潜在的に過剰強調差が生じる可能性があるので、あなたの写真をover​​exposing避けるために重要です。フィールド内の核の数は、ちょうど青チャンネル（ 図3B）を見ていると（ 図3B &#39;）数えながらそのような絵筆などの描画ツールを使って核をマークすることでカウントすることができます。一つは、次に目を表現することができますセルごとに染色の平均レベルを算出することで染色の電子レベル（画素/核のカウント数）。ハイスループット·スクリーニングのためにこのアルゴリズムを使用する1つの願いをした場合、ほとんどのスクリーニングパッケージは、特定のチャネルで明るさを測り、またフィールドで核をカウントするオブジェクト識別子の機能を持たせることができる、しかし、最も一般的なアプリケーション用に手動の方法は迅速であり、シンプル。例を挙げれば、 図2A-Cからサ ​​ンプル領域を定量化し、その結果がLysoTracker染色（ 図3C）のより高いレベルでのH 2 O 2の結果の濃度を増加させていることを確認した。 <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig1.jpg" alt="図1"/> 図1。 - / -胚ノーマルとShhでLysoTracker染色。 、 &#39;ノーマルと Shh - / - LysoTrackerレッドで染色10.5 DPC、、でマウス胚はVectashieldに取り付けられ、下で撮影epiflourescence解剖顕微鏡。ブラケットは、前肢の位置を示すA、B、B &#39;は正常とShhの前肢- / -胚は高い倍率で結像する。 &#39;事後壊死ゾーン&#39;（アスタリスク付き）および肢芽間充織の近位（矢印でマークされている）で領域を含む細胞死の正常なドメインに注意してください。Shhのヌル手足が内側と遠位部で強い染色を示すC、C &#39;。ノーマルとヌルの両方肢芽の前肢芽を通じて前頭セクション。ヌル肢芽内の正常な肢芽と背側と腹側および遠位の間充織内で強い染色の近充織（矢印）とAER（矢じり）で染色の存在に注意してください。DF。同じセクション（12ミクロン、凍結セクション）LysoTrackerとTUNEL染色（ロッシュ1684795）のために画像化した。セクションは 、Shhヌルmesencの遠位部を通過するhyme。 AERに矢印を指しています。全体的なパターンは、両方の方法を使用して非常に類似している方法は、しかし染色は完全に重ならないように注意してください。G、G &#39;。AERと間葉の高倍率で、一つはLysoTrackerまたはTUNEL陽性アールpunctaの存在の両方を見ることができます染色が重複しているpunctaのみだけでなく、。 <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig2.jpg" alt="図2"/> 図2。分化したES細胞の染色LysoTracker。分化細胞は、LIFの不在下で8チャンバースライドに播種した。オートファジー経路は血清飢餓の1時間を使って誘導されながらLysoTrackerとTUNEL染色を比較する方法を示すために、アポトーシス経路は、H 2 O 2の2つの異なる用量で誘発された。これらの画像はツァイスLSM5共焦点顕微鏡で撮影した- &#39;&#39;：。未処理培養物LysoTによって示されるように、いくつかの正常なアポトーシスを示すラッカーとTUNEL染色。ほとんど両方の技術の重複を（白矢印）を使用してパターンは、しかし、1つは正のLysoTrackerあるいくつかpunctaを見ることができます（赤矢印） のB-B &#39;、C-C &quot;：H 2の量を増加による治療O 2がアポトーシスを刺激。低用量は、未処理細胞と比較して、よりLysoTrackerとTUNEL陽性punctaを示しています。のみLysoTrackerが陽性であることpunctaに赤い矢印がポイントしながら、より高い線量は、染色が重なって、さらにLysoTrackerとTUNEL陽性puncta。白い矢印ポイントに誘導する。それはTUNEL染色（緑の矢印）のみ陽性であるpunctaを参照することも可能ですDD &quot;：血清飢餓は、リソソームとautophagolysosomesで材料の蓄積を刺激することができるオートファジーを誘導することができます。未処理培養に比べて表示されているどのように多くのLysoTrackerのpunctaに注意してください。 TUNEL陽性punctaが存在しています（このうちのほとんどがLysoTracker染色重複しているり、白矢印）が、しかし、数は、未処理の条件に比べて大幅に増加していません。また、血清飢餓条件下で、LysoTracker専用ポジティブpunctaは非常に普及している（赤矢印）。 <img src="/files/ftp_upload/4254/4254fig3.jpg" alt="図3"/> 図3。 Adobe Photoshopを使用して細胞集団における染色のレベルを評価するための定量法。 ：図2Aの部分が選ばれたとLysoTracker（赤チャンネル）とDAPI染色（核、青のチャンネル）がこのパネルに表示されます&#39;：図3Aの赤チャンネルはに変換するために閾値処理された黒と白のイメージ。白のピクセルが選択され、次にヒストグラム機能を使用してカウントすることができ、B-B &#39;：。青チャンネルは核を示しており、その数をカウントしながら、画像は、絵筆などの描画機能を付けることができますC：これは、EXですパネル2A〜Cからのサンプルの十分な定量化。データは、核あたりのピクセル数として表されます。 <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/4254/4254fig3large.jpg" target="_blank">拡大図を表示するには、ここをクリックしてください</a> 。

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特別な利害関係は宣言されません。

アポトーシスの重要な特徴は、カスパーゼ活性の検出と共にTUNELアッセイによるDNA損傷、（例えばZVAD-FMKとしてmAbまたは結合分子で検出）の検出、細胞の変化を観察し、ホスファチジルセリン（PSのプレゼンテーションを含める膜表面上）（アネキシンV結合によって検出された）。これらのアッセイのそれぞれのいくつかの欠点があります。例えば、TUNELアッセイで使用されるターミナルトラ?...

<table border="1"><tbody><tr><td> 試薬の名称 </td><td> 会社 </td><td></td><td> カタログ番号 </td></tr><tr><td> LysoTrackerレッドDND-99 </td><td>インビトロジェン</td><td> ＃L-7528 </td><td></td></tr><tr><td>ハンクスBSS </td><td>インビトロジェン</td><td> 14025-076 </td><td></td></tr><tr><td>パラホルムアルデヒド</td><td> EMD </td><td> EM-PX0055-3 </td><td></td></tr><tr><td> Vectashield </td><td> VECTOR </td><td> H-1200 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Cellgro </td><td> 10から013-CV </td><td></td></tr><tr><td>非必須アミノ酸</td><td> Cellgro </td><td> 25から025-CI </td><td></td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム</td><td> Cellgro </td><td> 25から000-CI </td><td></td></tr><tr><td> FBS </td><td> Hyclone社</td><td> SH30071.02 </td><td></td></tr><tr><td>ペンのStrep </td><td>インビトロジェン</td><td> 15140-122 </td><td></td></tr><tr><td> b-メルカプトエタノール、50mMの</td><td>インビトロジェン</td><td> 21985-023 </td><td></td></tr><tr><td> LabTek-Ⅱチャンバースライド （8ウェル） </td><td> Nalgeヌンクインターナショナル</td><td> 154534 </td><td></td></tr><tr><td> 0.1％ゼラチン</td><td>ミリポア</td><td> ES-006-B </td><td></td></tr><tr><td>ダルベッコPBS（D-PBS） </td><td> Cellgro </td><td> 21から031-CV </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td>ソリューションレシピ 4％パラホルムアルデヒド 100ミリリットルの場合： <ol><li> 4グラムのパラホルムアルデヒド、90 mlのH 2 O、およびNaOHを（2N NaOHの滴）混ぜます。あなたはpHを上昇させるためにいくつかのNaOHを追加するまでは、パラホルムアルデヒド溶液中に行くことはありません。 </li><li>すべての粉末が溶液（〜10月20日分）になるまで60℃で撹拌し、熱。 過熱しないでください。 </li><li> 100ミリリットルの最終体積を達成するために〜10ミリリットル10倍のPBSを追加します。 </li><li>便利（〜10mlまたは〜40ml）に分注して-20℃で保存。 </li></ol> 警告： &#39;フリル&#39;の形式でパラホルムアルデヒド（圧縮された小さなペレット）小さい粉状であるため、フードの外で測定することができます。しかし、あなたはまだ防塵マスク（N95を着用する必要があります取扱い中）少なくとも。 EB文化メディア 500ミリリットルEBメディアの場合： <table border="1"><tbody><tr><td> DMEM： </td><td> 404.5ミリリットル </td></tr><tr><td> FBS： </td><td> 75.0ミリリットル</td></tr><tr><td> L-グルタミン： </td><td> 5.0ミリリットル</td></tr><tr><td>ペニシリン/ストレプトマイシン： </td><td> 5.0ミリリットル</td></tr><tr><td>非必須アミノ酸： </td><td> 5.0ミリリットル</td></tr><tr><td>ピルビン酸ナトリウム： </td><td> 5.0ミリリットル</td></tr><tr><td> β-メルカプトエタノール： </td><td> 500μlの</td></tr></tbody></table></td></tr></tbody></table>

use of lysotracker to detect programmed cell death in embryos and differentiating embryonic stem cells

プログラム細胞死（PCD）は、通常の組織の恒常性を維持し、胎生発育中の組織や臓器1,2,6,7を形作るために成人に発生します。開発時には、有毒化学物質や遺伝子の変化は、PCDの増加の原因になったり、発育異常、先天性異常、結果3-5で、PCDのパターンを変更することができます。これらの欠陥の原因を理解するために、胚の研究は、胚性幹（ES）細胞を分化使用in vitroアッセイで補完することができます。 アポトーシスは、カスパーゼ酵素カスケードを活性化するシグナル伝達内因性及び外因性の両方が関与し、PCDのよく研究形態である。特徴的な細胞の変化は、膜ブレブ形成、核の縮小、およびDNA断片化が含まれています。 PCDの他の形態は、カスパーゼの活性化を伴わないと長引くオートファジーの最終結果かもしれません。かかわらず、PCD経路の、死細胞を除去することが必要。成人では、免疫細胞PERF胚では、免疫系がまだ発達していない場合には、除去、代替メカニズムによって発生している間は、この機能をORM。このメカニズムは、貪食役割彼らは瀕死細胞と巻き込むこと8月10日の表面に&quot;私を食べて&quot;信号を認識する上で取る隣接するセル（以下、 &quot;非専門食細胞&quot;と呼ばれる）が含まれます。貪食した後、破片が分解のためのリソソームに運ばれます。したがってかかわらずPCD機構は、リソソーム活性の上昇は、細胞死の増加と相関させることができる。 PCDは、厚い組織と多層差別の文化ではリソソームを可視化するための単純な検定を勉強しておくと便利です。 LysoTracker染料は、リソソーム11月13日のような酸性の細胞内区画内に保持される溶解性の高い小分子である。色素が拡散によって、循環を通じて取り上げられています。浸透は支障はないので、厚い組織と多層培養におけるPCDの可視化が可能である12,13 </&gt;（商標）。手順は、端末のエントリ/透トランスフェラーゼを必要とするので、これとは対照的に、TUNEL（ターミナルデオキシヌクレオチジルトランスフェラーゼdUTPニック末端標識）解析14は 、小さなサンプル、組織切片、及び単層培養に制限されています。 拡散し、溶剤によって溶解されるアニリンブルー、とは対照的に、LysoTrackerレッドDND-99は、修正可能な明るく、かつ安定しています。染色はホールマウントまたは水性または溶剤ベースマウントメディア12,13を使用して、セクション内の標準的な蛍光または共焦点顕微鏡を用いて可視化することができます。ここではノーマルとソニックヘッジホッグヌルのマウス胚でPCDを見て、この染料を使用してプロトコルを記述。加えて、我々はES細胞培養物の区別にPCDの分析を示し、単純な定量化法を提案する。要約すると、LysoTracker染色は、PCDを検出する他の方法に大きな補完することができます。

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Use of LysoTracker to Detect Programmed Cell Death in Embryos and Differentiating Embryonic Stem Cells

我々は、マウス胚とLysoTrackerと呼ばれる非常に水溶性染料を使用して差別化胚性幹（ES）細胞培養でプログラムされた細胞死（PCD）の領域を可視化するための単純なプロトコルを提示。

胚におけるプログラム細胞死を検出するためのLysoTrackerの使用は、胚性幹細胞を分化

Programmed cell death (PCD) occurs in adults to maintain normal tissue homeostasis and during embryological development to shape tissues and ...

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23.0K ビュー.  University of Southern California. 我々は、マウス胚とLysoTrackerと呼ばれる非常に水溶性染料を使用して差別化胚性幹（ES）細胞培養でプログラムされた細胞死（PCD）の領域を可視化するための単純なプロトコルを提示。

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Dissection of 6.5 dpc Mouse Embryos

Analysis of gene expression patterns during early stages of mammalian embryonic development can provide important clues about gene function, cell-cell interaction and signaling mechanisms that guide embryonic patterning. However, dissection of the mouse embryo from the decidua shortly after implantation can be a challenging procedure, and detailed step-by-step documentation of this process is lacking.

Here we demonstrate how post-implantation (6.5 dpc) embryos are isolated by first dissecting the uterus of a pregnant mouse (detection of the vaginal plug was designated day 0.5 poist coitum) and subsequently dissecting the embryo from maternal decidua. The dissection of Reichert's membrane is described as well as the removal of the ectoplacental cone.

Isolation of postimplantation-stage embryos allows one to study gene patterning and analyze cell-lineage decision making processes during embryonic development, but proper dissection of the early embryo can be challenging. This protocol describes a method for isolating early primitive-streak-stage embryos (~6.5 days post coitum [dpc]).

6.5 DPCのマウス胚の解剖

Analysis of gene expression patterns during early stages of mammalian embryonic development can provide important clues about gene function, cell-cell ...

生物学

Derivation of Hematopoietic Stem Cells from Murine Embryonic Stem Cells

A stem cell is defined as a cell with the capacity to both self-renew and generate multiple differentiated progeny.  Embryonic stem cells (ESC) are derived from the blastocyst of the early embryo and are pluripotent in differentiative ability.  Their vast differentiative potential has made them the focus of much research centered on deducing how to coax them to generate clinically useful cell types.  The successful derivation of hematopoietic stem cells (HSC) from mouse ESC has recently been accomplished and can be visualized in this video protocol.  HSC, arguably the most clinically exploited cell population, are used to treat a myriad of hematopoietic malignancies and disorders.  However, many patients that might benefit from HSC therapy lack access to suitable donors.  ESC could provide an alternative source of HSC for these patients.  The following protocol establishes a baseline from which ESC-HSC can be studied and inform efforts to isolate HSC from human ESC.  In this protocol, ESC are differentiated as embryoid bodies (EBs) for 6 days in commercially available serum pre-screened for optimal hematopoietic differentiation.  EBs are then dissociated and infected with retroviral HoxB4.  Infected EB-derived cells are plated on OP9 stroma, a bone marrow stromal cell line derived from the calvaria of  M-CSF-/- mice, and co-cultured in the presence of hematopoiesis promoting cytokines for ten days.  During this co-culture, the infected cells expand greatly, resulting in the generation a heterogeneous pool of 100s of millions of cells.  These cells can then be used to rescue and reconstitute lethally irradiated mice.

This protocol details the derivation of transplantable hematopoietic stem cells from mouse embryonic stem cells (ESC) and their subsequent injection into lethally irradiated recipient mice. Briefly, ESC are differentiated as embryoid bodies, which are then infected with retroviral HoxB4 and co-cultured with OP9 stromal cells and hematopoietic cytokines.

マウス胚性幹細胞から造血幹細胞の導出

A stem cell is defined as a cell with the capacity to both self-renew and generate multiple differentiated progeny.  Embryonic stem cells (ESC) are ...

Derivation of Human Embryonic Stem Cells by Immunosurgery

The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both medical applications and as a research 
tool for addressing fundamental questions in development and disease. Here, we provide a 
concise, step-by-step protocol for the derivation of human embryonic stem cells from embryos 
by immunosurgical isolation of the inner cell mass. 


The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both medical applications and as a research 
tool for addressing fundamental questions in development and disease. Here, we provide a 
concise, step-by-step protocol for the derivation of human embryonic stem cells from embryos 
by immunosurgical isolation of the inner cell mass.

免疫手術でヒト胚性幹細胞の導出

The ability of human embryonic stem cells to self-renew and differentiate into all cell types of 
the body suggests that they hold great promise for both ...

Preparation of embryos for Electron Microscopy of the Drosophila embryonic heart tube

The morphogenesis of the Drosophila embryonic heart tube has emerged as a valuable model system for studying cell migration, cell-cell adhesion and cell shape changes during embryonic development. One of the challenges faced in studying this structure is that the lumen of the heart tube, as well as the membrane features that are crucial to heart tube formation, are difficult to visualize in whole mount embryos, due to the small size of the heart tube and intra-lumenal space relative to the embryo. The use of transmission electron microscopy allows for higher magnification of these structures and gives the advantage of examining the embryos in cross section, which easily reveals the size and shape of the lumen. In this video, we detail the process for reliable fixation, embedding, and sectioning of late stage Drosophila embryos in order to visualize the heart tube lumen as well as important cellular structures including cell-cell junctions and the basement membrane.

Preparation of embryos for Electron Microscopy of the Drosophila embryonic heart tube

We describe a process for fixation, embedding, sectioning, and imaging of late stage Drosophila embryos for Trasmission Electron Microscopy of the embryonic heart tube. This technique allows for the visualization of the heart tube lumen as well as the basement membrane, which lines the lumen of the heart.

の電子顕微鏡のための胚の調製ショウジョウバエ胎児心臓の管

The morphogenesis of the Drosophila  embryonic heart tube has emerged as a valuable model system for studying cell migration, cell-cell adhesion and cell ...

Isolation and Derivation of Mouse Embryonic Germinal Cells

The ability of embryonic germinal cells (EG) to differentiate into primordial germinal cells (PGCs) and later into gametes during early developmental stages is a perfect model to address our hypothesis about cancer and infertility. This protocol shows how to isolate primordial germinal cells from developing gonads in 10.5-11.5 days post coitum (dpc) mouse embryos.  Developing gonadal ridges from mouse embryos (C57BL6J) were dissociated by mechanical disruption with collagenase, then plated in a mouse embryo fibroblast feeder layer (MEF-CF1) that was previously mitotically inactivated with mitomycin C in the presence of knockout media and supplemented with Leukemia Inhibitor Factor (LIF), basic Fibroblast Growth Factor (bFGF), and Stem Cell Factor (SCF).  Using these optimized methods for PCG identification, isolation, and establishment of culture conditions permits long term cultures of EG cells for more than 40 days.  The embryonic germinal cell lines showed embryonic phenotype and expression of common used markers of the pluripotent state.  Isolation and derivation of germinal cells in culture provide a tool to understand their development in vitro and offer the opportunity to monitor cumulative damage at genetic and epigenetic levels after exposure to oxidative stress.

The ability of embryonic germinal cells to differentiate into primordial germinal cells during early development stages is a perfect model to address our hypothesis about cancer and infertility. This protocol shows how to isolate primordial germinal cells from developing gonads in 10.5-11.5 days post coitum mouse embryos.

マウスES胚細胞の単離と導出

The ability of embryonic germinal cells (EG) to differentiate into primordial germinal cells (PGCs) and later into gametes during early developmental ...

Video Bioinformatics Analysis of Human Embryonic Stem Cell Colony Growth

Because video data are complex and are comprised of many images, mining information from video material is difficult to do without the aid of computer software.  Video bioinformatics is a powerful quantitative approach for extracting spatio-temporal data from video images using computer software to perform dating mining and analysis. In this article, we introduce a video bioinformatics method for quantifying the growth of human embryonic stem cells (hESC) by analyzing time-lapse videos collected in a Nikon BioStation CT incubator equipped with a camera for video imaging. In our experiments, hESC colonies that were attached to Matrigel were filmed for 48 hours in the BioStation CT.  To determine the rate of growth of these colonies, recipes were developed using CL-Quant software which enables users to extract various types of data from video images.  To accurately evaluate colony growth, three recipes were created. The first segmented the image into the colony and background, the second enhanced the image to define colonies throughout the video sequence accurately, and the third measured the number of pixels in the colony over time.  The three recipes were run in sequence on video data collected in a BioStation CT to analyze the rate of growth of individual hESC colonies over 48 hours. To verify the truthfulness of the CL-Quant recipes, the same data were analyzed manually using Adobe Photoshop software. When the data obtained using the CL-Quant recipes and Photoshop were compared, results were virtually identical, indicating the CL-Quant recipes were truthful. The method described here could be applied to any video data to measure growth rates of hESC or other cells that grow in colonies. In addition, other video bioinformatics recipes can be developed in the future for other cell processes such as migration, apoptosis, and cell adhesion.  

Video bioinformatics is the automated processing, analysis, understanding, and data mining of biological spatio-temporal data extracted from microscopic videos. The purpose of this article is to demonstrate a method for measuring human embryonic stem cell colony growth using a video bioinformatics method.

ヒト胚性幹細胞のコロニーの成長のビデオバイオインフォマティクス解析

Because video data are complex and are comprised of many images, mining information from video material is difficult to do without the aid of computer ...

Differentiation of Embryonic Stem Cells into Oligodendrocyte Precursors

Oligodendrocytes are the myelinating cells of the central nervous system. For regenerative cell therapy in demyelinating diseases, there is significant interest in deriving a pure population of lineage-committed oligodendrocyte precursor cells (OPCs) for transplantation. OPCs are characterized by the activity of the transcription factor Olig2 and surface expression of a proteoglycan NG2. Using the GFP-Olig2 (G-Olig2) mouse embryonic stem cell (mESC) reporter line, we optimized conditions for the differentiation of mESCs into GFP+Olig2+NG2+ OPCs. In our protocol, we first describe the generation of embryoid bodies (EBs) from mESCs. Second, we describe treatment of mESC-derived EBs with small molecules: (1) retinoic acid (RA) and (2) a sonic hedgehog (Shh) agonist purmorphamine (Pur) under defined culture conditions to direct EB differentiation into the oligodendroglial lineage. By this approach, OPCs can be obtained with high efficiency (&gt;80%) in a time period of 30 days. Cells derived from mESCs in this protocol are phenotypically similar to OPCs derived from primary tissue culture. The mESC-derived OPCs do not show the spiking property described for a subpopulation of brain OPCs in situ. To study this electrophysiological property, we describe the generation of spiking mESC-derived OPCs by ectopically expressing NaV1.2 subunit. The spiking and nonspiking cells obtained from this protocol will help advance functional studies on the two subpopulations of OPCs.

We describe a small molecule-based protocol for differentiation of mouse embryonic stem cells into oligodendrocyte precursor cells (OPCs). This protocol generates Olig2+NG2+ OPCs with high efficiency by 30 days of differentiation. We also describe a method to generate "spiking" OPCs that can fire action potentials.

オリゴデンドロサイト前駆体に胚性幹細胞の分化

Oligodendrocytes are the myelinating cells of the central nervous system. For regenerative cell therapy in demyelinating diseases, there is significant ...

Fate Mapping of Human Embryonic Stem Cells by Teratoma Formation

Human embryonic stem cells (hESCs) have an unlimited capacity for self-renewal, and the ability to differentiate into cells derived from all three embryonic germ layers (1). Directed differentiation of hESCs into specific cell types has generated much interest in the field of regenerative medicine (e.g., (2-5)), and methods for determining the in vivo fate of selected or manipulated hESCs are essential to this endeavor. We have adapted a highly efficient teratoma formation assay for this purpose. A small number of specifically selected hESCs is mixed with undifferentiated wild type hESCs and Phaseolus vulgaris lectin to form a cell pellet. This is grafted beneath the kidney capsule in an immunodeficient mouse. As few as 2.5 x 105 hESCs are needed to form a 16 cm3 teratoma within 8-12 weeks. The fate of the originally selected hESCs can then be determined by immunohistochemistry. This method provides a valuable tool for characterizing tissue-specific reagents for cell-based therapy.

Directed differentiation of hESCs into specific cells has generated much interest in regenerative medicine. We provide a concise, step-by-step protocol for determining the in vivo fate of selected hESCs that provides a valuable tool for characterizing tissue-specific reagents for cell-based therapy.

テラトーマ形成により、ヒト胚性幹細胞の運命のマッピング

Human embryonic stem cells (hESCs) have an unlimited capacity for self-renewal, and the ability to differentiate into cells derived from all three ...

Whole-mount Immunohistochemical Analysis for Embryonic Limb Skin Vasculature: a Model System to Study Vascular Branching Morphogenesis in Embryo

Whole-mount immunohistochemical analysis for imaging the entire vasculature is pivotal for understanding the cellular mechanisms of branching morphogenesis. We have developed the limb skin vasculature model to study vascular development in which a pre-existing primitive capillary plexus is reorganized into a hierarchically branched vascular network. Whole-mount confocal microscopy with multiple labelling allows for robust imaging of intact blood vessels as well as their cellular components including endothelial cells, pericytes and smooth muscle cells, using specific fluorescent markers. Advances in this limb skin vasculature model with genetic studies have improved understanding molecular mechanisms of vascular development and patterning. The limb skin vasculature model has been used to study how peripheral nerves provide a spatial template for the differentiation and patterning of arteries. This video article describes a simple and robust protocol to stain intact blood vessels with vascular specific antibodies and fluorescent secondary antibodies, which is applicable for vascularized embryonic organs where we are able to follow the process of vascular development.

We introduce a whole-mount immunohistochemistry and laser scanning confocal microscopy with multiple labelling for analyzing intricate vascular network formation in mouse embryonic limb skin.

胚肢の皮膚の血管系のためのホールマウント免疫組織化学的解析：胚における血管分岐形態形成を研究するモデルシステム

Whole-mount immunohistochemical analysis for imaging the entire vasculature is pivotal for understanding the cellular mechanisms of branching ...

Efficient Derivation of Human Cardiac Precursors and Cardiomyocytes from Pluripotent Human Embryonic Stem Cells with Small Molecule Induction

To date, the lack of a suitable human cardiac cell source has been the major setback in regenerating the human myocardium, either by cell-based transplantation or by cardiac tissue engineering1-3. Cardiomyocytes become terminally-differentiated soon after birth and lose their ability to proliferate. There is no evidence that stem/progenitor cells derived from other sources, such as the bone marrow or the cord blood, are able to give rise to the contractile heart muscle cells following transplantation into the heart1-3. The need to regenerate or repair the damaged heart muscle has not been met by adult stem cell therapy, either endogenous or via cell delivery1-3. The genetically stable human embryonic stem cells (hESCs) have unlimited expansion ability and unrestricted plasticity, proffering a pluripotent reservoir for in vitro derivation of large supplies of human somatic cells that are restricted to the lineage in need of repair and regeneration4,5. Due to the prevalence of cardiovascular disease worldwide and acute shortage of donor organs, there is intense interest in developing hESC-based therapies as an alternative approach. However, how to channel the wide differentiation potential of pluripotent hESCs efficiently and predictably to a desired phenotype has been a major challenge for both developmental study and clinical translation. Conventional approaches rely on multi-lineage inclination of pluripotent cells through spontaneous germ layer differentiation, resulting in inefficient and uncontrollable lineage-commitment that is often followed by phenotypic heterogeneity and instability, hence, a high risk of tumorigenicity6-8 (see a schematic in Fig. 1A). In addition, undefined foreign/animal biological supplements and/or feeders that have typically been used for the isolation, expansion, and differentiation of hESCs may make direct use of such cell-specialized grafts in patients problematic9-11. To overcome these obstacles, we have resolved the elements of a defined culture system necessary and sufficient for sustaining the epiblast pluripotence of hESCs, serving as a platform for de novo derivation of clinically-suitable hESCs and effectively directing such hESCs uniformly towards clinically-relevant lineages by small molecules12 (see a schematic in Fig. 1B). After screening a variety of small molecules and growth factors, we found that such defined conditions rendered nicotinamide (NAM) sufficient to induce the specification of cardiomesoderm direct from pluripotent hESCs that further progressed to cardioblasts that generated human beating cardiomyocytes with high efficiency (Fig. 2). We defined conditions for induction of cardioblasts direct from pluripotent hESCs without an intervening multi-lineage embryoid body stage, enabling well-controlled efficient derivation of a large supply of human cardiac cells across the spectrum of developmental stages for cell-based therapeutics.

We have established a protocol for induction of cardioblasts direct from pluripotent human embryonic stem cells maintained under defined conditions with small molecules, which enables derivation of a large supply of human cardiac progenitors and functional cardiomyocytes for cardiovascular repair.

Methods Article

胚におけるプログラム細胞死を検出するためのLysoTrackerの使用は、胚性幹細胞を分化