この研究は、カナダ保健研究所(助成番号MOP 38040)からR.K.、筋ジストロフィー協会(米国)からR.K.、SMAからR.K.とL.M.Mの家族、T.H.G.へのSMAトラスト、T.H.G.への筋ジストロフィーキャンペーンへの助成金によって支されました。L.M.Mはカナダ多発性硬化症協会のポストドクター・フェローシップの受賞者であり、R.K.はオタワ大学から大学健康研究委員長を受けています。

すべての手順は、機関によって定められた動物ケア基準に従って行われるべきです。
1. マウスからの腹部の筋肉の解剖
<ol><li>開始する前に、4%パラホルムアルデヒド(PFA)を構成してください。注意: 常にPFAをヒュームフード内に保管し、適切な保護具を着用してください。</li>
	<li>承認された方法でマウスを安楽死させる。 注: ビデオに示されたマウスは、CO2 の過剰摂取と子宮頸部脱臼によって安楽死させた。このマウスは、CD1 /C57Bl6ハイブリッドバックグラウンド上の4週齢の野生型マウスです。このマウスは、もともと購入されたマウスからオタワ大学の動物施設で飼育されました。</li>
	<li>股関節のレベルで皮膚を通して最初の切開を行い、マウスの周りのすべての方法を皮膚をカットします。</li>
	<li>皮膚を剥がし、前肢のレベルに達するまで上向きに引っ張ります。</li>
	<li>腰のレベルで腹部の筋肉を切り抜き、椎骨柱に到達するまで切開を続けます。</li>
	<li>この時点で、上肢に到達するまで、筋肉と肋骨を上向きに切り始めます。</li>
	<li>反対側の椎柱に到達するまでまっすぐ切ります。</li>
	<li>開始したポイントに達するまで下向きに切ります。</li>
	<li>下からダイヤフラムを離し(TVA筋肉に損傷を与えないように注意)、0.2mm解剖ピン付きのSYLGARDコーティングされた解剖皿にリン酸緩衝生理食塩水(PBS)に入れます。</li>
	<li>胸のケージと関連する筋肉を皿の中にピン留めし、表面的な側面を上にして、筋肉が完全に伸びることを確認します。</li>
	<li>1x PBSを注ぎ、4%PFAに交換します。</li>
	<li>蓋をして室温でロッキングプラットフォームに15分間放置します。</li>
	<li>室温で10分間PBSで3倍洗います。</li>
</ol>*この時点で固定筋肉は、その後の解剖の前に一晩冷蔵庫に残すことができます。
2. TVA筋肉の分離
<ol><li>TVA筋肉の単離を進めるには、解剖顕微鏡の下で、最後の数本の肋骨のレベルで外的斜筋を切断することから始めます(コメント付きガイドの 図1 を参照)。</li>
	<li>内側斜筋の始まりに達するまで、リネアアルバの横にまっすぐ切り捨て(下のTVAを切り裂かないように注意してください)。</li>
	<li>その後、下のTVAの上部から上の 直腸腹部 と外部斜めの筋肉を解放するために横切ります。</li>
	<li>TVA筋肉から血管と上にある脂肪を取り除きます。</li>
	<li>上の最後の肋骨から筋肉を解放します。</li>
	<li>筋肉の余白をカットし、PBSを含む24ウェルプレートに取り除きます。</li>
</ol>3. TVA筋肉の免疫蛍光標識と顕微鏡
以降のすべてのステップでは、細かいチップピペットを使用して液体を取り除き、揺れるプラットフォームにプレートを残します。特に明記されていない限り、以降のすべてのステップは室温で実行されます。
<ol><li>蛍光タグ付きバンガロトキシンを1:1000に含むPBSでインキュベートを30分間培養し、NmJにラベルを付けます。これは暗い部屋またはホイルの下で行うことができます。</li>
	<li>PBSで2%トリトンX-100のウェルあたり300 μlを加えて筋肉を透過させ、30分間ロッキングプラットフォームに放置します。</li>
	<li>30分間のブロッキング試薬(4%BSA、PBSで1%トリトン)でインキュベート。</li>
	<li>一次抗体を含むブロッキング試薬中にインキュベート(ニューロフィラメント1:100;シナプス小胞タンパク質2、1:250)を一晩で4°Cで。</li>
	<li>1x PBSで3倍を洗います。</li>
	<li>1:250二次抗体を2〜4時間含有するPBS中でインキュベートする。</li>
	<li>1x PBSで3倍を洗います。</li>
	<li>十分な蛍光実装メディアとカバースリップを使用して、ガラススライドに筋肉を取り付けます。</li>
	<li>スライドは標準的な蛍光顕微鏡の二重バンドパスフィルターを使用して最もよく見られる。</li>
	<li>NMJは、少なくとも40Xの目的を備えた共焦点顕微鏡上のZシリーズ投影を使用して最もよく画像化されます。</li>
</ol>

<ol>
	<li>Sanes, J. R., Lichtman, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+the+vertebrate+neuromuscular+junction.">Development of the vertebrate neuromuscular junction.</a> Annu. Rev. Neurosci. 22, 389-442 (1999).</li><li>Dupuis, L., Loeffler, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuromuscular+junction+destruction+during+amyotrophic+lateral+sclerosis:+insights+from+transgenic+models.">Neuromuscular junction destruction during amyotrophic lateral sclerosis: insights from transgenic models.</a> Curr. Opin. Pharmacol. 9, 341-346 (2009).</li><li>Murray, L. M., Talbot, K., Gillingwater, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Review:+neuromuscular+synaptic+vulnerability+in+motor+neurone+disease:+amyotrophic+lateral+sclerosis+and+spinal+muscular+atrophy.">Review: neuromuscular synaptic vulnerability in motor neurone disease: amyotrophic lateral sclerosis and spinal muscular atrophy.</a> Neuropathol. Appl. Neurobiol. 36, 133-156 (2010).</li><li>Murray, L. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Selective+vulnerability+of+motor+neurons+and+dissociation+of+pre-+and+post-synaptic+pathology+at+the+neuromuscular+junction+in+mouse+models+of+spinal+muscular+atrophy.">Selective vulnerability of motor neurons and dissociation of pre- and post-synaptic pathology at the neuromuscular junction in mouse models of spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 17, 949-962 (2008).</li><li>Kariya, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reduced+SMN+protein+impairs+maturation+of+the+neuromuscular+junctions+in+mouse+models+of+spinal+muscular+atrophy.">Reduced SMN protein impairs maturation of the neuromuscular junctions in mouse models of spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 17, 2552-2569 (2008).</li><li>Iguchi, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+TDP-43+causes+age-dependent+progressive+motor+neuron+degeneration.">Loss of TDP-43 causes age-dependent progressive motor neuron degeneration.</a> Brain. 136, 1371-1382 (2013).</li><li>Martinez-Hernandez, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Synaptic+defects+in+type+I+spinal+muscular+atrophy+in+human+development.">Synaptic defects in type I spinal muscular atrophy in human development.</a> J. Pathol. 229, 49-61 (2013).</li><li>Fischer, L. R., Li, Y., Asress, S. A., Jones, D. P., Glass, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Absence+of+SOD1+leads+to+oxidative+stress+in+peripheral+nerve+and+causes+a+progressive+distal+motor+axonopathy.">Absence of SOD1 leads to oxidative stress in peripheral nerve and causes a progressive distal motor axonopathy.</a> Exp. Neurol. 233, 163-171 (2012).</li><li>Cifuentes-Diaz, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neurofilament+accumulation+at+the+motor+endplate+and+lack+of+axonal+sprouting+in+a+spinal+muscular+atrophy+mouse+model.">Neurofilament accumulation at the motor endplate and lack of axonal sprouting in a spinal muscular atrophy mouse model.</a> Hum. Mol. Genet. 11, 1439-1447 (2002).</li><li>Fischer, L. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Amyotrophic+lateral+sclerosis+is+a+distal+axonopathy:+evidence+in+mice+and+man.">Amyotrophic lateral sclerosis is a distal axonopathy: evidence in mice and man.</a> Exp. Neurol.. 185, 232-240 (2004).</li><li>Diers, A., Kaczinski, M., Grohmann, K., Hubner, C., Stoltenburg-Didinger, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ultrastructure+of+peripheral+nerve,+motor+end-plate+and+skeletal+muscle+in+patients+suffering+from+spinal+muscular+atrophy+with+respiratory+distress+type+1+(SMARD1).">The ultrastructure of peripheral nerve, motor end-plate and skeletal muscle in patients suffering from spinal muscular atrophy with respiratory distress type 1 (SMARD1).</a> Acta Neuropathol. 110, 289-297 (2005).</li><li>Ang, E. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Motor+axonal+sprouting+and+neuromuscular+junction+loss+in+an+animal+model+of+Charcot-Marie-Tooth+disease.">Motor axonal sprouting and neuromuscular junction loss in an animal model of Charcot-Marie-Tooth disease.</a> J. Neuropathol. Exp. Neurol. 69, 281-293 (2010).</li><li>Simon, C. M., Jablonka, S., Ruiz, R., Tabares, L., Sendtner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ciliary+neurotrophic+factor-induced+sprouting+preserves+motor+function+in+a+mouse+model+of+mild+spinal+muscular+atrophy.">Ciliary neurotrophic factor-induced sprouting preserves motor function in a mouse model of mild spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 19, 973-986 (2010).</li><li>Murray, L. M., Gillingwater, T. H., Parson, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Using+mouse+cranial+muscles+to+investigate+neuromuscular+pathology+in+vivo.">Using mouse cranial muscles to investigate neuromuscular pathology in vivo.</a> Neuromuscul. Disord. 20, 740-743 (2010).</li><li>Brill, M. S., Marinkovic, P., Misgeld, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sequential+photo-bleaching+to+delineate+single+Schwann+cells+at+the+neuromuscular+junction.">Sequential photo-bleaching to delineate single Schwann cells at the neuromuscular junction.</a> J. Vis. Exp. (4460), (2013).</li><li>Murray, L. M., Thomson, D., Conklin, A., Wishart, T. M., Gillingwater, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Loss+of+translation+elongation+factor+(eEF1A2)+expression+in+vivo+differentiates+between+Wallerian+degeneration+and+dying-back+neuronal+pathology.">Loss of translation elongation factor (eEF1A2) expression in vivo differentiates between Wallerian degeneration and dying-back neuronal pathology.</a> J. Anat. 213, 633-645 (2008).</li><li>Bowerman, M., Murray, L. M., Beauvais, A., Pinheiro, B., Kothary, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+critical+smn+threshold+in+mice+dictates+onset+of+an+intermediate+spinal+muscular+atrophy+phenotype+associated+with+a+distinct+neuromuscular+junction+pathology.">A critical smn threshold in mice dictates onset of an intermediate spinal muscular atrophy phenotype associated with a distinct neuromuscular junction pathology.</a> Neuromuscul. Disord. 22, 263-276 (2012).</li><li>Comley, L. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ApoE+isoform-specific+regulation+of+regeneration+in+the+peripheral+nervous+system.">ApoE isoform-specific regulation of regeneration in the peripheral nervous system.</a> Hum. Mol. Genet. 20, 2406-2421 (2011).</li><li>Wright, M., Kim, A., Son, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subcutaneous+administration+of+muscarinic+antagonists+and+triple-immunostaining+of+the+levator+auris+longus+muscle+in+mice.">Subcutaneous administration of muscarinic antagonists and triple-immunostaining of the levator auris longus muscle in mice.</a> J. Vis. Exp. (55), (2011).</li><li>Ling, K. K., Gibbs, R. M., Feng, Z., Ko, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Severe+neuromuscular+denervation+of+clinically+relevant+muscles+in+a+mouse+model+of+spinal+muscular+atrophy.">Severe neuromuscular denervation of clinically relevant muscles in a mouse model of spinal muscular atrophy.</a> Hum. Mol. Genet. 21, 185-195 (2012).</li></ol>

著者らは開示するものは何もない。

このビデオでは、マウスからのTVA筋肉の解剖と筋肉内のNmJの全マウント免疫蛍光標識のためのプロトコルを詳述しました。また、この筋肉を示すデータを示すデータを提示し、SMAのマウスモデルにおける神経筋接合病理を解析するために使用することができる。
この手法の成功は、さまざまな要因に依存しています。最も一般的な問題のいくつかを以下に概説します。まず、免疫体質染色が悪い。これには、このプロトコルに記載されているものとは異なる試薬を使用することが最も一般的な理由の1つがあります。高品質の電子顕微鏡検査グレードPFAは、このプロトコルに記載されている抗体の選択と同様に、良好な染色を確保するために非常に重要です。さらに、古い動物(すなわち>3ヶ月)では、良質の染色を得ることはより困難な場合があります。これは、筋肉を取り巻く筋膜の厚さの増加と、外的斜めと 斜めの 腹部との間の脂肪蓄積の増加のためである。免疫蛍光に進む前に、脂肪を取り除くことを重要です。また、筋肉を覆う筋膜の一部を剥ぎ取る必要があるかもしれません, これは厚くなる可能性があります.筋線維に何らかの損傷を与え、インナーブパターンに混乱を招くことなく、筋膜や脂肪を筋肉から取り除くのは困難な場合があります。しかし、この技術を注意深く行えば、少なくとも1歳までマウスから良好な品質染色を得ることができる。若いマウス(すなわち、3ヶ月未満の)では、筋線維のからかいや分離を行う必要はないはずです。第二に:解剖および染色に続くNmJを見つけることが困難である。これはしばしば、解剖が最後の肋骨の下に広がっていないためです。NmJの大部分は、最後の肋骨のすぐ下に位置しているので、筋肉のこの部分が解剖に含まれていることを確認するために注意を払う必要があります。第三に: TVA筋肉にEO筋肉の付着.これは、個人が内部斜め(IO)筋肉のレベルを下回る解剖を拡張しようとする場合にしばしば苦情です。IOも存在するTVA筋肉の面積は、どの筋肉がどの筋肉であるかの区別が困難な場合があり、分析が難しい。このため、私たちは日常的にTVA筋肉の最も優れた部分を解剖するだけです。このレベルでは、EOとTVAの筋肉の間に付着性がないため、これは重大な問題ではないはずです。
TVA筋肉を使用する際の重要な障害の1つは、付加的な筋肉と比較して、外科的操作または物質の注入のいずれかのためのアクセシビリティである。これらのタイプの実験は、特定の筋肉におけるNMJ生理学を調査するために重要であり得る。TVAは確かに チビアリス前部 または 胃頭蓋のようなより一般的に使用される筋肉よりも容易にアクセスできないが、以前の研究は肋間神経18の外科的傷害によってTVAを否定することが可能であることを示している。我々はまた、最近、一般的な麻酔下の物質の局所投与のためにこの筋肉を使用しています (未発表データ).これらの実験は適度な技術的課題を表すことができますが、この研究は、それらが実行可能であり、病理学的および生理学的操作の両方の下でNJの分析のためにこの筋肉の有用性を拡張することを示しています。
TVA筋肉は、インネクレーションパターンの全体マウント分析に使用できる体全体に位置する薄い平らな筋肉の数の一つです。他の筋肉は、脳幹の顔の核から発する運動ニューロンによって内在する頭蓋筋のグループを含み、長さ、オーリリスの優れた、及び内転筋を包含する14,19に対する切離を包含する。さらに、TVAを取り巻く筋肉は、EO、IO、および直腸腹部を含む、また、NMJ分析のために標識および使用することができる。マウスモデルにおけるNMJ病理の包括的な分析のためには、全身に位置する筋肉の数を考慮し、単一の筋肉に分析を制限しないことが重要です。これは、異なる筋肉20間のNMJ病理のレベルにおいて有意な不均一性がある運動ニューロン疾患のマウスモデルで例示される。このような筋肉間変動は、運動ニューロンの脆弱性のメカニズムを調査する際に非常に貴重なツールであり、したがって、単一の筋肉に分析を制限することは、研究の可能性を大幅に減少させる可能性があります。

神経筋接合部(NmJ)は、低い運動ニューロンと骨格筋線維とのシナプス接続である。それらは伝統的に三者シナプスと考えられており、ニューロン(シナプス前末端)、筋線維(シナプス後末端)、および末端シュワン細胞1から構成されている。NmJは、運動ニューロン疾患およびマウスモデル2,3の範囲における病理学における早期かつ重要な標的であるように見える。典型的な症状としては、運動エンドプレートがシナプス前の内挿を欠く場合、シナプス前末端の腫脹、およびNMJ形態4-11の複雑さの低下を伴う脱児が含まれる。代償応答はまた、末端および節線発芽を含む、軸索プロセスが残りのシナプス末端またはノード間から再インナー化されたデンナー化されたエンドプレート12,13まで延びるところも注目できる。シナプス活性とNMJ形態の密接な相関により、NMJ形態の解析から運動ニューロンの機能状態に関する多くの情報を得ることができます。NJの喪失は神経筋病理4,10の最初の側面の1つを頻繁に表すので、内在レベルでの定量は、病理の進行および治療介入の潜在的効果に関する重要な情報を与えることができる。さらに、NMJの損失は病理学的進行における重要なステップを表すため、接続を安定させ、再生を促すことができる治療薬の開発は、大きな利益をもたらす可能性がある。
NMJの形態を分析する際には、筋肉の選択が非常に重要です。主な考慮事項のいくつかは、筋肉の繊維の種類を含めることができます, 体の位置, 人間の条件との比較分析.また、物質の注入や外傷性神経損傷などの操作が必要な場合には、実験的なアクセシビリティも考慮することが重要です。一般に、運動ユニットのサブタイプの範囲を反映して、全身に位置する筋肉の範囲を解析することが好ましい。しかし、多くの場合、筋肉の選択は解剖の容易さの影響を受けます。その結果、NMJ分析は、しばしば胃頭筋のような大きな付垂筋に対してのみ行われる。このような筋肉で良好なNMJ染色を得るためには、筋線維の切断または機械的破壊がしばしば必要とされる。その結果、インナレーションパターンが破壊され、インナレーションパターンの包括的かつ高品質な分析、発芽および脱毛がしばしば損なわれる可能性がある。別のアプローチは、断面を必要とせず、無傷で染色され、取り付けることができる薄い平らな筋肉を使用することです, 筋肉の全体のインナーブの包括的な概要を可能にします.このような分析に使用できる筋肉の数があります, 頭蓋筋のグループを含みます, (浮動オーリスロンサスを含みます, オーリキュラリス優れ, および内転管アウリスロングス)14,胸部筋肉 (例えば.三角柱 )15、および腹部(例えばトランス対筋腹部(TVA)))筋肉。このような筋肉を使用する際の主な障害は、損傷を受けずにそれらを解剖するために必要な技術的専門知識です。
本ビデオでは、マウスからTVA筋肉の免疫蛍光標識を解剖し、実行するプロトコルを提供し、インネクレーションパターンとNMJ形態の包括的な分析を可能にします。TVA筋肉は、腹部筋肉の最も深い層を含む主に遅いけいれん筋肉であり、より低い肋間神経によって内在化される。これまでの研究では、小児運動ニューロン疾患脊髄性筋萎縮症(SMA)の多くのマウスモデルおよび早期発症運動ニューロン変性4,16の他のマウスモデルにおいて、病理に対して一貫して非常に脆弱であることが示されている。したがって、TVAは末梢神経障害におけるNMJ分析を行うのに有用な筋肉であることを示唆する。

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0" width="958">
	<colgroup>
		<col />
		<col />
		<col />
		<col />
	</colgroup>
	<tbody>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Paraformaldehyde Aqueous Solution (16% )</td>
			<td style="width:259px;">Electron Micropscopy Sciences</td>
			<td style="width:216px;">15700</td>
			<td style="width:167px;"></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Dumont #5 Forceps</td>
			<td style="width:259px;">Fine Science Tools</td>
			<td>11251-10</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Angled Sprung Scissors</td>
			<td style="width:259px;">Fine Science Tools</td>
			<td>15006-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Fine Scissors - ToughCut</td>
			<td style="width:259px;">Fine Science Tools</td>
			<td>14058-09</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit</td>
			<td style="width:259px;">Dow Corning</td>
			<td style="width:216px;">dependant on local supplier</td>
			<td>Use this to make dissection dish for pinning out muscle</td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Minutien Pins</td>
			<td style="width:259px;">Fine science tools</td>
			<td>26002-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">&#945;-Bungarotoxin, Alexa Fluor 488 Conjugate</td>
			<td style="width:259px;">Invitrogen</td>
			<td style="width:216px;">B-13422</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Albumin from Bovine Serum</td>
			<td style="width:259px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:216px;">A4503</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:316px;">Neurofilament Primary antibody (2H3), Supernatant</td>
			<td style="width:259px;">Developmental Studies Hybridoma Bank</td>
			<td style="width:216px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="42">
			<td height="42" style="height:42px;width:316px;">SV2 Primary antibody (SV2), Supernatant</td>
			<td style="width:259px;">Developmental Studies Hybridoma Bank</td>
			<td style="width:216px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;">Goat Anti-Mouse IgG (H+L)</td>
			<td style="width:259px;">Jackson ImmunoResearch</td>
			<td>115-166-003</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Fluorescence Mounting Medium</td>
			<td style="width:259px;">Dako</td>
			<td>S3023</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Slides (Superfrost Plus; White)</td>
			<td style="width:259px;">Fisher</td>
			<td>12-550-15</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Coverslips</td>
			<td style="width:259px;">Fisher</td>
			<td style="width:216px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">Triton X-100</td>
			<td style="width:259px;">Sigma Aldrich</td>
			<td style="width:216px;">T8787</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr height="21">
			<td height="21" style="height:21px;width:316px;">CD1/C57Bl6 mouse</td>
			<td style="width:259px;">Jackson Labs</td>
			<td style="width:216px;"></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

dissection of the transversus abdominis muscle for whole-mount neuromuscular junction analysis

神経筋接合形態の解析は、特定の運動ニューロンの生理的状態に関する重要な洞察を与えることができる。細い平らな筋肉の分析は、後肢など、伝統的に使用される太い筋肉(例えば.ガストロクネミウス。細い筋肉は、特定の筋肉の全体のインナーブパターンの包括的な概要を可能にし、その結果、運動ニューロンの選択的に脆弱なプールの識別が可能になる。これらの筋肉はまたモーター単位サイズ、軸索分岐、および末端/節線の発芽のような変数の分析を可能にする。このような筋肉を使用する際の一般的な障害は、それらを解剖するための技術的な専門知識を得ています。このビデオでは、若いマウスから対流性腹部(TVA)筋を解剖し、免疫蛍光を行って軸索および神経筋接合(NJ)を可視化するためのプロトコルを詳しく説明します。我々は、この技術がTVA筋肉のインナーレーションパターンの完全な概観を与え、小児運動ニューロン疾患、脊髄性筋萎縮症のマウスモデルにおけるNMJ病理を調べることができることを実証する。

上記のプロトコルは、NMJ分析のためのTVA筋肉の分離と染色を指示する。これにより、筋肉のインジュレーションパターンの全体マウント分析と、NMJ形態の高解像度分析が可能です(図2)。この技術は、SMA4,17などの運動ニューロン疾患のマウスモデルにおけるNMJ病理を明らかにするためにうまく応用することができる(図3)。SMAのマウスモデルでは、病理に有意な筋肉内変動があるが、TVA筋肉は一貫して高い影響を受ける。これは、運動エンドプレートの脱用、シナプス前末端および末端発芽における神経フィラメントの蓄積によって証明される(図3)。ここで示した結果は、上記の手法が、マウスモデルにおけるNMJ病理のインナーレーションおよび分析の包括的な概要を提供する強力な方法であることを示す。
<img alt="Figure 1" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/51162/51162fig1highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51162/51162fig1.jpg" width="600px"> 図 1.マウスの腹部の筋肉の概要.(A)画像は、最近安楽死させたマウスから取り除かれ、表面的な側の解剖皿に固定された腹部の筋肉を付けた胸部ケージを示す(A)。(B)Aの解剖は、腹筋のおおよその境界を示すためにアセトされています。表在性腹筋は、解剖の左側に見ることができ、外部斜め(青色で輪郭を描いた)と直腸腹部(赤で概説)が含まれる。解剖の右側では、表面筋が取り除かれ、腹部筋(緑色で概説)と斜め筋(黄色で輪郭を描いた)の視覚化が可能であった。このプロトコルの目的は、TVA筋肉の上の部分の解剖を指示することです, 固体緑三角形としてここに示されています.<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51162/51162fig1highres.jpg" target="_blank">ここをクリックすると、より大きな画像を表示</a>できます。
<img alt="Figure 2" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/51162/51162fig2highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51162/51162fig2.jpg" width="600px"> 図 2.TVA筋肉における神経筋接合部の全マウント概要。TVA筋肉からの一例を示す画像は、神経フィラメント(NF;緑)、シナプス小胞タンパク質2(SV2;緑色)およびブンガロトキシン(BTX;赤色)の免疫蛍光染色で視覚化した。画像は、グループ(B)または個々の(C)NJを示す全筋肉(A)または共焦点画像を示すモンタージュ蛍光顕微鏡写真である。<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51162/51162fig2highres.jpg" target="_blank">ここをクリックすると、より大きな画像を表示</a>できます。
<img alt="Figure 1" fo:content-width="4in" fo:src="/files/ftp_upload/51162/51162fig3highres.jpg" src="/files/ftp_upload/51162/51162fig3.jpg" width="600px"> 図 3.SMAのマウスモデルからのTVA筋肉における神経筋接合病理。神経フィラメントの免疫蛍光染色(NF;緑)、シナプス小脳タンパク質2(SV2;緑)、バンガロトキシン(BTX;赤)のいずれかから視覚化されたTVA筋肉からのMJを示す共焦点顕微鏡写真(Smn2B/+)またはSMAマウスモデル(Smn 2B/--)。通常のNMJ形態はコントロールマウスで観察できるが、TvAではSmn2B/-マウスの筋には完全な脱ネル(白矢印)、部分的な脱ネル(紫色の矢印)末端発芽(青い矢印)およびシナプス前腫脹(黄色の矢印)の証拠がある。シナプス後のエンドプレートは、明らかに成熟していない表現型を反映した複雑性も低い。スケールバー = 50 μm.<a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/51162/51162fig3highres.jpg" target="_blank">拡大画像を表示するには ここをクリック</a>します。

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Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

本ビデオでは、マウスの 経対腹部 筋の解剖プロトコルを示し、免疫蛍光と顕微鏡を用いて神経筋接合部を可視化する。

全マウント神経筋接合解析のための トランス対アブドミン筋 の解剖

Analysis of neuromuscular junction morphology can give important insight into the physiological status of a given motor neuron. Analysis of thin flat ...

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Research

JoVE Journal

Neuroscience

Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

11.4K ビュー.  Ottawa Hospital Research Institute. 本ビデオでは、マウスの 経対腹部 筋の解剖プロトコルを示し、免疫蛍光と顕微鏡を用いて神経筋接合部を可視化する。

ビデオ: Dissection of the Transversus Abdominis Muscle for Whole-mount Neuromuscular Junction Analysis

Dissection of a Mouse Eye for a Whole Mount of the Retinal Pigment Epithelium

The retinal pigment epithelium (RPE) lies at the back of the mammalian eye, just under the neural retina, which contains the photoreceptors (rods and cones). The RPE is a monolayer of pigmented cuboidal cells and associates closely with the neural retina just above it. This association makes the RPE of great interest to researchers studying retinal diseases. The RPE is also the site of an in vivo assay of homology-directed DNA repair, the pun assay. The mouse eye is particularly difficult to dissect due to its small size (about 3.5mm in diameter) and its spherical shape. This article demonstrates in detail a procedure for dissection of the eye resulting in a whole mount of the RPE. In this procedure, we show how to work with, rather than against, the spherical structure of the eye. Briefly, the connective tissue, muscle, and optic nerve are removed from the back of the eye. Then, the cornea and lens are removed. Next, strategic cuts are made that result in significant flattening of the remaining tissue. Finally, the neural retina is gently lifted off, revealing an intact RPE, which is still attached to the underlying choroid and sclera. This whole mount can be used to perform the pun assay or for immunohistochemistry or immunofluorescent assessment of the RPE tissue.

A formal demonstration of the dissection of a mouse eye, resulting in a whole mount of the retinal pigment epithelium.

網膜色素上皮の全マウントするためのマウスの眼の解剖

The retinal pigment epithelium (RPE) lies at the back of the mammalian eye, just under the neural retina, which contains the photoreceptors (rods and ...

神経科学

Dissection and Imaging of Active Zones in the Drosophila Neuromuscular Junction

The Drosophila larvae neuromuscular junction (NMJ) is an excellent model for the study of synaptic structure and function. Drosophila is well known for the ease of powerful genetic manipulations and the larval nervous system has proven particularly useful in studying not only normal function but also perturbations that accompany some neurological disease (Lloyd and Taylor, 2010). Many key synaptic molecules found in Drosophila are also found in mammals and like most CNS excitatory synapses in mammals, the Drosophila NMJ is glutamatergic and demonstrates activity-dependent remodeling (Kohet al. , 2000). Additionally, Drosophila neurons can be individually identified because their innervation patterns are stereotyped and repetitive making it possible to study identified synaptic terminals, such as those between motor neurons and the body-wall muscle fibers that they innervate (Keshishian and Kim, 2004). The existence of evolutionarily conserved synapse components along with the ease of genetic and physical manipulation make the Drosophila model ideal for investigating the mechanisms underlying synaptic function (Budnik, 1996).
The active zones at synaptic terminals are of particular interest because these are the sites of neurotransmitter release. NC82 is a monoclonal antibody that recognizes the Drosophila protein Bruchpilot (Brp), a CAST1/ERC family member that is an important component of the active zone (Waghet al. , 2006). Brp was shown to directly shape the active zone T-bar and is responsible for effectively clustering Ca2+ channels beneath the T-bar density (Fouquetet al. , 2009). Mutants of Brp have reduced Ca2+ channel density, depressed evoked vesicle release, and altered short-term plasticity (Kittelet al. , 2006). Alterations to active zones have been observed in Drosophila disease models. For example, immunofluorescence using the NC82 antibody showed that the active zone density was decreased in models of amyotrophic lateral sclerosis and Pitt-Hopkins syndrome (Ratnaparkhiet al. , 2008; Zweieret al. , 2009). Thus, evaluation of active zones, or other synaptic proteins, in Drosophila larvae models of disease may provide a valuable initial clue to the presence of a synaptic defect.
Preparing whole-mount dissected Drosophila larvae for immunofluorescence analysis of the NMJ requires some skill, but can be accomplished by most scientists with a little practice. Presented is a method that provides for multiple larvae to be dissected and immunostained in the same dissection dish, limiting environmental differences between each genotype and providing sufficient animals for confidence in reproducibility and statistical analysis.

Dissection and Imaging of Active Zones in the Drosophila Neuromuscular Junction

The neuromuscular junction (NMJ) of Drosophila melanogaster is an important model system for studying normal synaptic function as well as perturbations to synaptic function found in certain neurological diseases. We present a protocol for dissection of the Drosophila larval motor system and immunostaining for active zone proteins within the NMJ.

で、アクティブなゾーンの解剖とイメージングショウジョウバエ神経筋接合部

The Drosophila  larvae neuromuscular junction (NMJ) is an excellent model for the study of synaptic structure and function. Drosophila  is well known for ...

Reproducible Mouse Sciatic Nerve Crush and Subsequent Assessment of Regeneration by Whole Mount Muscle Analysis

Regeneration in the peripheral nervous system (PNS) is widely studied both for its relevance to human disease and to understand the robust regenerative response mounted by PNS neurons thereby possibly illuminating the failures of CNS regeneration1. Sciatic nerve crush (axonotmesis) is one of the most common models of peripheral nerve injury in rodents2. Crushing interrupts all axons but Schwann cell basal laminae are preserved so that regeneration is optimal3,4. This allows the investigator to study precisely the ability of a growing axon to interact with both the Schwann cell and basal laminae4. Rats have generally been the preferred animal models for experimental nerve crush. They are widely available and their lesioned sciatic nerve provides a reasonable approximation of human nerve lesions5,4. Though smaller in size than rat nerve, the mouse nerve has many similar qualities. Most importantly though, mouse models are increasingly valuable because of the wide availability of transgenic lines now allows for a detailed dissection of the individual molecules critical for nerve regeneration6, 7. Prior investigators have used multiple methods to produce a nerve crush or injury including simple angled forceps, chilled forceps, hemostatic forceps, vascular clamps, and investigator-designed clamps8,9,10,11,12. Investigators have also used various methods of marking the injury site including suture, carbon particles and fluorescent beads13,14,1. We describe our method to obtain a reproducibly complete sciatic nerve crush with accurate and persistent marking of the crush-site using a fine hemostatic forceps and subsequent carbon crush-site marking. As part of our description of the sciatic nerve crush procedure we have also included a relatively simple method of muscle whole mount we use to subsequently quantify regeneration.

In this report we describe a method to crush mouse sciatic nerve. This method uses readily available hemostatic forceps and easily and reproducibly produces complete sciatic nerve crush. In addition, we describe a method to prepare muscle whole mounts suitable for analysis of nerve regeneration after sciatic nerve crush.

ホールマウントマッスル分析による再現性のあるマウスの坐骨神経クラッシュと再生のその後の評価

Regeneration in the peripheral nervous system (PNS) is widely studied both for its relevance to human disease and to understand the robust regenerative ...

Sequential Photo-bleaching to Delineate Single Schwann Cells at the Neuromuscular Junction

Sequential photo-bleaching provides a non-invasive way to label individual SCs at the NMJ. The NMJ is the largest synapse of the mammalian nervous system and has served as guiding model to study synaptic structure and function. In mouse NMJs motor axon terminals form pretzel-like contact sites with muscle fibers. The motor axon and its terminal are sheathed by SCs. Over the past decades, several transgenic mice have been generated to visualize motor neurons and SCs, for example Thy1-XFP1 and Plp-GFP mice2, respectively.
Along motor axons, myelinating axonal SCs are arranged in non-overlapping internodes, separated by nodes of Ranvier, to enable saltatory action potential propagation. In contrast, terminal SCs at the synapse are specialized glial cells, which monitor and promote neurotransmission, digest debris and guide regenerating axons. NMJs are tightly covered by up to half a dozen non-myelinating terminal SCs - these, however, cannot be individually resolved by light microscopy, as they are in direct membrane contact3.
Several approaches exist to individually visualize terminal SCs. None of these are flawless, though. For instance, dye filling, where single cells are impaled with a dye-filled microelectrode, requires destroying a labelled cell before filling a second one. This is not compatible with subsequent time-lapse recordings3. Multi-spectral "Brainbow" labeling of SCs has been achieved by using combinatorial expression of fluorescent proteins4. However, this technique requires combining several transgenes and is limited by the expression pattern of the promoters used. In the future, expression of "photo-switchable" proteins in SCs might be yet another alternative5. Here we present sequential photo-bleaching, where single cells are bleached, and their image obtained by subtraction. We believe that this approach - due to its ease and versatility - represents a lasting addition to the neuroscientist's technology palette, especially as it can be used in vivo and transferred to others cell types, anatomical sites or species6.
In the following protocol, we detail the application of sequential bleaching and subsequent confocal time-lapse microscopy to terminal SCs in triangularis sterni muscle explants. This thin, superficial and easily dissected nerve-muscle preparation7,8 has proven useful for studies of NMJ development, physiology and pathology9. Finally, we explain how the triangularis sterni muscle is prepared after fixation to perform correlated high-resolution confocal imaging, immunohistochemistry or ultrastructural examinations.

Visualizing individual cells in densely packed tissues, such as terminal Schwann cells (SCs) at neuromuscular junctions (NMJs), is challenging. "Sequential photo-bleaching" allows delineating single terminal SCs, for instance in the triangularis sterni muscle explant, a convenient nerve-muscle preparation, where sequential bleaching can be combined with time-lapse imaging and post-hoc immunostainings.

シーケンシャル神経筋接合部におけるシングルシュワン細胞の輪郭を描くのにフォトブリーチング

Sequential photo-bleaching provides a non-invasive way to label individual SCs at the NMJ. The NMJ is the largest synapse of the mammalian nervous system ...

Whole Mount Immunolabeling of Olfactory Receptor Neurons in the Drosophila Antenna

Odorant molecules bind to their target receptors in a precise and coordinated manner. Each receptor recognizes a specific signal and relays this information to the brain. As such, determining how olfactory information is transferred to the brain, modifying both perception and behavior, merits investigation. Interestingly, there is emerging evidence that cellular transduction and transcriptional factors are involved in the diversification of olfactory receptor neuron. Here we provide a robust whole mount immunological labeling method to assay in vivo olfactory receptor neuron organization. Using this method, we identified all olfactory receptor neurons with anti-ELAV antibody, a known pan-neural marker and Or49a-mCD8::GFP, an olfactory receptor neuron specifically expressed in Nba neuron using anti-GFP antibody.

Whole Mount Immunolabeling of Olfactory Receptor Neurons in the Drosophila Antenna

Herein we describe the process of whole mount immunostaining of Drosophila antennae, which enables us to better understand the molecular mechanisms involved in the diversification of olfactory receptor neurons (ORN)s.

における嗅覚受容ニューロンのホールマウント免疫標識<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;アンテナ

Odorant molecules bind to their target receptors in a precise and coordinated manner. Each receptor recognizes a specific signal and relays this ...

Whole Mount Dissection and Immunofluorescence of the Adult Mouse Cochlea

The organ of Corti, housed in the cochlea of the inner ear, contains mechanosensory hair cells and surrounding supporting cells which are organized in a spiral shape and have a tonotopic gradient for sound detection. The mouse cochlea is approximately 6 mm long and often divided into three turns (apex, middle, and base) for analysis. To investigate cell loss, cell division, or mosaic gene expression, the whole mount or surface preparation of the cochlea is useful. This dissection method allows visualization of all cells within the organ of Corti when combined with immunostaining and confocal microscopy to image cells at different planes in the z-axis. Multiple optical cross-sections can also be obtained from these z-stack images. In addition, the whole mount dissection method can be used for scanning electron microscopy, although a different fixation method is needed. Here, we present a method to isolate the organ of Corti as three intact cochlear turns (apex, middle, and base). This method can be used for mice ranging from one week of age through adulthood and differs from the technique used for neonatal samples where calcification of the cochlea is incomplete. A slightly modified version can be used for dissection of the rat cochlea. We also demonstrate a procedure for immunostaining with fluorescently tagged antibodies.

We present a method to isolate the adult organ of Corti as three intact cochlear turns (apex, middle, and base). We also demonstrate a procedure for immunostaining with fluorescently tagged antibodies. Together these techniques allow the study of hair cells, supporting cells, and other cell types found in the cochlea.

成体マウス蝸牛のホールマウント解剖および免疫蛍光

The organ of Corti, housed in the cochlea of the inner ear, contains mechanosensory hair cells and surrounding supporting cells which are organized in a ...

Why Quantification Matters: Characterization of Phenotypes at the Drosophila Larval Neuromuscular Junction

Most studies on morphogenesis rely on qualitative descriptions of how anatomical traits are affected by the disruption of specific genes and genetic pathways. Quantitative descriptions are rarely performed, although genetic manipulations produce a range of phenotypic effects and variations are observed even among individuals within control groups.&#160;Emerging evidence shows that morphology, size and location of organelles play a previously underappreciated, yet fundamental role in cell function and survival. Here we provide step-by-step instructions for performing quantitative analyses of phenotypes at the Drosophila larval neuromuscular junction (NMJ). We use several reliable immuno-histochemical markers combined with bio-imaging techniques and morphometric analyses to examine the effects of genetic mutations on specific cellular processes. In particular, we focus on the quantitative analysis of phenotypes affecting morphology, size and position of nuclei within the striated muscles of Drosophila larvae. The Drosophila larval NMJ is a valuable experimental model to investigate the molecular mechanisms underlying the structure and the function of the neuromuscular system, both in health and disease. However, the methodologies we describe here can be extended to other systems as well.

Why Quantification Matters: Characterization of Phenotypes at the Drosophila Larval Neuromuscular Junction

Morphology, size and location of intracellular organelles are evolutionarily conserved and appear to directly affect their function. Understanding the molecular mechanisms underlying these processes has become an important goal of modern biology. Here we show how these studies can be facilitated by the application of quantitative techniques.

なぜ定量事項：での表現型のキャラクタリゼーション<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;幼虫の神経筋接合部

Most studies on morphogenesis rely on qualitative descriptions of how anatomical traits are affected by the disruption of specific genes and genetic ...

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the molecular and cellular basis of higher brain functions. A whole-mount preparation of adult brains with well-preserved morphology is critical for such whole brain-based studies, but can be technically challenging and time-consuming. This protocol describes an easy-to-learn, one-step dissection approach of an adult fly head in less than 10 s, while keeping the intact brain attached to the rest of the body to facilitate subsequent processing steps. The procedure helps remove most of the eye and tracheal tissues normally associated with the brain that can interfere with the later imaging step, and also places less demand on the quality of the dissecting forceps. Additionally, we describe a simple method that allows convenient flipping of the mounted brain samples on a coverslip, which is important for imaging both sides of the brains with similar signal intensity and quality. As an example of the protocol, we present an analysis of dopaminergic (DA) neurons in adult brains of WT (w1118) flies. The high efficacy of the dissection method makes it particularly useful for large-scale adult brain-based studies in Drosophila.

A Simple One-step Dissection Protocol for Whole-mount Preparation of Adult Drosophila Brains

The adult Drosophila brain is a valuable system for studying neuronal circuitry, higher brain functions, and complex disorders. An efficient method to dissect whole brain tissue from the small fly head will facilitate brain-based studies. Here we describe a simple, one-step dissection protocol of adult brains with well-preserved morphology.

大人のホールマウントの準備のためのシンプルなワンステップ解剖プロトコル<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;ブレインズ

There is an increasing interest in using Drosophila to model human brain degenerative diseases, map neuronal circuitries in adult brains, and study the ...

Measuring Neuromuscular Junction Functionality

Neuromuscular junction (NMJ) functionality plays a pivotal role when studying diseases in which the communication between motor neuron and muscle is impaired, such as aging and amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Here we describe an experimental protocol that can be used to measure NMJ functionality by combining two types of electrical stimulation: direct muscle membrane stimulation and the stimulation through the nerve. The comparison of the muscle response to these two different stimulations can help to define, at the functional level, potential alterations in the NMJ that lead to functional decline in muscle.
Ex vivo preparations are suited to well-controlled studies. Here we describe an intensive protocol to measure several parameters of muscle and NMJ functionality for the soleus-sciatic nerve preparation and for the diaphragm-phrenic nerve preparation. The protocol lasts approximately 60 min and is conducted uninterruptedly by means of a custom-made software that measures the twitch kinetics properties, the force-frequency relationship for both muscle and nerve stimulations, and two parameters specific to NMJ functionality, i.e. neurotransmission failure and intratetanic fatigue. This methodology was used to detect damages in soleus and diaphragm muscle-nerve preparations by using SOD1G93A transgenic mouse, an experimental model of ALS that ubiquitously overexpresses the mutant antioxidant enzyme superoxide dismutase 1 (SOD1).

A functional assessment of the neuromuscular junction (NMJ) can provide essential information on the communication between muscle and nerve. Here we describe a protocol to comprehensively evaluate both the NMJ and muscle functionality using two different muscle-nerve preparations, i.e. soleus-sciatic and diaphragm-phrenic.

神経筋接合部機能を測定

Neuromuscular junction (NMJ) functionality plays a pivotal role when studying diseases in which the communication between motor neuron and muscle is ...

Focal Macropatch Recordings of Synaptic Currents from the Drosophila Larval Neuromuscular Junction

Drosophila neuromuscular junction (NMJ) is an excellent model system to study glutamatergic synaptic transmission. We describe the technique of focal macropatch recordings of synaptic currents from visualized boutons at the Drosophila larval NMJ. This technique requires customized fabrication of recording micropipettes, as well as a compound microscope equipped with a high magnification, long-distance water immersion objective, differential interference contrast (DIC) optics, and a fluorescent attachment. The recording electrode is positioned on the top of a selected synaptic bouton visualized with DIC optics, epi-fluorescence, or both. The advantage of this technique is that it allows monitoring the synaptic activity of a limited number of sites of release. The recording electrode has&#160;a diameter of several microns, and the release sites positioned outside of the electrode rim do&#160;not significantly affect the recorded currents. The recorded synaptic currents have fast kinetics and can be readily resolved. These advantages are especially important for the studies of mutant fly lines with enhanced spontaneous or asynchronous synaptic activity.

Focal Macropatch Recordings of Synaptic Currents from the Drosophila Larval Neuromuscular Junction

Synaptic currents can be recorded focally from visualized synaptic boutons at the Drosophila third instar larvae neuromuscular junction. This technique enables monitoring the activity of a single synaptic bouton.

ショウジョウバエ幼虫神経筋接合部のシナプス電流の焦点 Macropatch 録音

Drosophila neuromuscular junction (NMJ) is an excellent model system to study glutamatergic synaptic transmission. We describe the technique of focal ...

全マウント神経筋接合解析のための トランス対アブドミン筋 の解剖

全マウント神経筋接合解析のためのトランス対アブドミン筋の解剖