Name: a method to inflict closed head traumatic brain injury in drosophila
Uploaded: 2015-06-30T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 22 s
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この作品は、健康補助金の国立研究所、R01 AG033620（BG）で、ロバート·ドレイパー技術革新資金（DAW）によってサポートされていました。

HITデバイスの1建設<ol><li> 2つのクランプと4本のネジ（ 図1A）を使用して、ボードにスプリングを取り付けます。ボードの幅を基準にクランプを中心とボードの縁と外側のクランプ面一に互いに対してそれらを突き合わせ。クランプを取り付ける前に、バネの上にしっかりとフィットするようにペンチを使用してそれらを曲げます。 注：HITデバイスを構築するために必要な材料の説明については、表1を参照してください。春のクランプ端部は、基板の端から1/8インチ（3.2ミリメートル）であるべきであり、自由端が3/4インチ（19ミリメートル）て、ボード上に拡張する必要があります。それは板の長さと平行に位置するようにバネを調整します。 </li><li>ベルクロループの粘着テープで一度周りのばねの自由端を包みます。マジックテープの外縁部は、スプリングの端部と同一平面である必要があります。それはCREによってバネに、バイアルを固定するために使用されるので、マジックテープが重要ですタイトな圧縮フィッティングをレーティング。ベルクロは、多くのバイアルを短時間で処理することができるように、バイアル瓶の容易な接続及び取り外しを可能にします。 </li><li>タイトな木の板に対して、中心に、逆さまアイスバケットカバーを置きます。オリエント長辺は、ボードの幅と平行になるようアイスバケットカバーの隆起領域。バイアルをバネに取り付けられたとき、スプリングがボード上に平らにしないようにアイスバケットの隆起領域は、木の板よりも1/2インチ（13ミリメートル）高いことに注意してください。 </li><li>アイスバケットカバーは基板と対象物の間に押し込まれ、動かないように、壁などの固定オブジェクトに対して、装置全体をスライドさせます。 </li><li>テープ段ボールの底に紙分度器は、バイアルトレイを飛行し、それが完全に垂直位置に引き戻されたときに90°のマークは、ばねと整列されるように、基板の長さに対して、エッジの上に立っています。 </li></ol> 2。HIT装置の動作<ol><li>空のバイアルにハエやタイトフィットのコットンボールを使用して、バイアルを栓-anesthetized 1と60 CO 2との間に配置します。 </li><li>それが下から1インチ（2.5センチ）になるまでバイアルにコットンボールを押してバイアルの底1インチ（2.5センチ）にハエを閉じ込めます。これは、1インチ（2.5センチ）のマークでバイアル上に線を描画するために有用です。バイアルのより大きなまたはより小さな領域にハエを閉じ込めることは表現型の重症度に影響を与える可能性があることに注意してください。 </li><li>ハエはCO 2から移動性を回復するために5分を待ちます。それは5分で完全にCO 2の影響を除去するのに十分であるかどうかを知らないことに留意されたいです。 </li><li>ベルクロの内縁は、バイアル（ 図1B）の頂部と同じ高さになるまでバイアルに春の終わりを挿入します。春が平らに置かれた場合、バイアルの1インチ（2.5センチ）アイスバケットカバーの隆起領域をオーバーラップする必要があります。バイアルがmを再利用することができますいずれかの回。 </li><li>座った状態で、左手の親指と人差し指を使ってマジックテープ領域にバイアルを保持します。右手を使用して、ベンチトップに密な基板を保持します。あるいは、ベンチトップにタイトなボードを保持するために、C-クランプを使用しています。 </li><li>まっすぐ戻って所望の角度にバネを引き出します。春リリース。バネが完全に止まった状態にしてできるようにします。 </li><li>春からバイアルを取り外し、ハエが≥5分間回復することができます。別のストライキにハエを被写体やフライ食品でバイアルにハエを転送します。 注：種々のアッセイは、HIT装置からストライキの表現型効果を評価することができます。例えば、寿命への影響は、損傷後の時点で生存するハエの割合を分析することによって決定することができ、脳の形態への影響は、ヘッドの組織学的分析によって決定することができ、遺伝子発現に対する効果は、mRNAレベルの定量分析によって決定することができます10。 </li><li> Determinストライキに供されていない同一の対照ハエを処理することによるストライキによるものではない手続きの電子効果。アイスバケットカバーに対するバイアルの影響が大きな音を生成するので、保護を聞いて着用してください。 </li></ol>

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	<li>Harrison-Felix, C. L., Whiteneck, G. G., Jha, A., DeVivo, M. J., Hammond, F. M., Hart, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mortality+over+four+decades+after+traumatic+brain+injury+rehabilitation:+A+retrospective+cohort+study.">Mortality over four decades after traumatic brain injury rehabilitation: A retrospective cohort study.</a> Arch Phys Med Rehabil. 90, 1506-1513 (2009).</li><li>Coronado, V. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surveillance+for+traumatic+brain+injury-related+deaths+&#8211;+United+States.">Surveillance for traumatic brain injury-related deaths &#8211; United States.</a> MMWR Surveill Summ. 60, 1-32 (1997).</li><li>Masel, B., DeWitt, D. 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J., Loewen, C. A., Wassarman, D. R., Petersen, A. J., Ganetzky, B., Wassarman , D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+Drosophila.+model+of+closed+head+traumatic+brain+injury.">A Drosophila. model of closed head traumatic brain injury.</a> Proc Natl Acad Sci USA. 110, E4152-E4159 (2013).</li><li>Fang, Y., Bonini, N. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axon+degeneration+and+regeneration:+insights+from+Drosophila+.models+of+nerve+injury.">Axon degeneration and regeneration: insights from Drosophila .models of nerve injury.</a> Annu Rev Cell Biol. 28, 575-597 (2012).</li><li>Babcock, D. T., Ganetzky, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+method+for+accurate+and+rapid+measurement+of+flight+performance+in+Drosophila.">An improved method for accurate and rapid measurement of flight performance in Drosophila.</a> J Vis Exp. (84), e51223 (2014).</li><li>Tully, T., Preat, T., Boynton, S. C., Vecchio, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Genetic+dissection+of+consolidated+memory+in+Drosophila.">Genetic dissection of consolidated memory in Drosophila.</a> Cell. 79, 35-47 (1994).</li><li>Andretic, R., Shaw, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Essentials+of+sleep+recordings+in+Drosophila.:+moving+beyond+sleep+time.">Essentials of sleep recordings in Drosophila.: moving beyond sleep time.</a> Methods Enzymol. 393, 759-772 (2005).</li></ol>

我々は、開示する目的の競合がありません。

HIT装置方法は、それがTBI 11を貫通するのではなく、閉鎖性頭部を引き起こすという事実によってハエに外傷を負わせる他の方法と区別されます。また、HIT装置方法は、多くのハエでTBIを与えるために、より少ない時間、労力、およびスキルを取り、その方法は、大規模な遺伝子スクリーニングに、他の方法よりも適しています。最後に、HIT装置によって与え主要な傷害は、脳に限定?...

An author's name was corrected in the publication of <a href="http://www.jove.com/video/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila</a>. The second to last author's was spelled incorrectly. It has been updated from:
Barry Ganetky
to:
Barry Ganetzky

An author's name was corrected in the publication of <a href="http://www.jove.com/video/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila</a>.

Erratum: A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

外傷性脳損傷（TBI）は、外部の機械的な力から脳への損傷として定義されます。このような鈍力と脳が頭蓋骨の内側に当たるせる慣性加速と減速力などの閉鎖性頭部力から最も一般的には、TBIの結果。米国では、50,000人がTBIから毎年死亡し、2.5から6500000個人は、物理的な認知および行動上の問題1,2を衰弱させるなど、TBIの結果、で生きていると推定されています。 TBIの結果は、脳への主要な機械的傷害にも時間3-5にわたって生じる脳への二次細胞および分子の怪我だけでなく、他の組織にだけではなくです。 TBIを診断し、治療するための方法の開発は、TBIは、複雑な疾患過程であるため、困難であることが証明されています。異種の二私の主な傷害、人間の生理、および環境要因の結果の可変性njuriesと病理。根本的な変動要因は、一次損傷の重症度、繰り返しの一次傷害の間の時間、および個々の年齢および遺伝子型が含まれます。各変動要因は、TBIの結果にどのように寄与するかを理解することは、TBI 6,7を診断し、治療するためのアプローチの開発に役立つ可能性があります。 ここでは、TBIの結果に変動要因の寄与を描写するために使用することができるキイロショウジョウバエ （ショウジョウバエ）で閉鎖性頭部TBIを負わする方法について説明します。手のひらに対して激しくフライ培養バイアルの側面を打つ最初の観察は、野生型は、TBIの可能性の高い結果を一時的に行動不能になるために飛ぶ引き起こさに方法がベースにしています。したがって、我々は手打つ作用から加速と減速力を再現するための高インパクトトラウマ（HIT）デバイスを構築しました。高速ムービーが示していることから、単一のストライキHITデバイスは、自分の頭と体8でバイアル壁を数回連絡するハエが発生します。ある程度までは、すべての連絡先は、ハエの脳が跳ね返ると転倒や車のクラッシュ9に人間に何が起こるかに似た頭部カプセル、に対して変形させる可能性があります。したがって、脳10で運動失調が続く一時的無能力、モビリティの緩やかな回復、頭の中で遺伝子発現の変化、および進行性の神経変性を含む、脳損傷と一致HITデバイスディスプレイの表現型で処理したハエ。このように、HITデバイスはハエのために開発された実験ツールと技術の巨大な武器庫を使用して、TBIを研究することが可能となります。

<table><tbody><tr><td>Zinc plated compression spring</td><td>The Hillman&amp;nbsp; Group</td><td>540189</td><td>9 7/8 inch (length, 2.2 cm), 15/16 inch (outer diameter, 2.4 cm), 0.12 inch (wire size, 0.3 cm)</td></tr><tr><td>Wooden board</td><td></td><td></td><td>9 inch (length, 22.9 cm), 6.5 inch (width, 16.5 cm), 0.75 inch (height, 1.9 cm)</td></tr><tr><td>Clamps</td><td>Sigma Electrical Manufacturing Corporation</td><td>49822</td><td>3.10 inch (length, 7.9 cm), 0.68 inch (width, 1.7 cm), 1.11 inch (height, 2.8 cm), EMT Two Hole Straps, click on type for 1 inch (2.5 cm) steel EMT conduit</td></tr><tr><td>Loop half of self-adhesive velcro</td><td></td><td></td><td>3 inch (length, 7.6 cm), (3/4 inch width, 1.9 cm)</td></tr><tr><td>Polyurethane ice bucket cover</td><td>Fisher Scientific</td><td>02-591-45</td><td>9 1/8 inch (length, 23.2 cm), 9 1/8 inch (width, 23.2 cm), 1 1/4 inch (height, 3.2 cm)</td></tr><tr><td>Plastic fly vials</td><td>Applied Scientific</td><td>AS-510</td><td>3 11/16 inch (height, 9.4 cm), 1 1/16 inch (inner diameter, 2.7 cm), 1 1/8 inch (outer diameter, 2.9 cm)</td></tr><tr><td>Large cotton balls</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-456-883</td><td></td></tr><tr><td>Paper protractor</td><td></td><td></td><td>10 inch (diameter, 25.4 cm)</td></tr></tbody></table>

a method to inflict closed head traumatic brain injury in drosophila

外傷性脳損傷（TBI）、物理的な認知、行動機能と死の障害を引き起こし、毎年何百万人もの人々に影響を与えます。 ショウジョウバエを用いた研究は、神経学的プロセスを理解する上で重要なブレークスルーを貢献しています。したがって、ヒトにおけるTBI病理の細胞および分子基盤を理解することを目標に、私たちはハエに閉鎖性頭部TBIを与えるためにハイインパクトトラウマ（HIT）装置を開発しました。ハエは、このような一時的な無能力および進行性神経変性などのヒトTBIと一致HITデバイス表示の表現型を行いました。 HITデバイスは、フライ脳への機械的損傷を引き起こし、バイアルの壁にハエを推進するために、スプリングベースのメ​​カニズムを使用しています。デバイスは、その操作は簡単で、迅速で、安価で構築することが容易であり、再現性のある結果を生成します。したがって、HIT装置は、既存の実験ツールとハエは基本対処するための技術と組み合わせることができTBIの診断と治療法の開発につながる可能性がTBIについての質問。具体的には、HITデバイスはTBI病状の遺伝的基礎を理解するために、大規模な遺伝子スクリーニングを行うことができます。

私たちは、ハエが一次損傷後まもなく死ぬ理由を理解することに興味を持っています。死を定量化するために、我々は、一次損傷の24時間以内に死亡したハエの割合である24時間で死亡率指数（MI 24）を 、決定しました。 HIT装置からストライキに供ハエは、ハエの餌とバイアル中で25℃でインキュベートし、そして死んだハエの数は、24時間後に計数しました。私たちは、1〜60分を試?...

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A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

ここでは、 ショウジョウバエにおいて閉鎖性頭部外傷性脳損傷（TBI）を与えるための方法を説明します。この方法は、ハエのために利用可能な実験ツールと技術の広大な配列を使用して、TBI病理の根底にある細胞および分子メカニズムを調査するためのゲートウェイを提供します。

で閉鎖性頭部外傷性脳損傷を負わせる方法<em&gt;ショウジョウバエ</em

Traumatic brain injury (TBI) affects millions of people each year, causing impairment of physical, cognitive, and behavioral functions and death. Studies ...

a-method-to-inflict-closed-head-traumatic-brain-injury-in-drosophila

Research

JoVE Journal

Neuroscience

A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila

11.4K ビュー.  University of Wisconsin-Madison. ここでは、 ショウジョウバエにおいて閉鎖性頭部外傷性脳損傷（TBI）を与えるための方法を説明します。この方法は、ハエのために利用可能な実験ツールと技術の広大な配列を使用して、TBI病理の根底にある細胞および分子メカニズムを調査するためのゲートウェイを提供します。 

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Using Microfluidics Chips for Live Imaging and Study of Injury Responses in Drosophila Larvae

Live imaging is an important technique for studying cell biological processes, however this can be challenging in live animals. The translucent cuticle of the Drosophila larva makes it an attractive model organism for live imaging studies. However, an important challenge for live imaging techniques is to noninvasively immobilize and position an animal on the microscope. This protocol presents a simple and easy to use method for immobilizing and imaging Drosophila larvae on a polydimethylsiloxane (PDMS) microfluidic device, which we call the 'larva chip'. The larva chip is comprised of a snug-fitting PDMS microchamber that is attached to a thin glass coverslip, which, upon application of a vacuum via a syringe, immobilizes the animal and brings ventral structures such as the nerve cord, segmental nerves, and body wall muscles, within close proximity to the coverslip. This allows for high-resolution imaging, and importantly, avoids the use of anesthetics and chemicals, which facilitates the study of a broad range of physiological processes. Since larvae recover easily from the immobilization, they can be readily subjected to multiple imaging sessions. This allows for longitudinal studies over time courses ranging from hours to days. This protocol describes step-by-step how to prepare the chip and how to utilize the chip for live imaging of neuronal events in 3rd instar larvae. These events include the rapid transport of organelles in axons, calcium responses to injury, and time-lapse studies of the trafficking of photo-convertible proteins over long distances and time scales. Another application of the chip is to study regenerative and degenerative responses to axonal injury, so the second part of this protocol describes a new and simple procedure for injuring axons within peripheral nerves by a segmental nerve crush.

Using Microfluidics Chips for Live Imaging and Study of Injury Responses in Drosophila Larvae

Drosophila larvae are an attractive model system for live imaging due to their translucent cuticle and powerful genetics. This protocol describes how to utilize a single-layer PDMS device, called the &#39;larva chip&#39; for live imaging of cellular processes within neurons of 3rd instar Drosophila larvae.

における損傷応答のライブイメージングや研究のためのマイクロ流体チップを使用<em&gt;ショウジョウバエ</em&gt;幼虫

Live imaging is an important technique for studying cell biological processes, however this can be challenging in live animals. The translucent cuticle of ...

生物工学

A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila

Chronic Traumatic Encephalopathy (CTE) is an established neurodegenerative disease that is closely associated with exposure to repetitive mild Traumatic Brain Injury (mTBI). The mechanisms responsible for its complex pathological changes remain largely elusive, despite a recent consensus to define the neuropathological criteria. Here, we describe a novel method to develop a model of CTE in Drosophila melanogaster&#160;(Drosophila&#160;)&#160;in an attempt to identify the key genes and pathways that lead to the characteristic hyperphosphorylated tau accumulation and neuronal death in the brain. Adjustable-strength impacts to inflict mild closed injury are delivered directly to the fly head, subjecting the head to rapid acceleration and deceleration. Our method eliminates the potential problems inherent with other Drosophila mTBI models (e.g.,animal death might be induced by damage to other parts of the body or to internal organs). The less labor- and cost-intensive animal care, short life span, and extensive genetic tools make the fruit fly ideal to study CTE pathogenesis and make it possible to perform large-scale, genome-wide forward genetic and pharmacological screens. We anticipate that the ongoing characterization of the model will generate important mechanistic insights on disease prevention and therapeutic approaches.

A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila

Here, we describe a new approach to inflict closed-head traumatic brain injury in Drosophila melanogaster. Our method has the advantage of directly delivering repetitive impacts with adjustable strength to the head alone. Further exploration of the invertebrate system will help to illuminate the pathogenesis of chronic traumatic encephalopathy.

慢性外傷性脳症モデルの新しい方法<em&gt;ショウジョウバエ</em

Chronic Traumatic Encephalopathy (CTE) is an established neurodegenerative disease that is closely associated with exposure to repetitive mild Traumatic ...

神経科学

Monitoring Cell-to-cell Transmission of Prion-like Protein Aggregates in Drosophila Melanogaster

Protein aggregation is a central feature of most neurodegenerative diseases, including Alzheimer&#39;s disease (AD), Parkinson&#39;s disease (PD), Huntington&#39;s disease (HD), and amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Protein aggregates are closely associated with neuropathology in these diseases, although the exact mechanism by which aberrant protein aggregation disrupts normal cellular homeostasis is not known. Emerging data provide strong support for the hypothesis that pathogenic aggregates in AD, PD, HD, and ALS have many similarities to prions, which are protein-only infectious agents responsible for the transmissible spongiform encephalopathies. Prions self-replicate by templating the conversion of natively-folded versions of the same protein, causing spread of the aggregation phenotype. How prions and prion-like proteins in AD, PD, HD, and ALS move from one cell to another is currently an area of intense investigation. Here, a Drosophila melanogaster model that permits monitoring of prion-like, cell-to-cell transmission of mutant huntingtin (Htt) aggregates associated with HD is described. This model takes advantage of powerful tools for manipulating transgene expression in many different Drosophila tissues and utilizes a fluorescently-tagged cytoplasmic protein to directly report prion-like transfer of mutant Htt aggregates. Importantly, the approach we describe here can be used to identify novel genes and pathways that mediate spreading of protein aggregates between diverse cell types in vivo. Information gained from these studies will expand the limited understanding of the pathogenic mechanisms that underlie neurodegenerative diseases and reveal new opportunities for therapeutic intervention.

Monitoring Cell-to-cell Transmission of Prion-like Protein Aggregates in Drosophila Melanogaster

Accumulating evidence supports the idea that pathogenic protein aggregates associated with neurodegenerative diseases spread between cells with prion-like properties. Here, we describe a method that enables visualization of cell-to-cell spreading of prion-like aggregates in the model organism, Drosophila melanogaster.

キイロショウジョウバエにおけるプリオン様蛋白質集合体の細胞間伝達を監視

Protein aggregation is a central feature of most neurodegenerative diseases, including Alzheimer&#39;s disease (AD), Parkinson&#39;s disease (PD), ...

A Drosophila In Vivo Injury Model for Studying Neuroregeneration in the Peripheral and Central Nervous System

The regrowth capacity of damaged neurons governs neuroregeneration and functional recovery after nervous system trauma. Over the past few decades, various intrinsic and extrinsic inhibitory factors involved in the restriction of axon regeneration have been identified. However, simply removing these inhibitory cues is insufficient for successful regeneration, indicating the existence of additional regulatory machinery. Drosophila melanogaster, the fruit fly, shares evolutionarily conserved genes and signaling pathways with vertebrates, including humans. Combining the powerful genetic toolbox of flies with two-photon laser axotomy/dendriotomy, we describe here the Drosophila sensory neuron &#8211; dendritic arborization (da) neuron injury model as a platform for systematically screening for novel regeneration regulators. Briefly, this paradigm includes a) the preparation of larvae, b) lesion induction to dendrite(s) or axon(s) using a two-photon laser, c) live confocal imaging post-injury and d) data analysis. Our model enables highly reproducible injury of single labeled neurons, axons, and dendrites of well-defined neuronal subtypes, in both the peripheral and central nervous system.

A Drosophila In Vivo Injury Model for Studying Neuroregeneration in the Peripheral and Central Nervous System

Here, we present a protocol using the Drosophila sensory neuron - dendritic arborization (da) neuron injury model, which combines in vivo live imaging, two-photon laser axotomy/dendriotomy, and the powerful fly genetic toolbox, as a platform for screening potential promoters and inhibitors of neuroregeneration.

再生に関する末梢および中枢神経系を研究するため生体内でショウジョウバエ損傷モデル

The regrowth capacity of damaged neurons governs neuroregeneration and functional recovery after nervous system trauma. Over the past few decades, various ...

医学

Stimulating and Analyzing Adult Neurogenesis in the Drosophila Central Brain

The molecular and cellular mechanisms underlying neurogenesis in response to disease or injury are not well understood. However, understanding these mechanisms is crucial for developing neural regenerative therapies. Drosophila melanogaster is a leading model for studies of neural development but historically has not been exploited to investigate adult brain regeneration. This is primarily because the adult brain exhibits very low mitotic activity. Nonetheless, penetrating traumatic brain injury (PTBI) to the adult Drosophila central brain triggers the generation of new neurons and new glia. The powerful genetic tools available in Drosophila combined with the simple but rigorous injury protocol described here now make adult Drosophila brain a robust model for neural regeneration research. Provided here are detailed instructions for (1) penetrating injuries to the adult central brain and (2) dissection, immunohistochemistry, and imaging post-injury. These protocols yield highly reproducible results and will facilitate additional studies to dissect mechanisms underlying neural regeneration.

Stimulating and Analyzing Adult Neurogenesis in the Drosophila Central Brain

This article provides detailed protocols for inflicting Penetrating Traumatic Brain Injury (PTBI) to adult Drosophila and examining the resulting neurogenesis.

ショウジョウバエ中枢脳における成人神経新生の刺激と分析

The molecular and cellular mechanisms underlying neurogenesis in response to disease or injury are not well understood. However, understanding these ...

Mechanically Injuring Drosophila Larvae Segmental Nerves to Induce Neurodegeneration

Source: Danella, E. B., et al. <a href="https://app.jove.com/v/56128">A Simple Neuronal Mechanical Injury Methodology to Study Drosophila Motor Neuron Degeneration.</a> J. Vis. Exp. (2017).
The video demonstrates inducing neurodegeneration in Drosophila larva segmental nerves via mechanical injury. The ventral cuticle of anesthetized larvae is pinched using forceps to cause injury to the segmental nerves. The injured larvae are maintained with food, allowing the injury to cause degeneration of the motor neurons in the nerves, causing disruption of their neuromuscular junctions (NMJs).

ショウジョウバエの幼虫を機械的に傷つけ、神経分節神経を誘発する。

1. Preparation of Reagents and Equipment 

	Prepare 1x Dissection Buffer (70 mM NaCl, 5 mM KCl, 0.02 mM CaCl2, 20 mM MgCl2, 10 mM NaHCO3, 115 mM sucrose, ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neuropathology

Neurodegenerative Diseases

Drosophila Adult Brain Dissection: A Method in Fly Neurobiology

Source: Kelly, S. M., et al. <a href="https://www.jove.com/video/56174/" target="_blank">Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains</a>. J. Vis. Exp. (2017).
This video describes how to dissect and isolate the adult Drosophila brain&#8211;a procedure necessary for visualizing the organ, which is otherwise obscured by the cuticle, eye, and tracheal tissue. The example protocol shows a detailed demonstration yielding high-quality preparations that can be used for immunostaining and imaging methods in Drosophila neurobiology.

ショウジョウバエ成人の脳解剖:ハエの神経生物学の方法

Source: Kelly, S. M., et al. Dissection and Immunofluorescent Staining of Mushroom Body and Photoreceptor Neurons in Adult Drosophila melanogaster Brains. ...

生物学

Drosophila melanogaster（ショウジョウバエ）

成虫

Inducing Targeted Neuronal Injury Using a High-Power Laser in a Drosophila Larva

Source: Li, D., Li, F., et al. <a href="https://app.jove.com/v/57557">A Drosophila in vivo injury model for studying neuroregeneration in the peripheral and central nervous system.</a> J. Vis. Exp. (2018)
This video demonstrates a method for inducing targeted neuronal injury in Drosophila larvae using a high-power laser. After positioning the larva under a microscope, a low-power laser scans for fluorescent neurons, and then the laser power is increased to induce localized damage. The injury is confirmed by increased fluorescence and a crater at the injury site.

Source: Li, D., Li, F., et al. A Drosophila in vivo injury model for studying neuroregeneration in the peripheral and central nervous system. J. Vis. Exp. ...

Trauma

Source: Katzenberger, R. J., et al.,&#160;<a href="https://app.jove.com/v/52905">A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila.</a> J. Vis. Exp. (2015).
The video demonstrates the use of a High-Impact Trauma (HIT) device to induce closed-head traumatic brain injury (TBI) in Drosophila. TBI causes mechanical brain trauma affecting neuronal function, which over time leads to neurodegeneration and mortality.

Source: Katzenberger, R. J., et al.,&#160;A Method to Inflict Closed Head Traumatic Brain Injury in Drosophila. J. Vis. Exp. (2015).
The video ...

A Technique to Inflict Closed-Head Traumatic Brain Injury in Drosophila Flies

Source: Sun, M., et al. <a href="https://app.jove.com/v/55602">A Novel Method to Model Chronic Traumatic Encephalopathy in Drosophila.</a> J. Vis. Exp. (2017).
This video demonstrates a procedure to inflict a closed-head traumatic injury in anesthetized Drosophila flies using a strike device with a gas-propelled impactor. The injury affects neuronal function and impairs walking ability.

ショウジョウバエに閉鎖性外傷性脳損傷を負わせる技術

1. Assembly of the Strike Device (Figure 1)

	Remove the plunger from a 1 mL tuberculin syringe. Cut the barrel at the 1 mL mark.
	Remove an aerosol ...

で閉鎖性頭部外傷性脳損傷を負わせる方法

要約

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