표준 임상 Assays에 의해 탐지의 한도 이하 바이러스성로드와 HIV 감염된 개인의 확장 및 HIV - 1 RNA를 Quantifying

요약

플라즈마 및 시퀀싱에서 HIV - 1 RNA 수준을 Quantifying하면 단일 HIV - 1 검출 한계 (50-75 사본 / ML) 아래 바이러스성로드와 개인의 genomes가 어렵습니다. 여기 우리는 안정적으로 0.3 복사 / ML에 HIV - 1 RNA를 측정하고 매우 낮은 바이러스성로드와 샘플에서 단일 게놈 시퀀싱에 의해 바이러스 genomes를 증폭하는 방법을 실시간 PCR 분석을 사용하여 플라즈마 바이러스 RNA를 추출하고 계량하는 방법에 대해 설명합니다.

초록

바이러스 유전자를 확장 및 표준 assays에 의해 검출 한계 (아래 50-75 사본 / ML) 아래 바이러스성로드와 HIV - 1 감염 개인의 HIV - 1 RNA를 quantifying 것은 환자의 바이러스성 역학 및 바이러스 호스트 상호 작용에 대한 통찰력을 얻기 위해 필요한 사람 자연 감염과 조합 antiretroviral 치료 (카트)에있는 사람을 제어합니다.

여기 하나의 게놈 시퀀싱 (SGS 프로토콜) ^{13, 19} 및 정확하게 낮은 바이러스성로드 (단일 복사본 분석 (SCA) 프로토콜) ^{12, 20} 환자에서 HIV - 1 RNA를 수치로 바이러스 genomes를 증폭하는 방법에 대해 설명합니다.

단일 복사본 분석이 감도는 플라즈마가 assayed되는 볼륨에 따라과 실시간 PCR 분석이다. 단일 바이러스 게놈은 플라즈마 7 ML에 감지되면 RNA 사본 번호는 0.3 복사 / ML 것으로보고됩니다. 분석은 RNA 추출의 효율성을위한 내부 통제 테스트를 가지고 있으며, DNA 또는 오염 가능성 증폭을위한 제어합니다. 환자 표본 세중의 단위로 측정됩니다.

단일 게놈 시퀀싱 분석 (SGS), 현재 널리 사용하고 이외의 노동 집약적인 ^{3, 7, 12, 14, 15로} 간주는 끝점이 cDNA 제품이 96 자 이상 전염됩니다 희석하는, 제한 희석 분석입니다 판. Poisson 분포에 따르면, 적은 우물의 1 / 3 이상이 제품을 줄 때, 하나의 cDNA 분자에서 증폭의 PCR 제품되는 결과의 80 % 기회가 있습니다. SGS는 resampling의 대상이되지 및 PCR - 도입된 재조합 ¹⁹ 적이어서하지 복제를 통해 장점이 있습니다. 그러나, SCA와 SGS의 증폭 성공 프라이머 설계에 따라 달라집니다. 두 assays는 HIV - 1 subtype B에 대한 개발되었다지만, 변화 primers, 프로브 및 표준에 의해 다른 subtypes와 게놈의 다른 지역에 적용할 수 있습니다.

프로토콜

1. 플라즈마의 큰 볼륨에서 RNA의 추출

단일 복사본 분석 (SCA)의 개요 및 단일 게놈 시퀀싱 (SGS) 프로토콜은 그림 1과 2에 제공됩니다.

1. 플라즈마 7 ML을 얻으려면, 제동없이 15 분 동안 2,600 XG에 (헤파린되지 않음) 수집 튜브를 15 ML EDTA (에틸렌 다이아 민 테트라 초산)에서 수집된 혈액의 약 14 ML을 돌린다. 피펫 플라즈마 (버피 코트 레이어를하지 않아야 만들기) 15 ML 튜브로.
2. RNA는 단일 복사본 분석 (SCA), 스파이크 Rous 육종 바이러스 내부 virion 제어 (RCAS)의 30000 사본 플라즈마에 대한 추출하는 경우. RCAS 바이러스는 SCA대로 (20) 앞에서 설명한 수행하기 전에 준비가되어 있습니다. 간단히, 세포 배양 표면에 뜨는에서 RCAS 바이러스는 RT 활동에 의해 계량 5% FBS와 RPMI 조직 문화 미디어에 희석 200 UL 당 30,000 virions의 최종 농도로 희석하고, -80에서 ° C 단일 사용 aliquots에 저장됩니다. RCAS 바이러스는 냉동 / 분석에서 사용하기 전에 해동해서는 안됩니다. RCAS은 RNA 추출의 효율성과 PCR의 부량의 정확성을 위해 제어 환자 플라즈마에 아군이다. : RCAS에 대한 자세한 내용은 다음 링크에서 찾을 수 있습니다 http://home.ncifcrf.gov/hivdrp/RCAS/ .
3. "사전 스핀"플라즈마, 15 ML 원뿔 원심 튜브에 RNA의 정확한 양을 정함 방해할 수있는 lipids와 세포 부스러기를 밖으로 분리하는 15 분 동안 2,600 XG에.
4. 샘플 번호와 펠렛은 튜브 형태로 될 위치를 식별할 수있는 영구 마커와 라벨 Seton 간편한 인감 원심 분리기 튜브. 사전 스핀 후, 플라즈마를 pipetting과 표면에있는 세포 파편 및 / 또는 lipids를 피함으로써 Seton 쉬운 인감 원심 튜브에 플라즈마를 전송할 수 있습니다. 플라즈마의 입력 볼륨을 기록합니다.
5. 추가 트리스 버퍼 염분 (TBS)은 스레드 목의 하단에 Seton - 쉬운 인감 튜브의 나머지 볼륨을 채울 수 있습니다. 방울은 튜브에 존재하거나 튜브가 초원 심 분리기에 막을 수 있는지 확인하십시오. 회전자에 튜브를 삽입하면 튜브의 표시가 외부에 직면하고 있는지 확인합니다.
6. 4 170,000 XG (50,000 RPM) · 30 분 C에서 Sorval 90SE 초원 심 분리기에 미리 냉각 Sorval T1270 로터와 원심 분리기에서 재사용 가능한 뚜껑과 장소 샘플 인감.
7. 원심 분리가 뜨는 제거하고 바이러스 펠릿 (이것은 표시되지 않습니다) 90 UL 분자 학년 물 10 UL proteinase - K을 (20 MG / ML) 추가하면.
8. 30 분 55 ° C 물 목욕과 부화에 넣어 튜브. 튜브가 펠렛과 측면이 proteinase - K와 물이 혼합에 잠겨 있도록 각도로 설정되어 있는지 확인합니다.
9. 부화 후 곧 관의 하단에있는 모든 액체를 수집하는 테이블 톱 원심 분리기에있는 튜브를 스핀 (5 초) 및 6M guanidinium thiocyanate 솔루션의 315 UL 20 MG / ML 글리코겐의 10 UL (주 추가 : 적절한 따라 이 유해 물질에 대한 처리 지침은;) 표백 제나 산로 믹스와 별도의 용기에 배출하지 않습니다.
10. 가볍게 소용돌이 (5 초)을 곧 스핀. 상온에서 10 분 부화 후 새로 표시 1.5 ML RNAse 무료 원심 분리기 튜브 각 튜브의 내용을 전송할 수 있습니다.
11. 상온에서 30 분 21,000 XG 10 초 원심 각 튜브, 소용돌이에 분자 학년 이소 프로필 알코올의 495 UL을 추가합니다.
12. 뜨는을 취소하고 70 % 에탄올 500 UL를 추가합니다.
13. 상온에서 15 분 동안 21,000 XG 10 초 원심 분리기를위한 와동. 전송 피펫과 에탄올을 제거합니다. 다시 스핀과 피펫과 잔여 에탄올을 제거합니다. 항공은 10 분 건조. (SGS 프로토콜 5 MM 트리스 - HCL pH를 8.0 40 UL에서 RNA를 용해하고, SGS 프로토콜을 계속 들어.)
14. RNA - 버퍼의 55 UL에서 펠렛을 풀다. RNA - 버퍼가 100 MM의 DTT 10 UL 40 U / UL Rnasin 25 UL 추가하여 얻은 965 UL 트리스 - HCL (산도 8.0, 5 ㎜). 얼음 놓습니다.

2. 단일 복사본 분석

96 - 웰 플레이트는 HIV와 RCAS 표준 및 컨트롤을 모두 포함하여 8 환자의 샘플을 보유하고 있습니다. 이 프로토콜은 하나의 접시의 설정을 설명합니다.

1. HIV - 1 RNA 및 RNA RCAS의 성적표는 RNA 표준 곡선을위한 희석 수있는 1 ML RNA - 버퍼 2 aliquots을 준비하여 시작합니다. RNA - 버퍼는 1.13 이하 설명합니다.
2. 2 ML의 원심 분리기 튜브의 얼음에 dilutions를 준비합니다. 54 UL RNA - 버퍼는 3x10 ⁵ 부 / UL를 제공하기 위해 HIV - 1 RNA 주식 (1x10 ⁶ 부 / UL)의 25 UL 추가하여 RNA - 버퍼에서 HIV - 1 RNA의 성적의 절반 로그 dilutions을 만듭니다.
3. 10 UL (주 당 0.3 사본을 연속 절반 로그 dilutions을 (25 UL + 54 UL) 아래함으로써 계속 : 0.3, 1, 3 dilutions이에 대한 분석 기간 동안의 표준 곡선의 일부가되지 않습니다은 추정 값으로 사용됩니다 그리고는 신원 미상의 두어로 설정해야ING 분석). RCAS 성적 증명서는 사본 1x10 ⁶ / UL에서 갖춰져 있습니다. 마찬가지로, RNA - 버퍼 RCAS의 성적의 절반 로그 dilutions을 준비하지만, 아래로 100 사본 10 UL 당.
4. 로 표 1에 나와있는 cDNA 합성을위한 RT 칵테일을 준비합니다. RT 및 전송 중에 발생할 수있는 손실의 계정에 추가 조금을하기 위해 염두에두고 유지 표 1에 나열된대로 NRT 반응을 준비합니다. 참고 : NRT의 칵테일, RT 효소가 DNA의 증폭에 대한 제어 물로 대체됩니다.
   참고 :이 단계는 최근 Qiagen 로봇 (원래 Corbett)에 설정 판 이외에 자동화되었습니다.
5. 각 잘하는 RT 반응 혼합물 20 UL를 추가하여, 광학 96 - 웰 플레이트 (그림 3 참조)를 설정합니다. 표시된 8 우물에서 "NRT,"반대 transcriptase (NRT 반응 혼합물)없이 칵테일을 추가합니다. 접시에 칵테일을 추가하면, 우물 표시 "아니 템플릿 컨트롤 (NTC)"물을 10 UL를 추가합니다. 그림 3 농도에서 "HIV"이라는 우물에 HIV의 성적 10 UL을 추가합니다. 따라 농도에서 "RCAS"이라는 우물에 RCAS 성적 증명서 10 UL을 추가합니다. 판 다이어그램에서 "샘플"이라는 3 인접 우물에서 환자 샘플의 10 UL을 추가합니다. 표시된 우물에 eluted 샘플 10 UL 추가 'NRT. " 동일한 샘플 5 UL 및 표시된 우물 물을 5 UL 추가 "내부 통제를."
6. 번호판을 봉인하고시 thermocycler에서 실행 : 25 ° C 15 분, 42 ° 40 분 거리, 85은 10 분 ° C, 25 ° C 30 분, 5 ° C 개최를위한 C.
7. 준비 PCR 마스터는 표 2에 따라 혼합.
8. cDNA 합성이 완료되면, cDNA를 사용하여 지정된 장소로 이동합니다. 이 지정된 영역에서 HIV와 RCAS 모두 cDNA 접시의 각각 잘 수있는 PCR 마스터 믹스 20 UL를 추가합니다. 모든 가능한 오염을 방지하기 위해 지정된 지역에서이 단계를 수행하는 것이 중요합니다.
9. 스핀 플레이트, 광학 담요 (ABI 7700에만 필요한 담요)와 ABI 또는 Roche는 광학 커버 및 커버 인감. Roche는 480 또는 ABI 7700에서 실행됩니다. PCR 조건 : 95 ° C 10 분 후, 95 45 사이클 ° 15 초 동안 C, 60 ° 1 분 C. 별도 분석 RCAS와 HIV가 필요합니다. 결과의 예는 그림 4에 표시됩니다. 표준 곡선의 기울기는 낮은 사본 번호 성적의 정상적인 Poisson 분포에 의해 영향을받을 것입니다. 으로 설정하는 표준 곡선이 낮은 복사 번호 기준 (0.3, 1, 3 부)에 대한 가장 정확한 기울기를 보장하기 위해서는 "신원 ^미상."17

3. 단일 게놈 시퀀싱

1. cDNA 합성. 10 MM dNTPs 5 UL과 96 잘 PCR 플레이트 (Biorad)에 잘 수있는이 MM 유전자 특정 프라이머 (POL 또는 환경을) 5 UL을 추가합니다. 압축을 푼 RNA의 40 UL을 추가합니다. 인감 플레이트.
2. 10 분 65시 thermocycler에있는 RNA - 혼합 ° C를 변성.
3. 표 3에 나열 cDNA 합성에 대한 시약을 섞는다. denaturing 단계 후, 얼음에 PCR 플레이트를 삽입 각 샘플에 대한 cDNA 혼합물의 50 UL을 추가합니다.
4. thermocycler에서 PCR 플레이트 실행 45 ° 50 분, 85 C ° 10 분 4 ° C 개최를위한 C.
5. 첫 번째 PCR, 10 UL 반응. p6 - RT 또는 환경을 (표 3에 나열 시약, 표 5에 나열된 primers)의 첫 라운드 증폭을위한 중 primers를 사용하여 시약 트레이의 PCR 반응 혼합물을 준비합니다.
6. 멀티 채널 피펫을 사용하면 96 잘 PCR 플레이트 (70 샘플 3 부정적 컨트롤)에 PCR 혼합물 73 우물에의 8.0 UL 하는걸.
7. cDNA 합성이 완료되면 cDNA를 사용하여 지정된 지역으로 PCR 반응 혼합물을 포함하고있는 cDNA와 PCR 플레이트를 이동합니다. 지정된 영역에서 140 UL에 최종 볼륨을 가져 각 cDNA 샘플로 트리스 - HCL pH를 8.0 40 UL를 추가합니다. 부정적인 컨트롤 각각 70 우물과 물 2.0 UL 각 cDNA의 2.0 UL을 추가합니다. 인감 PCR 플레이트. thermocycler, 표 4에서 프로그램을 실행합니다.
8. 중첩된 PCR - 20ul 반응. 시약 트레이 (표 3에 나열 시약, 표 5에 나열된 primers)에 중첩 PCR을위한 시약을 섞는다.
9. 멀티채널 피펫으로 96 잘 PCR 플레이트에 73 우물에 중첩된 PCR 혼합물 18 UL 추가
10. 첫번째 PCR 1:5 희석하여 중첩 PCR에 첫 라운드 PCR 2 UL를 추가합니다. 표 4에 나열된 조건 하에서 thermocycler에 PCR 반응을 실행합니다.
11. 1 % 아가로 오스 겔에서 샘플을 실행합니다. PCR 제품의 대부분은 cDNA의 단일 분자의 결과 있는지 확인하려면 우물을 더 이상 30 %가 긍정되어야합니다. 이 과정은 1 % PCR 플레이트의 내용을로드하는 베크 만 보습 바로 앞에 달린 풀베는 날 Biomek FM 로봇을 사용하여 자동으로되어, 96 우물 E - 젤 (Invitrogen). E - 젤은 E -베이스 7 분 동안 실행됩니다. 표 5에 나열된 primers를 사용하여 시퀀스 제품.

4. 대표 결과 :

SCA :

모든 컨트롤은 HIV - 1 RNA 측정이 정확 고려하기 위해 통과해야합니다. 부정적인 제어 positi 경우적, 실행 때문에 가능한 오염의 무시해야합니다. 추출 단계에서 RNA의 손실을 제어하기 위해서는 플라즈마의 아군 RCAS의 적어도 50 %는 회복되어야합니다. 평균 RCAS는 <15,000 복사본이있는 경우 예제는 실패하고 RNA의 상당한 금액이 추출 또는 프로토콜의 다른 단계 도중에 분실되었을 수 있기 때문에 무시한다. 이것은 가능성으로 인해 플라즈마 ⁶ 높은 lipids 테스트를 모든 환자 샘플의 10 % 정도에서 발생합니다. RCAS 바이러스의 복구는 추출 및 cDNA 합성 및 PCR 증폭의 효율성의 품질을 제어하기위한 것입니다. 그것은 HIV가 면역 글로불린 가능성과 조직 문화에서 분리된 바이러스는 약간 다른하는 다른 인간 단백질에 바인딩되어 있기 때문에 HIV 복구를 위해 해결하기 위해 사용되지 않습니다. 4057 복사 / 반응 혼합물, 또는 95 % + / RCAS RNA의 -15 % ¹⁷ 추가 - 우리가 실험실에서 RCAS의 복구는 평균 25,716에 + /이되었다. NRT (NO 반대 transcriptase) 제어 DNA의 증폭을 위해 시험하기 위해 병렬로 실행됩니다. NRT 값이 세 HIV - 1 RNA 값 각 빼서는 다음 평균 계산이 숫자 영 (DNA의 증폭은 RNA의 증폭을 초과)보다 적은 경우, 결과는 실패 것이고 무시해야하기 때문에 대신 RNA보다 DNA에서 증폭의 위험. HIV - 1 RNA에만, 3분의 1 웰즈에서 증폭하는 경우 다시 테스트 샘플은 증폭이 실제 예제는 가능한 오염 물질로 인해하지 assayed 및 것에 대해 사실 확인하는 것이 좋습니다.

모든 컨트롤 통과하면, 플라즈마의 평균 HIV - 1 RNA 사본 번호를 계산하실 수 있습니다.

예제 1 : 평균 HIV - 1 부 번호가 0 인 경우, 검출 한계는 플라즈마의 볼륨 assayed에 따라 계산됩니다. 예를 들어,하자 플라즈마 7 ML이 assayed했다고. 이 분석과 감지 할 수 RNA의 작은 금액은 물론 당 0.33 사본의 평균을주는 두 가지 다른 우물에서 우물과 0의 사본 하나에 1 부 수도 있었을 텐데. 평균 복사 번호는 다음 RNA의 용출에 총 사본 번호 (가 각 물론 10 UL은 있지만, 전체 용출 량이 55 UL했습니다)에 도착하는 5.5의 요소를 곱한 수 있습니다. 감지의 하한선은 다음이다 : 5.5 7ml = 1.83 / 7 = 0.3 복사 / ML로 나눈 X 0.33 복사합니다. 이 예제에서 플라즈마에서 HIV - 1 RNA의 농도는 <0.3 부 / ML했다.

예제 2 : HIV - 1 RNA가 감지됩니다. RNA는 플라즈마 7 ML에서 추출한했다. HIV - 1 RNA마다의 평균 사본 번호가 좋지 당 2.0 복사본으로 계산됩니다. 그렇다면 플라즈마의 ML 당 평균 사본 번호는 5.5 X 2.0 부 / 7 ML = 1.6 HIV - 1 RNA / 플라즈마의 ML.

복사 숫자를 계산하는 데 사용 템플릿 엑셀 시트는 아래 웹사이트에서 로드할 수 있습니다.

SGS :

부정적인 컨트롤 중 하나가 긍정적인 경우 실행 가능한 오염으로 인해 무시해야합니다. 각 실행에서 제품의 숫자는 각 샘플의 바이러스로드 및 샘플의 상태에 따라 달라집니다. 우리의 경험에서 플라즈마 lipids 또는 세포의 많은 제품을 얻기의 기회를 줄일 수 있습니다. 조건 및 이전 동결을 저장하고 샘플 해동하는 것도 크게 RNA의 회복에 영향을 미칠 것이다. 일반적으로, 50 사본 / ML, 제품 (젤에 밴드) 아래 바이러스성로드와 함께 샘플 작업을 할 때 처리하는 샘플의 1 / 3 -1 / 2에 대한 예상이됩니다. 위에서 언급한 요인에 따라 강판 당 1-5 밴드는이 환자에있는 낮은 바이러스 부하로 인해 좋은 결과를 고려하여야한다.

cDNA 합성 (RT 칵테일 / cDNA 반응)	한 반응	아무도 반대 transcriptase 없음 (NRT) 칵테일 / cDNA 반응 (1 반응)
분자 학년 H 2 O	8.1 UL	8.2 UL
25 MM MgCl 2	6 UL	6 UL
25 MM dNTPs	0.6 UL	0.6 UL
100 MM DTT	0.2 UL	0.2 UL
무작위 Hexamers (0.1 ug / UL)	1.5 UL	1.5 UL
10X TaqMan 버퍼	3.0 UL	3.0 UL
Rnasin (40 U / UL)	0.5 UL	0.5 UL
Strategene RT (200 U / UL)	0.1 UL	추가하지 마십시오
합계	20 UL	20 UL
샘플 RNA	10 UL	10 UL
총 부피	30 UL	30 UL

표 1. 반응 mixt단일 복사본 분석에서 cDNA 합성을위한 ures.

PCR 마스터 믹스	한 반응	Primers
H 2 O	15.1 UL	HIV 앞으로의 프라이머 5' - CATGTTTTCAGCATTATCAGAAGGA - 3 '
10X PCR 골드 버퍼	2.0 UL	HIV의 역방향 프라이머 5' - TGCTTGATGTCCCCCCACT - 3 '
25 MM MgCl 2	2.0 UL	HIV Probe5'FAM - CCACCCCACAAGATTTAAACACCATGCTAA - TAMRA 3 '
* 앞으로 프라이머 (100 음)	0.3 UL
* 역방향 프라이머 (100 음)	0.3 UL	앞으로 RCAS Primer5' - GTCAATAGAGAGAGGGATGGACAAA - 3 '
* 프로브 (100 음)	0.05 UL	RCAS는 Primer5' - TCCACAAGTGTAGCAGAGCCC - 3 '을 거꾸로
TaqGold (5 U / UL)	0.25 UL	RCAS 프로브 5'FAM - TGGGTCGGGTGGTCGTGCC - TAMRA 3 '
합계	20.0 UL

표 2. PCR 마스터 믹스와 싱글 복사 분석을위한 primers.

cDNA 칵테일 / cDNA 반응	1 RNA 샘플	첫 번째 PCR 칵테일	1 판 (75 반응)	중첩된 PCR 칵테일	1 판 (75 반응)
10X RT 버퍼 (Invitrogen)	10 UL	10X PCR 버퍼 (Invitrogen)	75 UL	10X PCR 버퍼	150 UL
25 MM MgCl 2	20 UL	50 MM MgSO 4	30 UL	50 MM MgSO 4	60 UL
0.1M DTT	1 UL	10 MM dNTPs	15 UL	10 MM dNTPs	30 UL
RNase없는 물	17.5 UL	50 음 primers (EA)	3 UL	50 음 primers (EA)	6 UL
Rnase - 출력 (Invitrogen)	1 UL	플래티넘 DNA 형성 촉매 안녕 Fi를 효소 (invitrogen)	6 UL	플래티넘 DNA 형성 촉매 안녕 Fi를 효소 (Invitrogen)	12 UL
윗첨자 III (200 U / UL) (invitrogen)	0.5 UL	분자 수준의 물	468 UL	분자 수준의 물	1086 UL

표 1. cDNA와 단일 게놈 시퀀싱을위한 PCR 혼합물.

P6 - RT 한 PCR 프로그램	환경을 한 PCR 프로그램
1. 이분에 대해 94 ° C	1. 이분에 대해 94 ° C
2. 30 초 동안 94 ° C	30 초 동안 2 0.94는 ° C
30 초 동안 2 0.94는 ° C	3. 30 초 동안 52 ° C
4. 72 ° C 일분 30 초	4. 1 분 72 ° C
5. 44주기, # 2로 이동	5. 44주기, # 2로 이동
6. 72 ° C 3 분	6. 72 ° C 3 분
7. 4 ° C 개최	7. 4 ° C 개최
P6 - RT PCR이 프로그램	환경을 두 PCR 프로그램
1. 2 분 동안 94 ° C	1. 2 분 동안 94 ° C
2. 30 초 동안 94 ° C	2. 30 초 동안 94 ° C
3. 30 초 동안 55 ° C	3. 30 초 동안 56 ° C
4. 1 분 72 ° C	4. 72 ° C 45 초 동안
5. # 1, 40 (41 사이클 총)로 이동	5. # 1, 40 (41 사이클 총)로 이동
6. 72 ° C 3 분	6. 72 ° C 3 분
7. 4 ° C 개최	7. 4 ° C 개최

단일 게놈 시퀀싱 분석을위한 표 4. Thermocycler 조건.

반응	뇌관	순서
P6 - RT cDNA	3500 -	5 'CTATTAAGTATTTTGATGGGTCATAA 3'
cDNA 환경을	E115 -	5'AGAAAAATTCCCCTCCACAATTAA 3 '
P6 - RT 1. PCR	3500 -	5 'CTATTAAGTATTTTGATGGGTCATAA 3'
P6 - RT 1. PCR	1849 +	5 'GATGACAGCATGTCAGGGAG 3'
P6 - RT2.PCR	1870 +	5 'GAGTTTTGGCTGAGGCAATGAG 3'
P6 - RT 2.PCR	3410 -	5 'CAGTTAGTGGTATTACTTCTGTTAGTGCTT 3'
환경을 1. PCR	E115 -	5'AGAAAAATTCCCCTCCACAATTAA 3 '
환경을 1. PCR	E20 +	5'GGGCCACACATGCCTGTGTACCCACAG 3 '
환경을 2. PCR	E30 +	5'GTGTACCCACAGACCCCAGCCCACAAG3 '
환경을 2. PCR	E125 -	5'CAATTTCTGGGTCCCCTCCTGAGG 3 '
P6 - RT 시퀀싱	2030 +	5'TGTTGGAAATGTGGAAAGGAAGGAC 3 '
P6 - RT 시퀀싱	2600 +	5'ATGGCCCAAAAGTTAAACAATGGC3 '
P6 - RT 시퀀싱	2610 -	5'TTCTTCTGTCAATGGCCATTGTTTAAC3 '
P6 - RT 시퀀싱	3330 -	5'TTGCCCAATTCAATTTTCCCACTAA 3 '
환경을 시퀀싱	E30 +	5'GTGTACCCACAGACCCCAGCCCACAAG3 '
환경을 시퀀싱	E125 -	5'CAATTTCTGGGTCCCCTCCTGAGG 3 '

단일 게놈 시퀀싱 분석을위한 표 5. Primers.

그림 1. 그을음의 게놈 시퀀싱 분석 (SGS)의 개요.

그림 2. 단일 복사본 분석 (SCA)의 개요.

그림 3. 단일 복사본 분석을위한 설정 플레이트.

그림 4. ABI 7700에서 촬영 화면. A.이 엄청난 환자 샘플 RCAS 표준 곡선을 보여주는 환자의 샘플 및 B.있는 HIV - 1 RNA 표준 곡선을 보여주는.

토론

HIV - 1 감염을 자연스럽게 제어 감염 조합 antiretroviral 치료에 대한 개인 (카트) 또는 매우 낮은 바이러스성로드, 플라즈마 ^{4, 11, 12, 17, 18} ML 당 일반적으로 한 주변의 복사본을 가지고. 자연 컨트롤과 환자의 바이러스성로드는 종종 개인의 세트 포인트 ^{1, 2, 17} 주변 변동. assays의 감도는 여기에 플라즈마의 입력 볼륨에 크게 의존 설명했다. 일반적으로, 우리는 플라즈마 7 ML로 일하고 ?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
시약의 이름	회사	카탈로그 번호	댓글
무작위 hexamers (500 ug / ML)	Promega	C118A
Taqman 버퍼	응용 Biosystems	4,304,441
RNAsin (40 U / UL)	Promega	N211B
RT 효소 (200 U / UL)	Strategene	600107-51
Amplitaq 골드의 DNA 중합 효소	응용 Biosystems	4,311,814	6 팩
Amplitaq 10XGold PCR 버퍼 II	응용 Biosystems	4,311,814	효소와 함께 제공
Magnesiumcloride 25 MM	응용 Biosystems	4,311,814	효소와 함께 제공
1M 트리스 - HCL 버퍼, pH를 8.0, 5 MM	Invitrogen	AM9855G
윗첨자 III 리버스 transcriptase 효소, 200 U / UL	Invitrogen	18080-044
윗첨자 III 10X 버퍼	Invitrogen		효소와 함께 제공
DTT 100 MM	Invitrogen		효소와 함께 제공
플래티넘 DNA 형성 촉매 DNA 중합 효소 하이 피델리티 5 U / UL	Invitrogen	11304-102
10X 하이 피델리티 PCR 버퍼	Invitrogen	11304-102	효소와 함께 제공
Proteinase - K 20 MG / ML	Ambion	2546
Guanidinium Thiocyanate 솔루션 6M	FlukaBiochemica	50,983
글리코겐 20 MG / ML	호슈	10901393001
이소프로판올	시그마 - 올드 리치	19,516
에탄올 70%	시그마 - 올드 리치	E702 - 3
분자 등급 물	Gibco / Invitrogen	10977-015
dNTPs (25 mmol 각)	Bioline	BIO - 39025

Euipment 이름	회사	카탈로그 번호	댓글
쉬운 인감 원심 분리기 튜브 (16x73mm)	Seaton 과학	6041
화이트 Delrin 크라운	Seaton 과학	4020	쉬운 인감 튜브에 대한 모자
Optiseal 벨 - 탑 튜브를위한 튜브 랙, 8.9 ML	베크 만	361642
헥스 드라이버 ½ INC 오픈	Seaton 과학	4013
캡 제거 tupe	Seaton 과학	4014
5 ML serological pipettes	Costar	4051
Pipetboy	어떤
15 ML 전송 pipettes	ISC Bioexpress	P - 5005-7
5.8 ML Dispossable 전송 pipettes, 괜찮아요 팁	VWR	14670-329
15 ML 원심 분리기 튜브	매
1 ML의 원심 분리기 튜브	어떤
트리스 버퍼 식염 정제	시그마 - 올드 리치	T5030 - 100TAB
초원 심 분리기 및 로터	Sorval	90SE 및 T - 1270
96 - 웰 플레이트 PCR	Biorad	HSS - 9601
50 ML 시약 저장조	Costar	4870
Microamp 광학 96 - 웰 플레이트 반응	응용 Biosystems	N801 - 0560
광학 플레이트 커버	응용 Biosystems	4,333,183
MicroAmp 광학 압축 패드	응용 Biosystems	4,312,639
Microseal영화	Biorad	MSA - 5001
2 ML의 원심 분리기 튜브	어떤
1퍼센트 아가로 오스 젤 (E - 젤, invitrogen)	Invitrogen	G - 7008-01
E -베이스 (Invitrogen)	Invitrogen	EB - M03