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요약

큰 왁스 나방의 애벌레의 구강 내부 haemocolic 감염 갤러리아 mellonella이 설명되어 있습니다. 이 벌레는 entomopathogenic뿐만 아니라 포유류의 기회 박테리아의 독성 요인을 연구하는 데 사용할 수 있습니다. 감염 방법과의 예는 곤충의 양육 생체 내 분석에 설명되어 있습니다.

초록

박테리아 독성의 연구는 종종 적절한 동물 모델이 필요합니다. 감염의 포유류의 모델은 비용이 많이 들고 있으며, 윤리적 문제를 제기 할 수 있습니다. 감염 모델과 같은 곤충의 사용은 가치있는 대안을 제공합니다. 같은 nematodes와 같은 다른 비 척추 동물 모델 호스트에 비해 곤충은 항균 방어 비교적 고급 시스템을 가지고 있으며 따라서 더 포유류의 감염 과정에 관련 정보를 생성 할 가능성이 있습니다. 포유 동물과 마찬가지로, 곤충은 복잡한 타고난 면역 시스템 1을 보유하고 있습니다. hemolymph에있는 세포 미생물 침략자를 phagocytosing하거나 캡슐화 할 수 있으며, 체액 반응은 라이소자임 작은 항균 펩티드 2,3의 inducible 생산이 포함되어 있습니다. 또한, 유추는 곤충 애벌레의 midguts와 포유류의 소화 시스템의 장 세포의 상피 세포 사이에 발견된다. 마지막으로, 이러한 세포 부착, 저항 등의 세균 감염 과정에 필수적인 몇 가지 기본 구성 요소항균 펩티드, 조직 저하 및 산화 스트레스에 대한 적응은 곤충과 포유류 모두에 중요 할 가능성이 있습니다. 따라서, 곤충 포유류의 감염에 관련된 미생물 독성 요소의 식별 및 특성에 대한 여러 균을 혼합 한 도구입니다.

큰 왁스 나방 갤러리아 mellonella의 애벌레는 이러한 포도상 구균, 프로테우스의 vulgaris와 같은 포유류의 곰팡이 (Fusarium oxysporum, 누룩 곰팡이 fumigatus, 칸디다 알비 칸스) 및 세균성 병원체를 포함한 미생물 감염, 다양한 범위의 pathogenesis에 유용한 통찰력을 제공하기 위해 표시되었습니다 , Serratia marcescens 모나스 aeruginosa, 리스테리아 monocytogenes 또는 Enterococcus faecalis 4-7. 상관없이 박테리아 종, 결과는 큐티클을 통해 직접 분사에 감염 갤러리아 애벌레와 함께 지속적으로 시미의 그것과 상관 관계를 획득고맙다 포유류 연구 : 포유류의 모델 감쇠 아르 박테리아 변종은 갤러리아에서 낮은 독성을 보여줍니다, 그리고 심각한 인간 감염을 일으키는 변종도 갤러리아 모델 8-11에 매우 유독합니다. 갤러리아의 구강 감염이, 특정 독소와 같은 훨씬 덜 사용 및 화합물 추가됩니다는 사망률에 도달 할 필요합니다.

G. mellonella의 애벌레 존재하는 몇 가지 기술적 인 장점 : 사람들이 따라서 박테리아의 정의 복용의 주입을 사용 (pupation 전에 마지막 instar의 애벌레는 약 2 cm 길이, 무게 250 밀리그램입니다) 비교적 크기, 그들은 20 일 (다양한 온도에서 키운 할 수 있습니다 ° 30 ° C로 C) 및 감염 연구는 포유류의 환경을 모방 실험을 허용, 37 ° C 12,13 위를 15 ° C 사이에 실시 할 수 있습니다. 또한, 곤충 양육은 쉽고 상대적으로 저렴합니다. 애벌레의 감염은 여러 수단, includin에 의해 박테리아 독성을 모니터링 할 수 있습니다LD 50 14 g 계산, 박테리아 생존 15,16 및 감염 과정 17 시험의 측정. 여기, 우리는 G.의 모든 삶의 단계를 덮고, 곤충의 양육을 설명 mellonella. 구두 및 내부 haemocoelic : 우리는 접종의 두 경로로 감염에 대한 자세한 프로토콜을 제공합니다. 이 프로토콜에 사용되는 세균 모델은 바실루스 세레 우스, 위장뿐만 아니라 다른 심각한 지역 또는 조직 기회 감염 18,19에 연루 그램 긍정적 인 병원체이다.

프로토콜

1. 곤충 양육

계란의 마지막 instar의 애벌레에 대한 모든 과정이 25 ° C.에 약 5 주 정도 1 개 또는 2 개 추가 주는 성인 나비를 얻기 위해 필요합니다.

  1. 최소 100 pupae 또는 새로 합병 성인 G.를 배치 5 리터 와이어 메쉬 케이지의 mellonella 나비. 남자 나비는 10~15mm을 측정합니다. 성인 남성이 나방은 희미한 빛과 어두운 표시가있는 베이지 색입니다. 20mm 주변의 여성 나비 측정. 암컷은 갈색 / 회색과 수컷보다 어두운입니다.
  2. 계란 부설에 대한 우리에 네 계층 종이 두 팩을 일시 중지합니다. 이일 후, 성인 여성은 신문 사이의 가장자리에 알을 낳는 것입니다.
  3. 일주일에 두 번, 꽃가루와 벌 왁스가 포함 된 공기가 순환하게하기 위해 격자로 새로운 플라스틱 양육 상자에 계란 종이 팩을 넣습니다. 알은 약 3 일 부화 작은 애벌레는 왁스와 화분에 공급하여 개발 시작합니다. 또한, 애벌레는 인공 다이어트 consistin에 배치 할 수 있습니다500g 액체 꿀, 400g의 글리세린, 100g 건조 맥주 효모, 250g의 밀가루, 200g 탈지 분유와 400g 폴렌타 죽의 혼합의 g. 유충 당 음식의 적절한 비율을 제공하기 위해 정기적으로 새로운 상자에 애벌레를 분리 모든 이틀 음식을 보충.
  4. 애벌레는 유충 경기장의 여섯 단계에서 키운 있습니다. 각 경기장은 유충의 머리 캡슐의 미끄럼이 특징입니다. 애벌레는 pupation 전에 마지막 단계에 도달하면, 그들은 먹이를 중지하고 가벼운 실크 누에 고치를 구축 시작합니다.
  5. 자신의 보호 고치에서 애벌레 휴식하고 pupae로 변환 할 수 있습니다. 왁스 웜은 성인 나방에 등장하는 1~2주의 번데기 단계에 남아 있습니다. 성인 나방은 술도 먹지 않습니다. 짝짓기가 발생하고 왁스 웜 '수명주기가 다시 시작됩니다.
  6. 병리 검정을 표준화하기 위해 마지막 애벌레의 단계에서 유충을. 이 단계에서 사람들이 먹이를 중지, 양육 상자의 덮개에 이동 실크를 생산하기 시작합니다. 이 Stage 5 일 주위 지속됩니다.

2. 감염에 대한 곤충 선택

  1. 감염 전에 마지막으로 instar 무게에 2-3cm 길이 180-250 밀리그램 아르 애벌레,, 24 시간을 선택하고을 굶어 빈 상자에 넣어 두 었어요.
  2. 애벌레 주변의 초기 실크 누에 고치를 제거합니다.

3. 세균 준비

  1. CFU / ML 1x10 8 CFU / 섭취에 대한 ML을 (CFU는 구하는 방법 10 4 식민지 성형 단위 (CFU) / ML에서 10 8 CFU / 내부 haemocoelic 분사에 대한 ML과 3x10 6에서까지 최종 농도를 얻기 위해 세균 세균 현탁액을 준비 LD 50) 박테리아 종에 따라 달라집니다. 우리의 경우, B.에 세레 우스는 Luria-Bertani 국물 매체에서 재배됩니다 (LB, 10g / L tryptone, 5g / L 효모 추출물, 10g / L NaCl) 37의 ° C 교반 이하까지 성장의 안으로 굽음에 해당하는 고정 단계로 진입, 곡선. OD 600 nm의를 (측정B. 1 사이 2 세레 우스)과 이전에 한 적정 곡선을 사용하여 세균 농도를 평가하는 데 사용합니다. 객실 온도와 인산의 resuspend 10 분 5,000 XG에서 원심 분리하여 수확 박테리아 (: 1M KH 2 PO 4, 100 K 2 HPO 4, 5M NaCl, pH를 7.2 PBS) 식염 버퍼링. 각 유충 원하는 농도에서 세균 현탁액의 10 μl를 받게 될 것입니다.
  2. 또한, 포자 현탁액은 감염을 준비 할 수 있습니다. sporulation 매체 HCT (5 G / L tryptone, 2 G / L 카세인 가수 분해물, 12.5 MM K 2 HPO 4, 12.5 MM MgSO 4, 0.05 MM MnSO 4, 1.2 MM ZnSO 4, 1.2 MM 철의 배양 세균을하여 포자를 얻을 2 (SO 4) 3, 0.5 % H 2 3 일 30 ° C 25 MM CaCl 2) 20, 4 SO. 수확 원심 분리하여 포자 (10,000 XG, 15 분) 및 멸균 증류수에 두 번 씻는다. 포자 펠를 Resuspend남은 식물 세균을 제거하는 78시 15 분 ° C에 멸균 증류수와 열에 표시 할 수 있습니다. LB 한천 플레이트에 시리얼 dilutions을 도금하여 정지 수계. 각 유충 원하는 농도에 포자 현탁액의 10 μl를 받게 될 것입니다.

4. 독소 준비 눈물

  1. B.에서 Cry1C 독소를 준비 thuringiensis 변형 407은 유전자 인코딩 Cry1C를 들고 플라스미드 pHTF31C 21 변환. 30 100 ML의 HCT 매체의 문화 변형 °와 72 시간을위한 C 전체 sporulation, 문화 표면에 뜨는에 독소 크리스탈 생산과 해방을 허용하도록 (에리스로 마이신 10mg/ml) 항생제.
  2. 72% -79 %의 자당 기울기에 표면에 뜨는에서 결정을 정화. 먼저 40 ML 튜브에 79 % 자당 17 ML를 추가합니다. 79 % 자당 위에 72%의 자당의주의 층 17 ML. 마지막으로, 레이어 5-6 10X 집중 sporulated 문화의 ML하고 관을 닫습니다. 20,00에서 14 시간 동안 튜브를 원심 분리기0 XG, 4 ° C는 포자의 결정을 분리합니다. 기울기 인터페이스에서 결정을 수집합니다. 그것을 씻어 25 ML 차가운 멸균 물에 크리스탈 펠렛을 Resuspend. 20 분에 8,000 XG에 원심 분리기. 이 단계는 결정에 집어 넣는 모든 자당을 제거하려면 세 번 반복됩니다. 5 ML 멸균 물에 결정을 Resuspend하고 순결을 평가하기 위해 현미경으로 관찰한다.
  3. 50 MM NaOH에 presolubilized 크리스탈 솔루션에 고전 브래드 포드 착색에 의해 독소 단백질 농도를 평가합니다. 독소 결정은 사용 할 때까지 -20 ° C에 저장할 수 있습니다.

5. 주입기 준비

  1. 정확한 주입 볼륨을 제어하려면, 1 μl / 초 (그림 1A)에 설치 속도로 자동 주사기 펌프 (예 : KD 과학 KDS 100)을 사용합니다.
  2. 300 μl 물 1 ML의 피하 주사기 또는 20-25 애벌레의 감염 세균 솔루션 (조건 당 1 주사기)를 입력합니다. 조심스럽게 타하여 거품을 제거주사기 pping 다음 주사기에 0.45 X 12mm 바늘을 첨부합니다.
  3. 주입기에 주사기를 삽입합니다.
  4. 주입 된 볼륨을 제어 할 빈 튜브에 10 μl의 빈 주사를 수행합니다.

6. 곤충 Intrahaemocoelic 사출

  1. 엄지와 집게 손가락 사이에 수동으로 곤충를 놓습니다. 그런 다음 유충 피부 (표피) (그림 1C)에 분사기에서 해결 된 바늘을 삽입합니다.
  2. 10 μl 세균 솔루션을 (포자 또는 식물 박테리아) 주입하면서 장소에서 곤충세요.
  3. 조심스럽게 바늘에서 곤충을 제거합니다.
  4. 작은 페트리 접시 (직경 5cm), 음식 당 5 유충에 감염된 곤충를 놓습니다.
  5. 각 실험 조건에 대한 최소한 20 애벌레를 감염.
  6. 48 시간에 대한 보육에서 37 ° C에서 요리를 놓으십시오.

7. 곤충 강제 수유 (섭취)

  1. 2 ML Eppendorf 튜브에 0.2 μg / & m를 섞어U; 중 포자 나 식물 세포 현탁액과 Cry1C 독소 내가 3x10 4에서 10 μl 당 1x10 7에 이르기까지 최종 농도를 얻을 수 있습니다.
  2. 20-25 애벌레의 감염 세균 - Cry1C 독소 솔루션 300 μl과 30g의 25 밀리미터의 피하 주사기 바늘을 1 ML의 주사기를 채우십시오. 주사기에서 거품을 제거합니다.
  3. 수동 그래서 그 입을 바늘 (그림 1D) 분사기에서 해결하고, 자동화 된 주사기 펌프를 사용하여 세균 솔루션의 10 μl로 강제 먹이를 입력하는 곤충를 놓습니다.
  4. 각 실험 조건에 대한 최소한 20 애벌레를 감염.
  5. 작은 5cm 페트리 접시 (접시 당 5 유충)에 감염된 곤충를 놓습니다. 48 시간에 대한 보육에서 37 ° C에서 요리를 놓으십시오.

8. 녹화 곤충 사망률

  1. 힘 수유 또는 주입 실험을 한 후, 25에서 음식없이 배양 접시에있는 애벌레를 유지 ° C 또는 37 ° C. 애벌레의 몰리브덴을 확인48 시간 기간 동안 정기적으로 rtality. 죽은 유충은 불활성이며 일반적으로 검은 색을 (그림 1B) 설정합니다.
  2. 사망률 데이터는 로그 Probit 프로그램 14을 사용하여 분석 할 수 있습니다. 이 프로그램은 선량 사망률 곡선의 선형성을 시험하고 치명적인 복용 (LD 50)을 제공합니다. 또한, 이러한 프리즘 (그래프 패드), 생존을 분석하거나 사망률 데이터 같은 다른 프로그램이 사용할 수 있습니다.

결과

G.에 박테리아의 내부 haemocoelic 주입 mellonella는 여러 사람이 병원균의 타고난 면역 요인에 조직 손상 및 저항을 다루는 많은 독성 요소의 식별을 위해 매우 유용한 입증되었습니다. 예를 들어, 그림 2A는 B.의 다양한 복용의 주입 후 곤충 사망률을 나타냅니다 세레 우스 균 (야생 유형과 돌연변이 변종) 22. 그림 2B는 G 감염 후 세균 ?...

토론

곤충, 특히 애벌레의 단계의 사용은 여러 병원체에 대한 감염 모델로, 잦은되고 있습니다. 일부 측면에 대한 선택의 모델은 성인과 애벌레의 무대 1,2 모두로 사용 Drosophila (플라이 모델)입니다. lepidopteran 곤충 G. mellonella는 주로 주입하여 세균 독성을 시금에 사용되었습니다. 포유류의 병원체가 공부 할 때 Drosophila보다 높은 온도를 (37 ° C 이상) (최대 25 ° C) 참아의 장점...

공개

관심 없음 충돌이 선언 없습니다.

감사의 말

우리는 우수한 기술 지원을 위해 엘리자베스 Guillemet, 크리스토프 Buisson와 Ludovic Bridoux 감사드립니다. 우리는 초기 시스템 설정을위한 Sylvie Salamitou 및 Sinda Fedhila 께 무한한 빚을 수 있습니다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
시약의 이름 회사 카탈로그 번호 코멘트 (선택 사항)
왁스와 화분 라 루슈 Roanaise 303000 모든 벌꿀 생산
자동 주사기 펌프 KD 과학 KDS 100
주사 한 ML Terumo BS 01T
니들 0.45 X 12mm Terumo NN 2613R
페트리 접시 5cm VWR 89000-300
바늘 30g의, 25 밀리미터 피하 Burkard 제조 (주) PDE0005

참고문헌

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