조직을 통한 X선 여기 발광 화학 이미징을 통한 임플란트 관련 감염의 높은 공간 분해능 화학 이미징

요약

여기에서는 X선 여기 발광 화학 이미징(XELCI)을 사용하여 이식된 의료 기기 주변의 화학 정보를 고분해능 광학 검출하기 위한 프로토콜을 제시합니다. 이 새로운 이미징 기술은 임플란트 관련 감염 생화학을 연구할 수 있는 실험실에서 개발되었습니다.

초록

이식형 의료 기기와 관련된 미생물 감염은 골절 고정 실패의 주요 관심사입니다. 이러한 감염의 조기 진단은 두 번째 수술에 대한 추가 비용없이 항생제로 성공적으로 박멸 할 수 있습니다. 여기에서 XELCI는 높은 X선 해상도, 임플란트 특이성 및 이식된 의료 기기 표면 근처의 비침습적 이미지 화학 농도에 대한 화학적 민감성을 가진 기술로 설명합니다. 장치는 화학적으로 보고되는 표면으로 코팅되어 있습니다. 이 화학적으로 반응하는 표면은 이식 가능한 의료 기기에 코팅 된 두 개의 층으로 구성됩니다. 모니터링을 위해 적색 발광 섬광체(Gd2O2S:Eu) 층 위에 코팅되는 pH 민감성 층(브로모티몰 블루 또는 브로모크레졸 그린 혼입 하이드로겔)을 포함한다. 집속된 X선 빔이 임플란트의 한 지점을 조사하고 섬광체에서 생성된 적색광(620nm 및 700nm 피크 포함)이 감지층을 통과하여 pH에 따라 스펙트럼 비율이 변경됩니다. 임플란트를 가로질러 X선 빔을 스캔하고 조직을 통과하는 빛의 스펙트럼 비율을 점별로 측정하여 이미지를 생성합니다. 우리는 수정된 이식형 플레이트 센서로 이전에 대퇴골의 뼈 표면에서 임플란트 관련 감염을 모니터링하기 위해 이 이미징 기술을 사용했습니다. 이제 우리는 경골 골수내 막대 감염으로 인해 발생하는 pH 변화를 연구하고 있습니다. 파일럿 전 토끼 연구에는 두 가지 유형의 골수내 막대 디자인이 사용되었으며, XELCI 기술을 사용하여 뼈 표면뿐만 아니라 뼈 내부에서도 발생하는 화학적 변화를 모니터링할 수 있다는 것을 알게 되었습니다. 따라서 이를 통해 비침습적이고 높은 공간 분해능, 낮은 배경 국소 pH 이미징을 통해 임플란트 관련 감염 생화학을 연구할 수 있습니다.

서문

미국에서는 매년 약 200만 개의 골절 고정 장치가 삽입되며, 그 중 5%-10%가 임플란트 관련 감염을 유발한다¹. 이러한 감염은 생물막의 이질성과 항생제 내성 특성으로 인해 후기 단계에서 항생제로 치료하기가 더 어렵습니다 ^2,3. 조기에 진단되면 항생제와 외과적 괴사조직 제거술로 감염을 치료하여 치료된 골절 부위의 하드웨어를 교체하기 위한 두 번째 수술에 대한 추가 의료 비용을 방지할 수 있습니다. 일반 방사선 촬영 및 기타 고급 방사선 촬영 기술은 정형외과 임플란트 관련 감염, 불유합 및 관련 합병증의 진단에 적용됩니다. 이러한 기술은 정형외과 임플란트에서 주변 뼈와 조직의 구조적 정보를 획득하는 데 자주 사용되지만 특정 환경에서 생화학적 정보를 제공할 수 없습니다. 따라서 우리는 임플란트 부위에서 비침습적으로 생화학 정보를 고해상도 이미징하기 위한 새로운 X선 여기 발광 화학 이미징(XELCI) 기술을 개발했습니다. 정형 외과 임플란트 관련 감염의 진단은 일반적으로 하나 또는 다른 수단의 조합에 의해 수행됩니다. 임상 관찰 (통증, 부기, 발적, 상처 분비물 등)은 감염의 첫 징후를 시사합니다. 나중에, 뼈 치유 진행의 실패를 확인하고 병원성 유기체 ^4,5를 확인하기 위해 방사선 및 실험실 실험이 수행된다. 컴퓨터 단층 촬영 (CT), 자기 공명 영상 (MRI)과 같은 핵 의약 기술 및 단일 광자 방출 컴퓨터 단층 촬영 (SPECT) 및 양전자 방출 단층 촬영 (PET)과 같은 방사성 뉴클레오티드 방법은 감염된 임플란트 및 관련 감염의 더 나은 시각화를 위해 사용됩니다 ^6,7. CT와 MRI는 각각 골 괴사와 연조직 이상을 판별하는 데 유리하지만, 금속 임플란트에 가까운 거리에서 간섭을 일으킨다⁸. 임플란트 관련 골수염을 진단하기 위해 생체 내 영상 조영제로서 방사성 동위원소 표지 분석물과 결합된 SPECT 및 PET와 같은 다양한 X선 방법론이 널리 활용되고 있다². 현재 응용 분야는 CT 스캐닝 데이터와 SPECT 또는 PET의 라벨링 데이터를 결합하여 해부학적 정보를 생성합니다⁹. 이러한 이미징 양식 중 하나 이상이 감염 진단을 돕기 위해 사용되지만 추가 의료 및 수술 비용을 피하기 위해 항생제 치료를 시작하기 위해 감염과 관련된 pH 변화를 조기에 감지할 수 없습니다.

임플란트 관련 감염을 모니터링하기 위해 이 연구에 사용된 이미징 시스템을 활용하는 주요 이점은 스펙트럼 참조를 통해 생물막 미세 환경에 대한 생화학적 정보를 밝힐 수 있다는 것입니다. 주요 초점은 감염된 부위의 이미징 및 pH 매핑에 있지만 이 방법은 임플란트 관련 감염에 특이적인 다른 바이오마커를 모니터링하도록 변경할 수 있습니다. 따라서 XELCI를 통해 감염의 병태생리학을 이해할 수 있습니다. 높은 공간 해상도 이미징을 통해 감염이 증가함에 따라 이질성을 매핑할 수 있습니다. 생물막 형성이 일어나는 표면의 pH는 생화학적 변화를 이해하는 데 매우 중요합니다. 또한, 박테리아^10,11에 의한 항생제 관련 스트레스 반응으로 인해 다른 미세 환경 변화가 발생할 수 있다. 표면 특이적 및 높은 공간 분해능 이미징으로 인해 생물막 미세 환경에 대한 항생제 효과를 모니터링할 수 있습니다. 이 기술은 표적 약물 전달 실험을 위한 생물막 환경을 연구하는 데에도 사용할 수 있습니다. 우리는 표적 낮은 pH 약물 방출 또는 pH를 높여 더 높은 pH에서 작용하기 쉽게 만들 수 있습니다.

이 이미징 기술의 세 가지 특정 특성은 X선 해상도, 임플란트 표면 특이성 및 화학적 민감도입니다(그림 1A). 이러한 특성은 정형외과 임플란트 관련 감염을 이미징하기 위해 현재 사용 가능한 이미징 기술과 비교할 수 있습니다(그림 1B). X선이 조사되면 임플란트 표면에 코팅된 형광체 입자는 조직의 몇 센티미터를 통과할 수 있는 적색 및 근적외선(NIR) 빛을 생성합니다(약간의 감쇠가 있긴 하지만)^12,13. 표 1은 생물막 또는 조직을 통해 pH를 측정하는 데 사용된 다른 방법과 비교하여 개발된 이미징 시스템의 일부 기능을 보여줍니다.

XELCI는 그림 2와 같이 X선 여기와 결합하여 이식된 의료 기기 근처에서 광학적으로 높은 공간 분해능의 화학 정보를 획득하는 새로운 이미징 기술입니다. 여기서는 X선 여기성 형광체 입자의 선택적 여기 및 광학 검출이 활용됩니다. 임플란트는 신틸레이터 입자 층 위에 pH 민감성 염료가 포함된 폴리머 층인 두 개의 층으로 코팅됩니다. 일련의 집속 X선 빔이 임플란트를 조사하면 섬광체 층이 가시광선(620nm 및 700nm)을 생성합니다. 이렇게 생성된 빛은 pH 민감층을 통과하여 주변 환경의 pH에 따라 발광 스펙트럼을 조절합니다. 낮은 pH는 일반적으로 감염 및 생물막 형성과 관련이 있습니다. 감염이 진행됨에 따라 pH는 생리학적 pH(pH 7.2)에서 산성(pH 7 미만)으로 변하고 센서의 pH 염료는 색상과 흡광도를 변화시킵니다. 발광 스펙트럼의 변화는 pH 7 및 pH 4에서 브로모크레졸 녹색 pH 염료에 대한 그림 2E에 나와 있습니다. 조직과 뼈를 통해 투과된 빛이 수집되고 스펙트럼 비율이 pH를 결정합니다. pH 이미지를 생성하기 위해 집속된 X선 빔은 신틸레이터 필름에 한 번에 한 지점씩 조사하고 샘플 전체에 걸쳐 빔을 포인트별로 스캔합니다. 이전에는, 이 기술이 정형외과용 임플란트^14,15의 표면의 이미지 pH 변화에 적용되었고^, 뼈 및 조직을 통한 골수내 관내의 pH 변화를 모니터링하기 위해 이를 시험하였다.

아래 그림 3은 이미징 시스템의 개략도를 보여줍니다. 이미징 시스템의 기본 구성 요소는 폴리 모세관 광학 장치가 있는 X선 여기 소스, 두 개의 광전자 증배관에 연결되는 일체형 아크릴 광 가이드, X, Y 및 Z 전동 스테이지(30cm x 15cm x 6cm 이동) 및 데이터 수집을 위해 연결된 컴퓨터입니다. X선 소스, x, y, z 스테이지 및 수집 광학 장치(엘보우, 라이트 가이드, 광전자 증배관(PMT))는 X선 방지 인클로저에 있으며, X선 컨트롤러, PMT용 전원, 데이터 수집(DAQ) 보드 및 컴퓨터에 연결된 함수 발생기는 외부에 보관됩니다. 인클로저와 도어 전면 사이에 배치된 푸시 버튼(상시 개방 스위치)은 인터록 역할을 합니다. 도어가 완전히 닫히지 않은 경우(인터록 스위치가 열려 있는 경우) X선 소스가 켜지지 않고 작동 중에 열리면 X선 소스가 자동으로 꺼집니다. 모터는 연속 스캔을 실행할 수 있을 뿐만 아니라 개별 위치로 이동할 수 있습니다. y축의 스캔 속도는 일반적으로 1-5mm/s인 반면 x축의 스텝 크기는 일반적으로 150-2000μm에서 선택할 수 있습니다. 매개변수는 필요한 공간 분해능에 따라 선택할 수 있습니다. 연속 스캔을 통해 일정한 속도로 균일한 노출 시간을 확인할 수 있습니다.

집속된 X선 빔이 X선 발광 입자에 조사되면 생성된 빛은 주변 pH에 따라 빛을 변조하여 pH 감응막을 통과합니다. 투과된 빛은 조직과 상호 작용(부분적으로 산란 및 흡수)하는 반면, 산란 및 흡수에 의한 광 감쇠는 조직 두께가 증가함에 따라 증가합니다. 컬렉션 광학 장치에는 시작 부분에 반사 알루미늄 엘보우(90° 굽힘 및 광택 반사 내부 표면 포함)가 장착된 일체형 분기 아크릴 라이트 가이드가 포함됩니다. 이는 빛이 라이트 가이드에 도달하자마자 빛이 시준되도록 하기 위한 것입니다. 이러한 추가는 집광 효율을 크게 향상시켰습니다. 자세한 내용은 그림 4 에 엘보우와 라이트 가이드의 기계 도면이 나와 있습니다. 90° 엘보는 알루미늄으로 가공되었으며 내부 표면은 경면 마감 처리되었으며 라이트 가이드는 아크릴로 가공되었습니다. 또한 팔꿈치 시작 부분에 광범위한 장거리 통과 청색광 필터(350-450nm 빛 차단)를 부착하여 적색광만 통과하도록 했습니다. 일체형 아크릴 라이트 가이드의 끝은 두 개의 다른 PMT로 이어지는 두 개의 스트림으로 분기됩니다. PMT는 PMT를 ~5°C로 냉각하기 위해 열전 냉각기와 접촉하는 작은 기밀 금속 상자에 들어 있습니다. PMT 중 하나의 시작 부분에는 700nm 빛만 측정하기 위해 협범위 롱패스 필터(570-640nm 광 차단 및 640-740nm 광 통과)가 부착됩니다. 따라서 620nm 및 700nm 빛은 별도로 계산할 수 있습니다. PMT는 광자 계수 모드로 설정되며 검출된 각 광자에 대해 TTL(트랜지스터-트랜지스터 로직) 펄스를 생성합니다. DAQ 시스템은 USB 통신을 사용하여 펄스(포화점 2,000만 펄스/초)를 계산합니다. 데이터를 처리한 후 두 개의 개별 강도 맵이 생성되고 신호 파장 강도(620nm)와 기준 파장 강도(700nm)의 비율을 고려하여 최종 이미지가 생성됩니다. 이 비율은 전체 집광 효율의 차이를 설명하며, 이는 집광 광학 장치의 위치, X선 조사 강도 및 조직 두께에 따라 크게 달라집니다. 또한, pH 지시약 염료 없이 공간적으로 분리된 기준 영역은 파장 의존적 조직 침투로 인한 스펙트럼 왜곡을 설명합니다. 이미징 시스템을 제어하기 위해 그래픽 기반 프로그래밍 언어가 사용되며 작업의 기본 순서도가 아래에 나와 있습니다. 컴퓨터, X선 컨트롤러 및 DAQ 유닛을 제외한 이미징 설정은 방사선 노출을 최소화하기 위해 안전한 X선 인클로저에 포함되어 있습니다.

프로토콜

이 절차는 Clemson University Institutional Animal Care and Use Committee(IACUC)에서 승인한 동물 사용 프로토콜을 따릅니다. 실험은 클렘슨 대학교 생물 안전위원회 (IBC) 및 방사선 안전위원회 (RSC)에 따라 관련 지침 및 규정에 따라 수행됩니다.

참고: XELCI 스캔을 완료하기 위한 흐름도는 아래 그림 5 에 나와 있으며 이미징 절차에 대한 자세한 단계별 설명이 나와 있습니다.

1. 시스템 초기화 및 일반 방사선 사진 획득

1. PMT 쿨러를 켜면 일반적으로 설정값(예: 15°C)에 도달하는 데 ~4분이 걸립니다. PMT를 켜기 전에 나머지 초기화 단계를 수행합니다.
2. 이미징 시스템 제어 소프트웨어를 엽니다. 제어 소프트웨어 프로그램은 x-y-z 축 전동 스테이지를 통신하고 초기화합니다. 스테이지 x축과 y축을 원하는 시작 위치로 이동합니다.
3. 샘플을 이동식 x-y-z 스테이지에 놓습니다. 샘플 높이(z축)를 배치하여 방사선 발광 장치가 X선 소스 및/또는 스테이지를 올리거나 내려 다모세관 초점 광학 장치보다 5-5.5cm 아래에 있도록 합니다. 또한 레이저 크로스헤드(X선 초점 모세관에 부착되고 X선이 초점을 맞출 위치와 교차하도록 서로 90°에 배치된 두 개의 빨간색 선 모양의 레이저 포인터)를 사용하여 xy 평면에 표본을 배치합니다. X선과 PMT를 켜기 전에 레이저를 끄십시오.
4. 이미징 인클로저의 전면 도어에 푸시 버튼 인터록을 고정합니다. 광선 소스의 전원을 켭니다. 샘플의 일반 방사선 사진을 얻기 위해 초점 광학 장치를 제거합니다.
5. X선 제어 소프트웨어를 열고 X선 전력을 설정합니다(전압 및 전류 조정). X선 제어 소프트웨어로 X선 셔터를 엽니다.
6. 엑스레이 사진기를 위한 소프트웨어를 엽니다. 노출 버튼을 눌러 일반 방사선 사진을 찍습니다. 노출을 끄고 X-ray를 끕니다.
   알림: 필요한 경우 s를 이동ample 위치를 개선하거나 다른 위치에서 일련의 X선을 획득하여 더 큰 방사선 사진을 얻기 위해 대조할 수 있습니다. 별도의 시스템에서 방사선 사진을 촬영할 수도 있지만, 검체가 움직이면 XELCI와 방사선 촬영의 공동 등록이 더 어려워집니다.
7. 인클로저 도어를 엽니다.

2. 선택적으로 X-ray를 끈 상태에서 백그라운드 스캔을 수행합니다

1. 다모세관 광학 장치를 X선 소스에 다시 연결합니다.
2. 인클로저를 닫고 인터록을 고정합니다. PMT 전원 공급 장치를 켭니다.
   알림: PMT 전원 공급 장치는 빛에 과다 노출되지 않도록 문이 열리거나 열리려고 할 때마다 항상 꺼야 합니다.
3. 이미징 시스템 제어 소프트웨어를 열고 스텝 크기, 스캔 속도 및 스캔 영역을 지정합니다. 모든 매개변수가 설정되면 실행 버튼을 눌러 스캔을 시작합니다.
   참고: 고해상도 스캔의 경우 스텝 크기는 1000μm이고 저해상도 스캔의 경우 스텝 크기는 250μm입니다. 스캔 속도는 5mm/s에서 1mm/s까지 선택할 수 있습니다. 스캔 영역은 샘플의 크기에 따라 다릅니다.
4. X-ray를 끈 상태에서 백그라운드 스캔을 실행하여 샘플 이외의 인클로저에 있는 모든 빛의 어두운 수를 확인합니다.

3. X-ray를 켠 상태에서 샘플 스캔 수행

1. 샘플을 확인하십시오.amp스캔을 시작하기 위해 레이저 크로스 헤드로 여전히 올바른 위치에 있습니다.
2. 인클로저를 닫고 인터록을 고정합니다. PMT가 꺼져 있는 경우(예: 문을 열기 전에 꺼진 경우) PMT 전원 공급 장치를 켭니다.
3. 이미징 시스템 제어 소프트웨어를 엽니다. 단계 크기, 스캔 속도 및 스캔 영역에 대한 값을 입력합니다. 모든 매개변수가 설정되면 실행 버튼을 눌러 스캔을 시작합니다.
   참고: 고해상도 스캔의 경우 스텝 크기는 1000μm이고 저해상도 스캔의 경우 스텝 크기는 250μm입니다. 스캔 속도는 5mm/s에서 1mm/s까지 선택할 수 있습니다. 스캔 영역은 샘플의 크기에 따라 다릅니다.
4. X-ray를 켠 상태에서 샘플에 대한 스캔을 얻습니다.
5. 먼저 더 큰 스텝 크기와 더 빠른 스캔 속도로 저해상도 스캔을 수행하여 대상의 예비 이미지를 얻습니다. 샘플의 원하는 영역에 대한 저해상도 스캔을 얻은 후 더 작은 스텝 크기와 더 낮은 스캔 속도로 더 높은 해상도의 스캔을 얻습니다.
6. 문을 열기 전에 PMT 전원 공급 장치를 끄십시오.

4. 이미지 형성

1. 현재 스캔이 대상의 관심 영역을 이미징하고 있는지 확인합니다. 그렇지 않은 경우 중지 버튼을 눌러 현재 스캔을 중지 합니다.
2. 제어 소프트웨어에서 스캔 위치를 다시 조정하고 실행 버튼을 다시 누르십시오.
   참고: y축은 스캔의 첫 번째 행부터 계속 기록됩니다. 스캔을 수행하는 동안 각 파장당 카운트 수와 마지막으로 업데이트된 모터 위치 이후의 시간이 기록됩니다. 기록된 시간은 모터 속도의 변화, 즉 노출 시간을 고려합니다. 각 픽셀에 대해 counts/second가 정규화됩니다. y축 모터는 y축의 현재 행 끝을 스캔하기 위해 이동하고 모터는 시작 위치로 돌아갑니다. 그런 다음 x축 모터는 사용자가 정의한 스텝 크기만큼 위치를 늘리고 y축의 두 번째 행을 스캔합니다. 이 프로세스는 x축 모터가 x-방향에 대해 지정된 너비에 도달할 때까지 순환됩니다. 사용자는 스캔 크기, 모터 속도 및 모터 시작 위치를 제어할 수 있습니다. 단계 크기는 y축의 최종 이미지에서 픽셀의 크기를 결정합니다.

5. 무균 상태에서 이미징을 위한 박테리아 배양(박테리아 성장 센서가 이미징되는 경우)

1. 황색포도상구균 1945(ATCC 25923)의 신선한 배양액을 준비하려면 1주일 이내에 줄무늬가 있는 TSA(트립틴 대두 한천) 플레이트에서 콜로니 하나를 사용하여 멸균 트립신 대두 브로스(TSB) 5mL를 접종합니다.
2. 박테리아 배양액을 37°C에서 16-18시간 동안 정지 상태가 될 때까지 부드럽게 흔든다.
3. 다음으로, 실온(RT)에서 10분 동안 4000 x g 에서 원심분리를 통해 TSB로부터 배양된 펠렛을 펠렛화하고, 펠렛을 인산염 완충용액(PBS)으로 두 번 세척하고, 펠렛을 멸균된 PBS 5mL에 재현탁시킨다.
4. Beer-Lambert 법칙이 확인되는 OD 범위인 선형 범위를 사용하여 600nm에서 광학 밀도를 사용하여 박테리아 농도를 정량합니다(OD = kN, k 는 분자 소멸 및 광학 경로의 길이에 대한 계수, N 은 박테리아 농도)¹⁶. 그런 다음 멸균 PBS를 사용하여 샘플을 10⁵ cells/mL로 희석합니다.
5. 트립신 대두 한천(TSA)을 고압증기멸균으로 멸균한 다음 온도가 45°C에 도달할 때까지 혼합하여 냉각합니다. 박테리아를 TSA에 접종하십시오.
6. 희석된 박테리아 배양액(100 μL)을 이식형 센서의 표면에 피펫팅합니다.
   참고: 임플란트를 70% 에탄올에 5분 동안 담가 멸균하고 멸균 PBS에 보관했습니다.
7. 대조군으로 다른 멸균 임플란트 위에 접종되지 않은 TSA 100μL를 피펫으로 주입합니다.
8. 이식 전 37°C에서 48시간 동안 배양하기 전에 이식형 센서 위에 접종되지 않은 TSA 100μL를 추가합니다.

결과

예비 연구로서, 우리는 토끼 사체¹⁴의 경골에서 골수내 막대 센서를 이미지화했습니다. 센서에는 기준 영역, pH 8 영역(염기성 pH) 및 pH 4 영역(산성 pH)의 세 가지 영역이 있습니다. 기준 영역은 거친 에폭시 필름에 통합된 섬광체(Gd 2 O₂S:Eu) 입자입니다. 독특한 산성 및 염기성 pH 영역은 골수내관 내부의 감염 및 비감염 상황을 나타냅니다(그림 6A,B

토론

정형외과용 임플란트 관련 감염을 조기에 발견하고 연구하여 골수염 및 2차 수술로 인한 합병증을 예방할 수 있도록, XELCI를 새로운 기능적 영상 기술로 도입했습니다. 조직을 통한 pH 모니터링을 위해 현재 사용 가능한 기술과 비슷합니다.

이미징을 위해 샘플을 배치하는 동안 90° 각도로 교차하는 두 개의 선 모양 레이저 포인터가 있는 다모세관 초점 광학 장치에 연결된 레?...

자료

Name	Company	Catalog Number	Comments
90 degree elbow	Produced in Hilltop Technology Laboratory, 51 Parker, Irvine,CA
Bromo Cresol Green	Sigma-Aldrich	45ZW10
Bromo Thymol Blue	Sigma	76-59-5
ElectraCOOL Advanced thermoelectric cool plate	Pollock industries, White River, VT, USA	TCP 50
Ethanol	Beantown Chemical, 9 Sagamore Park Road Hudson, NH 03051	64-17-5
Gadolinium Oxysulfide Europium doped (Gd2O2S:Eu) particles-~8.0 µm	Phosphor Technologies Inc., Stevenage, England	UKL63/N-R1
LabVIEW	National Instruments, Austin, TX
Motorized Linear Vertical Stage Model (for Z axis)	Motion Control, Smithtown, NY, USA	AT10-60
National instruments c-DAQ 9171	National Instruments, Austin, TX	NI cDAQ™-9171
One piece acrylic light guide	Produced in Hilltop Technology Laboratory, 51 Parker, Irvine,CA
pH 4 buffer	VWR BDH Chemicals	BDH5024
pH 8 buffer	VWR BDH Chemicals	BDH5060
Phosphate Buffer Solution	MP Biomedicals, Irvine, CA. USA	2810305
Photo multiplier tubes Model P25PC-16	SensTech, Surrey, UK	Model P25PC-16
Staphylococcus aureus subsp. aureus Rosenbach	American Type Culture Collection (ATCC), Manassas, VA	ATCC 25923
Tryptic Soy Agar	Teknova, Hollister, CA, USA	T0520
Tryptic Soy Broth	EMD Millipore, Burlington, MA, USA	1005255000
X-ray source-iMOXS	Institute for Scientific Instruments GmbH, Berlin, Germany
X,Y motorized stage-30 cm x 15 cm x 6 cm travel	Thorlabs Inc., Newton, NJ, USA	LTS300 and LTS150