JoVE 비디오를 활용하시려면 도서관을 통한 기관 구독이 필요합니다. 전체 비디오를 보시려면 로그인하거나 무료 트라이얼을 시작하세요.

기사 소개

  • 요약
  • 초록
  • 서문
  • 프로토콜
  • 결과
  • 토론
  • 공개
  • 감사의 말
  • 자료
  • 참고문헌
  • 재인쇄 및 허가

요약

이 프로토콜은 인간 호중구에서 β2 인테그린 활성화를 억제하는 저분자 약물을 식별하기 위한 유세포 분석 기반의 고처리량 스크리닝 방법을 설명합니다.

초록

이 프로토콜은 구조적 변화 보고 항체 및 고처리량 유세포 분석을 활용하여 β2 인테그린 활성화의 소분자 길항제를 식별하는 방법을 확립하는 것을 목표로 합니다. 이 방법은 또한 다른 항체 기반 고처리량 스크리닝 방법에 대한 가이드 역할을 할 수 있습니다. β2 인테그린은 면역 반응에 중요한 백혈구 특이적 접착 분자입니다. 호중구는 혈류를 빠져나가기 위해 인테그린 활성화에 의존하며, 감염과 싸울 뿐만 아니라 여러 염증성 질환에도 관여합니다. β2 인테그린 활성화를 조절하는 것은 호중구 관련 염증성 질환을 치료하기 위한 실행 가능한 접근법을 제시합니다. 이 프로토콜에서는 β2 인테그린의 고친화성 헤드피스에 특이적으로 결합하는 단클론 항체인 mAb24를 사용하여 분리된 1차 인간 호중구에서 β2 인테그린 활성화를 정량화합니다. N-포르밀메티오닐-류실-페닐알라닌(fMLP)은 호중구 β2 인테그린을 활성화하기 위한 자극제로 사용됩니다. 이 연구에서는 384웰 플레이트 샘플을 자동으로 실행할 수 있는 고처리량 유세포 분석기를 사용했습니다. β2 인테그린 억제에 대한 320가지 화학 물질의 효과는 3시간 이내에 평가됩니다. β2 인테그린을 직접 표적으로 하는 분자 또는 G 단백질 결합 수용체 개시 인테그린 인사이드-아웃 활성화 신호 경로에서 분자를 표적으로 하는 분자는 이 접근법을 통해 식별할 수 있습니다.

서문

많은 염증성 질환은 부종이나 부상 부위에 호중구가 침윤하는 것이 특징이다1. 이러한 조직에 침투하기 위해 호중구는 내피에 대한 체포, 혈관 벽을 통한 유출 및 조직 내로의 모집을 포함하는 호중구 모집 캐스케이드를 완료해야 합니다2. 순환 호중구는 특히 정지 단계에서 이 캐스케이드를 완료하기 위해 β2 인테그린 활성화가 필요합니다. 따라서 호중구 부착, 외래 및 모집을 감소시키는 인테그린 억제 약물은 염증성 질환을 효과적으로 치료할 수 있습니다 3,4.

β2 인테그린은 이전에도 염증성 질환의 표적이 된 적이 있습니다. 인테그린 αLβ2를 직접 표적으로 하는 단클론 항체인 에팔리주맙(Efalizumab)은 건선5를 치료하기 위해 개발되었습니다. 그러나 에팔리주맙은 JC 바이러스 재활성화로 인한 진행성 다발성 백질뇌병증이라는 치명적인 부작용으로 인해 철회되었다 6,7. 새로운 항염증 인테그린 기반 요법은 부작용을 최소화하기 위해 백혈구의 항감염 기능을 유지하는 것을 고려해야 합니다. 에팔리주맙의 부작용은 혈류 내 단일클론항체의 장기적 순환으로 인해 발생할 수 있으며, 이는 장기적으로 면역 기능을 저해할 수 있다8. 최근 연구에 따르면 에팔리주맙은 αLβ2 교차결합과 α4 인테그린의 원치 않는 내재화를 매개하여 부작용에 대한 대안적 설명을 제공한다9. 따라서 수명이 짧은 저분자 길항제는 이 문제를 피할 수 있습니다.

인간 호중구를 사용하여 저분자 β2 인테그린 길항제를 스크리닝하는 고처리량 분석법이 여기에 제시되어 있습니다. β2 인테그린 활성화는 리간드에 접근하고 결합 친화도를 높이기 위해 인테그린 엑토도메인의 구조적 변화를 필요로 합니다. 표준 스위치블레이드 모델에서, 벤트-클로즈드 인테그린 엑토도메인(benent-closed integrin ectodomain)은 먼저 확장-폐쇄 형태(extended-closed conformation)로 연장된 다음, 완전히 활성화된 확장-개방 형태(10,11,12,13)로 그 헤드피스를 개방한다. 구부러진 닫힘에서 구부러진 열림 및 확장 열림으로 시작하여 결국 14,15,16,17,18,19로 시작하는 대체 경로도 있습니다. 형태 특이적 항체 mAb24는 엑토도메인의 헤드피스가 열려 있을 때 인간 β2-I 유사 도메인의 에피토프에 결합합니다(20,21,22,23).

여기서, mAb24-APC는 β2 인테그린의 활성화 여부를 결정하기 위해 사용된다. 호중구와 인테그린을 활성화하기 위해, 호중구 β2 인테그린을 활성화할 수 있는 박테리아 유래 짧은 화학주성 펩타이드인 N-포르밀메티오닐-류실-페닐알라닌(fMLP)이 이 프로토콜에서 자극제로 사용됩니다. fMLP가 호중구의 Fpr1에 결합하면 G-단백질, 포스포리파제 Cβ 및 포스포이노시티드 3-키나아제 γ와 관련된 다운스트림 신호 캐스케이드가 활성화됩니다. 이러한 신호전달 사건은 궁극적으로 인사이드-아웃(inside-out) 신호전달 경로(18,25)를 통해 인테그린 활성화를 초래한다. β2 인테그린에 직접 결합하고 인테그린 활성화26의 구조적 변화를 방지하는 저분자 길항제 외에도, β2 인테그린 인사이드-아웃 활성화 신호 경로의 성분을 억제할 수 있는 화합물도 이 방법으로 검출할 수 있습니다. 자동 유세포 분석기는 고처리량 스크리닝을 가능하게 합니다. 새로운 길항제를 식별하면 인테그린 생리학에 대한 이해를 심화할 수 있을 뿐만 아니라 인테그린 기반 항염증 요법에 대한 중개적 통찰력을 제공할 수 있습니다.

프로토콜

헤파린화된 전혈 샘플은 헬싱키 선언의 원칙에 따라 UConn Health의 기관 검토 위원회(Institutional Review Board of UConn Health)에서 승인한 정보에 입각한 동의를 얻은 후 식별되지 않은 건강한 인간 기증자로부터 획득되었습니다. 모든 기증자로부터 정보에 입각한 동의를 얻었습니다. 이 연구의 포함/제외 기준은 참가자의 적합성을 보장하고 잠재적 위험을 최소화하기 위해 신중하게 개발되었습니다. 적격 참가자는 18세에서 65세 사이, 모든 인종, 영어에 능통하고 정보에 입각한 동의를 제공할 수 있는 사람이었습니다. 제외된 참가자에는 법적 권한이 있는 대리인이 필요한 사람, 18세 미만 또는 65세 이상의 개인, 수감자 및 임산부와 같이 정보에 입각한 동의를 제공할 수 없는 사람이 포함되었습니다. 또한 참가자들은 항염증제 사용 및 염증 질환이 없어야 했습니다. 현재 감염 또는 진행 중인 만성 또는 급성 염증 상태도 제외 기준이었습니다. 마지막으로, 현재 또는 최근 COVID-19 감염 이력이 있는 개인은 연구에 부적격했습니다. 이러한 기준은 연구 결과에 영향을 미칠 수 있는 잠재적인 교란 요인을 최소화하면서 참가자의 안전과 적합성을 보장하기 위해 고안되었습니다.

1. 시약의 준비

  1. 호중구 배지: 페놀 레드 없이 RPMI-1640에 2% 인간 혈청 알부민을 첨가하여 호중구 배지를 준비합니다( 재료 표 참조).
  2. fMLP 용액: 페놀 레드가 없는 RPMI 1640으로 10mM fMLP 디메틸 설폭사이드(DMSO) 저장 용액( 재료 표 참조)에서 100배 희석하여 fMLP 용액을 준비합니다.
  3. 항체 용액: β2 integrin의 고친화성 형태를 보고하는 알로피코시아닌(APC)-복합 단클론 항체 mAb24(mAb24-APC) 120μL를 호중구 배지 10mL에 희석하여 1.2μg/mL mAb24-APC 용액을 만듭니다.
  4. 화합물 라이브러리: 액체 처리기를 사용하여 384웰 플레이트에서 10mM 라이브러리( 재료 표 참조) 5μL를 DMSO 45μL에 추가하여 초기 화합물 라이브러리를 10mM에서 1mM 농도로 희석합니다. 그 후, 액체 처리기를 사용하여 1mM 화합물 라이브러리의 웰당 5μL를 빈 384웰 플레이트로 옮깁니다.
  5. 그림 1에서 볼 수 있듯이 4개의 컬럼( 1, 2, 23, 24)에는 DMSO만 포함되고 화합물은 포함되지 않아 스크리닝에서 양성 및 음성 대조군 역할을 했습니다. 페놀 레드 없이 45μL의 RPMI-1640을 추가하여 각 웰을 더 희석하여 모든 화합물에 대해 최종 농도가 100μM가 됩니다.

2. 인간 혈액에서 호중구 분리

  1. 혈청학적 피펫을 사용하여 15mL 원심분리 튜브에 시판되는 밀도 구배 배지( 재료 표 참조) 8mL 위에 4mL의 혈액을 조심스럽게 층층합니다(그림 2A).
  2. 20°C에서 30-50분 동안 550× g 에서 혈액을 원심분리합니다. 로터를 점진적으로 감속합니다(감속 계수 1).
    참고: 적혈구에서 호중구( 그림 2B의 밴드 2)를 성공적으로 분리하는 것은 기증자마다 다를 수 있습니다. 대부분의 기증자의 경우 30분의 원심분리로 충분합니다. 그러나 일부 기증자의 경우 분리가 성공하지 못할 경우 추가로 10-30분의 원심분리가 필요할 수 있습니다(그림 2C).
  3. 플라즈마(상단의 노란색 액체)와 단핵 전지(상단의 흐린 띠; 도 2B의 PBMC 밴드)를 1mL 피펫으로 사용하였다.
  4. 하부 탁한 띠( 그림 2B의 호중구 띠)와 맑은 액체 아래 약 3-4mL의 호중구를 10mL의 인산염 완충 식염수(PBS)가 들어 있는 15mL 원심분리 튜브로 수집합니다. 호중구 현탁액을 2-3회 뒤집어 부드럽게 섞습니다.
  5. 현탁액을 400× g 에서 20°C에서 10분 동안 원심분리한 다음 디캔팅하여 상층액을 조심스럽게 제거합니다.
  6. 펠릿을 5mL의 PBS로 부드럽게 재현탁시키고 20°C에서 5분 동안 300× g 으로 원심분리합니다.
  7. 디캔팅으로 상층액을 제거하고 진공 흡입을 사용하여 튜브 입구 주변과 튜브 벽에 남아 있는 상층액을 조심스럽게 제거합니다. 펠릿을 호중구 배지 1mL에 재현탁시킵니다.
  8. 혈구계를 사용하여 세포 수를 계산합니다. 전형적으로, 1 내지 4 × 107 호중구는 8 mL의 인간 혈액으로부터 얻어졌다.
    알림: 호중구 현탁액에 적혈구 오염이 있을 수 있습니다. 적혈구는 대부분의 분석에 큰 영향을 미치지 않으며 호중구 활성화/프라이밍을 예방할 수 있다27. 정확한 호중구 농도를 얻기 위해 계산하기 전에 적혈구를 용해해야 합니다. 적혈구를 용해하기 위해 10-30초 동안 891μL의 탈이온수에 세포 현탁액 10μL를 첨가한 다음 99μL의 10× PBS를 추가하여 삼투압의 균형을 유지하여 호중구의 용해를 방지합니다.
  9. 호중구 배지를 추가하여 세포 밀도를 6.25 × 105 cells/mL로 조정합니다.

3. 384웰 플레이트의 준비

  1. 1.5mL 원심분리 튜브에 1mL의 항체 용액(1.2μg/mL mAb24-APC)과 0.2mL의 호중구 배지를 결합하여 1μg/mL mAb24-APC 용액을 만듭니다. 그런 다음 이 혼합물 25μL를 384웰 플레이트의 음성 대조군 웰( 그림 1의 파란색 웰)에 추가합니다.
  2. 15mL 원심분리 튜브에 9mL의 항체 용액을 21.6μL의 fMLP 용액(100μM) 및 1.7784mL의 호중구 배지와 혼합하여 1μg/mL mAb24-APC 및 200nM fMLP를 포함하는 용액을 만듭니다. 다음으로, 이 혼합물 25μL를 384웰 플레이트( 그림 1의 빨간색 및 파란색 웰)의 양성 대조군 및 테스트 웰에 추가합니다.
  3. 멀티 채널 피펫을 사용하여 100μM 화합물 용액 5μL를 화합물 라이브러리 플레이트에서 384웰 플레이트로 옮깁니다.
  4. 실온에서 500× g에서 1분 동안 액체를 원심분리합니다.
    알림: 플레이트를 원심분리하려면 스윙 버킷 로터와 플레이트 버킷이 필요합니다.

4. 세포의 처리

  1. 16채널 피펫을 사용하여 각 웰에 20μL의 호중구 현탁액을 추가합니다(384웰 플레이트의 각 컬럼에 대해 5-50μL 범위). 피펫을 사용하여 5-10회 부드럽게 혼합하고 각 피펫팅 사이에 일정한 시간 간격을 유지합니다.
    참고: 웰의 최종 농도는 다음과 같습니다: 호중구 2.5 × 105 cells/mL(모든 웰); mAb24-APC 0.5μg/mL(모든 웰); fMLP 100nM(포지티브 대조군 및 테스트 웰); 화합물 10μM(테스트 웰).
  2. 300rpm의 Shaker에서 실온(RT)에서 10분 동안 배양합니다.
  3. 16채널 피펫(최종 PFA 농도 ~0.91%)을 사용하여 각 웰에 16% 파라포름알데히드(PFA) 3μL를 추가하여 셀을 고정합니다. 그런 다음 얼음 위에서 10분 동안 배양합니다.
    알림: 호중구와 PFA를 추가할 때 서로 다른 컬럼 사이에 일관된 시간 간격을 유지하는 것이 좋습니다. 이를 통해 각 웰의 호중구가 fMLP 및 mAb24-APC와 동일한 배양 시간을 갖도록 할 수 있습니다.

5. 유세포 분석

  1. 유세포 분석기를 켜고( 재료 표 참조) 기기에 연결된 컴퓨터도 켜져 있는지 확인합니다.
  2. 피복 유체 용기가 채워져 있고 폐기물 용기가 비어 있고 기기에 제대로 연결되어 있는지 확인하십시오.
  3. 384웰 플레이트를 유세포 분석기의 샘플 로더에 로드합니다. 플레이트의 A1 웰이 로더의 A1 표시와 정렬되는지 확인하십시오.
  4. 소프트웨어를 열고 새 실험을 만듭니다. 384 well 을 선택하고 원하는 형광단을 선택합니다. 그런 다음 플레이트 설정(Plate setup)을 클릭하고 드래그하여 모든 웰을 선택한 다음 샘플( Sample)을 클릭합니다. "High throughput(높은 처리량)" 스위치를 켜고 rate 패널에서 High(높음 )를 선택합니다.
    1. 볼륨 상자에 50을 입력합니다. 홀수 열에서 샘플을 선택한 다음 "교반" 스위치를 활성화합니다. 마지막으로 오른쪽 패널에서 샘플의 이름을 지정합니다.
  5. 플롯 및 게이트를 클릭합니다. 그런 다음 적용 버튼(녹색으로 채워진 원에 두 개의 화살표)을 클릭한 다음 재생 버튼(삼각형 모양)을 클릭합니다. 첫 번째 우물에서 일부 세포를 관찰할 때까지 몇 초 동안 기다린 다음 일시 중지 버튼을 클릭합니다.
    1. FSC 및 SSC 전압을 조정하여 플롯에서 세포를 적절하게 시각화합니다. Acquisition( 획득)을 클릭한 다음 재생 버튼(삼각형 모양)을 클릭하여 분석을 시작합니다.
  6. 유세포 분석기는 각 웰에서 ~50μL의 1000-3000 호중구를 순차적으로 샘플링합니다. 전체 384웰 플레이트를 완성하는 데 약 3시간이 걸립니다.
  7. 모든 샘플을 완료한 후 다음 단계를 위해 .fcs 파일을 내보냅니다.

6. 데이터 분석

  1. 유세포 분석 데이터 분석 소프트웨어를 엽니다( 재료 표 참조). 모든 .fcs 파일이 포함된 폴더를 선택하여 소프트웨어 창으로 드래그한 다음 손을 떼면 데이터가 소프트웨어로 가져옵니다.
  2. 그림 3과 같이 팝업 창에서 FSC 및 SSC28,29,30을 기반으로 하는 단일 호중구를 게이트하는 샘플 하나를 두 번 클릭합니다. 게이트 행을 선택하고 폴더로 끈 다음 놓아 해당 폴더의 모든 샘플에 게이팅을 적용합니다.
  3. 소프트웨어의 테이블 편집기 기능을 사용하여 각 웰에서 호중구의 APC 평균 형광 강도(MFI)를 계산하고 내보낼 수 있습니다. Edit(편집) 탭에서 Add Column(열 추가)을 클릭합니다. 통계량 탭에서 중앙값을 선택하고, 게이트 모집단 호중구를 선택하고, APC를 매개변수로 선택합니다. 확인 버튼을 클릭합니다.
  4. "Table editor" 탭으로 돌아가서 "Group" 탭에서 All Samples 를 선택하고 Create table 버튼을 누릅니다. 생성된 테이블을 표시하는 새 창이 나타납니다. 텍스트, CSV 또는 Excel 파일로 저장합니다.
  5. 내보낸 표를 열고 양성 및 음성 대조군 샘플에 대한 APC MFI의 평균값과 표준 편차를 계산합니다(그림 4).
  6. 다음 방정식을 사용하여 플레이트의 Z'-계수(Z')를 계산합니다.
    Z' = 1 - 3(σ p + σ n)/(μp - μn),
    여기서σ p와 σ n은 각각 양성 및 음성 대조군의 표준 편차이고,μ p 및 μn은 각각 양성 대조군과 음성 대조군의 평균입니다(31).
    참고: Z' 계수는 양성 및 음성 제어 분포의 분리를 나타냅니다. Z'가 0이면 분리가 없음을 의미하고, Z'가 0.5이면 분리가 동일함을 나타냅니다. 이전 연구31에서 언급한 바와 같이, Z' > 0.5는 화합물 스크리닝을 위한 우수한 분석법을 나타낸다. 0.5에서 0 사이의 Z'는 허용되지만 분석에서 강한 적중만 식별할 수 있으므로 2차 분석에서 추가 검증이 필요합니다.
  7. 화합물 처리된 호중구의 APC MFI가 양성 대조군 MFI에서 뺀 양성 대조군 MFI의 표준 편차의 3배 미만인 경우(P = 0.0013, 그림 4의 점선으로 표시) 화합물을 스크리닝을 위한 "히트"로 간주합니다.

결과

대표적인 384웰 플레이트 스크리닝 데이터(그림 4)에 따르면 음성 대조군은 mAb24-APC의 MFI가 3236 ± 110인 반면, 양성 대조군은 mAb24-APC의 MFI가 7588 ± 858이었습니다. 이 플레이트의 Z' 계수는 약 0.33으로, 허용 범위31 내에 있습니다. 그러나 Z'는 2차 분석에서 추가 검증이 필요합니다.

데이터를 정규화하기 위해 양수 평균에 최대값 1을 할당하고...

토론

호중구 자극 및 염색의 시작과 종료는 호중구와 고정제 PFA의 첨가에 의해 결정됩니다. 따라서 호중구 또는 PFA를 각 컬럼에 피펫팅하는 사이에 동일한 시간 간격을 유지하는 것이 중요합니다. 이렇게 하면 각 웰에서 호중구의 자극 및 염색 시간이 일정하게 유지됩니다. 호중구의 수명이 짧기 때문에 기증자로부터 혈액을 채취하는 것부터 유세포 분석 완료에 이르기까지 전체 실험을 같은 날에 수?...

공개

저자는 경쟁적인 재정적 이익이 없음을 선언합니다.

감사의 말

유세포 분석에 도움을 주신 UConn Health의 유세포 분석 코어의 Evan Jellison 박사와 Li Zhu 박사, 기기를 지원해 주신 UConn Health 면역학과의 Lynn Puddington 박사, 혈액 샘플 채취에 도움을 주신 UConn Health의 임상 연구 핵심 부서의 Slawa Gajewska 박사와 Paul Appleton 박사에게 감사드립니다. 이 원고의 과학적 집필 및 편집에 도움을 주신 UConn School of Medicine의 Christopher "Kit" Bonin 박사와 Geneva Hargis 박사에게 감사드립니다. 이 연구는 미국 국립보건원(National Institutes of Health), 미국 국립심장폐혈액연구소(National Heart, Lung, and Blood Institute, R01HL145454), 미국 국립종합의학연구소(National Institute of General Medical Sciences, P20GM121176), 미국심장협회(American Heart Association)의 경력개발상(Career Development Award, 18CDA34110426), UConn Health의 스타트업 펀드의 지원을 받았습니다. 그림 1 은 BioRender.com 사용하여 만들었습니다.

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
16-channel pipettesThermo4661090NInstrument
384-well plateGreiner784201Materials
APC anti-human CD11a/CD18 (LFA-1) Antibody Clone: m24BioLegend363410Reagents
Bravo Automated Liquid Handling Platform Agilent16050-102384 multi-channel liquid handler
CentrifugeEppendorfModel 5810RInstrument
FlowJoBecton, Dickinson & CompanyNASoftware
Human Serum Albumin Solution (25%)GeminiBio800-120Reagents
LifitegrastThermofisher 50-208-2121Reagents
Nexinhib20Tocris6089Reagents
N-Formyl-Met-Leu-Phe (fMLP)SigmaF3506Reagents
Paraformaldehyde 16% solutionElectron Microscopy Sciences15710Reagents
Plate bucketsEppendorfUL155Accessory
Plate shaker Fisher88-861-023Instrument
PolymorphPrepPROGEN1895 (previous 1114683)Reagents
Prestwick Chemical Library Compound Plates (10 mM)Prestwick Chemical LibrariesVer19_3841520 small molecules, 98% marketed approved drugs (FDA, EMA, JAN, and other agencies approved)
RPMI 1640 Medium, no phenol redGibco11-835-030Reagents
Swing-bucket rotor EppendorfA-4-62Rotor
ZE5 Cell AnalyzerBio-Rad LaboratoriesModel ZE5Instrument

참고문헌

  1. Herrero-Cervera, A., Soehnlein, O., Kenne, E. Neutrophils in chronic inflammatory diseases. Cellular & Molecular Immunology. 19 (2), 177-191 (2022).
  2. Sadik, C. D., Kim, N. D., Luster, A. D. Neutrophils cascading their way to inflammation. Trends in immunology. 32 (10), 452-460 (2011).
  3. Mitroulis, I. et al. Leukocyte integrins: Role in leukocyte recruitment and as therapeutic targets in inflammatory disease. Pharmacology & Therapeutics. 147, 123-135 (2015).
  4. Slack, R. J., Macdonald, S. J. F., Roper, J. A., Jenkins, R. G., Hatley, R. J. D. Emerging therapeutic opportunities for integrin inhibitors. Nature Reviews Drug Discovery. 21 (1), 60-78 (2022).
  5. Frampton, J. E., Plosker, G. L. Efalizumab. American Journal of Clinical Dermatology. 10 (1), 51-72 (2009).
  6. Talamonti, M. et al. Efalizumab. Expert Opinion on Drug Safety. 10 (2), 239-251 (2011).
  7. Saribaş, A. S., Özdemir, A., Lam, C., Safak, M. JC virus-induced progressive multifocal leukoencephalopathy. Future Virology. 5 (3), 313-323 (2010).
  8. Chames, P., Van Regenmortel, M., Weiss, E., Baty, D. Therapeutic antibodies: successes, limitations and hopes for the future. British Journal of Pharmacology. 157 (2), 220-233 (2009).
  9. Mancuso, R. V., Casper, J., Schmidt, A. G., Krähenbühl, S., Weitz-Schmidt, G. Anti-αLβ2 antibodies reveal novel endocytotic cross-modulatory functionality. British Journal of Pharmacology. 177 (12), 2696-2711 (2020).
  10. Anderson, J. M., Li, J., Springer, T. A. Regulation of integrin α5β1 conformational states and intrinsic affinities by metal ions and the ADMIDAS. Molecular Biology of the Cell. 33 (6), ar56 (2022).
  11. Jensen, R. K. et al. Complement receptor 3 forms a compact high-affinity complex with iC3b. The Journal of Immunology. 206 (12), 3032-3042 (2021).
  12. Li, J., Yan, J., Springer, T. A. Low affinity integrin states have faster ligand binding kinetics than the high affinity state. Elife. 10, e73359 (2021).
  13. Luo, B. H., Carman, C. V., Springer, T. A. Structural basis of integrin regulation and signaling. Annual Review of Immunology. 25, 619-647 (2007).
  14. Fan, Z. et al. Neutrophil recruitment limited by high-affinity bent β2 integrin binding ligand in cis. Nature communications. 7 (1), 1-14 (2016).
  15. Fan, Z. et al. High-affinity bent β2-integrin molecules in arresting neutrophils face each other through binding to ICAMs in cis. Cell reports. 26 (1), 119-130 (2019).
  16. Gupta, V. et al. The β-tail domain (βTD) regulates physiologic ligand binding to integrin CD11b/CD18. Blood. 109 (8), 3513-3520 (2006).
  17. Sen, M., Yuki, K., Springer, T. A. An internal ligand-bound, metastable state of a leukocyte integrin, αXβ2. Journal of Cell Biology. 203 (4), 629-642 (2013).
  18. Sun, H., Hu, L., Fan, Z. β2 integrin activation and signal transduction in leukocyte recruitment. American Journal of Physiology-Cell Physiology. 321 (2), C308-C316 (2021).
  19. Sun, H., Zhi, K., Hu, L., Fan, Z. The activation and regulation of β2 integrins in phagocytes. Frontiers in Immunology. 12, 978 (2021).
  20. Kamata, T. et al. The role of the CPNKEKEC sequence in the β2 subunit I domain in regulation of integrin αLβ2 (LFA-1). The Journal of Immunology. 168 (5), 2296-2301 (2002).
  21. Lu, C., Shimaoka, M., Zang, Q., Takagi, J., Springer, T. A. Locking in alternate conformations of the integrin αLβ2 I domain with disulfide bonds reveals functional relationships among integrin domains. Proceedings of the National Academy of Sciences. 98 (5), 2393-2398 (2001).
  22. Yang, W., Shimaoka, M., Chen, J., Springer, T. A. Activation of integrin β-subunit I-like domains by one-turn C-terminal α-helix deletions. Proceedings of the National Academy of Sciences. 101 (8), 2333-2338 (2004).
  23. Dransfield, I., Hogg, N. Regulated expression of Mg2+ binding epitope on leukocyte integrin alpha subunits. The EMBO Journal. 8 (12), 3759-3765 (1989).
  24. Torres, M., Hall, F., O'neill, K. Stimulation of human neutrophils with formyl-methionyl-leucyl-phenylalanine induces tyrosine phosphorylation and activation of two distinct mitogen-activated protein-kinases. The Journal of Immunology. 150 (4), 1563-1577 (1993).
  25. Dorward, D. A. et al. The role of formylated peptides and formyl peptide receptor 1 in governing neutrophil function during acute inflammation. The American Journal of Pathology. 185 (5), 1172-1184 (2015).
  26. Lin, F. Y. et al. A general chemical principle for creating closure-stabilizing integrin inhibitors. Cell. 185 (19), 3533-3550 (2022).
  27. Lizcano, A. et al. Erythrocyte sialoglycoproteins engage Siglec-9 on neutrophils to suppress activation. Blood, The Journal of the American Society of Hematology. 129 (23), 3100-3110 (2017).
  28. Tadema, H., Abdulahad, W. H., Stegeman, C. A., Kallenberg, C. G., Heeringa, P. Increased expression of Toll-like receptors by monocytes and natural killer cells in ANCA-associated vasculitis. PloS One. 6 (9), e24315 (2011).
  29. Nagelkerke, S. Q., aan de Kerk, D. J., Jansen, M. H., van den Berg, T. K., Kuijpers, T. W. Failure to detect functional neutrophil B helper cells in the human spleen. PloS one. 9 (2), e88377 (2014).
  30. Blanco-Camarillo, C., Alemán, O. R., Rosales, C. Low-density neutrophils in healthy individuals display a mature primed phenotype. Frontiers in Immunology. 12, 672520 (2021).
  31. Zhang, J. H., Chung, T. D., Oldenburg, K. R. A simple statistical parameter for use in evaluation and validation of high throughput screening assays. Journal of biomolecular screening. 4 (2), 67-73 (1999).
  32. Shimaoka, M., Salas, A., Yang, W., Weitz-Schmidt, G., Springer, T.A. Small molecule integrin antagonists that bind to the β2 subunit I-like domain and activate signals in one direction and block them in the other. Immunity. 19 (3), 391-402 (2003).
  33. Liu, W. et al. Nexinhib20 Inhibits neutrophil adhesion and β2 integrin activation by antagonizing Rac-1-Guanosine 5′-Triphosphate interaction. The Journal of Immunology. 209 (8), 1574-1585 (2022).
  34. Robinson, M. et al. Antibody against the Leu-CAM beta-chain (CD18) promotes both LFA-1-and CR3-dependent adhesion events. The Journal of Immunology. 148 (4), 1080-1085 (1992).
  35. Lu, C., Ferzly, M., Takagi, J., Springer, T. A. Epitope mapping of antibodies to the C-terminal region of the integrin β2 subunit reveals regions that become exposed upon receptor activation. The Journal of Immunology. 166 (9), 5629-5637 (2001).
  36. Mauler, M. et al. Platelet serotonin aggravates myocardial ischemia/reperfusion injury via neutrophil degranulation. circulation. 139 (7), 918-931 (2019).
  37. Shen, X. F., Cao, K., Jiang, J., Guan, W. X., Du, J. F. Neutrophil dysregulation during sepsis: an overview and update. Journal of Cellular and Molecular Medicine. 21 (9), 1687-1697 (2017).
  38. Chiang, C. C., Cheng, W. J., Korinek, M., Lin, C. Y., Hwang, T. L. Neutrophils in Psoriasis. Frontiers in Immunology. 10, 02376 (2019).
  39. Lood, C. et al. Neutrophil extracellular traps enriched in oxidized mitochondrial DNA are interferogenic and contribute to lupus-like disease. Nature medicine. 22 (2), 146-153 (2016).
  40. Bazzoni, G., Shih, D. T., Buck, C. A., Hemler, M. E. Monoclonal antibody 9EG7 defines a novel β1 integrin epitope induced by soluble ligand and manganese, but inhibited by calcium. Journal of Biological Chemistry. 270 (43), 25570-25577 (1995).
  41. Luque, A. et al. Activated conformations of very late activation integrins detected by a group of antibodies (HUTS) specific for a novel regulatory region(355-425) of the common β1 chain. Journal of Biological Chemistry. 271 (19), 11067-11075 (1996).
  42. Mould, A. P., Akiyama, S. K., Humphries, M. J. The inhibitory Anti-β1 integrin monoclonal antibody 13 recognizes an epitope that is attenuated by ligand occupancy: evidence for allosteric inhibition of integrin function. Journal of Biological Chemistry. 271 (34), 20365-20374 (1996).
  43. Spiess, M. et al. Active and inactive β1 integrins segregate into distinct nanoclusters in focal adhesions. Journal of Cell Biology. 217 (6), 1929-1940 (2018).
  44. Yang, S. et al. Relating conformation to function in integrin α5β1. Proceedings of the National Academy of Sciences. 113 (27), E3872-E3881 (2016).
  45. Shattil, S. J., Hoxie, J. A., Cunningham, M., Brass, L. F. Changes in the platelet membrane glycoprotein IIb.IIIa complex during platelet activation. Journal of Biological Chemistry. 260 (20), 11107-11114 (1985).
  46. Shattil, S. J., Motulsky, H. J , Insel, P. A., Flaherty, L., Brass, L. F. Expression of fibrinogen receptors during activation and subsequent desensitization of human platelets by epinephrine. Blood. 68 (6), 1224-1231 (1986).
  47. Carreño, R. et al. 2E8 binds to the high affinity i-domain in a metal ion-dependent manner: a second generation monoclonal antibody selectively targeting activated LFA-1. Journal of Biological Chemistry. 285 (43), 32860-32868 (2010).
  48. Keizer, G. D., Visser, W., Vliem, M., Figdor, C. G. A monoclonal antibody (NKI-L16) directed against a unique epitope on the alpha-chain of human leukocyte function-associated antigen 1 induces homotypic cell-cell interactions. The Journal of Immunology. 140 (5), 1393-1400 (1988).
  49. Lefort, C. T. et al. Distinct roles for talin-1 and kindlin-3 in LFA-1 extension and affinity regulation. Blood. 119 (18), 4275-4282 (2012).
  50. van Kooyk, Y. et al. Activation of LFA-1 through a Ca2(+)-dependent epitope stimulates lymphocyte adhesion. Journal of Cell Biology. 112 (2), 345-354 (1991).
  51. Mould, A. P. et al. Conformational changes in the integrin a domain provide a mechanism for signal transduction via hybrid domain movement. Journal of Biological Chemistry. 278 (19), 17028-17035 (2003).
  52. Chigaev, A. et al. Real-time analysis of conformation-sensitive antibody binding provides new insights into integrin conformational regulation. Journal of Biological Chemistry. 284 (21), 14337-14346 (2009).
  53. Njus, B. H. et al. Conformational mAb as a tool for integrin ligand discovery. Assay and Drug Development Technologies. 7 (5), 507-515 (2009).
  54. Chigaev, A., Wu, Y., Williams, D. B., Smagley, Y., Sklar, L. A. Discovery of very late antigen-4 (VLA-4, α4β1 integrin) allosteric antagonists. Journal of Biological Chemistry. 286 (7), 5455-5463 (2011).
  55. Ghigo, A., De Santi, C., Hart, M., Mitash, N., Swiatecka-Urban, A. Cell signaling and regulation of CFTR expression in cystic fibrosis cells in the era of high efficiency modulator therapy. Journal of Cystic Fibrosis. 22, S12-S16 (2023).
  56. Van Goor, F., Yu, H., Burton, B., Hoffman, B.J. Effect of ivacaftor on CFTR forms with missense mutations associated with defects in protein processing or function. Journal of Cystic Fibrosis. 13 (1), 29-36 (2014).

재인쇄 및 허가

JoVE'article의 텍스트 или 그림을 다시 사용하시려면 허가 살펴보기

허가 살펴보기

더 많은 기사 탐색

Immunology and Infection204

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

개인 정보 보호

이용 약관

정책

연락처

사서에게 추천하기

JoVE 뉴스레터

연구

교육

저자

사서

JoVE 소개

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. 판권 소유