Name: 비디오: Video-oculography in Mice
Uploaded: 2012-07-19T12:00:00
Duration: 9 min 43 s

우리는 친절하게 건강 연구 및 개발을위한 네덜란드기구 (MDJ, CDZ), 과학 연구에 대한 네덜란드기구 (CDZ), NeuroBasic (CDZ)를 감사이 Beatrix Fonds (CDZ), SENSOPAC (CDZ), C7 (CDZ)하고 Prinses 의 재정적인 지원을위한 유럽 공동체의 CEREBNET (CDZ) 프로그램입니다.

1. 준비 다음 실험은 동물 실험에 대한 Duch 윤리위원회에 따라 실시되었다. <ol><li> 비디오 oculography 위해 쥐를 준비. 마우스의 눈 움직임을 측정하기 위해서는 마우스의 머리는 고정해야합니다. 따라서, 페데 스탈 건설은 마우스 두개골 (그림 1)에서 이루어집니다. <ol><li> 와 가스실에서 산소, isoflurane의 혼합물 (Rhodia Organique 파인 (주), 프랑스 isofluran 1-1.5 %)으로 마우스를 마취. 과도한 가스 청소한다. 코 콘을 통해 마취를 유지합니다. 발가락이 핀치를 통해 마취의 깊이를 확인합니다. </li><li> 항문 thermosensor의 사용과 손난로 (FHC, Bowdoinham, ME)에서 37 ° C에서 체온을 유지합니다. </li><li> 눈 연고 (duratears, Alcon, 벨기에)와 그들을 취재하여 눈을 보호합니다. 지느러미 두개골 모피를 면도하고, 스크럽과 betadin의 회전 외과 영역을 청소전자 또는 chlorhexidine 솔루션입니다. </li><li> 두개골의 지느러미 두개골 표면을 노출 중간 라인 절개를합니다. 표면이 깨끗하고 건조합니다. </li><li> bregma에서 람다의 두개골 지느러미 두개골 표면에, 인산 (커, CA 인의 산성 젤 에천트 37.5 %)의 방울을 적용합니다. 15초 후 에천트를 제거하고 두개골 표면이 다시 염분 및 건조와 함께 청소합니다. </li><li> 이 에칭처리된 두개골 표면 OptiBond 소수의 방울 (커, CA)와 30 초 동안 그것을 공기 건조의 상단에 적용합니다. </li><li> OptiBond 소수의 꼭대기에서 OptiBond 접착제 (커, CA)의 방울을 놓고 1 분 (맥시멈 480 가시 광선의 경화 장치, 헨리 Schein, 미국)의 빛으로 치료. </li><li> 카리스마 합성 (Heraeus Kulzer, 독일)의 얇은 층과 접착 층을 커버. 합성의 두 개의 연결된 너트 (지름 3mm) 포함시킵니다. 라이트와 합성 나중을 치료. 필요한 경우 복합의 추가 레이어를 적용하고 밝은 그들을 치료. </li><li> 광고수술 진통제에 대한 장관 buprenorphine (0.015 밀리그램 / kg, SC). 동물은 약 ​​5 분 이내에 힘으로 돌아갈 겁니다. 마우스 수술 후 최소 3 일간 상온에서 홈 새장에 복구하도록 허용합니다. </li></ol></li><li> 생쥐를위한 비디오-oculography 설정 (그림 2). <ol><li> restrainer에 마우스를 놓고 두 개의 나사 (그림 1)에 의해 restrainer로 머리를 고정시킨다. 마우스가이 절차에 대한 anesthetized 될 필요가 없습니다. 금지 시간은 1 시간 / 일 초과할 수 없습니다. </li><li> 나아가 턴테이블 (60cm 직경)에 따라 마운트되어 XY 플랫폼에서 마우스 머리 앤 바디 ​​restrainer를 탑재합니다. XY 플랫폼 사용 마우스 머리는 턴테이블의 중앙 위에 배치될 수 있습니다. 마우스는 피치, 편요각 및 롤 축 위에 이동할 수 있습니다. 마우스의 머리는 ISCAN syste에 의해 생성된 눈의 영상을 사용하여 시선을 정렬하여 정확한 피치, 편요각 및 롤 각도에 배치됩니다줄게. 양자 택일로, 페데 스탈 건설은 stereotactic 프레임 11에 마우스의 머리에 둘 수 있습니다. </li><li> 턴테이블은 AC 서보 제어 모터 (고조파 드라이브 AG, 네덜란드)와 ​​턴테이블의 위치에 붙어있다는 턴테이블 축에 부착된 전위 차계 (Bourns INC., CA)에 의해 모니터링된다. </li><li> 원통 주위의 화면 (지름 : 63cm, 높이 : 35 ㎝) 임의의 점선 패턴 (각 요소 2 °)와 함께 턴테이블을 커버,이 드럼은 또한 AC 서보 제어 모터 (고조파 드라이브 AG, 네덜란드)을 갖추고있다 . 원통형 스크린의 게재 순위는 축과 화면 할로겐 조명 (20 와트)에 의해 점등 수에 부착된 전위 차계 (Bourns INC., CA)에 의해 모니터링된다. 주변 스크린과 턴테이블 모두 독립적으로 구동됩니다. </li><li> 턴테이블과 주변 화면의 움직임은 I / O 인터페이스 (CED 제한, 캠브리지, 영국)에 연결된 컴퓨터에 의해 제어됩니다. 고마워, I / O 인터페이스에 의해 디지털 처리되고이 컴퓨터에 저장 : 경과 주변 화면 위치 신호 (20 Hz에서 컷 - 오프 주파수) 필터링됩니다. </li><li> 마우스의 눈으로 세 적외선 방사체가 켜져있는 (600 MW, 분산 각도 : 7 °, 최대 파장 : 880 nm의, RS 부품, 네덜란드). 두 개의 적외선 방사체는 턴테이블에 고정되며 세 번째 방출은 카​​메라에 첨부되어 있습니다. 이 세 번째 에미터는 교정 절차를 수행하는 동안과 안구 운동 녹음시 사용되는 참조 각막 반사 (CR)를 생산하고 있습니다. </li><li> 줌 렌즈 (줌 6000 Navitar INC., NY)이 장착된 적외선 CCD 카메라는 턴테이블에 첨부되어 턴테이블의 중앙에 마우스 머리에 주력하고 있습니다. 카메라 보정 절차 동안 정확히 20 ° 이상의 잠금을 해제 할 수 있으며, 턴테이블의 축에 대해 yawed 수 있습니다. </li><li> 비디오 신호는 안구 추적 시스템 (ISCAN ETL-200, 벌링턴, MA)에 의해 처리됩니다. ISCAN 시스템은 뭔가를 사용하여학생 및 참조 CR의 센터를 추적할 rithm. 시스템은 120 Hz의 샘플 속도로 수평 및 수직 방향으로 학생과 참조 CR을 추적할 수 있습니다. </li><li> 참조 CR 위치, 동공 위치와 동공 크기의 신호는 I / O 인터페이스에 의해 디지털화되며 테이블과 주변의 화면 위치 신호와 같은 파일에 저장됩니다. 동영상 동공 추적 시스템은 약 27 MS의 안구 운동 신호의 지연을 유도합니다. </li></ol></li></ol> 2. 동영상 학생 추적을 사용하여 눈 움직임을 보정 및 측정 안구 추적 시스템 translational 모션으로 동공의 움직임을 캡처합니다. 추적 학생의 translational 움직임은 눈의 회전 중심과 안구 (각막 곡률 즉, 중심)의 해부 센터, 안구의 각도 회전에 의한 회전 성분 사이의 축방향 차이로 인해 translational 구성 요소를 포함하고 있습니다. 빼기으로학생 운동 / 위치에서 참조 CR을 접근한, 바람직하지 translational 성분은 안구의 회전에 의한 것입니다 translational 모션 그 결과 신호로부터 제거된다. 그들은 종종 아주 작은 있지만이 뺄셈도 머리와 카메라 사이의 번역을 없애줍니다. 잔여 절연 translational 운동은 다음과 같은 보정 방법 8,12에 의해 안구의 각도 회전으로 변환됩니다. 이 교정은 어떤 안구 운동 실험 이전에 수행되었다. <ol><li> 동공의 비디오 이미지가 모니터의 중간에 위치하고 참조 CR의 표현은되도록이면 직접 학생 위 안구의 수직 중간선에 위치하고있는 것을 같은 방법으로 카메라에 마우스 머리의 위치를​​ 조정합니다. 때문에 카메라 / 테이블 축을 통해 각막 곡률 중심을 배치하여 수행할 수 있습니다 각운 카메라 회전에 참조 CR의 움직임을 최소화합니다. &lt;/ 리&gt; <li> 10 ° (즉, 20도에서 최대 피크) 턴테이블의 수직 축을 중심으로 - + / -로 카메라를 여러 번 회전합니다. (학생의 회전 반경을 계산하는 카메라 회전 극단적인 위치에 기록된 추적 동공 (P) 및 참조 CR의 위치를​​ 사용하여 RP; RP = Δ / 죄악 (20 °), Δ = (CR -P),) 그림 3A 참조하십시오. </li><li> RP 값이 동공 크기에 의존한다는 사실로 인해 동공 크기 보정 12 (그림 3B) 구현해야합니다. RP 관계를하고 RP 보정 곡선 (그림 3D)를 작성 - 동공의 크기를 결정하기 위해, (그림 3C 즉, 동공 크기를 조작) 다양한 조명 조건에서 2.2 여러 번 단계를 반복합니다. RP 가치도 수직 안구의 위치에 따라 달라집니다. 실험 수직 안구 운동을 일으킬 것입니다 그렇다면 수직 안구 위치에 대한 보정의 보정이 매우 추천입니다13. </li><li> 참조 CR 위치, P의 위치와 동공 크기를 측정하여 안구 (E)의 각도 위치를 결정합니다. 참조 CR 위치는 translational 무료 동공 위치를 생성 동공 위치에서 빼는됩니다. 동공 크기를 측정하여 RP 값이 RP 보정 곡선에서 추출 수와 E는 다음과 같은 수식을 사용하여 계산할 수 E = arcsin {(Δ1) / RP} (그림 4A, 어디 Δ1 = (P 2 - P 1) 및 P 1과 P 2) 참조 CR의 뺄셈에 의해 해결된다. </li><li> 턴테이블 및 / 또는 주변의 화면 회전의 대형 레퍼토리는 이제 oculomotor 시스템을 자극하는 데 사용할 수 있습니다. 어둠 속에서 비디오 oculography을 수행하기 위해서는 마우스 눈은 동공 팽창을 제한하고 이러한 상황에서 학생 추적을 허용하는 miotic 약물로 pretreated해야합니다. 우리의 실험에서 우리는 pilocarpine (4 %, 연구소 Chauvin, 프랑스)에서 동공 팽창을 제한하기 위해 사용어둠. </li></ol> 3. 데이터 분석 <ol><li> 눈 위치, 테이블 위치와 주변 스크린 순위는 모두 (2.4에서 그림 4B와 수식 참조) 각도 위치로 변환됩니다. 안구 신호 학생 추적 시스템의 이미징 처리에 의해 27 MS 유도들의 지연을 위해 수정하고 있습니다. </li><li> 눈, 테이블과 주변 스크린의 각도 위치는 차별 및 20 Hz의 주파수 해제 잘라내기를 사용 버터월스 로우 - 패스 필터로 걸러집니다. </li><li> Saccades는 40 ° / s의 탐지 임계값을 사용하여 안구 속도 신호에서 제거됩니다. 데이터가 감지 임계값을 건너 후 20 MS 80 이전까지 MS부터 제거됩니다. </li><li> 표, 주위의 화면과 눈의 속도 신호는 흔적 (그림 4C)에서 각각의 사이클을 사용하여 평균하고 있습니다. </li><li> 평균 신호는 적절한 기능을 장착하고 있습니다. 일반적으로 sinusoidal 속도 자극을 사용하여 평균하고 있습니다주기는 부비동이나 cosinus 함수 (그림 4C)가 장착되어있다. 단계는 눈의 속도와 경기 부양 속도의 차이 (온도)로 계산할 수 있습니다 반면 그런 이득은 경기 부양 속도로 안구 속도의 비율로 계산할 수 있습니다. </li></ol> 4. 대표 결과 뿐만 아니라 모터 학습 (보르 적응, OKR 각색) 비디오-oculography 다양한 oculomotor 공연의 형태를 (; :; 보르 시각적으로 향상된가 vestibulo - 안구 반사 VVOR vestibulo - 안구 반사 OKR 즉 optokinetic 반사) 조사하는 데 사용할 수 있습니다. OKR 시각적 피드백을 사용하여 저주파 방해 보상. OKR은 잘 조명 주변 화면 (동영상 1) 회전에 의해 유도된 수 있습니다. 1.6 °의 진폭과 0.2 -1.0 Hz의 주파수 범위 주위의 화면을 회전하면 optokinetic 시스템이 낮은 주파수 범위 THA에서보다 효율적인 보상 메커니즘입니다 방법을 보여줍니다N 높은 주파수 범위 (그림 5A). 보르는 vestibular 기관에서 신호를 사용하여 고주파 헤드의 움직임에 대한 보상. 보르은 (영화 2) 어둠 속에서 동물 (즉 턴테이블)를 회전하여 유도된 수 있습니다. 1.6 °의 진폭과 0.2 -1.0 Hz의 주파수 범위에서 턴테이블을 회전하면 (그림 5A) vestibulo-안구 시스템이 낮은 주파수 범위보다 높은 주파수 범위에서 보상 안구의 움직임을 생성하는보다 효율적인 방법을 보여줍니다 . 콘서트에서 optokinetic 및 vestibulo - 안구 시스템 행위는 이미지가 헤드 움직임의 광범위한 범위에서 망막에 안정 수납니다. 주변 화면이 잘 켜져있는 동안, 1.6 °의 진폭과 0.2 -1.0 Hz의 주파수 범위에서 턴테이블을 회전하면 (영화 3) 눈이 전체 주파수 범위 이상의 &quot;하이 게인&quot;보상 운동을 (그림 5A 생성 방법을 보여줍니다 ). 이 모든 이득과 산도성별 14 변형 15,16,17 차이가보고되었다지만 ASE 값은, 마우스를위한 전형입니다. 턴테이블 및 주변 화면이 이상의 독립적인 컨트롤은 우리 시각과 vestibular 정보 간의 불일치로 쥐를 직면 수 있습니다. 일치하지 않는 시각과 vestibular 정보의 장기와 균일한 노출 후 마우스 보르가 변경된 영상 입력 (; 영화 4 보르 적응)에 대한 보상으로 변경됩니다. 주변 화면 (1 Hz에서 1.6 °)로 (즉, 180 °) 단계의 턴테이블을 회전하면 보르 게인 (그림 5B)을 증가시킵니다. 보르 이득의 최대한의 변화는 한 시범 학습 패러다임을 사용할 때, 종종 30 분 후에 도달된다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/3971/3971fig1.jpg" /> 그림 1. 마우스 머리 앤 바디 restrainer의 도식 그리기. 마우스의 시신은 사용하고 구속되어35mm의 직경을 가진 플​​라스틱 원통형 튜브. 마우스의 머리는 두 개의 나사와 철제 막대에 마우스의 받침대를 연결하여 고정합니다. 철 막대 ambulation 동안 정상적인 피치에 마우스의 머리를 배치하기 위해 30 도의의 각도를 만듭니다. * 두 개의 너트를 포함한 받침대 위에 볼 수 있습니다. <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/3971/3971fig2.jpg" /> 그림 2. 마우스 비디오 oculography 설정의 도식 그림. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/3971/3971fig3.jpg" /> 그림 3. 동영상을 학생 추적 시스템의 보정. 10 ° (즉, 최대 20도 피크) 턴테이블의 수직 축을 중심으로 -) 카메라는 + / -에 의해 회전을 여러 번있다. 추적 동공 (P) 및 카메라 회전 극단적인 위치에 기록된 참조 각막 반사 (CR)은 학생의 회전 반경을 계산하는 데 사용됩니다(RP). B) 동공 직경의 반경은 동공의 크기에 따라 달라집니다. C) 예 (두 픽셀 (픽셀 단위로 측정)) 보정 절차 동안 동공 순위에 동공 크기의 효과를 보여주고 있습니다. D) RP와 동공 직경 사이의 관계는 한 번의 마우스로 측정. 열세 가지 동공 지름은 주변 빛의 강도를 변경하여 수행되었다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/3971/3971fig4.jpg" /> 그림 4. 측정 및 동영상 동공 추적을 사용하여 안구의 움직임을 분석. CR 위치에 대해 수정);) 각도 동공 위치가 학생의 반경 (RP)과 학생의 위치 (P로부터 계산됩니다. B) 보상 안구 운동의 예 vestibular 및 영상 시스템 (시각 향상된 보르)을 자극하여 유도된. 주변 화면이 잘 켜지지 동안 턴테이블은 1.6 °의 진폭과 0.6 Hz에서에서 회전 sinusoidally했습니다. C) 녹음의 분석) B에 표시됩니다. 그래프 턴테이블 (파란색)과 동공 (적색)의 평균 속도 추적을 보여줍니다. 이러한 평균 추적은 sinusoidal 함수 (검정)과 함께 장착했다. <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/3971/3971fig5.jpg" /> 그림 5. 성능 하나 C57Bl6 마우스로 측정 oculomotor 시스템을 학습. (vestibulo - 안구 반사 어둠 속에서 마우스를 회전하여 OKR, 상단 패널) : 보르, 중 판넬) 및 (시각 빛 가운데 마우스를 회전하여) 안구의 움직임은 주변 화면 회전 (optokinetic 반사에 의해 생성되는 강화된 vestibulo - 안구 반사 : 0.2에서 1.6 °의 진폭에서 1.0 Hz에서에 이르기까지 다양한 주파수와 VVOR, 하단 패널). 반사의 이득은 경기 부양 속도로 안구 속도의 비율 (왼쪽 패널)와 반사의 단계로 계산되었다 눈의 속도와 경기 부양 속도 (오른쪽 패널) 사이의 위상 차이로부터 계산되었다. B) 모터 학습하여 수행되었다<html> adaptively 위상 교육 패러다임의 아웃을 사용 보르도 증가합니다. 마우스는 마우스의 회전 마흔 분 동안 주변 스크린 (1.0 Hz에서 1.6 °의 회전 모두)의 회전과 상 (180 °) 떨어 졌있는 visuovestibular 교육 패러다임의 대상이었다. 10 분마다 보르는 (1.0 Hz에서 1.6 °) 테스트되었습니다. 이 마우스에는 위상 연수 밖 보르 게인을 증가했다. 영화 1. 생쥐에서 OKR을 유도 패러다임을 보여주는 애니메이션은 <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3971/3971movie1.mov" target="_blank">동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . 영화 2. 생쥐에서 보르을 유도 패러다임을 보여주는 애니메이션. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3971/3971movie2.mov" target="_blank">동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> . 생쥐의 VVOR을 유도 패러다임을 보여주는 영화 3. 애니메이션..com/files/ftp_upload/3971/3971movie3.mov &quot;대상 =&quot;_blank &quot;&gt; 동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오. 영화 4. 생쥐의 보르 적응 (증가)를 유도 위상 교육 패러다임의 visuovestibular 밖을 보여주는 애니메이션. <a href="http://www.jove.com/files/ftp_upload/3971/3971movie4.mov" target="_blank">동영상을 보려면 여기를 클릭하십시오</a> .

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관심의 어떠한 충돌 선언 없습니다.

생쥐에서 고품질의 비디오 안구 운동 녹음을 얻기 위해서는 몇 가지 요구 사항이 필요합니다. 교정 절차는 위에서 언급한 표준 물질로 진행해야합니다. 예를 들어 중심을 벗어난 교정은 학생이 교정 절차를 수행하는 동안 참조 CR과 수직 중간선에 위치하지 않는 경우, 라인란트의 싼 견적 및 안구 운동의 결과적으로 과대 평가가 발생합니다. 매우 안정 동공의 크기를 보여 시도는 매우 드문이기 때문에 더욱이, 우리는 교정 절차 12 동공 크기의 보정 방법을 통합하는 것이 좋습니다. 재판 도중에도 작은 스트레스는 이미 크게 동공 직경을 변경할 수 있습니다. 안구 운동 실험을 설계할 때 다음과 같은 요소들은 안구 운동 응답에 영향을 미치는 것으로 알려져 있기 때문에 고려 또는 조절이 가능해야합니다 나이 13,18, 성별 14 변형 15,16을, 19. 동공과 홍채 사이의 대조가 BALB / C 마우스에서처럼 너무 낮은 경우 동공 탐지 및 추적이 불가능하기 때문에 또한, 실험 동물 색소 붓꽃이 있어야합니다. 매우 긴장하거나 불안한 동물 실험 세트까지하고 억제된 상태 익숙해 사전 실험로 훈련해야합니다. 이 동물은 눈이 덜 폐쇄 혹은 반 폐쇄의 절차 결과 처리 및 실험 도중 눈 체액의 생성을 방지하고 결과적으로 더 나은 학생 추적이 수행됩니다. 마지막으로, 수집하고 데이터를 분석하는 것은 동물마다 두세 시간 전에 필요합니다. 따라서 안구 운동 레코딩 가능성이 선택한 마우스에 적용하여 높은 처리량 선별 검사로서 적합하지 않다 특정 절차 유지됩니다.

<table border="1"><tbody><tr><td> 시약의 이름 </td><td> 회사 </td><td> 카탈로그 번호 </td></tr><tr><td> Isofluran </td><td> Rhodia Organique 파인 (주) </td><td></td></tr><tr><td> 생리대 </td><td> FHC </td><td> 40-90-8 </td></tr><tr><td> Duratears </td><td> Alcon </td><td></td></tr><tr><td> 인산 겔 </td><td> 커 </td><td> 31,297 </td></tr><tr><td> Optibond 프라임 </td><td> 커 </td><td> 35,369 </td></tr><tr><td> Optibond 접착제 </td><td> 커 </td><td> 35,369 </td></tr><tr><td> 카리스마 복합 </td><td> Heraeus Kulzer </td><td></td></tr><tr><td> 맥시멈 480 광 경화 장치 </td><td> 헨리 Schein </td><td></td></tr><tr><td> AC 서보 모터 제어 </td><td> 고조파 드라이브 AG </td><td></td></tr><tr><td> Cylindric 화면 </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 할로겐 라이트 (20 승) </td><td> RS 컴포넌트 </td><td></td></tr><tr><td> Potentiometers (정밀) </td><td> Bourns INC. </td><td> 6574 </td></tr><tr><td> 파워 1401 (I / O 인터페이스) </td><td> CED 제한 </td><td></td></tr><tr><td> 컴퓨터 </td><td> 작은 골짜기 </td><td></td></tr><tr><td> 적외선 emmitters </td><td> RS 컴포넌트 </td><td> 195-451 </td></tr><tr><td> ETL-200 </td><td> ISCAN </td><td></td></tr><tr><td> 줌 렌즈 (줌 6,000) </td><td> Navitar INC. </td><td></td></tr><tr><td> Pilocarpinenitrate (minims) </td><td> Laboratoire Chauvin </td><td></td></tr></tbody></table>

video-oculography in mice

안구의 움직임은 객체를 추적하거나 운동하는 동안 망막에 이미지를 안정화하기 위해 매우 중요하다. 같은 마우스와 같은 fovea없는 동물은, 대상에 자신의 눈을 주시하는 제한된 능력을 가지고. 이러한 목표 감독 안구의 움직임와는 달리, 보상 안구 안구의 움직임을 쉽게 afoveate 동물 1,2,3,4에 elicited있다. 보상 안구 움직임은 눈의 근육을 운전하는 명령 신호로 vestibular 및 optokinetic 정보 처리에 의해 생성됩니다. vestibular 및 optokinetic 정보의 처리는 oculomotor 시스템 적자의 사양을 수 있도록 별도로 함께 조사 할 수 있습니다. oculomotor 시스템 optokinetic 반사 (OKR), vestibulo - 안구 반사 (보르) 또는 시각적으로 향상된 vestibulo - 안구 반사 (VVOR)을 evoking하여 테​​스트 할 수 있습니다. 보르는 반사적 눈 미터 반면 OKR은 망막에서 &quot;전체 필드&quot;이미지의 움직임에 대한 보상 반사 운동이다머리의 움직임을 보상 ovement. VVOR는 적절한 보상을 만들뿐만 optokinetic 정보 등 모두 vestibular를 사용하여 반사 안구 운동입니다. 소뇌는 모니터링하고 이러한 보상 안구의 움직임을 조정할 수 있습니다. 따라서 oculography뿐만 아니라 병적인 조건 (vestibular, 안구 및 / 또는 소뇌 원산지 FE)에서 정상 아래 뇌 - 행동의 관계를 조사하기위한 매우 강력한 도구입니다. oculomotor 시스템을 테스트, 행동 패러다임으로서, 여러 가지 이유가 흥미롭습니다. 첫째, oculomotor 시스템은 잘 이해 신경 시스템 5. 둘째, oculomotor 시스템은 상대적으로 간단한 여섯이다; 가능한 안구 운동의 금액은 그 공 - 인 - 소켓 아키텍처 ( &quot;단일 공동&quot;)과 엑스트라 안구 근육 7 삼쌍에 의해 제한됩니다. 셋째, 행동 출력과 감각 입력을 쉽게 정량이 높은 접근 시스템을지게하고, 측정 가능분석 8. 많은 행동 검사 양적 능력이 높은 수준의 부족합니다. 그리고 마지막으로, oculomotor 시스템의 양쪽 성능뿐만 아니라 소성가있게 테스트할 수 학습과 기억 과정 9 일 연구. 유전자 변형 생쥐는 최근 널리 사용할 수 있으며 그들은 다양한 수준의 10시 뇌 기능의 탐사를위한 중요한 원천을 형성하고 있습니다. 또한, 그들은 모델이 인간의 질병을 모방하는 데으로 사용할 수 있습니다. 정상에 oculography 적용 pharmacologically - 치료 또는 유전자 변형 생쥐 것은 정상과 병적인 조건에서 모터 행동의 기본 생리를 탐험하기 위해 강력한 연구 도구입니다. 여기서는 쥐를 8 비디오 oculography을 측정하는 방법에 대해 설명합니다.

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Video-oculography in Mice

비디오 - oculography 아주 양적 안구 모터의 성능을 조사하는 방법뿐만 아니라 모터 학습입니다. 여기서는 생쥐에서 비디오 oculography을 측정하는 방법에 대해 설명합니다. 정상에서이 기술을 적용 pharmacologically - 치료 또는 유전자 변형 생쥐 것은 모터 행동의 기본 생리를 탐험하기 위해 강력한 연구 도구입니다.

마우스의 비디오 - oculography

Eye movements are very important in order to track an object or to stabilize an image on the retina during movement. Animals without a fovea, such as the ...

Research

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Neuroscience

23.5K 조회수.  Erasmus MC, Rotterdam, The Netherlands. 비디오 - oculography 아주 양적 안구 모터의 성능을 조사하는 방법뿐만 아니라 모터 학습입니다. 여기서는 생쥐에서 비디오 oculography을 측정하는 방법에 대해 설명합니다. 정상에서이 기술을 적용 pharmacologically - 치료 또는 유전자 변형 생쥐 것은 모터 행동의 기본 생리를 탐험하기 위해 강력한 연구 도구입니다.

비디오: Video-oculography in Mice

Measuring Motor Coordination in Mice

Mice are increasingly being used in behavioral neuroscience, largely replacing rats as the behaviorist's animal of choice. Before aspects of behavior such as emotionality or cognition can be assessed, however, it is vital to determine whether the motor capabilities of e.g. a mutant or lesioned mouse allow such an assessment. Performance on a maze task requiring strength and coordination, such as the Morris water maze, might well be impaired in a mouse by motor, rather than cognitive, impairments, so it is essential to selectively dissect the latter from the former. For example, sensorimotor impairments caused by NMDA antagonists have been shown to impair water maze performance2. 
Motor coordination has traditionally been assessed in mice and rats by the rotarod test, in which the animal is placed on a horizontal rod that rotates about its long axis; the animal must walk forwards to remain upright and not fall off. Both set speed and accelerating versions of the rotarod are available.
The other three tests described in this article (horizontal bar, static rods and parallel bars) all measure coordination on static apparatus. The horizontal bar also requires strength for adequate performance, particularly of the forelimbs as the mouse initially grips the bar just with the front paws. 
Adult rats do not perform well on tests such as the static rods and parallel bars (personal observations); they appear less well coordinated than mice. I have only tested male rats, however, and male mice seem generally less well coordinated than females. Mice appear to have a higher strength:weight ratio than rats; the Latin name, Mus musculus, seems entirely appropriate. The rotarod, the variations of the foot fault test12 or the Catwalk (Noldus)15 apparatus are generally used to assess motor coordination in rats.

Protocols are presented for two established motor coordination tasks, the accelerating rotarod and horizontal bar, also two tests developed in Oxford recently, the static rods and parallel bars. These tests can detect motor impairments potentially of interest in their own right, as well as being possible variables in tests of other areas of behavior.

마우스에 모터 조정을 측정

Mice are increasingly being used in behavioral neuroscience, largely replacing rats as the behaviorist's animal of choice. Before aspects of behavior such ...

연구

신경과학

A Simple and Inexpensive Method for Determining Cold Sensitivity and Adaptation in Mice

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life. The cold plantar assay allows the objective and inexpensive assessment of cold sensitivity in mice, and can quantify both analgesia and hypersensitivity. Mice are acclimated on a glass plate, and a compressed dry ice pellet is held against the glass surface underneath the hindpaw. The latency to withdrawal from the cooling glass is used as a measure of cold sensitivity.
Cold sensation is also important for survival in regions with seasonal temperature shifts, and in order to maintain sensitivity animals must be able to adjust their thermal response thresholds to match the ambient temperature. The Cold Plantar Assay (CPA) also allows the study of adaptation to changes in ambient temperature by testing the cold sensitivity of mice at temperatures ranging from 30 &#176;C to 5 &#176;C. Mice are acclimated as described above, but the glass plate is cooled to the desired starting temperature using aluminum boxes (or aluminum foil packets) filled with hot water, wet ice, or dry ice. The temperature of the plate is measured at the center using a filament T-type thermocouple probe. Once the plate has reached the desired starting temperature, the animals are tested as described above.
This assay allows testing of mice at temperatures ranging from innocuous to noxious. The CPA yields unambiguous and consistent behavioral responses in uninjured mice and can be used to quantify both hypersensitivity and analgesia. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

The Cold Plantar Assay (CPA) measures cold responsiveness between 30 &#176;C and 5 &#176;C, and can also measure cold adaptation. This protocol describes how to use the CPA to measure cold hypersensitivity, analgesia, and adaptation in mice.

마우스에 콜드 민감도 및 적응을 결정하기위한 간단하고 저렴한 방법

Cold hypersensitivity is a serious clinical problem, affecting a broad subset of patients and causing significant decreases in quality of life.  The cold ...

Assessment of Dopaminergic Homeostasis in Mice by Use of High-performance Liquid Chromatography Analysis and Synaptosomal Dopamine Uptake

Dopamine (DA) is a modulatory neurotransmitter controlling motor activity, reward processes and cognitive function. Impairment of dopaminergic (DAergic) neurotransmission is strongly associated with several central nervous system-associated diseases such as Parkinson&#39;s disease, attention-deficit-hyperactivity disorder and drug addiction1,2,3,4. Delineating disease mechanisms involving DA imbalance is critically dependent on animal models to mimic aspects of the diseases, and thus protocols that assess specific parts of the DA homeostasis are important to provide novel insights and possible therapeutic targets for these diseases.
Here, we present two useful experimental protocols that when combined provide a functional read-out of the DAergic system in mice. Biochemical and functional parameters on DA homeostasis are obtained through assessment of DA levels and dopamine transporter (DAT) functionality5. When investigating the DA system, the ability to reliably measure endogenous levels of DA from adult brain is essential. Therefore, we present how to perform high-performance liquid chromatography (HPLC) on brain tissue from mice to determine levels of DA. We perform the experiment on tissue from dorsal striatum (dStr) and nucleus accumbens (NAc), but the method is also suitable for other DA-innervated brain areas.
DAT is essential for reuptake of DA into the presynaptic terminal, thereby controlling the temporal and spatial activity of released DA. Knowing the levels and functionality of DAT in the striatum is of major importance when assessing DA homeostasis. Here, we provide a protocol that allows to simultaneously deduce information on surface levels and function using a synaptosomal6 DA uptake assay.
Current methods combined with standard immunoblotting protocols provide the researcher with relevant tools to characterize the DAergic system.

Synaptosomal dopamine uptake and high-performance liquid chromatography analysis represent experimental tools to investigate dopamine homeostasis in mice by assessing the function of the dopamine transporter and levels of dopamine in striatal tissue, respectively. Here we present protocols to measure dopamine tissue content and assess the functionality of the dopamine transporter.

고성능 액체 크로마토그래피 분석 및 Synaptosomal 도파민 통풍 관의 사용에 의해 쥐에서 Dopaminergic 항상성의 평가

Dopamine (DA) is a modulatory neurotransmitter controlling motor activity, reward processes and cognitive function. Impairment of dopaminergic (DAergic) ...

An Objective and Reproducible Test of Olfactory Learning and Discrimination in Mice

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and parenting. Importantly, mice can be trained to associate novel odors with specific behavioral responses to provide insight into olfactory circuit function. This protocol details the procedure for training mice on a Go/No-Go operant learning task. In this approach, mice are trained on hundreds of automated trials daily for 2&#8211;4 weeks and can then be tested on novel Go/No-Go odor pairs to assess olfactory discrimination, or be used for studies on how odor learning alters the structure or function of the olfactory circuit. Additionally, the mouse olfactory bulb (OB) features ongoing integration of adult-born neurons. Interestingly, olfactory learning increases both the survival and synaptic connections of these adult-born neurons. Therefore, this protocol can be combined with other biochemical, electrophysiological, and imaging techniques to study learning and activity-dependent factors that mediate neuronal survival and plasticity.

Here, we train mice on an associative learning task to test odor discrimination. This protocol also allows for studies on learning-induced structural changes in the brain.

후 각 학습 및 쥐에 있는 차별의 객관적이 고 재현성 시험

Olfaction is the predominant sensory modality in mice and influences many important behaviors, including foraging, predator detection, mating, and ...

Transcranial Direct Current Stimulation (tDCS) in Mice

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a non-invasive neuromodulation technique proposed as an alternative or complementary treatment for several neuropsychiatric diseases. The biological effects of tDCS are not fully understood, which is in part explained due to the difficulty in obtaining human brain tissue. This protocol describes a tDCS mouse model that uses a chronically implanted electrode allowing the study of the long-lasting biological effects of tDCS. In this experimental model, tDCS changes the cortical gene expression and offers a prominent contribution to the understanding of the rationale for its therapeutic use.

Transcranial Direct Current Stimulation tDCS in Mice

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a therapeutic technique proposed to treat psychiatric diseases. An animal model is essential for understanding the specific biological alterations evoked by tDCS. This protocol describes a tDCS mouse model that uses a chronically implanted electrode.

Transcranial 직류 자극 (tDCS) 마우스

Transcranial direct current stimulation (tDCS) is a non-invasive neuromodulation technique proposed as an alternative or complementary treatment for ...

Quantitative Measurement of Intrathecally Synthesized Proteins in Mice

Cerebrospinal fluid (CSF), a fluid found in the brain and the spinal cord, is of great importance to both basic and clinical science. The analysis of the CSF protein composition delivers crucial information in basic neuroscience research as well as neurological diseases. One caveat is that proteins measured in CSF may derive from both intrathecal synthesis and transudation from serum, and protein analysis of CSF can only determine the sum of these two components. To discriminate between protein transudation from the blood and intrathecally produced proteins in animal models as well as in humans, CSF protein profiling measurements using conventional protein analysis tools must include the calculation of the albumin CSF/serum quotient (Qalbumin), a marker of the integrity of the blood-brain interface (BBI), and the protein index (Qprotein/Qalbumin), an estimate of intrathecal protein synthesis. This protocol illustrates the entire procedure, from CSF and blood collection to quotients and indices calculations, for the quantitative measurement of intrathecal protein synthesis and BBI impairment in mouse models of neurological disorders.

Elevated spinal fluid protein levels can either be the result of diffusion of plasma protein across an altered blood-brain barrier or intrathecal synthesis. An optimized testing protocol is presented in this article that helps to discriminate both cases and provides quantitative measurements of intrathecally synthesized proteins.

쥐의 경내 합성 단백질의 정량적 측정

Cerebrospinal fluid (CSF), a fluid found in the brain and the spinal cord, is of great importance to both basic and clinical science. The analysis of the ...

Electrocorticographic Recording of Cerebral Cortex Areas Manipulated Using an Adeno-Associated Virus Targeting Cofilin in Mice

The use of electrocorticographic (ECoG) recordings in rodents is relevant to sleep research and to the study of a wide range of neurological conditions. Adeno-associated viruses (AAVs) are increasingly used to improve understanding of brain circuits and their functions. The AAV-mediated manipulation of specific cell populations and/or of precise molecular components has been tremendously useful to identify new sleep regulatory circuits/molecules and key proteins contributing to the adverse effects of sleep loss. For instance, inhibiting activity of the filamentous actin-severing protein&#160;cofilin&#160;using AAV prevents sleep deprivation-induced memory impairment. Here, a protocol is&#160;described that combines the manipulation of cofilin function in a cerebral cortex area with the recording of ECoG activity to examine whether cortical cofilin modulates the wakefulness and sleep ECoG signals. AAV injection is performed during the same surgical procedure as the implantation of ECoG and electromyographic (EMG) electrodes in adult male and female mice. Mice are anesthetized, and their heads are shaved. After skin cleaning and incision, stereotaxic coordinates of the motor cortex are determined, and the skull is pierced at this location. A cannula prefilled with an AAV expressing cofilinS3D, an inactive form of cofilin, is slowly positioned in the cortical tissue. After AAV infusion, gold-covered screws (ECoG electrodes) are screwed through the skull and cemented to the skull with gold wires inserted in the neck muscles (EMG electrodes). The animals are allowed three weeks to recover and to ensure sufficient expression of cofilinS3D. The infected area and cell type are verified using immunohistochemistry, and the ECoG is analyzed using visual identification of vigilance states and spectral analysis. In summary, this combined methodological approach allows the investigation of the precise contribution of molecular components regulating neuronal morphology and connectivity to the regulation of synchronized cerebral cortex activity during wakefulness and sleep.

This article describes a protocol for the manipulation of molecular targets in the cerebral cortex using adeno-associated viruses and for monitoring the effects of this manipulation during wakefulness and sleep using electrocorticographic recordings.

쥐에서 코필린을 표적으로 하는 아데노 관련 바이러스를 사용하여 조작된 대뇌 피질 지역의 전기 코르티코그래피 기록

The use of electrocorticographic (ECoG) recordings in rodents is relevant to sleep research and to the study of a wide range of neurological conditions. ...

생쥐의 운동 피질에서 세포외 전기생리학적 기록

Multichannel Extracellular Recording in Freely Moving Mice

The protocol aims to uncover the properties of neuronal firing and network local field potentials (LFPs) in behaving mice carrying out specific tasks by correlating the electrophysiological signals with spontaneous and/or specific behavior. This technique represents a valuable tool in studying the neuronal network activity underlying these behaviors. The article provides a detailed and complete procedure for electrode implantation and consequent extracellular recording in free-moving conscious mice. The study includes a detailed method for implanting the microelectrode arrays, capturing the LFP and neuronal spiking signals in the motor cortex (MC) using a multichannel system, and the subsequent offline data analysis. The advantage of multichannel recording in conscious animals is that a greater number of spiking neurons and neuronal subtypes can be obtained and compared, which allows the evaluation of the relationship between a specific behavior and the associated electrophysiological signals. Notably, the multichannel extracellular recording technique and the data analysis procedure described in the present study can be applied to other brain areas when conducting experiments in behaving mice.

저자 스포트라이트: 자유롭게 움직이는 마우스의 신경 활동을 연구하기 위한 다중 채널 세포외 기록의 발전 

The protocol describes the methodology of extracellular recording in the motor cortex (MC) to reveal extracellular electrophysiological properties in freely moving conscious mice, as well as the data analysis of local field potentials (LFPs) and spikes, which is useful for evaluating the network neural activity underlying behaviors of interest.

자유롭게 움직이는 마우스의 다채널 세포외 기록

The protocol aims to uncover the properties of neuronal firing and network local field potentials (LFPs) in behaving mice carrying out specific tasks by ...