저자는 쥐를 번식 UC 데이비스 마우스 생물학 프로그램에 감사드립니다. 이 연구는 머크, 독일에서 교부금에 의해 지원되었다.

모든 동물 연구와 실험은 캘리포니아 대학, 데이비스 기관 동물 관리 및 관리 자문위원회를 사용하여 승인 된 프로토콜에 따라 수행되었다. 1. MUC1.Tg 마우스 사육 및 번식 <ol><li> 이형 MUC1.Tg C57BL / 6 암컷 생쥐와 UC 데이비스 마우스 생물학 프로그램 (MBP)은 품종 야생 유형 C57BL / 6 수컷 생쥐 우리의 사육 식민지를 설정합니다. 필요에 따라 MUC1.Tg 자손이 연구에 전달됩니다. </li><li> MBP 담당자는 마우스 식별을 위해 정의 된 패턴 (99)의 자손의 발가락을 잘라, 그리고 해당되는 경우 클립 꼬리. 발가락이나 꼬리 조직은 표준 DNA 추출 및 중합 효소 연쇄 반응 (PCR) 분석을 이용하여 유전자형을 위해 처리됩니다. </li></ol> 2. 연구 설계 <ol><li> 그룹 할당을 연구 <ol><li> 균형에 별도로 각 마우스의 무게를 측정하고 각 마우스 그램의 무게를 기록한다. </li><li> INV 절차의이 부분연구의 방법론과 설계를 olves. 연구의 첫 번째 부분, OH-BBN과 함께 방광 암 유도를 시작하는 나이와 일치 MUC1.Tg와 야생형 생쥐을 지정합니다. 팔주 조직 학적으로 방광 종양의 존재를 확인하는 마지막 OH-BBN 투여 후 쥐를 안락사. </li><li> 연구의 두 번째 부분에 대한 치료 및 제어 그룹의 해당 번호로 남성 MUC1.Tg 쥐를 무작위. 이 생쥐 ~ 8 주 마지막 OH-BBN 투여 후 연구 종료시에는 유도하고 종양 개발하는 동안 혈청 사이토 카인 및 T 세포 면역 반응을 모니터링하고, 될 것입니다. </li></ol></li><li> 방광 암 유도 <ol><li> OH-BBN은 발암 물질과 독성이 높은 것입니다. 이 화학 물질을 취급 및 보관시 물질 안전 보건 자료의 지침을 읽고 따르십시오. </li><li> 평균 무게와 numbe를 기준으로 각 마우스에 100 μL의 볼륨에서 적절한 용량 (3 MG)를 제공하는 데 필요한 투여 용액의 농도를 계산각 연구 및 그룹의 생쥐의 연구. </li><li> 100 % 에탄올에 OH-BBN을 희석. 최종 농도 30 멸균 물 MG / ML을 가져옵니다. 최종 에탄올 : 물 농도 20:80 있어야한다, V / V </li><li> 팔주 세의 나이에 시작하는 치료 그룹 할당에 따라 스테인리스, 매일 20 G 투여 바늘 5 일 / 12 주 동안 일주일을 사용하여 OH-BBN 구두를 관리 할 수​​ 있습니다. </li></ol></li><li> 예방 접종 트리트먼트 <ol><li> 0.9 % 멸균 생리 식염수 600 μL에 철저하게 0.5 인치 27 G 바늘 배를 통해 솔루션을 그려 resuspend을 동결 건조 된 펩타이드 백신의 재구성 각각의 병. 원하는 용량을 100 μL의 볼륨 전달되도록 생리 식염수 사용하여 농도를 조정합니다. </li><li> OH-BBN의 마지막 투여 후 25 G 바늘 (주 번호가 마우스의 연령에 해당)를 사용하여 100 μL의 피하 주사로 8 주주기 매주 백신 관리, 주 20 년부터. </li></ol></li><li> 모니터링 및 시료 채취 <ol><li> 모든 마우스의 무게를 각각 일주일에 한 번 새로운 종양의 존재를 만져. 만져서 알 수있는 종양, 소변에 혈액, 및 / 또는 요폐가있는 경우 또는 체중 ≥ 20 %를 잃은 모든 쥐를 안락사. </li><li> 다음 첫 번째 OH-BBN 투여하기 전에 4 주 간격으로 그 이후, 턱밑 출혈을 통해 전체 혈액을 수집합니다. 혈청 응고 튜브 (BD Microtainer)에서 혈액을 수집하고, 응고 혈액 30 분을 허용합니다. </li><li> 10 분 3,500 XG에서의 microcentrifuge에서 혈액 샘플을 원심 분리기. 조심스럽게 피펫을 사용하여 캡 cryotubes을 망칠 혈청을 전송합니다. </li><li> -80에서 액체 질소와 저장소에 플래시 동결 ° C 다중으로 추가 분석까지. </li><li> 팔주 OH-BBN의 마지막 투여 후, CO 2 질식하여 모든 쥐를 안락사. </li><li> 해부 보드에 각 마우스를 놓고 사지 모두에 의해 아래로 핀. </li><li> 엄마는 집게와 가위를 사용하여애 상단 복부에 수평 절개. 표피 층과 복벽 사이의 절개로 가위를 넣고 부드럽게 포셉의 도움으로 기본 조직으로부터 피부를 분리합니다. </li><li> 마우스의 앞쪽 끝 부분의 중앙 축을 따라 수평 절개에서 수직으로 절개를합니다. 흉곽으로부터 피부를 분리하고 1 ML의 주사기와 22 G 바늘 구멍을 뚫거나 마음과 원활하고 안정적​​인 무승부로 혈액을 수집를 사용하여. </li><li> 혈청 분리 및 저장을위한 2.4.3 및 2.4.4 단계를 참조하십시오. </li><li> 집게와 가위, 절단 다시 껍질 표피 층의 나머지 부분을 사용. 복벽과 복막의 실수로 무균 면역 (IHC)과 서양 얼룩에 대한 방광 종양을 제거합니다. </li><li> 세포 생존 능력 분석 (뮤즈)와 ELISPOT에 대한 비장를 수집합니다. IHC 장소 방광 종양 조직 카세트의 시편 실온에서 식힌 포르말린 하룻밤에 고정합니다. </lI&gt; <li> 다음 날, 70 % 에탄올로 포르말린을 대체합니다. </li><li> 종양의 서양 얼룩 분석, 종양을 균질화 단백질 추출 버퍼 플러스 정지 프로테아제 억제제를 추가하고 1.5 ML의 microcentrifuge 튜브로 전송할 수 있습니다. </li><li> 30 ~ 60 초 동안 소용돌이 5 분 동안 얼음십시오. 플래시가 주위의 물에 액체 질소와 해동에서 냉동. , 소용돌이로 동결 번 해동의 과정을 반복합니다. </li><li> 4 10 분 ° C 10,000 XG에서 샘플을 원심 분리하고 새 레이블 튜브에 세포 추출물을 전송합니다. </li><li> 단백질 측정을위한 Bicinchoninic 산성 단백질 분석 (BCA)를 수행하여 농도를 정량화. 매장 샘플 서양 얼룩 분석 -80 ° C까지 준비. </li></ol></li></ol> 3. 분자 생물학 / 양식 다음 절차는 표준 서쪽 오점 프로토콜을 사용하여 마우스 방광 종양 조직에서 MUC1의 발현을 확인 하였다 (자료는 표시되지N). <ol><li> semidry 장치를 이용하여 PVDF 막에 전송 한 후 SDS-폴리 아크릴 아미드 겔 전기 영동 (SDS-PAGE)에 의해 단백질 추출물을 분리합니다. </li><li> 0.1 %에서 5 % 탈지 우유 단백질 전송 멤브레인을 차단 인산염의 트윈-20은 상온에서 궤도 셰이커에 1 시간 동안 식염수 (PBS-T) 산도 7.4 버퍼. </li><li> 0.1 % PBS-T의 반대로 MUC1 또는 반대로 β-액틴 항체 통에 실온에서 1 시간 동안 막 품어. </li><li> 솔루션을 이동시키기 0.1 % PBS-T를 추가하여 막 씻으십시오. 5 분간 가만히 따르다에 대한 통에 소용돌이 막. 이 단계를 두 번 반복합니다. </li><li> 말 무 퍼 옥시 데이즈 (HRP) 복합 이차 항체로 실온에서 1 시간 동안 막 품어. </li><li> 배를 (3.4 단계를 참조하십시오) 씻으십시오. </li><li> fluorography을 활성화하고 읽을 수있는 확장 Chemiluminesence (ECL) 키트에 대한 프로토콜을 따르십시오. </li></ol> 4. 다중 형광 마이크로 비드의 면역 &lt;OL&gt; <li> 설치 및 계산 <ol><li> 96 - 웰 플레이트지도를 사용하여, 우물 공백, 표준, 컨트롤, 미지수를 지정합니다. 수와 분석의 볼륨을 계산 항체를 캡처하고 스트렙 타비 딘 - 가하고 (SA-PE)는 분석에 필요한. </li><li> 모든 버퍼 희석제가 실내 온도에 평형 수 있습니다. 빈 96 - 웰 플레이트를 사용하여 표준 시료 희석을 준비합니다. </li><li> 제조 업체의 프로토콜과 96 - 웰 플레이트에 적절한 희석제와 표준 1시 5분 시리얼 희석을 따라 혈청 매트릭스와 동결 건조 된 표준 재구성. 빈 우물은 해당 희석제를 사용합니다. </li><li> 96 - 웰 플레이트의 나머지 부분에서 적절한 희석제의 모든 컨트롤과 미지 시료 1:2 희석. </li><li> 비드 혼합의 경우, 15 ML 튜브에 적절한 희석제의 필요한 볼륨을 피펫. 20 초 피펫 15 ML 튜브에 각 분석의 필요한 볼륨의 소용돌이 각 비드 병을. </lI&gt; <li> 항상 photobleaching에 방지하기 위해 빛의 구슬을 보호합니다. 위킹을 통해 시료의 손실을 방지하기 위해 흡수제 96 - 웰 플레이트를 올려 놓지 마십시오. </li></ol></li><li> 분석 프로토콜 <ol><li> 분석 버퍼 200 μL와 96 - 웰 필터 바닥 판을 Prewet 및 필터의 완전한 몸을 담글 수 있도록. 조심스럽게 96 - 웰 플레이트 진공 장치를 이용하여 배수 및 종이 타월로 접시의 바닥을 건조 얼룩. </li><li> 멀티 채널 피펫, 공백 및 표준 컨트롤과 미지에 할당 된 우물 분석 버퍼의 피펫 25 μL에 할당 된 우물에 혈청 행렬의 피펫 25 μl를 사용. </li><li> 피펫 25 빈 μL, 표준, 컨트롤 및 해당 할당 우물에 미지수. 소용돌이는 구슬을 20 초 동안 혼합 및 저수지에 구슬을 전송합니다. </li><li> 각 우물에 구슬 믹스의 피펫 25 μL. 알루미늄 호일이나 빛으로부터 보호하기 위해 불투명 플레이트 뚜껑 접시를 커버. </li><l난&gt; 접시 흔드는에 상온에서 2 시간 동안 500 rpm에서 판을 흔들어. 배수와 0.1 %의 200 μL 인산염의 트윈 20과 함께 접시를 씻어 두 번 (PBS-T) 염분 버퍼. 배수하고 건조 얼룩. </li><li> 캡처 항체 솔루션을 준비합니다. 0.1 % PBS-T의 필요한 양을 피펫 10 초 동안 15 ML 튜브와 소용돌이에 항체를 캡처합니다. 각 우물에 저수지와 피펫 25 μL로 캡처 항체 믹스를 전송합니다. </li><li> 접시 통에 상온에서 한 시간 동안 500 rpm에서 판을 흔들어. 두 번 배수 0.1 % PBS-T 200 μL와 접시를 씻으십시오. 배수하고 건조 얼룩. </li><li> SA-PE 솔루션을 준비합니다. 15 ML 튜브 10 초 동안 소용돌이로 0.1 % PBS-T와 SA-PE의 필요한 볼륨을 피펫. 각 우물에 저수지와 피펫 25 μL에 대한 해결책을 전송합니다. </li><li> 접시 통에 실온에서 30 분 동안 500 rpm에서 판을 흔들어. 두 번 배수 0.1 % PBS-T 200 μL와 접시를 씻으십시오. 배수와 b많이 건조. </li><li> 피펫 100 0.1 % PBS-T의 μL와 구슬을 resuspend을 적어도 2 분 동안 500 rpm에서 접시 뿌리를 흔들어. Luminex의 LX200 기계에 접시를 읽고 분석합니다. </li></ol></li></ol> 5. IFN-γ/IL-4 ELISPOT 준비 및 분석 <ol><li> 생물 안전 캐비닛에 100 μm의 나일론 조직을 통해 비장을 처리 5 ML 멸균 인산에 체 식염수 (PBS)는 멸균 페트리 접시에 버퍼. 멸균 15 ML 튜브 림프구 분리 매체의 3 ML 위에 레이어 비장합니다. </li><li> 붉은 혈액 세포에서 림프구를 분리하는 15 분 600 XG에 튜브를 원심 분리기. 새로운 멸균 15 ML 튜브에 그라데이션 위의 계층 림프구를 전송합니다. </li><li> 멸균 PBS 10 ML에 볼륨을 조정합니다. 펠렛 세포에 10 분 600 XG에 현탁액을 원심 분리기. </li><li> 뜨는을 기음과 세포 생존을위한 PBS 1 ML에있는 세포를 resuspend을하고 뮤즈로 계산분석기. 뮤즈 횟수 및 생존 키트 프로토콜을 따르십시오. </li><li> 1.5 ML 나사 캡 원심 분리기 1:10의 희석 요인 튜브, 1:20 및 횟수 및 생존 시약 (최소 총 부피 300 μL)의 1시 40분 (또는 필요)에서 림프구의 시리얼 희석하십시오. 뮤즈에 혼합하고 분석 할 여러 번 각 희석을 피펫 아래. </li><li> ELISPOT 플레이트 샘플 및 조건의 플레이트지도를 준비합니다. 제조 업체의 프로토콜과 매체의 피펫 100 μL, 펩타이드 (10 ㎍ / ㎖) 또는 스크램블 각 웰에 펩타이드 (10 ㎍ / ㎖)에 따라 ELISPOT 플레이트를 준비합니다. </li><li> 물론 각각 1.0 × 10 6 세포를 제공하고 37 ° C에서 하룻밤 번호판을 품어 세포 현탁액의 피펫 100 μL. </li><li> ELISPOT 분석에 대한 제조 업체의 프로토콜을 따르십시오. 해부 현미경을 사용하여 개발 ELISPOT 플레이트를 분석합니다. </li><li> 색 반점의 수를 대응되는 수를 계산하여 결과를 정량화각 우물에서 각 분석에 NG. 반점은 각 우물에 자리 형성 세포의 수 (SFC)에 해당합니다. </li></ol> 6. 면역 조직 화학 (IHC) 헤 마톡 실린 및 에오신 (H &amp; E) 염색 <ol><li> 면역 조직 화학 분석을위한 4 μm의에서 파라핀과 단계 섹션에 포함 위에서 설명한대로 보존 방광 종양 조직 (제 2.4.11)를 가져 가라. </li><li> MUC1의 탠덤 반복 영역을 인식 MUC1 항체를 사용하여 IHC를 수행합니다. 조직에 존재하는 내인성 면역 글로불린과 보조 마우스 항체 반응을 최소화하기 위해 동물 연구 키트 과산화 효소를 사용합니다. </li><li> 표준 프로토콜을 사용하여 H &amp; E 염색을 수행합니다. </li></ol> 7. 통계적 방법 다중 형광 마이크로 비드의 면역을 위해, 평균 치료 및 제어 그룹 간의 혈청 사이토 카인 농도를 관찰 비교하는 두 꼬리 학생의 T - 테스트를 사용합니다. ELISPOT를 들어, 한-W를 사용미디어 컨트롤 사이에 식민지를 형성하는 자리를 비교하는 AY ANOVA는 펩타이드 펩타이드 그룹을 스크램블. 위양성 결과의 가능성을 줄이기 위해 Dunnett의 다중 비교 테스트를 사용합니다. ≤ 0.05의 P-값은 모든 분석을위한 유의 한 차이로 간주됩니다.

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J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+induction+of+primary+human+CD4++and+CD8++T+cell+responses+against+cancer-associated+MUC1+peptide+epitopes.">Rapid induction of primary human CD4+ and CD8+ T cell responses against cancer-associated MUC1 peptide epitopes.</a> Int. Immunol. 10 (12), 1907-1916 (1998).</li><li>Palmer, M., Parker, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phase+I+study+of+the+BLP25+(MUC1+peptide)+liposomal+vaccine+for+active+specific+immunotherapy+in+stage+IIIB/IV+non-small-cell+lung+cancer.">Phase I study of the BLP25 (MUC1 peptide) liposomal vaccine for active specific immunotherapy in stage IIIB/IV non-small-cell lung cancer.</a> Clin. Lung Cancer. 3 (1), 49-57 (2001).</li><li>Walsh, M. D., Hohn, B. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mucin+expression+by+transitional+cell+carcinomas+of+the+bladder.">Mucin expression by transitional cell carcinomas of the bladder.</a> Br. J. Urol. 73 (3), 256-262 (1994).</li><li>Murray, A., Simms, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Production+and+characterization+of+rhenium-188-C595+antibody+for+radioimmunotherapy+of+transitional+cell+bladder+cancer.">Production and characterization of rhenium-188-C595 antibody for radioimmunotherapy of transitional cell bladder cancer.</a> J. Nucl. Med. 42 (5), 726-732 (2001).</li><li>Hughes, O., Bishop, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeting+superficial+bladder+cancer+by+the+intravesical+administration+of+67copper-labelled+anti-MUC1+mucin+monoclonal+antibody+C595.">Targeting superficial bladder cancer by the intravesical administration of 67copper-labelled anti-MUC1 mucin monoclonal antibody C595.</a> J. Clin. Oncol. 18 (2), 363-370 (2000).</li><li>Conn, I. G., Crocker, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=HMFG-2+as+a+prognostic+indicator+in+superficial+bladder+cancer.">HMFG-2 as a prognostic indicator in superficial bladder cancer.</a> J. Clin. Pathol. 41 (11), 1191-1195 (1988).</li><li>Hughes, O., Denley, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MUC1+mucin+expression+in+transitional+cell+carcinoma+of+the+bladder:+a+target+for+diagnosis+and+therapy+with+monoclonal+antibody+C595.">MUC1 mucin expression in transitional cell carcinoma of the bladder: a target for diagnosis and therapy with monoclonal antibody C595.</a> J. Urol. Pathol. 12, 185-197 (2000).</li><li>Rowse, G. J., Tempero, R. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tolerance+and+immunity+to+MUC1+in+a+human+MUC1+transgenic+murine+model.">Tolerance and immunity to MUC1 in a human MUC1 transgenic murine model.</a> Cancer Res. 58 (2), 315-321 (1998).</li><li>Mukherjee, P., Madsen, C. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mucin-1+specific+immunotherapy+in+a+mouse+model+of+spontaneous+breast+cancer.">Mucin-1 specific immunotherapy in a mouse model of spontaneous breast cancer.</a> J. Immunother. 26 (1), 47-62 (2003).</li><li>McCormick, D. L., Ronan, S. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influence+of+total+dose+and+dose+schedule+on+induction+of+urinary+bladder+cancer+in+the+mouse+by+N-butyl-N-(4-hydroxy-butyl)nitrosamine.">Influence of total dose and dose schedule on induction of urinary bladder cancer in the mouse by N-butyl-N-(4-hydroxy-butyl)nitrosamine.</a> Carcinogenesis. 2 (3), 251-254 (1981).</li><li>Wurz, G. T., Gutierrez, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antitumor+effects+of+L-BLP25+antigen-specific+tumor+immunotherapy+in+a+novel+human+MUC1+transgenic+lung+cancer+mouse+model.">Antitumor effects of L-BLP25 antigen-specific tumor immunotherapy in a novel human MUC1 transgenic lung cancer mouse model.</a> J. Transl. Med. 11, 10-1186 (2013).</li><li>Kunze, E., Schauer, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stages+of+transformation+in+the+development+of+N-butyl-N-(4hydroxybutyl)-nitrosamine-induced+transitional+cell+carcinomas+in+the+urinary+bladder+of+rats.">Stages of transformation in the development of N-butyl-N-(4hydroxybutyl)-nitrosamine-induced transitional cell carcinomas in the urinary bladder of rats.</a> Z Krebsforsch Klin. Onkol. Cancer Res. Clin. Oncol. 87 (2), 139-160 (1976).</li><li>Crallan, R. A., Georgopoulos, N. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Experimental+models+of+human+bladder+carcinogenesis.">Experimental models of human bladder carcinogenesis.</a> Carcinogenesis. 27 (3), 374-381 (2006).</li><li>Samma, S., Uemura, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+induction+of+carcinoma+in+situ+in+dog+urinary+bladder+by+sequential+treatment+with+N-methyl-N'-nitrosourea+and+N-butyl-N-(4-hydroxybutyl)-nitrosamine.">Rapid induction of carcinoma in situ in dog urinary bladder by sequential treatment with N-methyl-N'-nitrosourea and N-butyl-N-(4-hydroxybutyl)-nitrosamine.</a> Gann. 75 (5), 385-387 (1984).</li><li>Bornhof, C., Wolfrath, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Induction+of+urinary+bladder+urothelial+cancers+in+the+rabbit+by+dibutylnitrosamine+with+an+artificial+bladder+calculus+as+cocarcinogen.">Induction of urinary bladder urothelial cancers in the rabbit by dibutylnitrosamine with an artificial bladder calculus as cocarcinogen.</a> Urologe A. 28 (6), 339-343 (1989).</li><li>Irving, C. C., Tice, A. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inhibition+of+N-n-butyl-N-(4-hydroxybutyl)nitrosamine-induced+urinary+bladder+cancer+in+rats+by+administration+of+disulfiram+in+the+diet.">Inhibition of N-n-butyl-N-(4-hydroxybutyl)nitrosamine-induced urinary bladder cancer in rats by administration of disulfiram in the diet.</a> Cancer Res. 39 (8), 3040-3043 (1979).</li><li>Mehta, N. R., Wurz, G. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=L-BLP25+vaccine+plus+letrozole+induces+a+TH1+immune+response+and+has+additive+antitumor+activity+in+MUC1-expresssing+mammary+tumors+in+mice.">L-BLP25 vaccine plus letrozole induces a TH1 immune response and has additive antitumor activity in MUC1-expresssing mammary tumors in mice.</a> Clin. Cancer Res. 18 (10), 2861-2871 (2012).</li></ol>

DPV, GTW, SMG, CJK, AMG, 그리고 GKH은 경쟁 이익을 선언하지 않습니다. MWD는 머크로부터받은 보조금의 수사 반장, 그리고 MW는 머크의 직원입니다.

인간 MUC1.Tg 마우스의 침략 이행 및 편평 세포 방광 암의 성공적인 유도 면역 요법 개발을위한 전임상 모델을 제공합니다. Immunotherapeutic 연구는 시간뿐만 아니라 면역에 대한 면역 반응을 통해 종양의 진행에 염증 반응을 평가하기 위해 자연 면역 손상 모델의 사용을 필요로합니다. 자연 종양 개발 모델에서 종양 미세 환경은 그대로 남아 있고 종양 치료의 항암 효과의 평가를 위해 수 많은 대표 성...

방광 암은 암의 네 번째 가장 일반적인 형태 및 미국 남성의 암 사망의 여덟 번째 주요 원인이다. 미국에서 방광암에서 약 72,500 새로운 케이스 및 15,000의 죽음 2013 년 1 결합 된 남자와 여자 사이 예상된다. 방광 암의 발생률은 여성에 비해 약 3 배 남자 높은 것입니다. 케이스의 90 % 이상을 미국, 이행 세포 암 (TCC)는 계정 편평 세포 암종 (SCC)이 2 % 미만 2 발병률을 가지고있는 동안. 유두 TCC에 대한 전반적인 상대적으로 5 년 생존율은 SCC 2 만 30.9 %에 비해 91.5 %입니다. 비침 유두 TCCS도 환자의 50 % 이상 치료를 더 근육 침략 질병에 3,4로 진행이 환자의 30 %까지로 5 년 내에 재발을 경험하게 될 것입니다와 함께, 진단시에 케이스의 약 75 %를 차지하고 있지만, . 비 근육 인보이스에 대한 일반적인 치료 요법asive 질병은 방광 화학 요법에 이어 요도 절제술 (TUR) 이용하실 수 있습니다. 고급 따 또는 T1 종양 환자에서 반복 TUR 화학 요법 3,4하기 전에 수행 할 수 있습니다. 낮은 수준의 따 재발 또는 고급 따 또는 T1 병변을 가진 환자의 경우, TUR는 Calmette-Guerin의이 (BCG) 3,4 사용할 수 있습니다 간균의 형태로 보조 화학 요법 또는 면역 요법에 의해 따랐다. 방광 BCG는 재발 5 시간에 대하여 방광 마이 토마 이신 C를 우수한 것으로 표시되었습니다. T2 근육 침략 질환, 선행 항암 화학 요법의 유무에 관계없이 급진적 인 방광 치료 3의 권장 코스입니다. SCC 환자에서, 급진적 인 방광이 가장 효과적인 치료 6 것으로 보인다. 최선의 치료를 제공에도 불구하고 재발의 매우 높은 비율을 감안할 때, 방광 암에 대한 새로운, 더 효과적인 치료법에 대한 필요성은 분명히있다. bladd에 대한 새로운 면역을 확대어 암 무병 생존을 확장하기위한 약속을 보유 할 수있는 한 가지 방법입니다. 역사적으로, BCG 방광 암에 대한 유일한 효과적인 면역 요법이다. 행동의 메커니즘은 증가 인터루킨-2 수준 (IL-2)와 인터페론 감마 (IFN-γ) 4를 통해 T-도우미 1 (살전) 형 면역 반응의 특이성 유도를 포함하는 것으로 생각됩니다. 휴대 전화, 또는 살전 면역, 체액, 또는 Th2 사이토으로 암 면역 요법의 중요한 면역는 성장 인자 수용체 7에 대한 감독 항체를 제외하고, 단단한 종양에 대한 효과적인 것으로 표시 적이있다. BCG 단독 요법의 이점을 개선하기위한 시도에서, IFN-α 2B/BCG 조합 면역 요법은 결정적 결과를 8 단계 II 임상 시험에서 평가되었다. 방광 암에 대한 면역 요법에 대한 대안 7 암 면역 요법보다 구체적인 만든 식별 어느 종양 관련 항원 (TAAS)을 대상으로 할 수 있습니다 </s&gt;까지. 하나의 TAA는 방광, 유방, 폐, 췌장 암 9,10 많은 상피 세포 암에서 과발현 세포 표면 당 단백질 점액 1 (MUC1)입니다. MUC1의 발현 및 수정도 크게 발암 중에 변경되는 등 그 underglycosylation는 펩타이드 코어 탠덤 반복의 변수 번호 (VNTR)로 알려진 아미노산의 항원 시퀀스를 노출합니다. MUC1은 자기 분자 있지만, 이러한 immunodominant VNTR 영역은 일반적으로 인해 광범위한 당화에 노출되지 않으며, 따라서 그들은 외국 11,12으로 면역 시스템에 의해 볼 수 있습니다. 특히 MUC1 항원을 인식 세포 독성 T 림프구 (CTL을)를 MUC1에 대한 잠재적 인 대상 만들기, 유방암 환자의 13뿐만 아니라, 골수종 환자 14,15의 혈액과 골수의 종양 림프절에서 분리 된 세포 면역 반응. underglycosylate의 immunodominant VNTRsMUC1 d의 형식은 16-19 종양 세포의 파괴의 결과로, CTL을에 의해 인식됩니다. 암 MUC1에 기본 세포 및 / 또는 체액 성 면역 반응은, 그러나, 종양을 제거 할 수있을만큼 강력하지 않습니다. MUC1에 대한 기존의 약한 면역 반응을 증가시키기 위해, 합성 immunodominant 펩티드는 임상 이득 18,20 될 정도로 강한 CTL 반응을 생성하기 위해 예방 접종을 도입 할 수 있습니다. MUC1 리포솜 백신은 이미 폐암 환자 21,22 생존을 증가 MUC1 양성 종양 세포를 죽이는 능력이 CTL을 생성하고, 살전 편광 사이토 카인 반응 23,24을 생산하기 위해 표시되었습니다. MUC1 표현 9,11,25의 높은 수준, 방광 암은 MUC1-감독 면역 26,27 테스트를위한 논리적 인 후보이다. 또한, MUC1 암 28, TCC에있는 MUC1 발현이 크게 무대와 등급과 연관되어 방광의 예후 인자로 잠재력을 가지고, 그리고 전이성 TCCMUC1 29 표현을 계속 보여왔다. 방광 암 MUC1 - 감독 면역 요법의 잠재력 유틸리티를 평가하기 위해, 우리는 면역 그대로 사람 MUC1 (hMUC1) 표현 6 / C57BL 배경 30 방광암 congenic의 형질 전환 (MUC1.Tg) 마우스 모델을 개발했다. 사람 MUC1은 인간 30,31에서 관찰과 일관성 조직의 발현 양상의 결과로 자신의 발기인의 통제하에 자체 단백질로 표현됩니다. 생쥐는 다음 알려진 방광 발암 물질 N-부틸-N-(4 - 히드 록시 부틸) 니트로사민 (OH-BBN) 32, 그 결과 종양이 hMUC1 표현과 종양의 종류와 등급을 평가 하였다 함께 유도 하였다. 종양의 개발 과정에서 Th1/Th2 사이토 카인 수준에 대한 발암 물질의 효과를 평가하기 위해 혈청 샘플은 멀티 플렉스 분석을 위해 주기적으로 수집되었다. 마우스는 다음 MUC1 표적 펩타이드 백신을 취급하고, 혈청 사이토 카인 면역 반응은 evalua 있었다되었다다중 형광 마이크로 비드 면역와 ELISPOT에 의한 테드.

<table border="1">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Reagent&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>N-butyl-N-(4-hydroxybutyl)-nitrosamine (OH-BBN)</td>
			<td>TCI America</td>
			<td>B0938</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>20 G Gavage Needles</td>
			<td>Popper &#38; Sons, Inc.</td>
			<td>7921</td>
			<td>Stainless steel</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Peptide Vaccine</td>
			<td>N/A</td>
			<td>N/A</td>
			<td>investigational agent</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>BD Microtainers</td>
			<td>BD</td>
			<td>365957</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tissue Cassettes</td>
			<td>Simport</td>
			<td>M490-12</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>10% Neutral Buffered Formalin</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>SF100-4</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Lysis Buffer</td>
			<td>Pierce</td>
			<td>87787</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Halt Protease &#38; Phosphatase inhibitor cocktail</td>
			<td>Thermo Scientific</td>
			<td>78444</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Pierce BCA Protein Assay Kit</td>
			<td>Pierce</td>
			<td>23225</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mouse Cytokine 20plex Kit</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>LMC006</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Magnetic Microsphere Beads</td>
			<td>Luminex</td>
			<td>MC100xx-01</td>
			<td>xx is the bead region</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-mouse TNF- Capture Antibody</td>
			<td>BD Pharmingen</td>
			<td>551225</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-mouse TNF- Detection Antibody</td>
			<td>BD Pharmingen</td>
			<td>554415</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-mouse IFN- Capture Antibody</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab10742</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-mouse IFN- Detection Antibody</td>
			<td>Abcam</td>
			<td>ab83136</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PBS, pH 7.4</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>P3813-10PAK</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tween-20</td>
			<td>Fisher</td>
			<td>BP337-500</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Assay Buffer</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>L-MAB</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Cytokine Standard</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>MXM8070</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Multi-screen HTS 96well filter plates</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>MSBVN1210</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>SA-PE</td>
			<td>Invitrogen</td>
			<td>SA10044</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>100 m Nylon Tissue Sieves</td>
			<td>BD</td>
			<td>352360</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Splenocyte Separation Media</td>
			<td>Lonza</td>
			<td>17-829E</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>TNF- /IL-4 ELISpot plates</td>
			<td>R&#38;D Systems</td>
			<td>ELD5217</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rabbit Anti-MUC1 monoclonal antibody</td>
			<td>Epitomics</td>
			<td>2900-1</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat Anti-actin monoclonal antibody</td>
			<td>Sigma</td>
			<td>A1978</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Anti-rabbit HRP antibody</td>
			<td>Promega</td>
			<td>W401B</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Goat anti-mouse HRP antibody</td>
			<td>Santa Cruz Biotechnology, Inc.</td>
			<td>SC-2005</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PVDF membrane</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>162-0174</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini Protean TGX Precast Gels</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>456-1083</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Muse Count &#38; Viability Kit</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>MCH100104</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>MUC1 Antibody</td>
			<td>BD Pharmingen</td>
			<td>550486</td>
			<td>IHC antibody</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Animal Research Peroxidase Kit</td>
			<td>Dako</td>
			<td>K3954</td>
			<td>IHC staining</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>[header]</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Equipment and Software</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Millipore plate vaccum apparatus</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>MSVMHTS00</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luminex Lx200</td>
			<td>Millipore / Luminex</td>
			<td>40-013</td>
			<td>Manufactured by Luminex, distributed by Millipore</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Luminex Xponent Software</td>
			<td>Millipore / Luminex</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Version 3.1; included with Luminex Lx200</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Milliple Analyst Software</td>
			<td>Milliplex / VigeneTech</td>
			<td>40-086</td>
			<td>Version 5.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Muse Cell Analyzer</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>0500-3115</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Muse Software</td>
			<td>Millipore</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Version 1.1.0.0; included with Analyzer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Dissecting Microscope</td>
			<td>Unitron</td>
			<td>Z730</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Graphpad Prism Software</td>
			<td>Graphpad Software Inc.</td>
			<td>N/A</td>
			<td>Version 5.1</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Mini Protean Tetra Cell Gel apparatus</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>165-8001</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Trans Blot SD Cell and PowerPac</td>
			<td>BioRad</td>
			<td>170-3849</td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

induction of invasive transitional cell bladder carcinoma in immune intact human muc1 transgenic mice:  a model for immunotherapy development

침입 방광 암의 임상 모델은 인간의 점액 1 (MUC1) 면역 요법 및 / 또는 세포 독성 화학 요법을 평가하기위한 목적으로 유전자 변형 (MUC1.Tg) 생쥐에서 개발되었다. 방광 암, C57BL / 6 마​​우스 (MUC1.Tg 및 야생 유형)이 3.0 ㎎ / 하루에 발암 물질 N-부틸-N-(4 - 히드 록시 부틸) 니트로사민 (OH-BBN)와 경구 치료했다 5 일 / 주를 유발하는 12 주 동안. 종양 개발하는 동안 혈청 사이토 카인 프로필에 OH-BBN의 효과를 평가하기 위해 전체 혈액 턱밑 치료 이전에 출혈과 4 주마다를 통해 수집되었다. 또한, MUC1 표적 펩타이드 백신과 위약을 8 주 동안 매주 쥐 그룹에 투여 하였다. 종양의 개발과 백신 접종시 혈청 사이토 카인의 다중 형광 마이크로 비드의 immunoanalyses을 수행 하였다. 종료시, 인터페론 감마 (IFN-γ) / MUC1 특정 T 세포 면역 반응과 종양 유형의 조직 병리학 적 평가를위한 인터루킨-4 (IL-4) ELISPOT 분석및 등급을 수행 하였다. 결과를 보여 주었다 (1) MUC1.Tg 야생 양 식 생쥐의 방광암 발생률은 67 %였다 (2) 2:1 비율로 개발 한 이행 세포 암 (TCC)는 편평 세포 암종 (SCC)에 비해 (3) 염증성 사이토 카인은 종양의 개발 과정에서 시간이 증가하고, (4) 펩타이드 백신의 투여 살전-편광 혈청 사이토 카인 프로필과 MUC1 특정 T 세포 반응을 유도합니다. MUC1.Tg 마우스에있는 종양은 MUC1 발현 양성이었고, MUC1.Tg와 야생형 생쥐의 모든 종양의 절반 침략했다. 결론적으로, 약리학, 면역학, 병리학 및 분자 생물학의 노력의 조정을 통해 팀 접근 방식을 사용하여, 우리는 hMUC1을 표현 방광 암의 면역 그대로 형질 전환 마우스 모델을 개발했습니다.

방광암의 새로운 면역 요법 및 이들의 조합의 효과 전임상 평가는 적절한 동물 모델의 개발이 필요합니다. 우리의 유전자 변형 마우스 모델에서, 화학적 발암 물질 OH-BBN을 가진 유도 인간의 방광 암과 유사한 일부 SCC와 주로 TCC의 방광암 발생의 높은 비율로 만들었습니다. 종양의 조직 학적, MUC1 발현 상태 및 펩티드 백신 치료에 면역 반응을 확인하기 위해 21 MUC1.Tg 18 야생형 마우스는 OH-BBN 유도 ?...

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Induction of Invasive Transitional Cell Bladder Carcinoma in Immune Intact Human MUC1 Transgenic Mice:  A Model for Immunotherapy Development

N-부틸-N-(4 - 히드 록시 부틸) 니트로사민 유도 방광암 모델은 인간의 점액 1 (MUC1) 테스트의 목적 MUC1-감독 면역 형질 전환 생쥐에서 개발되었다. MUC1 표적 펩타이드 백신을 투여 한 후, MUC1에 대한 세포 독성 T 림프구 반응은 혈청 사이토 카인 수준과 T 세포의 특정 활동을 측정하여 확인 하였다.

면역 본래대로 사람 MUC1 유전자 변형 마우스의 침략 과도 셀 방광 암의 유도 : 면역 요법 개발을위한 모델

A preclinical model of invasive bladder cancer was developed in human mucin 1 (MUC1) transgenic (MUC1.Tg) mice for the purpose of evaluating immunotherapy ...

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Research

JoVE Journal

Medicine

21.1K 조회수.  University of California, Davis. N-부틸-N-(4 - 히드 록시 부틸) 니트로사민 유도 방광암 모델은 인간의 점액 1 (MUC1) 테스트의 목적 MUC1-감독 면역 형질 전환 생쥐에서 개발되었다. MUC1 표적 펩타이드 백신을 투여 한 후, MUC1에 대한 세포 독성 T 림프구 반응은 혈청 사이토 카인 수준과 T 세포의 특정 활동을 측정하여 확인 하였다.

비디오: Induction of Invasive Transitional Cell Bladder Carcinoma in Immune Intact Human MUC1 Transgenic Mice:  A Model for Immunotherapy Development

Establishment and Propagation of Human Retinoblastoma Tumors in Immune Deficient Mice

Culturing retinoblastoma tumor cells in defined stem cell media gives rise to primary tumorspheres that can be grown and maintained for only a limited time. These cultured tumorspheres may exhibit markedly different cellular phenotypes when compared to the original tumors. Demonstration that cultured cells have the capability of forming new tumors is important to ensure that cultured cells model the biology of the original tumor. 
Here we present a protocol for propagating human retinoblastoma tumors in vivo using Rag2-/- immune deficient mice. Cultured human retinoblastoma tumorspheres of low passage or cells obtained from freshly harvested human retinoblastoma tumors injected directly into the vitreous cavity of murine eyes form tumors within 2-4 weeks. These tumors can be harvested and either further passaged into murine eyes in vivo or grown as tumorspheres in vitro. Propagation has been successfully carried out for at least three passages thus establishing a continuing source of human retinoblastoma tissue for further experimentation. 
Wesley S. Bond and Lalita Wadhwa are co-first authors.

A method is described to propagate human retinoblastoma tumors in mice. Tumor cells are directly injected into the eyes of immune deficient mice. Secondary tumors have been successfully established using both cells directly harvested from human tumors and cultured tumorspheres.

면역 결함 마우스의 확립과 인간 Retinoblastoma 종양의 전파

Culturing retinoblastoma tumor cells in defined stem cell media gives rise to primary tumorspheres that can be grown and maintained for only a limited ...

연구

의학

Multi-photon Imaging of Tumor Cell Invasion in an Orthotopic Mouse Model of Oral Squamous Cell Carcinoma

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient management strategies. Orthotopic mouse models of oral cancer have been developed to facilitate the study of factors that impact invasion and serve as model system for evaluating anti-tumor therapeutics. In these systems, visualization of disseminated tumor cells within oral cavity tissues has typically been conducted by either conventional histology or with in vivo bioluminescent methods. A primary drawback of these techniques is the inherent inability to accurately visualize and quantify early tumor cell invasion arising from the primary site in three dimensions. Here we describe a protocol that combines an established model for squamous cell carcinoma of the tongue (SCOT) with two-photon imaging to allow multi-vectorial visualization of lingual tumor spread. The OSC-19 head and neck tumor cell line was stably engineered to express the F-actin binding peptide LifeAct fused to the mCherry fluorescent protein (LifeAct-mCherry). Fox1nu/nu mice injected with these cells reliably form tumors that allow the tongue to be visualized by ex-vivo application of two-photon microscopy. This technique allows for the orthotopic visualization of the tumor mass and locally invading cells in excised tongues without disruption of the regional tumor microenvironment. In addition, this system allows for the quantification of tumor cell invasion by calculating distances that invaded cells move from the primary tumor site. Overall this procedure provides an enhanced model system for analyzing factors that contribute to SCOT invasion and therapeutic treatments tailored to prevent local invasion and distant metastatic spread. This method also has the potential to be ultimately combined with other imaging modalities in an in vivo setting.

A comprehensive overview of the techniques involved in generating a mouse model of oral cancer and quantitative monitoring of tumor invasion within the tongue through multi-photon microscopy of labeled cells is presented. This system can serve as a useful platform for the molecular assessment and drug efficacy of anti-invasive compounds.

구강 편평 세포 암종의 Orthotopic 마우스 모델에서 종양 세포 침략의 다중 광자 이미징

Loco-regional invasion of head and neck cancer is linked to metastatic risk and presents a difficult challenge in designing and implementing patient ...

Protocol for Long Duration Whole Body Hyperthermia in Mice

Hyperthermia is a general term used to define the increase in core body temperature above normal. It is often used to describe the increased core body temperature that is observed during fever. The use of hyperthermia as an adjuvant has emerged as a promising procedure for tumor regression in the field of cancer biology. For this purpose, the most important requirement is to have reliable and uniform heating protocols. We have developed a protocol for hyperthermia (whole body) in mice. In this protocol, animals are exposed to cycles of hyperthermia for 90 min followed by a rest period of 15 min. During this period mice have easy access to food and water. High body temperature spikes in the mice during first few hyperthermia exposure cycles are prevented by immobilizing the animal. Additionally, normal saline is administered in first few cycles to minimize the effects of dehydration. This protocol can simulate fever like conditions in mice up to 12-24 hr. We have used 8-12 weeks old BALB/Cj female mice to demonstrate the protocol.

This paper describes a protocol for whole body hyperthermia in mice that can stimulate fever like conditions up to 12-24 hr.

마우스의 긴 기간 온 몸이 고열에 대한 프로토콜

Hyperthermia is a general term used to define the increase in core body temperature above normal. It is often used to describe the increased core body ...

The Use of Cystometry in Small Rodents: A Study of Bladder Chemosensation

The lower urinary tract (LUT) functions as a dynamic reservoir that is able to store urine and to efficiently expel it at a convenient time. While storing urine, however, the bladder is exposed for prolonged periods to waste products. By acting as a tight barrier, the epithelial lining of the LUT, the urothelium, avoids re-absorption of harmful substances. Moreover, noxious chemicals stimulate the bladder's nociceptive innervation and initiate voiding contractions that expel the bladder's contents. Interestingly, the bladder's sensitivity to noxious chemicals has been used successfully in clinical practice, by intravesically infusing the TRPV1 agonist capsaicin to treat neurogenic bladder overactivity1. This underscores the advantage of viewing the bladder as a chemosensory organ and prompts for further clinical research. However, ethical issues severely limit the possibilities to perform, in human subjects, the invasive measurements that are necessary to unravel the molecular bases of LUT clinical pharmacology. A way to overcome this limitation is the use of several animal models2. Here we describe the implementation of cystometry in mice and rats, a technique that allows measuring the intravesical pressure in conditions of controlled bladder perfusion.
	After laparotomy, a catheter is implanted in the bladder dome and tunneled subcutaneously to the interscapular region. Then the bladder can be filled at a controlled rate, while the urethra is left free for micturition. During the repetitive cycles of filling and voiding, intravesical pressure can be measured via the implanted catheter. As such, the pressure changes can be quantified and analyzed. Moreover, simultaneous measurement of the voided volume allows distinguishing voiding contractions from non-voiding contractions3.
	Importantly, due to the differences in micturition control between rodents and humans, cystometric measurements in these animals have only limited translational value4. Nevertheless, they are quite instrumental in the study of bladder pathophysiology and pharmacology in experimental pre-clinical settings. Recent research using this technique has revealed the key role of novel molecular players in the mechano- and chemo-sensory properties of the bladder.

Cystometry is an efficient technique to measure bladder function of small animals in vivo. The bladder is continuously infused at rates controlled through an intravesical catheter, whereas the urethra is left free for micturition. This allows for repetitive filling and emptying of the bladder, while intravesical pressure and voided volume are recorded.

작은 쥐의 Cystometry의 사용 : 방광 Chemosensation의 연구

	The lower urinary tract (LUT) functions as a  dynamic reservoir that is able to store urine and to efficiently expel it at a  convenient time. While ...

Generation of Subcutaneous and Intrahepatic Human Hepatocellular Carcinoma Xenografts in Immunodeficient Mice

In vivo experimental models of hepatocellular carcinoma (HCC) that recapitulate the human disease provide a valuable platform for research into disease pathophysiology and for the preclinical evaluation of novel therapies. We present a variety of methods to generate subcutaneous or orthotopic human HCC xenografts in immunodeficient mice that could be utilized in a variety of research applications. With a focus on the use of primary tumor tissue from patients undergoing surgical resection as a starting point, we describe the preparation of cell suspensions or tumor fragments for xenografting. We describe specific techniques to xenograft these tissues i) subcutaneously; or ii) intrahepatically, either by direct implantation of tumor cells or fragments into the liver, or indirectly by injection of cells into the mouse spleen. We also describe the use of partial resection of the native mouse liver at the time of xenografting as a strategy to induce a state of active liver regeneration in the recipient mouse that may facilitate the intrahepatic engraftment of primary human tumor cells. The expected results of these techniques are illustrated. The protocols described have been validated using primary human HCC samples and xenografts, which typically perform less robustly than the well-established human HCC cell lines that are widely used and frequently cited in the literature. In comparison with cell lines, we discuss factors which may contribute to the relatively low chance of primary HCC engraftment in xenotransplantation models and comment on technical issues that may influence the kinetics of xenograft growth. We also suggest methods that should be applied to ensure that xenografts obtained accurately resemble parent HCC tissues.

Human tumor xenografts in immunodeficient mice are valuable tools to study cancer biology. Specific protocols to generate subcutaneous and intrahepatic xenografts from human hepatocellular carcinoma cells or tumor fragments are described. Liver regeneration induced by partial hepatectomy in recipient mice is presented as a strategy to facilitate intrahepatic engraftment.

면역 결핍 마우스의 피하 및 간내 인간의 간세포 암 이종 이식의 생성

In  vivo experimental models of hepatocellular carcinoma (HCC) that recapitulate  the human disease provide a valuable platform for research into disease  ...

Urinary Bladder Distention Evoked Visceromotor Responses as a Model for Bladder Pain in Mice

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition characterized by increased urgency and frequency of urination, as well as nocturia and general pelvic pain, especially upon bladder filling or voiding. Despite years of research, the cause of IC/BPS remains elusive and treatment strategies are unable to provide complete relief to patients. In order to study nervous system contributions to the condition, many animal models have been developed to mimic the pain and symptoms associated with IC/BPS. One such murine model is urinary bladder distension (UBD). In this model, compressed air of a specific pressure is delivered to the bladder of a lightly anesthetized animal over a set period of time. Throughout the procedure, wires in the superior oblique abdominal muscles record electrical activity from the muscle. This activity is known as the visceromotor response (VMR) and is a reliable and reproducible measure of nociception. Here, we describe the steps necessary to perform this technique in mice including surgical manipulations, physiological recording, and data analysis. With the use of this model, the coordination between primary sensory neurons, spinal cord secondary afferents, and higher central nervous system areas involved in bladder pain can be unraveled. This basic science knowledge can then be clinically translated to treat patients suffering from IC/BPS.

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition characterized in part by pelvic pain. In order to study nervous system contributions to the condition, a physiological model of urinary bladder pain is used in mice and rats.

쥐의 방광 통증 모델로 방광 팽창 유발 내장 운동 응답

Approximately 3-8 million people in the United States suffer from interstitial cystitis/bladder pain syndrome (IC/BPS), a debilitating condition ...

Facial Nerve Axotomy in Mice: A Model to Study Motoneuron Response to Injury

The goal of this surgical protocol is to expose the facial nerve, which innervates the facial musculature, at its exit from the stylomastoid foramen and either cut or crush it to induce peripheral nerve injury. Advantages of this surgery are its simplicity, high reproducibility, and the lack of effect on vital functions or mobility from the subsequent facial paralysis, thus resulting in a relatively mild surgical outcome compared to other nerve injury models. A major advantage of using a cranial nerve injury model is that the motoneurons reside in a relatively homogenous population in the facial motor nucleus in the pons, simplifying the study of the motoneuron cell bodies. Because of the symmetrical nature of facial nerve innervation and the lack of crosstalk between the facial motor nuclei, the operation can be performed unilaterally with the unaxotomized side serving as a paired internal control. A variety of analyses can be performed postoperatively to assess the physiologic response, details of which are beyond the scope of this article. For example, recovery of muscle function can serve as a behavioral marker for reinnervation, or the motoneurons can be quantified to measure cell survival. Additionally, the motoneurons can be accurately captured using laser microdissection for molecular analysis. Because the facial nerve axotomy is minimally invasive and well tolerated, it can be utilized on a wide variety of genetically modified mice. Also, this surgery model can be used to analyze the effectiveness of peripheral nerve injury treatments. Facial nerve injury provides a means for investigating not only motoneurons, but also the responses of the central and peripheral glial microenvironment, immune system, and target musculature. The facial nerve injury model is a widely accepted peripheral nerve injury model that serves as a powerful tool for studying nerve injury and regeneration.

We present a surgical protocol detailing how to perform a cut or crush axotomy on the facial nerve in the mouse. The facial nerve axotomy can be employed to study the physiological response to nerve injury and test therapeutic techniques.

마우스의 얼굴 신경 Axotomy : 부상으로 운동 신경 응답을 연구하는 모델

The goal of this surgical protocol is to expose the facial nerve, which innervates the facial musculature, at its exit from the stylomastoid foramen and ...

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The "Wire-Injury" Model

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. Moreover, by rupture of the defective vascular wall, atherosclerosis induces occlusive thrombus formation, which represents the main cause of myocardial infarction or stroke and the most frequent cause of death. Despite the advances in the cardiovascular field, many questions remain unanswered, and additional basic research is essential to improve our understanding of the molecular mechanisms during atherosclerosis and its effects. Due to limited clinical studies, there is a need for representative animal models recreating atherosclerotic conditions such as neointima formation after stent implantation, balloon angioplasty, or endarterectomy. Since the mouse presents many advantages and is the most frequently used model for studying molecular processes, the current study proposes an invasive procedure of endothelial denudation, also known as the wire-injury model, which is representative of the human condition of neointima formation in arteries after revascularization procedures.

Induction of Accelerated Atherosclerosis in Mice: The &quot;Wire-Injury&quot; Model

This study describes an invasive procedure for the induction of accelerated atherosclerosis in mice. In comparison to other methods using electric- or cryo-induced injury, mechanical-induced injury mimics the human condition of restenosis after revascularization therapies and is ideal for the study of the molecular mechanisms involved.

마우스에서 가속 죽상 경화증의 유도: "와이어 부상" 모델

Atherosclerosis is a proliferative fibro-inflammatory disease developing in the arterial wall, inducing a deficient blood flow or a lack of blood flow. ...

Technique of Minimally Invasive Transverse Aortic Constriction in Mice for Induction of Left Ventricular Hypertrophy

Transverse aortic constriction (TAC) in mice is one of the most commonly used surgical techniques for experimental investigation of pressure overload-induced left ventricular hypertrophy (LVH) and its progression to heart failure. In the majority of the reported investigations, this procedure is performed with intubation and ventilation of the animal which renders it demanding and time-consuming and adds to the surgical burden to the animal. The aim of this protocol is to describe a simplified technique of minimally invasive TAC without intubation and ventilation of mice. Critical steps of the technique are emphasized in order to achieve low mortality and high efficiency in inducing LVH.
Male C57BL/6 mice (10-week-old, 25-30 g, n=60) were anesthetized with a single intraperitoneal injection of a mixture of ketamine and xylazine. In a spontaneously breathing animal following a 3-4 mm upper partial sternotomy, a segment of 6/0 silk suture threaded through the eye of a ligation aid was passed under the aortic arch and tied over a blunted 27-gauge needle. Sham-operated animals underwent the same surgical preparation but without aortic constriction. The efficacy of the procedure in inducing LVH is attested by a significant increase in the heart/body weight ratio. This ratio is obtained at days 3, 7, 14 and 28 after surgery (n = 6 - 10 in each group and each time point). Using our technique, LVH is observed in TAC compared to sham animals from day 7 through day 28. Operative and late (over 28 days) mortalities are both very low at 1.7%.
In conclusion, our cost-effective technique of minimally invasive TAC in mice carries very low operative and post-operative mortalities and is highly efficient in inducing LVH. It simplifies the operative procedure and reduces the strain put on the animal. It can be easily performed by following the critical steps described in this protocol.

The aim of this protocol is to describe step-by-step the technique of minimally invasive transverse aortic constriction (TAC) in mice. By elimination of intubation and ventilation which are mandatory for the commonly used standard procedure, minimally invasive TAC simplifies the operative procedure and reduces the strain put on the animal.

왼쪽된 심 실 비 대의 유도 대 한 생쥐에서 최소 침 습 가로 대동맥 수축의 기술

Transverse aortic constriction (TAC) in mice is one of the most commonly used surgical techniques for experimental investigation of pressure ...

A Minimally Invasive Model to Analyze Endochondral Fracture Healing in Mice Under Standardized Biomechanical Conditions

Bone healing models are necessary to analyze the complex mechanisms of fracture healing to improve clinical fracture treatment. During the last decade, an increased use of mouse models in orthopedic research was noted, most probably because mouse models offer a large number of genetically-modified strains and special antibodies for the analysis of molecular mechanisms of fracture healing. To control the biomechanical conditions, well-characterized osteosynthesis techniques are mandatory, also in mice. Here, we report on the design and use of a closed bone healing model to stabilize femur fractures in mice. The intramedullary screw, made of medical-grade stainless steel, provides through fracture compression an axial and rotational stability compared to the mostly used simple intramedullary pins, which show a complete lack of axial and rotational stability. The stability achieved by the intramedullary screw allows the analysis of endochondral healing. A large amount of callus tissue, received after stabilization with the screw, offers ideal conditions to harvest tissue for biochemical and molecular analyses. A further advantage of the use of the screw is the fact that the screw can be inserted into the femur with a minimally invasive technique without inducing damage to the soft tissue. In conclusion, the screw is a unique implant that can ideally be used in closed fracture healing models offering standardized biomechanical conditions.

This protocol describes a minimally invasive osteosynthesis technique using an intramedullary screw for standardized stabilization of femur fractures, which can be used to analyze endochondral bone healing in mice.

Endochondral 골절 표준화 된 Biomechanical 조건 하에서 쥐에서 치유를 분석 하는 최소 침 습 모델

Bone healing models are necessary to analyze the complex mechanisms of fracture healing to improve clinical fracture treatment. During the last decade, an ...