Name: a protocol to infect caenorhabditis elegans with salmonella typhimurium
Uploaded: 2014-06-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 50 s
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우리는 원고의 비판적 읽기 박사 다이앤 Baronas - 로웰 감사합니다. 이 작품은 과학 씨 그랜트의 FAU 찰스 E. 슈미트 대학 KJ에 엘리슨 의료 재단에서 노화 장학금 지원

1. XLD (크 실리 톨 리신 데스 옥시 콜레이트) 한천 플레이트 XLD 한천 XLD 한천 플레이트에 검은 식민지로 나타납니다 살모넬라 균에 대한 선택 성장 매체입니다. 오염 될 우려가없는 경우에는, 정규 LB 플레이트가 치환 될 수있다. <ol><li> 5 ㎖의 탈 이온수에 5.5 g의 XLD 한천과에 resuspend를 달다. </li><li> 모든 한천 젖은 때까지 철저하게 섞는다. 모든 덩어리가 사라과 매체가 완전히 재현 탁 될 때까지 탈 이온수 95 ML을 추가합니다. </li><li> 완전히 (압력솥하지 않음) 용해 매체를 끓인다. </li><li> 50 ℃의 실온에서 매체를 냉각 </li><li> 각 95 x 15mm (직경 x 높이) 플레이트 (파라 필름으로 밀봉 플레이트가 1 달 동안 4 ° C에 저장할 수 있습니다)에 25 ㎖의 한천을 부어. </li></ol> 2. 선충류 성장 중간 (NGM)의 RNAi는 플레이트를 먹이는 C. 준비 엘레 NGM 플레이트는 이전에 설명 된 19. 다음 절차는 짧게 RNAi의 먹이 접시를 만들기 위해 NGM 미디어에 항생제 암피실린 및 RNAi의 화학 유도 이소 프로필 β-D-1-티오 갈 락토 피 라노 시드 (IPTG)를 추가 할 설명되어 있습니다. <ol><li> 3g의 NaCl 1 L 탈 이온수 2.5 g 박토 펩톤을 녹입니다. </li><li> 미디어에 17g의 박토 한천을 추가합니다. </li><li> 45 분 동안 미디어를 압력솥 수욕에서 50 ° C로 미디어를 냉각. </li><li> 1 ㎖ 콜레스테롤 (95 % 에탄올에 5 ㎎ / ㎖) 1 ㎖ 1 M 염화칼슘, 1 ㎖ 1 M 망초, 25 ㎖의 1 M 인산 칼륨 완충액 (pH 6.0) : 다음과 같은 솔루션을 추가합니다. 잘 섞는다. </li><li> 1 ㎖ 1 M IPTG 500 ㎕의 암피실린 (멸균 100 ㎎ / ㎖)를 추가합니다. </li><li> 잘 솔루션을 섞어 피펫 보조를 사용하여 멸균 절차에 따라 25 ㎖의 혈청 피펫 (60) X 15mm (직경 x 높이) 페트리 접시에 붓는다. 12 ML 한천 각 접시를 채우십시오. 플레이트는 최대 1 달 동안 4 ° C에 저장할 수 있습니다. </li></ol> autophagy에 필수적인 유전자는 BEC-1은 살모넬라 감염에 대한 방어의 숙주 유전자의 기능을 검사하는 예로서 사용된다. 실험 절차는도 1 및 표 1에 도시된다. 감염의 RNAi-처리 된 동물의 제조 프로토콜은 괄호 안에 각 실험 단계의 일로, 다음과 같다. <ol><li> BEC-1 RNAi의 먹이를 접종 및 100 ㎎ / ㎖ 암피실린 (1 일) 보충 2 ㎖ LB 배지에 -80 ° C 냉동 박테리아의 조각을 배치하여 빈 벡터 L4440 RNAi의 박테리아 먹이를 제어 할 수 있습니다. 신선한 RNAi의 세균을 가지고 전체 실험 기간 동안 일주일에 한 번이 단계를 반복합니다. 사용하지 않을 경우 4 ° C의 냉장고에 문화를 저장합니다. </li><li> RNAi의 접시에 하룻밤 RNAi의 세균 배양을 100 ㎖의 종자. 세 BEC-1 RNAi의 세 제어 빈 V를 준비RNAi의 판을 엑터. 37 ° C에서의 하룻밤 (2 일)에서 번호판을 품어. </li><li> 37 ° C의 배양기에서 RNAi의 플레이트를 제거하고 벤치에서 실온까지 냉각 할 수 있습니다. 잘 공급 L4 야생형 N2 자웅 동체를 들고 그들을의 RNAi-1 벡 빈 벡터 RNAi의 판을 제어하는 전송. 세중의 플레이트에 플레이트에 세 벌레를 놓습니다. 단계 3.2 (3 일)에 설명 된대로 같은 날, RNAi의 판을 준비합니다. </li><li> 3.3 단계에서 제조 된 신선한 해당 RNAi의 플레이트에 36-40 시간 및 전송 웜에 대한 20 ° C 배양기에서 벌레와 RNAi의 번호판을 품어. 웜이 전송 된 후, 64 시간 (4 일)에 20 °의 C 배양기에서 접시를 품어. </li></ol> 4. 감염 살모넬라 준비 <ol><li> 줄무늬 살모넬라 -80 ° C 냉동 1 XLD 한천 접시에 하룻밤 (5 일 37 ° C에서 접시를 품어 </st룽&gt;). </li><li> 잘 고립 된 검은 살모넬라 식민지를 선택하고 (6 일) 밤새 진탕 37 ° C에서 2 ㎖ LB 배지에 접종. </li><li> 1 C.에 씨 80 ㎖의 살모넬라 균 배양 물 엘레 60 X 15mm (직경 x 높이) NGM 한천 플레이트와 총 6 판을 준비합니다. 6 시간 동안 실온에서 번호판을 품어. 세균 배양 접시 (주 7)에 잔디를 건조 형성한다. </li></ol> 살모넬라 5.을 감염 RNAi의 처리 벌레 <ol><li> 이동 BEC-1 RNAi의 처리 및 살모넬라 판에 빈 벡터 RNAi의 처리 L4 N2의 자웅 동체 (3 단계에서 설정 벌레의 자손)을 제어 할 수 있습니다. 각 그룹에 대해 3 접시에 접시 당 40 벌레를 놓습니다. 48 시간 (주 7) 20 ° C에서 웜 번호판을 품어. </li><li> 단계 3.1 및 3.2 (일 7에 설명 된대로 신선한 RNAi의 접시의 한 세트를 준비하고 <stroNG&gt; 8 일). </li><li> 48 시간 감염 후, 단계 5.2에서 제조 된 해당 RNAi의 접시에 살모넬라 균에 감염된 웜을 전송하고 20 ° C (9 일)에 품어. </li></ol> 6. 생존 분석 <ol><li> 매일 벌레의 생존을 점수와 알을 낳는 시간 동안 신선한 해당 RNAi의 플레이트로 웜을 전송합니다. 단계 3.1 및 3.2에 설명 된대로 이전에 각 웜 전송에 신선한 RNAi의 접시 세트를 준비합니다. 부드럽게 끝 평평 백금 와이어 웜 몸 (머리, 중간 부분 및 꼬리)를 터치합니다. 웜 본체의 어떠한 움직임이 관찰되지 않은 경우 웜 죽은로서 획득된다. </li><li> 매일 웜 또는 매일의 생존을 점수와 벌레가 산란을 중단 한 후 일주일에 두 번 신선한 해당 RNAi의 플레이트로 웜을 전송합니다. </li><li> 모든 벌레가 죽은 후에, 하나의 데이터 세트로 세중 판에서 생존 데이터를 풀. 같은 그래프 패드 P 적절한 통계 소프트웨어에 각 그룹의 입력 생존 데이터생존 곡선을 생성하고 Kaplan-Meier 생존 분석을 수행 할 rism. 전체 실험의 결론을 확인하기 위해 한 번 이상 반복한다. </li></ol>

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저자는 더 경쟁 재정적 이익이 없다는 것을 선언합니다.

C. elegans의는 영양원으로 세균을 먹는 간단한 유전자 모델 생물이다. 따라서, C. 사이의 상호 작용을 조사하기 위해 장내 병원체 정상 세균 음식을 대체하기 쉽다 엘레 및 선택 병원체. 여기 프로토콜은 살모넬라 균 감염과 C를 결합하여 설명 엘레 RNAi의 살모넬라 균 감염에 대한 방어의 호스트 유전자의 역할을 조사하는 치료를 먹이. 이전 감염 프로토콜은 <...

독립 생활 토양 선충 Caenorhabditis의 엘레 많은 생물학적 질문을 연구하는 데 사용하는 간단하고 유 전적으로 다루기 쉬운 모델 생물이다. C. 엘레 지배적 자기 시비 자웅 동체로 존재합니다. 남성은 자발적으로 배우자 형성 1,2 동안 X 염색체의 비 분리에 의해 생성됩니다. 풍부한 음식, C.의 존재 엘레 지속적으로 성인 네 애벌레 단계를 통해 개발. 온도는 C.에 영향을 elegans의 개발; 빠른 개발은 높은 온도에서 관찰된다. 실험실에서, C. 엘레 음식 1,2 시드 박테리아 대장균 (주 OP50)와 한천 플레이트에서 20 ° C의 표준 온도에서 배양. 지난 10 년, C. 엘레 호스트 병원체 상호 작용 3-5을 연구하는 무척추 생물로 떠오르고있다. 자연에서, C. 엘레는 nutrien으로 박테리아를 먹는다T 소스, 2. 정상 세균 실험실 음식, OP50은 쉽게 C. 사이의 상호 작용을 조사하기 위해 다른 병원체로 치환 될 수있다 엘레 및 선택 병원체. 이러한 조건에서, 대장은 감염의 기본 사이트이다. 실제로, 세균성 병원체의 넓은 범위는 치명적 C. 감염을 보였다 엘레 3-5. 그람 음성 박테리아 살모넬라 균은 전 세계적으로 6,7 인간 식중독을 일으키는 위장 병원체이다. C. 이 박테리아가 복제 및 지속적인 장내 감염 8-10 전시로 엘레는 살모넬라 티피 뮤 리움 (Salmonella typhimurium)에 대한 좋은 모델 호스트입니다. C. 엘레 참신한 모두를 식별하는 데 사용되었으며, 이전에 공지 된 살모넬라 병원성 11 요인. 흥미롭게도, C. elegans의 면역 체계가 성공적으로 살모넬라 균의 복제를 제한합니다. 그것은 그 저해에게 이전에보고 된autophagy에 유전자의 ition는 C. 증가 살모넬라 복제를 렌더링 엘레 감염된 웜 (10)의 조기 사망의 결과. (여기에 autophagy라고 함) Macroautophagy이 저하 12 리소좀에 배달 세포질과 세포 기관을 격리시키는하기 위해 세포 내 세포막의 재 배열을 포함하는 역동적 인 과정이다. 에 autophagy는 C.에서 살모넬라 복제를 제한하기 위해보고되었다 엘레와 포유류 10, 13에. C. elegans의 게놈 염기 서열 첫 번째 다세포 진핵 생물의 게놈이었다; 이는 RNAi의 치료 14-16에 응답한다. 또한,이 RNAi의 RNAi의이 (16, 17)를 먹이로 알려진 표적 유전자의 이중 가닥 RNA를 포함하는 박테리아를 섭취하도록 웜을 실시함으로써 효과적으로 투여 될 수있다. 전체 게놈 RNAi의 먹이 라이브러리는 게놈 전체의 RNAi는 16, 18 심사에 대해 생성되었습니다. 여기서, 살모넬라 균 감염 프로프로토 콜은 RNAi의이 테스트 C. 허용하도록 먹이와 결합 살모넬라 균 감염으로부터 보호하기 위해 자신의 능력에 대한 관심 elegans의 유전자.

<table><tbody><tr><td>LB Broth</td><td>Fisher</td><td>BP9723-500</td><td></td></tr><tr><td>XLD agar</td><td>EMD Chemicals</td><td>1.05287.0500</td><td></td></tr><tr><td>Bacto Agar</td><td>Fisher</td><td>DF0140-01-0</td><td></td></tr><tr><td>Peptone</td><td>Fisher</td><td>BP1420-500</td><td></td></tr><tr><td>Sodium Chloride</td><td>Fisher</td><td>S671-500</td><td></td></tr><tr><td>Calcium Chloride</td><td>Fisher</td><td>C69-500</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium Sulfate</td><td>Fisher</td><td>M65-500</td><td></td></tr><tr><td>IPTG</td><td>Gold Biotechnology</td><td>12481C50</td><td></td></tr><tr><td>Cholesterol</td><td>Sigma</td><td>C8667-25G</td><td></td></tr><tr><td>Ampicillin</td><td>Fisher</td><td>BP1760-25</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Salmonella typhimurium&lt;/em&gt;</td><td>ATCC</td><td>ATCC14028</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dish 95 x 15 mm</td><td>Fisher</td><td>FB0875714G</td><td></td></tr><tr><td>Petri Dish 60 x 15 mm&amp;nbsp;</td><td>Fisher</td><td>08-757-13A</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Serological pipet</td><td>Fisher</td><td>13-668-2</td><td></td></tr><tr><td>Falcon Express Pipet-Aid</td><td>Fisher</td><td>13-675-42</td><td></td></tr><tr><td>MaxQ6000 shaking incubator&amp;nbsp;</td><td>Thermo Scientific</td><td>SHKE6000-7</td><td></td></tr><tr><td>Incubator</td><td>Percival</td><td>I-36DL</td><td></td></tr></tbody></table>

a protocol to infect caenorhabditis elegans with salmonella typhimurium

지난 10 년, C. 엘레은 그람 음성 박테리아 살모넬라 티피 뮤 리움 (Salmonella typhimurium)에 대한 숙주 방어를 포함하여, 호스트와 병원체 사이의 상호 작용을 연구하는 무척추 생물로 떠오르고있다. 살모넬라 균은 C.의 소장에서 지속적인 감염을 설정 엘레 감염된 동물의 조기 사망의 결과. 면역기구의 수는 C.에서 확인되었다 살모넬라 균 감염에 대해 방어하는 엘레. autophagy에, 진화 적으로 보존 된 리소좀의 분해 경로는 C에서 살모넬라 균의 복제를 제한하기 위해 표시되었습니다 엘레와 포유류. 여기서, 프로토콜은 C. 감염 설명 벌레가 인간의 살모넬라 균 감염과 유사한 제한된 시간에 대한 살모넬라 균에 노출 된 살모넬라 티피 뮤 리움 (Salmonella typhimurium)와 엘레. 살모넬라 균 감염은 크게 C.의 수명을 단축 엘레 &lt;/ EM&gt;. 예를 들어 필수 autophagy에 유전자 BEC-1을 사용하여, 우리는 C.으로이 감염 방법을 결합 엘레 RNAi의 접근법은 먹이와이 프로토콜은 C.의 기능을 검사하는 데 사용될 수 보였다 살모넬라 균 감염에 대한 방어 엘레 호스트 유전자. 이후 C. elegans의 전체 게놈 RNAi의 라이브러리를 사용할 수 있으며,이 프로토콜은 포괄적 C.에 대한 화면으로 가능하게한다 게놈 전체의 RNAi 라이브러리를 사용하여 살모넬라 균 등 장내 병원균에 대한 보호 elegans의 유전자.

20 ° C에서, 야생 형 N2 벌레의 평균 수명은. 살모넬라 균 감염이 크게 10.5 일 N2 웜의 평균 수명을 감소 십칠일 (그림 2A 및 표 2)는 (P = 0.0002, 로그 순위 검정) (그림 2A ). 만약 C. 엘레 유전자는 살모넬라 감염에 대한 방어에 중요한 역할을, 그것은 그것의 억제는 살모넬라 감염에 대한 감수성을 부여 할 것으로 예상된다. ?...

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A Protocol to Infect Caenorhabditis elegans with Salmonella typhimurium

C. elegans의 호스트 병원체 상호 작용을 연구 할 수있는 새로운 유전자 모델로 떠오르고있다. 여기에서 우리는 C. 감염 프로토콜을 설명 살모넬라 감염에 대한 방어의 숙주 유전자의 역할을 조사하는 이중 가닥의 RNAi 간섭 기법과 결합 된 살모넬라 티피 뮤 리움과의 elegans.

감염 프로토콜<em&gt; 예쁜 꼬마 선충</em&gt;와<em&gt; 살모넬라 티피 뮤 리움 (Salmonella typhimurium)</em

In the last decade, C. elegans has emerged as an invertebrate organism to study interactions between hosts and pathogens, including the host defense ...

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Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

A Protocol to Infect Caenorhabditis elegans with Salmonella typhimurium

11.5K 조회수.  Florida Atlantic University.  C. elegans의 호스트 병원체 상호 작용을 연구 할 수있는 새로운 유전자 모델로 떠오르고있다. 여기에서 우리는 C. 감염 프로토콜을 설명 살모넬라 감염에 대한 방어의 숙주 유전자의 역할을 조사하는 이중 가닥의 RNAi 간섭 기법과 결합 된 살모넬라 티피 뮤 리움과의 elegans. 

비디오: A Protocol to Infect Caenorhabditis elegans with Salmonella typhimurium

The Nematode Caenorhabditis Elegans - A Versatile In Vivo Model to Study Host-microbe Interactions

We demonstrate a method using Caenorhabditis elegans as a model host to study microbial interaction. Microbes are introduced via the diet making the intestine the primary location for disease. The nematode intestine structurally and functionally mimics mammalian intestines and is transparent making it amenable to microscopic study of colonization. Here we show that pathogens can cause disease and death. We are able to identify microbial mutants that show altered virulence. Its conserved innate response to biotic stresses makes C. elegans an excellent system to probe facets of host innate immune interactions. We show that hosts with mutations in the dual oxidase gene cannot produce reactive oxygen species and are unable to resist microbial insult. We further demonstrate the versatility of the presented survival assay by showing that it can be used to study the effects of inhibitors of microbial growth. This assay may also be used to discover fungal virulence factors as targets for the development of novel antifungal agents, as well as provide an opportunity to further uncover host-microbe interactions. The design of this assay lends itself well to high throughput whole-genome screens, while the ability to cryo-preserve worms for future use makes it a cost-effective and attractive whole animal model to study.

The Nematode Caenorhabditis Elegans - A Versatile In Vivo Model to Study Host-microbe Interactions

Here, we present the nematode Caenorhabditis elegans as a versatile host model to study microbial interaction.

선 충 꼬마 선 충-모델을 다양 한 비보에 호스트-미생물 상호작용 연구

We demonstrate a method using Caenorhabditis elegans as a model host to study microbial interaction. Microbes are introduced via the diet making the ...

연구

유전학

Automated Separation of C. elegans Variably Colonized by a Bacterial Pathogen

The wormsorter is an instrument analogous to a FACS machine that is used in studies of Caenorhabditis elegans, typically to sort worms based on expression of a fluorescent reporter. Here, we highlight an alternative usage of this instrument, for sorting worms according to their degree of colonization by a GFP-expressing pathogen. This new usage allowed us to address the relationship between colonization of the worm intestine and induction of immune responses. While C. elegans immune responses to different pathogens have been documented, it is still unknown what initiates them. The two main possibilities (which are not mutually exclusive) are recognition of pathogen-associated molecular patterns, and detection of damage caused by infection. To differentiate between the two possibilities, exposure to the pathogen must be dissociated from the damage it causes. The wormsorter enabled separation of worms that were extensively-colonized by the Gram-negative pathogen Pseudomonas aeruginosa, with the damage likely caused by pathogen load, from worms that were similarly exposed, but not, or marginally, colonized. These distinct populations were used to assess the relationship between pathogen load and the induction of transcriptional immune responses. The results suggest that the two are dissociated, supporting the possibility of pathogen recognition.

Automated Separation of C. elegans Variably Colonized by a Bacterial Pathogen

The wormsorter facilitates genetic screens in Caenorhabditis elegans by sorting worms according to expression of fluorescent reporters. Here, we describe a new usage:&#160;sorting according to colonization by a GFP-expressing pathogen, and we employ it to examine the poorly understood role of pathogen recognition in initiating immune responses.

의 자동 분리<em&gt; C. 엘레</em&gt; 가변 세균성 병원체에 의해 식민지

The wormsorter is an instrument analogous to a FACS machine that is used in studies of Caenorhabditis elegans, typically to sort worms based on expression ...

면역학 및 감염병학

High-throughput Assay to Phenotype Salmonella enterica Typhimurium Association, Invasion, and Replication in Macrophages

Salmonella species are zoonotic pathogens and leading causes of food borne illnesses in humans and livestock1. Understanding the mechanisms underlying Salmonella-host interactions are&#160;important to elucidate the molecular pathogenesis of Salmonella infection. The Gentamicin protection assay to phenotype Salmonella association, invasion and replication in phagocytic cells was adapted to allow high-throughput screening to define the roles of deletion mutants of Salmonella enterica serotype Typhimurium in host interactions using RAW 264.7 murine macrophages. Under this protocol, the variance in measurements is significantly reduced compared to the standard protocol, because wild-type and multiple mutant strains can be tested in the same culture dish and at the same time. The use of multichannel pipettes increases the throughput and enhances precision. Furthermore, concerns related to using less host cells per well in 96-well culture dish were addressed. Here, the protocol of the modified in vitro Salmonella invasion assay using phagocytic cells was successfully employed to phenotype 38 individual Salmonella deletion mutants for association, invasion and intracellular replication. The in vitro phenotypes are presented, some of which were subsequently confirmed to have in vivo phenotypes in an animal model. Thus, the modified, standardized assay to phenotype Salmonella association, invasion and replication in macrophages with high-throughput capacity could be utilized more broadly to study bacterial-host interactions.

High-throughput Assay to Phenotype Salmonella enterica Typhimurium Association, Invasion, and Replication in Macrophages

A high-throughput assay to in vitro phenotype Salmonella or other bacterial association, invasion, and replication in phagocytic cells with high-throughput capacity was developed. The method was employed to evaluate Salmonella gene knockout mutant strains for their involvements in host-pathogen interactions.

표현형 높은 처리량 분석<em&gt; 살모넬라 엔테</em&gt; 티피 뮤 리움 협회, 침략, 그리고 대 식세포에서의 복제

Salmonella species are zoonotic pathogens and leading causes of food borne illnesses in humans and livestock1. Understanding the mechanisms underlying ...

예쁜꼬마선충(Caenorhabditis elegans)의 식품 섭취량과 수명을 측정하기 위한 고처리량 분석

Quantifying Food Intake in Caenorhabditis elegans by Measuring Bacterial Clearance

Feeding is an essential biological process for an organism&#39;s growth, reproduction, and survival. This assay aims to measure the food intake of Caenorhabditis elegans&#160;(C. elegans), an important parameter when studying the genetics of aging or metabolism. In most species, feeding is determined by measuring the difference between the amount of food provided and the amount left after a given time interval. The method presented here uses the same strategy to determine the feeding of C. elegans. It measures the amount of bacteria, the food source of C. elegans, cleared within 72 h. This method uses 96-well microtiter plates and has allowed the screening of hundreds of drugs for their ability to modulate food intake at a speed and depth not possible in other animal models. The strength of this assay is that it allows to measure feeding and lifespan simultaneously and directly measures the disappearance of food and, thus, is based on the same principles used for other organisms, facilitating species-to-species comparison.

저자 스포트라이트: 지독성과 HFpEF의 관계 탐구 

This protocol describes an assay to quantify Caenorhabditis elegans feeding rate based on measuring the clearance of bacteria in liquid culture.

예쁜꼬마선충( Caenorhabditis elegans )의 음식 섭취량을 세균 청소율 측정으로 정량화

Feeding is an essential biological process for an organism&#39;s growth, reproduction, and survival. This assay aims to measure the food intake of ...

행동분석학

Using the Protozoan Paramecium caudatum as a Vehicle for Food-borne Infections in Zebrafish Larvae

Due to their transparency, genetic tractability, and ease of maintenance, zebrafish (Danio rerio) have become a widely-used vertebrate model for infectious diseases. Larval zebrafish naturally prey on the unicellular protozoan Paramecium caudatum. This protocol describes the use of P. caudatum as a vehicle for food-borne infection in larval zebrafish. P. caudatum internalize a wide range of bacteria and bacterial cells remain viable for several hours. Zebrafish then prey on P. caudatum, the bacterial load is released in the foregut upon digestion of the paramecium&#160;vehicle, and the bacteria colonize the intestinal tract. The protocol includes a detailed description of paramecia maintenance, loading with bacteria, determination of bacterial degradation and dose, as well as infection of zebrafish by feeding with paramecia. The advantage of using this method of food-borne infection is that it closely mimics the mode of infection observed in human disease, leads to more robust colonization compared to immersion protocols, and allows the study of a wide range of pathogens. Food-borne infection in the zebrafish model can be used to investigate bacterial gene expression within the host, host-pathogen interactions, and hallmarks of pathogenicity including bacterial burden, localization, dissemination and morbidity.

Using the Protozoan Paramecium caudatum as a Vehicle for Food-borne Infections in Zebrafish Larvae

Zebrafish (Danio rerio) are becoming a widely-used vertebrate animal model for microbial colonization and pathogenesis. This protocol describes the use of the protozoan Paramecium caudatum as a vehicle for food-borne infection in zebrafish larvae. P. caudatum readily internalizes bacteria and get taken up by larval zebrafish through natural preying behavior.

Zebrafish 애벌레에 음식 감염에 대 한 차량으로 Protozoan Paramecium caudatum 를 사용 하 여

Due to their transparency, genetic tractability, and ease of maintenance, zebrafish (Danio rerio) have become a widely-used vertebrate model for ...

Chronic Salmonella Infection Induced Intestinal Fibrosis

Tissue fibrosis characterized by the pathological accumulation of extracellular matrix such as collagen is the outcome of persistent inflammation and dysregulated repair. In inflammatory bowel disease (IBD), fibrosis leads to recurrent stricture formations for which there is no effective therapy other than surgical resection. Due to its late onset, the processes that drive fibrosis is less studied and largely unknown. Therefore, fibrotic complications represent a major challenge in IBD. In this protocol, a robust in vivo model of intestinal fibrosis is described where streptomycin pre-treatment of C57Bl/6 mice followed by oral gavage with vaccine grade Salmonella Typhimurium &#916;AroA mutant leads to persistent pathogen colonization and fibrosis of the cecum. Methodologies for preparing S. Typhimurium &#916;AroA for inoculation, quantifying pathogen loads in the cecum and spleen, and evaluating collagen deposition in intestinal tissues are explained. This experimental disease model is useful for examining host factors that either enhance or exacerbate CD-like intestinal fibrosis.

This protocol describes a mouse model of Salmonella driven intestinal fibrosis that resembles key pathological hallmarks of Crohn&#8217;s disease including transmural inflammation and fibrosis. This method can be used to evaluate host factors that alter fibrotic outcomes using mutant mice maintained on a C57Bl/6 genetic background.

만성 살모넬라 감염 유도 장 섬유증

Tissue fibrosis characterized by the pathological accumulation of extracellular matrix such as collagen is the outcome of persistent inflammation and ...

Studying Inherited Immunity in a Caenorhabditis elegans Model of Microsporidia Infection

Inherited immunity describes how some animals can pass on the "memory" of a previous infection to their offspring. This can boost pathogen resistance in their progeny and promote survival. While inherited immunity has been reported in many invertebrates, the mechanisms underlying this epigenetic phenomenon are largely unknown. The infection of Caenorhabditis elegans by the natural microsporidian pathogen Nematocida parisii results in the worms producing offspring that are robustly resistant to microsporidia. The present protocol describes the study of intergenerational immunity in the simple and genetically tractable N. parisii -C. elegans infection model. The current article describes methods for infecting C. elegans and generating immune-primed offspring. Methods are also given for assaying resistance to microsporidia infection by staining for microsporidia and visualizing infection by microscopy. In particular, inherited immunity prevents host cell invasion by microsporidia, and fluorescence in situ hybridization (FISH) can be used to quantify invasion events. The relative amount of microsporidia spores produced in the immune-primed offspring can be quantified by staining the spores with a chitin-binding dye. To date, these methods have shed light on the kinetics and pathogen specificity of inherited immunity, as well as the molecular mechanisms underlying it. These techniques, alongside the extensive tools available for C. elegans research, will enable important discoveries in the field of inherited immunity.

Studying Inherited Immunity in a Caenorhabditis elegans Model of Microsporidia Infection

The infection of Caenorhabditis elegans by the microsporidian parasite Nematocida parisii enables the worms to produce offspring that are highly resistant to the same pathogen. This is an example of inherited immunity, a poorly understood epigenetic phenomenon. The present protocol describes the study of inherited immunity in a genetically tractable worm&#160;model.

Caenorhabditis elegans Model of Microsporidia Infection에서 유전 된 면역 연구

Inherited immunity describes how some animals can pass on the "memory" of a previous infection to their offspring. This can boost pathogen resistance in ...

Characterizing Salmonella Typhimurium-induced Septic Peritonitis in Mice

Sepsis is a dysregulated host immune response to microbial invasion or tissue damage, leading to organ injury at a site distant from that of the infection or damage. Currently, the widely used mice models of sepsis include lipopolysaccharide (LPS)-induced endotoxemia, cecal ligation and puncture (CLP), and monobacterial infection model systems. This protocol describes a method to study the host responses during Salmonella Typhimurium infection-induced septic peritonitis in mice. S. Typhimurium, a Gram-negative intracellular pathogen, causes typhoid-like disease in mice.
This protocol elaborates the culture preparation, induction of septic peritonitis in mice through intraperitoneal injection, and methods to study systemic host responses. Furthermore, the assessment of bacterial burden in different organs and the flow cytometric analysis of increased neutrophil numbers in the peritoneal lavage is presented. Salmonella Typhimurium-induced sepsis in mice leads to an increase in proinflammatory cytokines and rapid infiltration of neutrophils in the peritoneal cavity, leading to lower survival.
Every step in this protocol has been optimized, resulting in high reproducibility of the pathogenesis of septic peritonitis. This model is useful for studying immunological responses during bacterial sepsis, the roles of different genes in disease progression, and the effects of drugs to attenuate sepsis.

Characterizing Salmonella Typhimurium-induced Septic Peritonitis in Mice

This protocol describes the induction of Gram-negative monobacterial sepsis in a mouse model system. The model is useful in investigating the inflammatory and lethal host responses during sepsis.

살모넬라 티피뮤리움-유도된 마우스의 패혈성 복막염의 특징

Sepsis is a dysregulated host immune response to microbial invasion or tissue damage, leading to organ injury at a site distant from that of the infection ...

감염 프로토콜

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선 충 꼬마 선 충-모델을 다양 한 비보에 호스트-미생물 상호작용 연구

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예쁜꼬마선충( Caenorhabditis elegans )의 음식 섭취량을 세균 청소율 측정으로 정량화

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Zebrafish 애벌레에 음식 감염에 대 한 차량으로 Protozoan Paramecium caudatum 를 사용 하 여

만성 살모넬라 감염 유도 장 섬유증

Caenorhabditis elegans Model of Microsporidia Infection에서 유전 된 면역 연구

살모넬라 티피뮤리움-유도된 마우스의 패혈성 복막염의 특징