저자는 기술 지원에 대 한 부인 Paulette 멕 케 나 및 비서 지원에 대 한이 연구에서 리사 Pezzino 씨 필 Auerbach을 감사합니다. 저자는 또한 우리 체 외에서 고립 된 머리 준비를 도입에 대 한 박사 마이클 아리엘과 마이클 S. 존스 (세인트 루이스 대학의 학부) 감사 합니다. 이 협력의 지원에 대 한 자금 학과 생물학 (로버트 S. 체이스 펀드), 학술 연구 위원회 그리고 라파예트 대학 신경 과학 프로그램에 의해 제공 했다. 마지막으로,이 작품은에 전념 씨 필 Auerbach, 28 9 월 2016; 돌아가 그는 스캐닝 전자 현미경을 해제 하 고이 프로토콜에 사용 하기 위해 그것의 5 축 단계의 유용성을 인식. 그의 우정과 지 략 크게 그리울 것 이다.

참고: 빨간 귀 슬라이더 거북, 둘 다 남성과 여성, 공급 업체 로부터 구입 했다. 거북이 따뜻한 동물 제품군 250 W 적외선 조명 아래 sunning 벽돌 제도 완비 두 60 갤런 통에에서 보관 되어 있었다. 환경 물 온도 22 ° c.에 14/10-h 명암 주기 유지 되었다 조명 오전 6시 켜져 있었고 오후 8시. 필터링 시스템 갖춘 탱크 매주 청소 했다 그리고 거북이 매일 광고 libitum 지 루 했다. 빨간 귀 슬라이더의 거북 그리고 다음 실험 절차 설명된 여기32,33 의 모든 기관 동물 관리 및 사용 위원회 (IACUC) 라파예트 대학에 의해 승인 했다.
1. 장비 설치
<ol><li>터틀 벨의 솔루션을 준비 합니다. 이 순서 대로 증류수에 다음을 추가: 염화 나트륨 96.5 m m (58.44 g/mol), 2.6 m m (74.56 g/mol), 염화 칼륨 염화 마그네슘 2.0 m m (203.31 g/mol), 나트륨 중 탄산염 31.5 m m (84.01 g/mol), 포도 당 20.0 mM (180.16 g/mol), 집중 7.51, 및 염화 칼슘 4.0 m m (110.98 g/mol)에 pH를 조정 하는 염 산 ( 재료의 표참조). 각 솔트를 추가 하는 동안 솔루션을 믹스. 주의: 집중된 HCl은 위험한 (피부, 눈, 흡입 및 섭취 위험).</li>
	<li>5 cm 긴 모 세관에서 흡입 전극에 대 한 팁을 확인 하기 위해 다양 한 두께의 두개골 신경 내부 직경의 다른 크기에 화재 연마 하 여 ( 재료의 표참조)을 유리.<ol>
<li>작은 파일을 사용 하 여 모 세관 유리의 조각에 걸쳐 선 엣지. 티슈 페이퍼에 놓고 반으로 휴식.</li>
		<li>롤 천천히 분 젠 버너의 불꽃으로 유리 모 세관의 끝 중 하나를. 크기, 부드럽게, 그리고는 해 부를 사용 하 여 대칭에 대 한 팁을 주기적으로 검사 범위와 섬유 광섬유 빛 소스 ( 재료의 표참조). 참고: 20 그리고 30 밀리미터 사이 머리 폭 거북이, 최적의 피팅 내경 크기 일반적으로 0.4 oculomotor 신경 (nIII), 0.8 m m에 이르기까지 trochlear 신경 (nIV), 0.3에서 0.6 m m와 0.2에서 0.4 m m abducens 신경 (nVI)에 대 한.</li>
	</ol>
</li>
	<li>깨끗 하 고 정리 Rongeurs, 무딘 해 부 조사, microscissors, 괜 찮 아 요 집게, 곡선된 겸 자, 그리고 메스 핸들 블레이드 ( 재료의 표참조) 해 부. 참고: 살 균 계기의 선택 사항입니다.</li>
</ol>2. 마 취와 안락사
<ol><li>장소는 얼음에 거북이 양동이 cryoanesthetize 60 분 그것.</li>
	<li>잘린 작은 동물 단두대를 사용 하 여 거북이 안락사 ( 재료의 표참조).<ol>
<li>부드럽게 놀 리 려는 동물의 턱 작은 무게 주걱으로 후크를 삽입 하 고 위 턱의 끝 아래에 맞게 설정 수 있습니다.</li>
		<li>단두대를 통해 동물의 머리를 연장 하는 꾸준한 압력 당겨. 신속 하 게 동물을 목을 벨.</li>
	</ol>
</li>
	<li>거북이 머리를 해 부 접시에 놓습니다. 한편 관개 조직에 충분 한 거북이 벨의 해결책이. Oxygenize 95/5 O2/CO2 솔루션 ( 재료의 표참조).</li>
	<li>얼음 접시의 외부 주위에 배치 하 여 4 ° C에서 조직을 유지 합니다.</li>
</ol>3입니다. 해 부
<ol><li>섬유 광섬유 광원 절 개 범위를 사용 하 여 해 부를 수행.</li>
	<li>아래 턱을 제거 합니다. 머리의 쉽게 처리를 제공할 것 입 통해 무딘 해 부 프로브를 배치 합니다. 메스와 두개골에 dentary 뼈 연결 관절을 잘라. 아래 턱은 두개골에서 뽑아 rongeurs를 사용 합니다. Rongeurs를 사용 하 여 두개골의 등 쪽과 측면 지역에서 피부와 근육이 그들의 첨부 파일에서 해 내.</li>
	<li>척추 열을 제거 합니다.<ol>
<li>두개골의 꼬리 끝에 척추 열을 식별 합니다. 척수를 ventrally 척추 열을 구 부. Microscissors를 사용 하 여 척수를 싹 둑. Rongeurs를 사용 하 여 caudally 당겨는 두개골에서 다른 조직과 척추 열을 제거 하.</li>
	</ol>
</li>
	<li>두개골 신경 절단 후는 두개골에서 뇌를 제거 합니다.<ol>
<li>구멍 매그넘에서 시작, 등 두개골에 두 개의 절 개를 잘라 rongeurs를 사용해. 상처 표면 아래 뇌의 손상을 방지 하려면 확인 합니다.</li>
		<li>Rongeurs를 사용 하 여 조심 스럽게 등 두개골 해 내. Microscissors를 사용 하 여 두뇌의 나머지 부분을 노출 meninx 제거. 후 각 전구 앞쪽 두개골 구멍에서 확인할 수 있습니다 때까지 충분 한 meninx 제거 ( 그림 1A참조). 터틀 벨의 솔루션을 필요에 따라 뇌를 관개를 계속 합니다.</li>
		<li>굽은 집게를 사용 하 여 부드럽게 뇌 caudally 고 두개골 신경에 약간의 긴장을 생산. 신중 하 게 멀리 잘라 고 곡선된 겸 자와 후 각 전구 및 뇌를 제거 합니다.</li>
		<li>Microscissors를 사용 하 여 부드럽게 midbrain 두개골 신경; 폭로 중간 선 쪽으로 밀어 nIII, 약 0.6 m m, 이니라, 앞에서 볼 수 있다 그리고 직경 이니라의 약간 nIII 보다는 더 적은 있을 것입니다. 그들은 midbrain 연결할 이니라 nIII을 잘라 ( 그림 1B를 참조). 다른 측면에서이 반복 합니다.</li>
		<li>왼쪽 및 오른쪽 시 신경 (nII)와 microscissors 잘라. 그런 다음 한쪽 brainstem 기울기. NVI는 폰 스 및 모 수의 교차점 근처 복 부 표면에서 신흥 관찰 ( 그림 1C참조). nVI의 직경은 작은 고 약 0.3 m m. 잘라내기 모두 왼쪽과 오른쪽 nVI.</li>
		<li>좋은 집게와 microscissors 거북이에서 brainstem의 나머지 부분을 제거 합니다. 일단은 두개골에 두개골 구멍 바닥을 검사 합니다. NIII, nIV, 및 nVI를 식별 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>위와 더 낮은 눈-뚜껑 미세 집게와 microscissors를 제거 합니다.</li>
</ol>4입니다. 눈 움직임의 교정
<ol><li>딱딱한 테이블을 사용 하 여 ( 재료의 표참조)는 짐 벌 및 다른 계기의 배치를 지원 하기 위해. 머리의 등 쪽 표면 두개골에 걸쳐 작은 거품 수준 휴식을 사용 하 여 수평선에 평행 되도록 짐 벌 척으로 거북이 머리를 놓습니다. 대략 눈 중 하나을 짐 벌의 수평 및 수직 회전의 중심에 위치.</li>
	<li>적외선 카메라는 적외선 발광 다이오드 (LED), 비디오 기반 눈 추적 시스템의 일부인 장착 장소 ( 테이블의 자료를 참조), 거북의 눈에서 약 12 cm의 보기 거리에.<ol>
<li>카메라 눈의 시력의 라인 위에 45도 각도. 카메라 렌즈를 보면 LED 11 시 위치에 있어야 합니다. 눈의 광 축 센터 LED. 카메라는 (로 눈 위에서 본) 축에서 약간 있을 것입니다.</li>
		<li>안구에 의해 극대로 채워진 카메라 보기는 눈에서 카메라의 거리를 조정 합니다. 가로 보기의 가장자리에 눈 (canthi)의 모서리를 확인 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>추적 데이터를 처리 하는 시스템 비디오 기반 눈에 카메라를 연결 합니다. 원시 비디오를 캡처할 DVD 레코더에 신호를 분할. 눈의 깨끗 한 이미지를 카메라의 초점을 맞춥니다. 벌금-위치 (x, y, z) 선형 조정의 3도 사용 하 여 카메라 보기의 중심에 아이 짐 벌 제공 주의.</li>
	<li>임계값 및 비디오 기반 눈 추적 시스템으로 제공 하는 프로그램을 사용 하 여 적절 하 게 대비를 설정 하 여 어두운 눈동자를 감지 합니다.<ol>
<li>마우스를 사용 하 여 "비디오" 메뉴에서 클릭 하 고 "모드"에서 "높은 정밀도" 30 Hz (640 픽셀 x 480 라인의 해상도)의 샘플링 레이트에서 이미지를 선택. 또한 "비디오"에서 "학생 세분화 하는 방법"에 대 한 "눈동자 유형" 및 "타원 (회전된 타원)"에 대 한 "어두운 눈동자"를 선택 합니다.</li>
		<li>"EyeCamera" 창에서 "학생 검색 영역 조정" 아이콘 (가운데에 점이 작은 수직 사각형)를 클릭 합니다. 눈동자 주위 영역을 제한 하는 사각형 밖으로 드래그 하는 마우스를 사용 합니다. 눈동자와 혼동 될 수 있는 어두운 부분을 하지 마십시오.</li>
		<li>"컨트롤" 창에서 "자동 이미지"와 "긍정적인 잠금 임계값-추적" 상자 검사 됩니다 확인 합니다. "자동-임계값" 스캔의 밀도 최적화 하는 어두운 눈동자 녹색 점으로 표시 됩니다를 클릭 하십시오.</li>
	</ol>
</li>
	<li>비디오 기반 눈 추적 프로그램 짐 벌 (+) 12.5 °의 회전을 수평 축을 중심 수직 축 중심 (+) 10 °의 비디오 디스플레이 보정.<ol>
<li>"컨트롤" 창에서 "디스플레이"를 클릭 합니다. "시선", "Calib 지역", 및 "기 표"에 대 한 "시선" 및 "Stim" 확인란. "기 표" 아래의 박스를 체크 후 창이 팝업 되며 말, "자극 디스플레이 형상을 해야 합니다 측정 전에 형상 그리드 표시 될 수 있습니다. 하 시겠습니까 지금 이렇게 "? 대 한 예 "Y"를 선택 합니다.</li>
		<li>마우스를 사용 하 여 "창" 메뉴에서 클릭 하 고 "자극"을 선택 합니다. "자극" 창이 디스플레이의 중심에 수직 및 수평 교차점을 보여주는 열립니다. "자극" 윈도우를 종료 하려면 키보드에 가까운 m m. 보도 "Esc" 라인의 길이 측정 합니다.</li>
		<li>마우스를 사용 하 여 "자극" 메뉴에서 클릭 하 고 "형상을 설치"를 선택 합니다. 그냥 측정 하는 줄의 길이 입력 합니다. 도/라인 25 ° 수평 라인 및 20 ° 수직 라인에 대 한 동등한 시 거리를 조정 합니다. "저장" 버튼 클릭 하 고 창을 닫습니다.</li>
		<li>"EyeSpace" 창에서 교정 "9"를 "데이터 요소"로 선택 합니다. 거북이 눈 중앙에 위치, 클릭 센터 데이터 가리키고 "다시 제시" 버튼을 클릭 합니다. 참고: "자극" 창이 나타납니다, 그리고 "준비" 화면 중앙에 표시 됩니다. 상자 중심 위치에 표시 되며 다음 사라집니다. 그것의 실종에 "자극" 창이 닫힙니다. 센터 위치 이제 보정 한다.</li>
		<li>수평 유지 장치가 문제인 오른쪽/왼쪽, 12.5 ° /-12.5 °, 회전 및 업/다운 + 10 ° /-10 ° 나머지 데이터 요소를 보정 하는 절차를 반복 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>비틀림 회전 보정, 피팅 알고리즘 프로그램 추적 비디오 기반 아이 함께 제공 된 템플릿을 사용 합니다. 알고리즘의 표시에 따라 제로 위치를 설정 하 고 표시는 눈동자의 중심에서 상쇄 될 때 회전의 각도 계산.<ol>
<li>마우스 포인터를 사용 하 여 "창" 메뉴에서 클릭 하 고 "염력"를 선택 합니다. "염력" 창에서 "시작" 버튼을 클릭 합니다. "EyeCamera" 창 호 눈의 이미지 위에 나타납니다.</li>
		<li>반경, 각도, 그리고 불규칙 한 표 하기는 조리개에 존재 하는 위치에 있는 슬라이더를 사용 하 여 아크의 길이 조정 합니다. "실시간 그래픽"과 "후 자동 설정 조정"에 대 한 확인란을 선택. 필요한 경우 밝기를 조정 하 고 컨트롤 창에 다시 임계값 어두운 눈동자 대조 (4 단계 참조). "설정 서식 파일" 버튼을 클릭 합니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>눈동자와 같은 초점 평면에 통치자를 놓고 전체 카메라 보기의 너비를 기록 합니다. 눈동자의 실제 너비를 결정 하는 값 나중 사용 됩니다.</li>
</ol>5. 안구의 움직임을 연상 두개골 신경에 흡입 전극의 위치
<ol><li>신중 하 게 머리에 남아 있는 결합 또는 근육 조직으로 핀 참조 전극 장소.</li>
	<li>흡입 전극 배치 ( 재료의 표참조) 두개골 신경에 호황에 탑재 micromanipulator 및 절 개 범위를 사용 하 여. 섬유 광섬유 광원을 사용 하 여 확인 하 고 위치 안내.<ol>
<li>유리 모 세관 팁에 신경의 크기와 일치. 시행 착오는 최적 신경의 직경 주위를 얻기 위해 필요한 (크기 권장 사항에 대 한 1.2 단계 참조). 흡입 전극에 유리 팁을 놓습니다. 흡입 전극 벨의 솔루션 작성 및 약 주사기 내 볼륨을 조정 용량의 절반.</li>
		<li>신중 하 게 선택 된 신경의 절단 끝 위에 위치 하는 micromanipulator를 사용 하 여 전극의 유리 팁을 이동 합니다. 벨의 솔루션 채우고는 두개골 표면 아래 팁은 확인 합니다. 필요한 경우 모델링 점토를 사용 하 여 위치 벨의 솔루션은 두개골 밖으로 새는 댐.</li>
		<li>다시 주사기의 플런저를 당겨. 참고: 진공 모 세관 팁의 끝에 신경을 그릴 것입니다. 잘 맞는 거의 비슷하게 추가 진공 적용 팁 내 남아 있는 신경으로 표시 됩니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>6. 자극의 두개골 신경 및 눈 운동의 분석
<ol><li>범용 신경/근육 자극 기를 사용 하 여 현재 격리 장치 ( 재료의 표참조) 흡입 전극을 통해 뇌신경을 자극 하.<ol>
<li>흡입 전극 케이블을 사용 하 여 현재 격리 장치에 연결 합니다. 절연 장치의 접지 연결에 핀 참조 전극에서 리드를 연결 합니다.</li>
		<li>선택 매개 변수는 다이얼을 사용 하 여 전류 자극 기 및 절연 장치에 전환 하 고. 1에서 100 µ A 전류 범위를 사용 하 여 10 400 Hz. 1 또는 2 ms 사용 열차 100, 500 또는 1000 ms 지속에 펄스의 주파수.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Stimulations의 타이밍을 기록 합니다. 참고: 트랜지스터-트랜지스터 논리 (TTL) 펄스는 자극에서 해류의 배달와 동기화와 통신 케이블 비디오 기반 눈 추적 시스템의 입력된 채널을 통해 실시간으로. 비디오 기반 안구 추적 프로그램 제어 통신 소프트웨어 모듈 제공.<ol>
<li>현재 응용 프로그램 및 눈 움직임에 그들 영향의 타이밍을 시각화 하려면 "PenPlots" 메뉴를 클릭 합니다. 선택 "X 시선 위치", "Y 시선 위치", "염력"와 "눈동자 너비" X 및 Y 위치, 비틀림, 및 학생 폭을 눈에 대 한 실시간으로 원시 데이터 플롯을 표시. 또한 타이밍 음모 1 s 간격에 표시 되는 눈금 표시를 표시 하려면 "PenPlots" 메뉴에서 "초 & 마커"를 선택 합니다. 참고: 대문자 "T" TTL 펄스, 동시에 발생 하는 현재 응용 프로그램의 개시를 표시 나타납니다.</li>
		<li>전류에 의해 갖는 눈 움직임의 데이터를 저장 하려면 "파일" 메뉴에서 클릭 하 고 "데이터" 아래 "새 데이터 파일"을 선택 합니다. 파일 이름을 입력 하 고 "Enter" 키를 누릅니다. 저장 데이터는 일시 중지 될 수 있습니다 하 고 키 명령, "Ctrl" + "p"의 조합을 사용 하 여 다시 시작. 실험적인 세션이 완료 되 면 "데이터" 아래에서 "파일" 메뉴에서 "닫기 데이터 파일"을 선택 합니다.</li>
		<li>적용의 종류의 추적을 유지 하기 위해, "창" 메뉴에서 클릭 하 고 "데이터 패드"를 선택 합니다. "키패드/DataMarker" 창이 나타납니다. 편지 또는 신경에 전달 되 고 현재 stimulations의 매개 변수를 식별 하는 번호를 클릭 하십시오. 참고: 예를 들어, "X" 수 서 10 µ A. 클릭 "X"에 특별 게시물 분석을 위한 실시간으로 데이터 파일에 항목을 저장. 그것은 지속적인 관찰에 대 한 "초 & 마커"에 대 한 "PenPlot"에 나타납니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>눈 추적 시스템에서 데이터를 분석 합니다.<ol>
<li>데이터를 정리 하 고 통계 분석을 수행 하는 선택의 스프레드 시트 프로그램으로 구분 된 텍스트 형식에 있는 저장 된 데이터 파일을 엽니다.<ol>
<li>Mm에서 실제 크기를 파일에 저장 된 눈동자 너비 값을 변환 합니다.</li>
			<li>X의 값을 변환 및 Y 위치와 정도의 단위에 torsions 눈 및 눈 움직임;을 설명 하기 위한 규칙을 사용 하 여 따라서, 회전의 긍정적인 방향: intorsion, 고도, 고 예증; 그리고 부정적인 회전의 방향: extorsion, 우울증, 그리고 납치.</li>
		</ol>
</li>
		<li>헤더 정보를 새 워크시트에 복사 합니다. 이 화면 크기 (폭 및 높이)와 시 거리에 대 한 값을 포함 됩니다. 30 Hz의 속도로 수집 된 데이터의 8 열 머리글 정보 아래 따를 것 이다.</li>
		<li>다시 원시 데이터가 포함 된 워크시트를 이동 합니다. "T", 현재 자극의 시작을 표시의 찾기 발생률 자극 10 µ A. 적용 된 찾을 "마커" 라는 마지막 열에 "X"에 대 한 "찾기"를 할. 15 행 복사 (0.5 s) 후에 "T" "T"와 90 프레임 전에 발생 하는 데이터 (3.0 s); 즉, 3.5 s 총입니다. 머리글 정보 아래 새 워크시트에 데이터를 붙여 넣습니다.</li>
		<li>"PupilWidth" 다음 빈 열을 삽입 합니다. 빈 열에서 mm에서 보정된 치수 변환: 수평 눈동자 직경 = "PupilWidth" × 카메라 보기 폭의 치수</li>
		<li>"X_Gaze"와 "Y_Gaze" 다음 2 빈 열을 삽입 합니다. 위치 보기 스크린의 크기를 표준화: 좌표 (0, 0) 상단에 왼쪽에 화면 확장 (1, 1) 오른쪽 하단에. 첫 번째 빈 열에 데 좌표계 위치 변환 (0, 0)는 스크린의 센터에서. 스크린의 크기를 변환 m m에 포함: X = (0.5 × 폭)-("X_Gaze" × 폭); Y = (0.5 × 높이)-("Y_Gaze" × 높이) 참고: 왼쪽된 눈에 대 한 작업의 시퀀스가입니다. 순서는 오른쪽 눈에 대 한 납치에 대 한 부정과 예증에 대 한 양성의 규칙에 따라 위해 되돌릴 수 필요 합니다.</li>
		<li>두 번째 열에서 삼각 함수를 사용 하 여 회전의 각도 (°)로 변환: 수평 회전 = arctan (X/viewing 거리); 수직 회전 = arctan (Y/viewing 거리)</li>
		<li>비틀림 각도의 단위로 이미 표시 됩니다 하지만 왼쪽된 눈에 이루어집니다 측정 하는 경우에 intorsion에 대 한 양성의 규칙을 준수, 곱합니다-1. 오른쪽 눈에 대 한 아무 곱셈은 필요 합니다. 프로그램 코드 긍정적으로 시계 방향으로 회전 합니다.</li>
		<li>시간의 기능으로 눈동자 직경 및 회전을 플롯 합니다.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Kikillus, K. H., Hare, K. M., Hartley, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Minimizing+false-negatives+when+predicting+the+potential+distribution+of+an+invasive+species:+A+bioclimatic+envelope+for+the+red-eared+slider+at+global+and+regional+scales.">Minimizing false-negatives when predicting the potential distribution of an invasive species: A bioclimatic envelope for the red-eared slider at global and regional scales.</a> Anim Conserv. 13, 5-15 (2010).</li><li>Lutz, P. L., Rosenthal, M., Sick, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Living+without+oxygen:+turtle+brain+as+a+model+of+anaerobic+metabolism.">Living without oxygen: turtle brain as a model of anaerobic metabolism.</a> Mol Physiol. 8, 411-425 (1985).</li><li>Lutz, P. L., Milton, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Negotiating+brain+anoxia+survival+in+the+turtle.">Negotiating brain anoxia survival in the turtle.</a> J Exp Biol. 207, 3141-3147 (2004).</li><li>Storey, K. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anoxia+tolerance+in+turtles:+Metabolic+regulation+and+gene+expression.">Anoxia tolerance in turtles: Metabolic regulation and gene expression.</a> Comp Biochem Physiol A-Mol Integr Physiol. 147 (2), 263-276 (2007).</li><li>Granda, A. M., Dearworth, J. R., Subramaniam, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Balanced+interactions+in+ganglion-cell+receptive+fields.">Balanced interactions in ganglion-cell receptive fields.</a> Vis Neurosci. 16, 319-332 (1999).</li><li>Dearworth, J. R., Granda, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiplied+functions+unify+shapes+of+ganglion-cell+receptive+fields+in+retina+of+turtle.">Multiplied functions unify shapes of ganglion-cell receptive fields in retina of turtle.</a> J Vis. 2 (3), 204-217 (2002).</li><li>Nesbit, S. C., Van Hoof, A. G., Le, C. C., Dearworth Jr, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extracellular+recording+of+light+responses+from+optic+nerve+fibers+and+the+caudal+photoreceptor+in+the+crayfish.">Extracellular recording of light responses from optic nerve fibers and the caudal photoreceptor in the crayfish.</a> J Undergrad Neurosci Educ. 14 (1), A29-A38 (2015).</li><li>McMahon, B. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Respiratory+and+circulatory+compensation+to+hypoxia+in+crustaceans.">Respiratory and circulatory compensation to hypoxia in crustaceans.</a> Resp Phsiol. 128 (3), 349-364 (2001).</li><li>Leigh, R. J., Zee, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The neurology of eye movements. , (1999).</li><li>Robinson, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+method+of+measuring+eye+movement+using+a+scleral+search+coil+in+a+magnetic+field.">A method of measuring eye movement using a scleral search coil in a magnetic field.</a> IEEE Trans Biomed Eng. 10, 137-145 (1963).</li><li>Judge, S. J., Richmond, B. J., Chu, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Implantation+of+magnetic+search+coils+for+measurement+of+eye+position:+an+improved+method.">Implantation of magnetic search coils for measurement of eye position: an improved method.</a> Vis Res. 20, 535-538 (1980).</li><li>Ong, J. K. Y., Halswanter, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+torsional+eye+movements+by+tracking+stable+iris+features.">Measuring torsional eye movements by tracking stable iris features.</a> J Neurosci Meth. 192, 261-267 (2010).</li><li>Kimmel, D. L., Mammo, D., Newsome, W. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tracking+the+eye+non-invasively:+simultaneous+comparison+of+the+scleral+search+coil+and+optical+tracking+techniques+in+the+macaque+monkey.">Tracking the eye non-invasively: simultaneous comparison of the scleral search coil and optical tracking techniques in the macaque monkey.</a> Front Behav Neurosci. 6 (49), 1-17 (2012).</li><li>Otero-Millan, J., Roberts, D. C., Lasker, A., Zee, D. S., Kheradmand, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Knowing+what+the+brain+is+seeing+in+three+dimensions:+A+novel,+noninvasive,+sensitive,+accurate,+and+low-noise+technique+for+measuring+ocular+torsion.">Knowing what the brain is seeing in three dimensions: A novel, noninvasive, sensitive, accurate, and low-noise technique for measuring ocular torsion.</a> J Vis. 15 (14), 1-15 (2015).</li><li>Demski, L. S., Bauer, D. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eye+movements+evoked+by+electrical+stimulation+of+the+brain+in+anesthetized+fishes.">Eye movements evoked by electrical stimulation of the brain in anesthetized fishes.</a> Brain Behav Evol. 11, 109-129 (1975).</li><li>Gioanni, H., Bennis, M., Sansonetti, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visual+and+vestibular+reflexes+that+stabilize+gaze+in+the+chameleon.">Visual and vestibular reflexes that stabilize gaze in the chameleon.</a> Vis Neurosci. 10, 947-956 (1993).</li><li>Straka, H., Dieringer, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basic+organization+principles+of+the+VOR:+lessons+from+frogs.">Basic organization principles of the VOR: lessons from frogs.</a> Prog Neurobio. 73 (4), 259-309 (2004).</li><li>Voss, J., Bischof, H. -. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Eye+movements+of+laterally+eyed+birds+are+not+independent.">Eye movements of laterally eyed birds are not independent.</a> J Exp Biol. 212 (10), 1568-1575 (2009).</li><li>Ariel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Independent+eye+movements+in+the+turtle.">Independent eye movements in the turtle.</a> Vis Neurosci. 5, 29-41 (1990).</li><li>Ariel, M., Rosenberg, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+synaptic+drugs+on+turtle+optokinetic+nystagmus+and+the+spike+responses+of+the+basal+optic+nucleus.">Effects of synaptic drugs on turtle optokinetic nystagmus and the spike responses of the basal optic nucleus.</a> Vis Neurosci. 7, 431-440 (1991).</li><li>Balaban, C. D., Ariel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+"beat-to-beat"+interval+generator+for+optokinetic+nystagmus.">A "beat-to-beat" interval generator for optokinetic nystagmus.</a> Biol Cybern. 66, 203-216 (1992).</li><li>Keifer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+eye-blink+reflex+model:+Role+of+excitatory+amino+acid+receptors+and+labeling+of+network+activity+with+sulforhodamine.">In vitro eye-blink reflex model: Role of excitatory amino acid receptors and labeling of network activity with sulforhodamine.</a> Exp Brain Res. 97, 239-253 (1993).</li><li>Keifer, J., Armstrong, K. E., Houk, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+classical+conditioning+of+abducens+nerve+discharge+in+turtles.">In vitro classical conditioning of abducens nerve discharge in turtles.</a> J Neurosci. 15, 5036-5048 (1995).</li><li>Rosenberg, A. F., Ariel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+model+for+optokinetic+eye+movements+in+turtles+that+incorporates+properties+of+retinal+slip+neurons.">A model for optokinetic eye movements in turtles that incorporates properties of retinal slip neurons.</a> Vis Neurosci. 13, 375-383 (1996).</li><li>Ariel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Open-loop+optokinetic+responses+of+the+turtle.">Open-loop optokinetic responses of the turtle.</a> Vis Res. 37, 925-933 (1997).</li><li>Anderson, C. W., Keifer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Properties+of+conditioned+abducens+nerve+responses+in+a+highly+reduced+in+vitro+brainstem+preparation+from+the+turtle.">Properties of conditioned abducens nerve responses in a highly reduced in vitro brainstem preparation from the turtle.</a> J Neurophysiol. 81, 1242-1250 (1999).</li><li>Keifer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vitro+classical+conditioning+of+the+turtle+eyeblink+reflex:+Approaching+cellular+mechanisms+of+acquisition.">In vitro classical conditioning of the turtle eyeblink reflex: Approaching cellular mechanisms of acquisition.</a> Cerebell. 2, 55-61 (2003).</li><li>Zhu, D., Keifer, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathways+controlling+trigeminal+and+auditory+nerve-evoked+abducens+eyeblink+reflexes+in+pond+turtles.">Pathways controlling trigeminal and auditory nerve-evoked abducens eyeblink reflexes in pond turtles.</a> Brain Behav Evol. 64, 207-222 (2004).</li><li>Jones, M. S., Ariel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effects+of+unilateral+eighth+nerve+block+on+fictive+VOR+in+the+turtle.">The effects of unilateral eighth nerve block on fictive VOR in the turtle.</a> Br Res. 1094, 149-162 (2006).</li><li>Jones, M. S., Ariel, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphology,+intrinsic+membrane+properties,+and+rotation-evoked+responses+of+trochlear+motoneurons+in+the+turtle.">Morphology, intrinsic membrane properties, and rotation-evoked responses of trochlear motoneurons in the turtle.</a> J Neurophysiol. 99 (3), 1187-1200 (2008).</li><li>Krenz, J. G., Naylor, G. J. P., Shaffer, H. B., Janzen, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+phylogenetics+and+evolution+of+turtles.">Molecular phylogenetics and evolution of turtles.</a> Mol Phylogenet Evol. 37 (1), 178-191 (2005).</li><li>Dearworth, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+the+trochlear+nerve+in+eye+abduction+and+frontal+vision+of+the+red-eared+slider+turtle+(Trachemys+scripta+elegans).">Role of the trochlear nerve in eye abduction and frontal vision of the red-eared slider turtle (Trachemys scripta elegans).</a> J Comp Neur. 52, 3464-3477 (2013).</li><li>Dearworth, J. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pupil+constriction+evoked+in+vitro+by+stimulation+of+the+oculomotor+nerve+in+the+turtle+(Trachemys+scripta+elegans).">Pupil constriction evoked in vitro by stimulation of the oculomotor nerve in the turtle (Trachemys scripta elegans).</a> Vis Neurosci. 26, 309-318 (2009).</li><li>Mead, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IFEL+TOUR:+a+description+of+the+introduction+to+FUN+electrophysiology+labs+workshop+at+Bowdoin+College,+July+27-30,+and+the+resultant+faculty+learning+community.">IFEL TOUR: a description of the introduction to FUN electrophysiology labs workshop at Bowdoin College, July 27-30, and the resultant faculty learning community.</a> J Undergrad Neurosci Educ. 5, A42-A48 (2007).</li><li>Jackson, D. C., Ultsch, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiology+of+hibernation+under+the+ice+by+turtles+and+frogs.">Physiology of hibernation under the ice by turtles and frogs.</a> J Exp Zool A Ecol Genet Physiol. 313 (6), 311-327 (2010).</li><li>Romano, J. M., Dearworth, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pupil+constriction+evoked+by+stimulation+of+the+ciliary+nerve+in+the+red-eared+slider+turtle+(Trachemys+scripta+elegans).">Pupil constriction evoked by stimulation of the ciliary nerve in the red-eared slider turtle (Trachemys scripta elegans).</a> J Penns Acad Sci. 85, 4-8 (2011).</li><li>Miller, J. M., Robins, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extraocular-muscle+forces+in+alert+monkey.">Extraocular-muscle forces in alert monkey.</a> Vis Res. 32, 1099-1113 (1992).</li><li>Gamlin, P. D., Miller, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Extraocular+muscle+motor+units+characterized+by+spike-triggered+averaging+in+alert+monkey.">Extraocular muscle motor units characterized by spike-triggered averaging in alert monkey.</a> J Neurosci Meth. 204, 159-167 (2011).</li><li>Quaia, C., Ying, H. S., Optican, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Viscoelastic+properties+of+passive+eye+muscle+in+primates.+III:+Force+elicited+by+natural+elongations.">The Viscoelastic properties of passive eye muscle in primates. III: Force elicited by natural elongations.</a> PLOS ONE. 5, A236-A254 (2010).</li><li>Anderson, S. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamics+of+primate+oculomotor+plant+revealed+by+effects+of+abducens+microstimulation.">Dynamics of primate oculomotor plant revealed by effects of abducens microstimulation.</a> J Neurophys. 101, 2907-2923 (2009).</li><li>Maxwell, J. H., Harless, M., Morlock, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anesthesia+and+surgery.">Anesthesia and surgery.</a> Turtles: Perspective and Research. , 127-152 (1979).</li><li>AVMA Panel on Euthanasia. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=American+Veterinary+Medical+Association.">American Veterinary Medical Association.</a> J Am Vet Med Assoc. 218 (5), 669-696 (2001).</li><li>Clarke, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Shaping+the+pupil's+response+to+light+in+the+hooded+rat.">Shaping the pupil's response to light in the hooded rat.</a> Exp Br Res. 176, 641-651 (2007).</li><li>Bennett, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+review+of+anesthesia+and+chemical+restraint+in+reptiles.">A review of anesthesia and chemical restraint in reptiles.</a> J Zoo Wild Med. 22 (3), 282-303 (1991).</li><li>Bickler, P. E., Buck, L. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypoxia+Tolerance+in+Reptiles,+Amphibians,+and+Fishes:+Life+with+Variable+Oxygen+Availability.">Hypoxia Tolerance in Reptiles, Amphibians, and Fishes: Life with Variable Oxygen Availability.</a> Ann Rev Physiol. 69, 145-170 (2007).</li></ol>

저자는 공개 없다.

중요 한 단계:
이 프로토콜 내에서 중요 한 단계는 다음과 같습니다: 1) 해 부와 transected 신경;의 생존 능력을 유지 하 게 하는 치료 2)과 일치 하는 크기의 두개골 신경 하 일관 된;에 흡입 전극 그리고 3) 눈의 회전의 적절 한 보정을 제공 하는 짐 벌에 머리의 배치.
문제 해결:
해 부도 전하실 수 있습니다, 하지만 그것에 게 몇 번을 완료 단?...

빨간 귀 슬라이더 거북 Electrophysiological 실험에 사용 하기 위한 근거:
빨간 귀 슬라이더 거북 (Trachemys scripta 선 충), 세계 최악의 침략 종1 중 하나 간주 됩니다 하 고 생태계 문제 임을 나타낼 수 있습니다. 왜 빨간 귀 슬라이더 거북은 그래서 성공 하는 이유는 제대로 이해 하지만 일부 했기 때문일 수도 있습니다 그들의 관용 생리학과 신경 조직의 hypoxic 조건2,3,4에서 살아남을 수 있는 소유 물 . 실험 그들의 숫자를 위협 하지 않습니다에 대 한 최소한의 노력으로 electrophysiological 준비 남아 있을 수 있는 실행 가능한 만큼 18 시간5,6연장된 기간 동안 그들을 사용 합니다. 혜택 또한 산소8의 낮은 레벨을 견딜 수 있는 대7, 같은 무척 추 동물 동물을 사용 하는 장점은 비슷합니다.
안구의 움직임을 측정 하기 위한 기법.
정면 eyed 동물 비 인간 영장류를 사용 하 여 안구의 움직임을 측정 하는 방법 잘 개발 된9되었습니다. 눈 회전 궤도 있는 3 개의 축: 수평, 수직, 및 비틀림. 마그네틱 검색 코일 방법 일반적으로 측정 회전에 대 한 가장 신뢰할 수 있는 것으로 간주 하지만 침략, 동물10,11의 scleras에 삽입 하려면 작은 코일을 요구. 비디오 기반 시스템도 수 측정 회전 하 고 비-침략 적 되 고의 이점이 있다. 혁신적인 이미지 처리 함께 더 나은 카메라의 개발 비디오 기반 시스템12,,1314를 고려 하는 매력적인 대안을 만드는 그들의 기능을 강화 했습니다.
Nonmammals에서 안구의 움직임을 측정 하기 위한 개발 기술을 훨씬 덜 중요 한 되었습니다. 측정 중 낮은 해상도 또는 회전15,16,,1718의 일부 설명. 개발의 부족 시각적 대상에 따라 훈련 nonmammals에 어려움에 부분적으로 비난 받을 수 있다. 비록 눈 움직임 잘 빨간 귀 슬라이더 거북19,20,21,22,23,,2425 에서 연구 26,,2728,29,30, 대상 추적 훈련 동물에서 도전 때문에 그들의 눈 움직임의 정확한 운동학은 저조한 이해.
빨간 귀 슬라이더 거북은 일반적으로 척추 옆 눈 간주 됩니다 하지만 그들은 완전히 그들의 셸31에 그들의 머리를 철회 수, 때문에 등 딱지에 의해 측면 시각 필드의 중요 한 폐색 발생32. 결과 그들의 시각 가시 더 정면 눈 포유류 처럼 행동 그들 앞쪽 강제로. 따라서, 안구의 움직임을 측정 하기 위한 접근 방법을 개발 하기 위한 모델 사용은 또한 독특한 진화 관점을 제공 합니다.
이 작품에서 설명 하는 프로토콜 빨간 귀 슬라이더 거북의 눈 운동의 운동학을 식별 하는 생체 외에서 고립 된 머리 준비를 사용 합니다. 두뇌는 두개골 신경 그대로 두개골에서 해 부. 머리는 눈 근육 innervating 두개골 신경의 전기 자극에 의해 안구의 움직임을 보정 하 여 반응을 짐 벌에 배치 됩니다. 조치는 눈에 의해 회전의 어두운 눈동자와 아이리스의 표시를 추적 하는 소프트웨어 알고리즘을 사용 하는 비디오 기반 시스템에 의해 수행 됩니다. 운동학 extraocular 모두 (즉, 수평, 수직, 및 비틀림 회전)을 측정 하 기회를 제공 하는 준비32 및 안 구내 (즉, 눈동자 변화)33 움직임.
원심 성 신경 경로의 분석을 위한 모델 시스템:
접근 기회 공부 어떻게 원심 성 신경 신호를 생성 눈 움직임 근육 뇌32에 의해 처리 된 통합 감각 정보의 부재와 그들의 편안한 상태에서 시작 하는 조사를 제공 하는 더 일반적으로, 33. 따라서, 눈 운동학 있는 그들은 전적으로 원심 성 신경 통로 떠나 뇌와 근육에 synapsing에 의해 처리 되는 모델 시스템에서 시험 될 수 있다.

<table><tbody><tr><td>Red-eared slider turtles</td><td>Kons Scientific</td><td>&lt;em&gt;Trachemys scripta elegans&lt;/em&gt;</td><td>Large size (carapace length 15-20 cm)</td></tr><tr><td>Sodium chloride</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S5886</td><td></td></tr><tr><td>Potassium chloride</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>P5405</td><td></td></tr><tr><td>Magnesium choride</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>M7304</td><td></td></tr><tr><td>Sodium bicarbonate</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S5761</td><td></td></tr><tr><td>Dextrose</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>C5767</td><td></td></tr><tr><td>Concentrated hydrochloric acid</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>H7020</td><td></td></tr><tr><td>Calcium chloride</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>C7902</td><td></td></tr><tr><td>pH meter</td><td>Oakton</td><td>pH 6+</td><td></td></tr><tr><td>Suction stimulation electrode</td><td>A-M Systems</td><td>573000</td><td>Bipolar suction electrode. Note that 573000 has been replaced with 573050.</td></tr><tr><td>Capillary glass</td><td>A-M systems</td><td>626000</td><td>Single-barrel borosilicate capillary glass without microfilament, length 10 cm, outside diameter 1.0 mm, inner diameter 0.50 mm</td></tr><tr><td>Alternative suction stimulation electrode</td><td>A-M Systems</td><td>573050</td><td>Bipolar suction electrode. Requires larger diameter capillary glass: 627000, outside diameter 1.2 mm, inner diameter 0.68 mm</td></tr><tr><td>Stereoscope</td><td>Lieca</td><td>GZ7</td><td>Magnification range, 10x &amp;ndash; 70x</td></tr><tr><td>Fiber optic light source</td><td>Amscope</td><td>HL250-A</td><td>150W Fiber optical microscope illuminator light box</td></tr><tr><td>Rongeurs</td><td>Carolina Biological Supply Company</td><td>625654</td><td>stainless steel, straight spring, 5.25&quot;</td></tr><tr><td>Blunt dissection probe</td><td>Carolina Biological Supply Company</td><td>627405</td><td>Huber mall probe, double-ended probe and seeker, 6&quot;</td></tr><tr><td>Microscissors</td><td>Carolina Biological Supply Company</td><td>623555</td><td>Iris microdissecting scissors, stainless steel, 0.5&quot; blades, 4.75&quot; long</td></tr><tr><td>Fine forceps</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>F6521</td><td>Jewelers forceps, dumont No. 5, inox alloy, 4.25&quot;</td></tr><tr><td>Curved forceps</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>Z168696</td><td>Medium tip, curved forceps, stainless steel, 4&quot;</td></tr><tr><td>Scalpel handle</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S2896</td><td>Scalpel handles, No. 3, stainless steel</td></tr><tr><td>Scalpel blade</td><td>Sigma-Aldrich Co. LLC.</td><td>S2771</td><td>Scalpel blades, No. 11, steel</td></tr><tr><td>Guillotine</td><td>Harvard Apparatus</td><td>73-1918</td><td>Kleine guillotine type 7575</td></tr><tr><td>Spatula</td><td>Sigma</td><td>Z648299</td><td>Micro spoon and spatula weighing set. Use small spatula: 5.9&amp;rdquo; long x 0.07&amp;rdquo; diameter handle with square end: 0.17&amp;rdquo; x 1.3&amp;rdquo; long, other end round: 0.17&amp;rdquo; x 1.27&amp;rdquo; long</td></tr><tr><td>Hook</td><td>Autozone</td><td>98069</td><td>SureBilt hook and pick set. Use grinder to dull sharp points of hook to prevent injury to animals mouth.</td></tr><tr><td>95/5% O&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;/CO&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;</td><td>Airgas, Inc.</td><td>X02OX95C2003102</td><td>5% Carbon dioxide balance oxygen certified standard gas mixture, size 200 Cylinder, CGA-296</td></tr><tr><td>Regulator</td><td>Airgas, Inc.</td><td>Y11244D296-AG</td><td>Single stage brass 0-100 psi analytical cylinder regulator CGA-296 with needle outlet. Use brass adjustable airline pipe valve to go from 3/8&quot;, inner diameter, vinyl airline tubing connected to regulator to a 3/16&quot;, inner diameter, airline connection going to airstone or glass pasteur pipette.</td></tr><tr><td>Adjustable airline pipe valve</td><td>Doctors Foster and Smith</td><td>CD-12061</td><td>Brass valve</td></tr><tr><td>Rigid table</td><td>Unknown</td><td>Unknown</td><td>Auto-clave door laid on top of a sturdy table. Nine 5&quot; diameter tennis balls isolate vibrations from the top surface of the table.</td></tr><tr><td>5&quot; tennis ball</td><td>Petco Animal Supplies, Inc.</td><td>712868</td><td>Petco Jumbo Pet Tennis Ball: balls are unsliced and held within an integrated frame on the underside part of the autoclave door.</td></tr><tr><td>Alternative vibration isolation table</td><td>Newport Corporation</td><td>INT1-36-6-N</td><td>Rigid vibration control system, integrity 1: Surface dimensions, 3&#039; x 6&#039;</td></tr><tr><td>Gimbal</td><td>ISI, International Scientific Instruments, Inc.</td><td>Stage from SUPER III-A Scanning EM</td><td>5-axis eucentric stage: X, Y, and Z linear movements, &amp;plusmn;20 mm, 0.1 mm precision; Rotations, vertical, &amp;plusmn;10&amp;deg;, and horizontal, &amp;plusmn;12.5&amp;deg;, with 1.25&amp;deg; precision. Note: from decommission instrument.</td></tr><tr><td>Chuck for gimbal</td><td>Unknown</td><td>Unknown</td><td>Chuck from an old microtome of unknown manufacture was machined to fit the shaft of the specimen holder of the Scanning EM stage</td></tr><tr><td>Alternative gimbal</td><td>ThorLabs, Inc.</td><td>GN2/M with MBT602/M</td><td>Dual-axis goniometer (GN2/M) mounted on 3-axis microblock stage with thumbscrew adjusters (MBT602/M): design a chuck to hold turtle head with eye at 12.7 mm above top surface of goniometer (distance to point of rotation)</td></tr><tr><td>Video-based eye tracking system</td><td>Arrington Research, Inc.</td><td>ViewPoint EyeTracker, PC-60</td><td>Tracking method: Infrared video by dark pupil; Black and white camera (Item BC02): 30 Hz, 640 x 480; System requirements: Windows 2000, XP, 7, 8, 8.1, 10; Visual range: Horizontal +/- 44&amp;deg;; vertical +/- 20&amp;deg;; Accuracy ~0.5&amp;deg;; Spatial resolution ~0.15&amp;deg;; Pupil size resolution ~0.03 mm; Eye data: X, Y position of gaze, pupil height and width, torsion, delta time, total time, and regions of interest (ROI); Real-time communication (Item 0022): 4-Channel AnalogOut with eight TTL input channels to mark codes into the data file</td></tr><tr><td>Multi-position magnetic base</td><td>Harbor Freight Tools</td><td>Pittsburg, item #5645</td><td>Magnetic holder reaches up to 12&quot; and produces 45 lbs. of magnetic pull. Use to position camera. Machine thread holes onto the end of the rod to mount cameras.</td></tr><tr><td>Micromanipulator</td><td>Kopf</td><td>900</td><td>5 axis manipulation for mount of suction electrode: X, Y, Z linear travel, 2 axis of rotation</td></tr><tr><td>Dissection scope on boom</td><td>Lieca</td><td>GZ6</td><td>Magnification range, 6.7x &amp;ndash; 40x</td></tr><tr><td>Nerve/muscle stimulator</td><td>Astro-Med Grass Telefactor</td><td>Grass S88</td><td>Dual pulse voltage stimulator: two output channels that can be operated independently or synchronized to generate non-isolated constant voltage pulses (10 mv to 150 V). Pulses can be single (10 &amp;mu;sec to 10 sec), repetitive (0.01 Hz to 1 KHz), and trains (1 ms to 10 s) and synchronized with TTL inputs and output. Send TTL outputs via the output channels of a DB25 connector to the TTL input channels of the ViewPoint EyeTracker. Note: Astro-Med Grass Telefactor is no longer in business.</td></tr><tr><td>Current isolation device</td><td>Astro-Med Grass Telefactor</td><td>PSIU6</td><td>Current stimulus isolation unit: enables safe delivery of constant currents by the S88 to the preparation. The PSIU6 connects by a BNC cable to one of the output channels of the S88. Multiplier switches on the PSIU6 allow the S88 to generate a wide array of current amplitudes ranging from 0.1 &amp;micro;A to 15 mA.</td></tr><tr><td>Alternative nerve/muscle stimulator with isolation</td><td>A-M Systems</td><td>2100</td><td>Isolated Pulse Stimulator: Unit has built-in isolator to produce constant currents.</td></tr></tbody></table>

ocular kinematics measured by in vitro stimulation of the cranial nerves in the turtle

동물 안락사는 후 그들의 조직 죽을 시작 합니다. 거북 특히 온 혈 척추 동물에 비교 될 때 그들의 조직의 더 긴 생존 시간 때문에 이점을 제공 합니다. 이 때문에, 신경 신호를 조사 하는 시간의 연장된 기간 및 그들의 대상 작업의 제어에 대 한 거북에 생체 외에서 실험을 수행할 수 있습니다. 고립 된 머리 준비를 사용 하 여, 거북, 눈 운동의 운동학 측정 그리고 전기 신호에 의해 그들의 변조 두개골 신경에 의해 수행. 두뇌는 두개골에서 제거 되었다, 후 그대로 두개골 신경, 해 부 머리에에서 배치 했다 안구의 움직임을 보정 하려면 짐 벌. 유리 전극은 두개골 신경에 연결 된 (oculomotor, trochlear, 그리고 abducens) 안구의 움직임을 연상 하는 전류와 자극. 우리는 적외선 비디오 추적 시스템 및 눈의 계량된 회전 안구의 움직임을 모니터링. 전류 펄스의 진폭, 주파수, 범위 그리고 기차 기간 응답에 미치는 영향을 관찰 하는 데 사용 했다. 준비는 뇌에서 분리 하기 때문에 근육 대상에가 하는 원심 성 통로 중앙 처리 감각 정보의 부재에서 신경 신호를 조사 하는 절연에서 시험 수 있다.

그림 1 에서는 해 부를 설명 하는 비디오에서 촬영 한 이미지의 스틸. 이미지는 두뇌에서 절단 전에 신경의 일반적인 위치를 제공합니다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56864/56864fig1.jpg"> 그림 1: 시 신경 (nII), oculomotor 신경 (nIII), trochlear 신경 (nIV), 및 abducens 신경 (nVI)의 위치를 표시 해 ...

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Ocular Kinematics Measured by In Vitro Stimulation of the Cranial Nerves in the Turtle

이 프로토콜에는 그들의 눈 운동의 운동학을 측정 하는 체 외에서 고립 된 거북이 머리 준비를 사용 하는 방법을 설명 합니다. 두개골에서 뇌의 제거 후, 두개골 신경 척도 회전 눈의 동 공 크기에 변화를 전류로 자극 수 있습니다.

눈 기구학 생체 외에서 거북이에 두개골 신경의 자극에 의해 측정

After animals are euthanized, their tissues begin to die. Turtles offer an advantage because of a longer survival time of their tissues, especially when ...

ocular-kinematics-measured-vitro-stimulation-cranial-nerves

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Ocular Kinematics Measured by In Vitro Stimulation of the Cranial Nerves in the Turtle

8.4K 조회수.  Lafayette College. 이 프로토콜에는 그들의 눈 운동의 운동학을 측정 하는 체 외에서 고립 된 거북이 머리 준비를 사용 하는 방법을 설명 합니다. 두개골에서 뇌의 제거 후, 두개골 신경 척도 회전 눈의 동 공 크기에 변화를 전류로 자극 수 있습니다.

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VisioTracker, an Innovative Automated Approach to Oculomotor Analysis

Investigations into the visual system development and function necessitate quantifiable behavioral models of visual performance that are easy to elicit, robust, and simple to manipulate. A suitable model has been found in the optokinetic response (OKR), a reflexive behavior present in all vertebrates due to its high selection value. The OKR involves slow stimulus-following movements of eyes alternated with rapid resetting saccades. The measurement of this behavior is easily carried out in zebrafish larvae, due to its early and stable onset (fully developed after 96 hours post fertilization (hpf)), and benefitting from the thorough knowledge about zebrafish genetics, for decades one of the favored model organisms in this field. Meanwhile the analysis of similar mechanisms in adult fish has gained importance, particularly for pharmacological and toxicological applications.
Here we describe VisioTracker, a fully automated, high-throughput system for quantitative analysis of visual performance. The system is based on research carried out in the group of Prof. Stephan Neuhauss and was re-designed by TSE Systems. It consists of an immobilizing device for small fish monitored by a high-quality video camera equipped with a high-resolution zoom lens. The fish container is surrounded by a drum screen, upon which computer-generated stimulus patterns can be projected. Eye movements are recorded and automatically analyzed by the VisioTracker software package in real time.
Data analysis enables immediate recognition of parameters such as slow and fast phase duration, movement cycle frequency, slow-phase gain, visual acuity, and contrast sensitivity.
Typical results allow for example the rapid identification of visual system mutants that show no apparent alteration in wild type morphology, or the determination of quantitative effects of pharmacological or toxic and mutagenic agents on visual system performance.

The VisioTracker is an automated system for the quantitative analysis of visual performance of larval and small adult fish based on the recording of eye movements. It features full control over visual stimulus properties and real-time analysis, enabling high-throughput research in fields such as visual system development and function, pharmacology, neural circuit studies and sensorimotor integration.

VisioTracker, 눈 돌림 분석에 대한 혁신적인 자동화 된 접근

Investigations into the visual system development and function necessitate quantifiable behavioral models of visual performance that are easy to elicit, ...

연구

신경과학

Video-oculography in Mice

Eye movements are very important in order to track an object or to stabilize an image on the retina during movement. Animals without a fovea, such as the mouse, have a limited capacity to lock their eyes onto a target. In contrast to these target directed eye movements, compensatory ocular eye movements are easily elicited in afoveate animals1,2,3,4. Compensatory ocular movements are generated by processing vestibular and optokinetic information into a command signal that will drive the eye muscles. The processing of the vestibular and optokinetic information can be investigated separately and together, allowing the specification of a deficit in the oculomotor system. The oculomotor system can be tested by evoking an optokinetic reflex (OKR), vestibulo-ocular reflex (VOR) or a visually-enhanced vestibulo-ocular reflex (VVOR). The OKR is a reflex movement that compensates for "full-field" image movements on the retina, whereas the VOR is a reflex eye movement that compensates head movements. The VVOR is a reflex eye movement that uses both vestibular as well as optokinetic information to make the appropriate compensation. The cerebellum monitors and is able to adjust these compensatory eye movements. Therefore, oculography is a very powerful tool to investigate brain-behavior relationship under normal as well as under pathological conditions (f.e. of vestibular, ocular and/or cerebellar origin).
Testing the oculomotor system, as a behavioral paradigm, is interesting for several reasons. First, the oculomotor system is a well understood neural system5. Second, the oculomotor system is relative simple6; the amount of possible eye movement is limited by its ball-in-socket architecture ("single joint") and the three pairs of extra-ocular muscles7. Third, the behavioral output and sensory input can easily be measured, which makes this a highly accessible system for quantitative analysis8. Many behavioral tests lack this high level of quantitative power. And finally, both performance as well as plasticity of the oculomotor system can be tested, allowing research on learning and memory processes9.
Genetically modified mice are nowadays widely available and they form an important source for the exploration of brain functions at various levels10. In addition, they can be used as models to mimic human diseases. Applying oculography on normal, pharmacologically-treated or genetically modified mice is a powerful research tool to explore the underlying physiology of motor behaviors under normal and pathological conditions. Here, we describe how to measure video-oculography in mice8.

Video-oculography is a very quantitative method to investigate ocular motor performance as well as motor learning. Here, we describe how to measure video-oculography in mice. Applying this technique on normal, pharmacologically-treated or genetically modified mice is a powerful research tool to explore the underlying physiology of motor behaviors.

마우스의 비디오 - oculography

Eye movements are very important in order to track an object or to stabilize an image on the retina during movement. Animals without a fovea, such as the ...

Three Dimensional Vestibular Ocular Reflex Testing Using a Six Degrees of Freedom Motion Platform

The vestibular organ is a sensor that measures angular and linear accelerations with six degrees of freedom (6DF). Complete or partial defects in the vestibular organ results in mild to severe equilibrium problems, such as vertigo, dizziness, oscillopsia, gait unsteadiness nausea and/or vomiting. A good and frequently used measure to quantify gaze stabilization is the gain, which is defined as the magnitude of compensatory eye movements with respect to imposed head movements. To test vestibular function more fully one has to realize that 3D VOR ideally generates compensatory ocular rotations not only with a magnitude (gain) equal and opposite to the head rotation but also about an axis that is co-linear with the head rotation axis (alignment). Abnormal vestibular function thus results in changes in gain and changes in alignment of the 3D VOR response.
Here we describe a method to measure 3D VOR using whole body rotation on a 6DF motion platform. Although the method also allows testing translation VOR responses 1, we limit ourselves to a discussion of the method to measure 3D angular VOR. In addition, we restrict ourselves here to description of data collected in healthy subjects in response to angular sinusoidal and impulse stimulation.
Subjects are sitting upright and receive whole-body small amplitude sinusoidal and constant acceleration impulses. Sinusoidal stimuli (f = 1 Hz, A = 4&deg;) were delivered about the vertical axis and about axes in the horizontal plane varying between roll and pitch at increments of 22.5&deg; in azimuth. Impulses were delivered in yaw, roll and pitch and in the vertical canal planes. Eye movements were measured using the scleral search coil technique 2. Search coil signals were sampled at a frequency of 1 kHz.
The input-output ratio (gain) and misalignment (co-linearity) of the 3D VOR were calculated from the eye coil signals 3.
Gain and co-linearity of 3D VOR depended on the orientation of the stimulus axis. Systematic deviations were found in particular during horizontal axis stimulation. In the light the eye rotation axis was properly aligned with the stimulus axis at orientations 0&deg; and 90&deg; azimuth, but gradually deviated more and more towards 45&deg; azimuth.
The systematic deviations in misalignment for intermediate axes can be explained by a low gain for torsion (X-axis or roll-axis rotation) and a high gain for vertical eye movements (Y-axis or pitch-axis rotation (see Figure 2). Because intermediate axis stimulation leads a compensatory response based on vector summation of the individual eye rotation components, the net response axis will deviate because the gain for X- and Y-axis are different.
In darkness the gain of all eye rotation components had lower values. The result was that the misalignment in darkness and for impulses had different peaks and troughs than in the light: its minimum value was reached for pitch axis stimulation and its maximum for roll axis stimulation.
Case Presentation
Nine subjects participated in the experiment. All subjects gave their informed consent. The experimental procedure was approved by the Medical Ethics Committee of Erasmus University Medical Center and adhered to the Declaration of Helsinki for research involving human subjects.
Six subjects served as controls. Three subjects had a unilateral vestibular impairment due to a vestibular schwannoma. The age of control subjects (six males and three females) ranged from 22 to 55 years. None of the controls had visual or vestibular complaints due to neurological, cardio vascular and ophthalmic disorders.
The age of the patients with schwannoma varied between 44 and 64 years (two males and one female). All schwannoma subjects were under medical surveillance and/or had received treatment by a multidisciplinary team consisting of an othorhinolaryngologist and a neurosurgeon of the Erasmus University Medical Center. Tested patients all had a right side vestibular schwannoma and underwent a wait and watch policy (Table 1; subjects N1-N3) after being diagnosed with vestibular schwannoma. Their tumors had been stabile for over 8-10 years on magnetic resonance imaging.

A method is described to measure three-dimensional vestibulo ocular reflexes (3D VOR) in humans using a six degrees of freedom (6DF) motion simulator. The gain and misalignment of the 3D angular VOR provide a direct measure of the quality of vestibular function. Representative data on healthy subjects are provided

자유 모션 플랫폼의 여섯도를 사용하여 세 가지 차원 전정 안구 반사 테스트

The vestibular organ is a sensor that measures angular and linear accelerations with six degrees of freedom (6DF). Complete or partial defects in the ...

The Optokinetic Response as a Quantitative Measure of Visual Acuity in Zebrafish

Zebrafish are a proven model for vision research, however many of the earlier methods generally focused on larval fish or demonstrated a simple response. More recently adult visual behavior in zebrafish has become of interest, but methods to measure specific responses are new coming. To address this gap, we set out to develop a methodology to repeatedly and accurately utilize the optokinetic response (OKR) to measure visual acuity in adult zebrafish. Here we show that the adult zebrafish's visual acuity can be measured, including both binocular and monocular acuities. Because the fish is not harmed during the procedure, the visual acuity can be measured and compared over short or long periods of time. The visual acuity measurements described here can also be done quickly allowing for high throughput and for additional visual procedures if desired. This type of analysis is conducive to drug intervention studies or investigations of disease progression.

Zebrafish have been a valuable tool for many research areas. Here we demonstrate a method to elicit a visual response and calculate a functional visual acuity in the adult zebrafish.

Zebrafish의 시력의 정량적 측정과 Optokinetic 응답

Zebrafish are a proven model for vision research, however many of the  earlier methods generally focused on larval fish or demonstrated a simple  ...

Using Optical Coherence Tomography and Optokinetic Response As Structural and Functional Visual System Readouts in Mice and Rats

Optical coherence tomography (OCT) is a fast, non-invasive, interferometric technique allowing high-resolution retinal imaging. It is an ideal tool for the investigation of processes of neurodegeneration, neuroprotection and neuro-repair involving the visual system, as these often correlate well with retinal changes. As a functional readout, visually evoked compensatory eye and head movements are commonly used in experimental models involving the visual function. Combining both techniques allows a quantitative in vivo investigation of structure and function, which can be used to investigate the pathological conditions or to evaluate the potential of novel therapeutics. A great benefit of the presented techniques is the possibility to perform longitudinal analyses allowing the investigation of dynamic processes, reducing variability and cuts down the number of animals needed for the experiments. The protocol described aims to provide a manual for acquisition and analysis of high quality retinal scans of mice and rats using a low cost customized holder with an option to deliver inhalational anesthesia. Additionally, the proposed guide is intended as an instructional manual for researchers using optokinetic response (OKR) analysis in rodents, which can be adapted to their specific needs and interests.

A detailed protocol for the assessment of structural and visual readouts in rodents by optical coherence tomography and optokinetic response is presented. The results provide valuable insights for ophthalmologic as well as neurologic research.

쥐와 쥐에 구조와 기능적 시각 시스템 판독으로 광학 일관성 단층 촬영 및 Optokinetic 응답을 사용 하 여

Optical coherence tomography (OCT) is a fast, non-invasive, interferometric technique allowing high-resolution retinal imaging. It is an ideal tool for ...

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury are essential for translating novel therapeutic strategies from rodent models to clinical application due to their closer similarities to humans in size and anatomy. Here we describe some in vivo methods to evaluate the function and structure of the retinal ganglion cells (RGCs) and optic nerve (ON) in large animals, including visual evoked potential (VEP), pattern electroretinogram (PERG) and optical coherence tomography (OCT). Both goat and non-human primate were employed in this study. By presenting these in vivo methods step by step, we hope to increase experimental reproducibility among different labs and facilitate the usage of large animal models of optic neuropathies.

In Vivo Methods to Assess Retinal Ganglion Cell and Optic Nerve Function and Structure in Large Animals

Here we demostrate several in vivo tests (flash visual evoked potential, pattern electroretinogram and optic coherence tomography) in goat and rhesus macaque to understand the structure and function of the optic nerve and its neurons.

인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법

The optic nerve collects axons signals from the retinal ganglion cells and transmits visual signal to the brain. Large animal models of optic nerve injury ...

A New Optokinetic Testing Method to Measure Rat Vision

Optokinetic nystagmus (OKN) is a reflexive eye movement initiated by the motion of visual stimuli in the field of vision. The head-tracking movement associated with OKN is commonly used as a measure of visual function in rodents. To record OKN responses in normal and experimental rats, a simple and inexpensive apparatus has been developed. This setup uses two tablet screens to display the OKN visual stimulus consisting of high contrast black and white stripes generated using the OKN Stripes Visualization Web Application, a freely available software. The rat is placed inside a clear Plexiglass holder that limits&#160;movement so that the&#160;rat&#39;s head continuously faces the OKN display screen. The position of the rat holder can be changed to adjust the distance between the rat and the display screen. A micro-camera positioned above the rat holder is used to record the rat&#39;s visual activities. These recordings can be used for quantitative assessments. Based on the presence or absence of clear head-tracking, the OKN responses at different spatial frequencies can be determined. The collected data demonstrates a novel technique for reliable measurement of visual acuity in normal and retinal degenerate rats.

<meta charset="utf8"></head><body>쥐의 시력을 측정하기 위한 새로운 광학 검사 방법

The Optokinetic Nystagmus (OKN) behavioral testing method is used for the assessment of visual acuity in rodents. Here a simple method is demonstrated that can be easily set up in research laboratories for a reliable assessment of visual function in both normal and experimental rats.

쥐의 시력을 측정하기 위한 새로운 광학 검사 방법

Optokinetic nystagmus (OKN) is a reflexive eye movement initiated by the motion of visual stimuli in the field of vision. The head-tracking movement ...

생쥐의 광동태 반사 반응 평가: 새로운 고정밀 프로토콜

Quantification of Visual Feature Selectivity of the Optokinetic Reflex in Mice

The optokinetic reflex (OKR) is an essential innate eye movement that is triggered by the global motion of the visual environment and serves to stabilize retinal images. Due to its importance and robustness, the OKR has been used to study visual-motor learning and to evaluate the visual functions of mice with different genetic backgrounds, ages, and drug treatments. Here, we introduce a procedure for evaluating OKR responses of head-fixed mice with high accuracy. Head fixation can rule out the contribution of vestibular stimulation on eye movements, making it possible to measure eye movements triggered only by visual motion. The OKR is elicited by a virtual drum system, in which a vertical grating presented on three computer monitors drifts horizontally in an oscillatory manner or unidirectionally at a constant velocity. With this virtual reality system, we can systematically change visual parameters like spatial frequency, temporal/oscillation frequency, contrast, luminance, and the direction of gratings, and quantify tuning curves of visual feature selectivity. High-speed infrared video-oculography ensures accurate measurement of the trajectory of eye movements. The eyes of individual mice are calibrated to provide opportunities to compare the OKRs between animals of different ages, genders, and genetic backgrounds. The quantitative power of this technique allows it to detect changes in the OKR when this behavior plastically adapts due to aging, sensory experience, or motor learning; thus, it makes this technique a valuable addition to the repertoire of tools used to investigate the plasticity of ocular behaviors.

저자 스포트라이트: 생쥐에서 광학 동태 반사의 시각적 특징 선택성을 연구하기 위한 정확하고 정량적인 접근 방식 

Here, we describe a standard protocol for quantifying the optokinetic reflex. It combines virtual drum stimulation and video-oculography, and thus allows precise evaluation of the feature selectivity of the behavior and its adaptive plasticity.

생쥐에서 광동태 반사의 시각적 특징 선택성 정량화

The optokinetic reflex (OKR) is an essential innate eye movement that is triggered by the global motion of the visual environment and serves to stabilize ...

눈 기구학 생체 외에서 거북이에 두개골 신경의 자극에 의해 측정

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VisioTracker, 눈 돌림 분석에 대한 혁신적인 자동화 된 접근

마우스의 비디오 - oculography

자유 모션 플랫폼의 여섯도를 사용하여 세 가지 차원 전정 안구 반사 테스트

Zebrafish의 시력의 정량적 측정과 Optokinetic 응답

쥐와 쥐에 구조와 기능적 시각 시스템 판독으로 광학 일관성 단층 촬영 및 Optokinetic 응답을 사용 하 여

인 비보 큰 동물의 망막 신경 세포 및 시신경 기능 및 구조를 평가하는 방법

쥐의 시력을 측정하기 위한 새로운 광학 검사 방법

쥐의 시력을 측정하기 위한 새로운 광학 검사 방법

생쥐에서 광동태 반사의 시각적 특징 선택성 정량화

생쥐에서 광동태 반사의 시각적 특징 선택성 정량화