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Neste Artigo

  • Resumo
  • Resumo
  • Introdução
  • Protocolo
  • Resultados
  • Discussão
  • Divulgações
  • Agradecimentos
  • Materiais
  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

Vacinação profilática e terapêutica, muitas vezes não estimulam fortes respostas imunes, devido à semana de drenagem da vacina para os gânglios linfáticos e, consequentemente, fraco envolvimento das células do sistema imunológico. Por injecção directa de vacina para os nódulos linfáticos, assim chamada injecção intralinfática, a eficácia da vacina pode ser fortemente melhorada e as doses de vacina podem ser reduzidos.

Resumo

Vacinas são tipicamente injectado subcutaneamente ou intramuscularmente para estimulação de respostas imunes. O sucesso desta requer drenagem eficiente da vacina para os nódulos linfáticos onde as células apresentadoras de antigénio pode interagir com os linfócitos para a geração das respostas imunitárias desejadas. A força e o tipo de respostas imunitárias induzidas também depender da densidade ou da frequência de interacções bem como o microambiente, especialmente o teor de citocinas. Como apenas uma fração mínima de vacinas perifericamente injetados atinge os gânglios linfáticos, a vacinação de camundongos e humanos foram realizados por injecção directa da vacina em linfonodos inguinais, ou seja, injeção intralinfática. No homem, o procedimento é guiada por ultra-sons. Nos ratos, uma pequena (5-10 mm) incisão é feita na região inguinal de animais anestesiados, o nó de linfa é localizada e imobilizada com uma pinça, e um volume de 10-20 mL da vacina é injectada sob controle visual.A incisão é fechada com um único ponto com suturas cirúrgicas. Os ratinhos foram vacinados com ADN de plasmídeo, ARN, péptidos, proteínas, partículas, e bactérias, bem como adjuvantes, e foi observada forte melhoria da resposta imune contra todos os tipos de vacinas. O método intralinfática da vacinação é especialmente adequada em situações onde a vacinação convencional produz imunidade insuficientes ou quando a quantidade de vacina disponível é limitado.

Introdução

As vacinas são tipicamente injectados por via subcutânea ou intramuscular para a estimulação de respostas imunitárias. O sucesso deste procedimento requer a drenagem eficiente da vacina para os nódulos linfáticos onde as células apresentadoras de antigénio pode interagir com os linfócitos para a geração de t-e as respostas de células-B. Além disso, a força e o tipo de respostas imunitárias induzidas também depender da densidade ou da frequência de tais interacções, bem como o próprio microambiente, especialmente o teor de citocinas. Como apenas uma pequena fração de uma vacina injetada em um tecido periférico atinge um gânglio linfático, a vacinação de camundongos e humanos por injeção direta de vacina para os gânglios linfáticos, o site foram gerados respostas imunes, foram realizados. No homem, o procedimento é guiada por ultra-sons, um procedimento também utilizados para a administração de agentes de imagem para visualização de diagnóstico e do sistema linfático. Em ratinhos, o procedimento é invasivo. Aqui, uma pequena (5-10 mm) incision é feita na região inguinal de animais anestesiados 1, o nó de linfa é localizada e imobilizada com uma pinça, e um volume de 10-20 mL da vacina é injectada sob controlo visual, 10 ul é usado para as primeiras injecções e em ratos jovens com linfonodos pequenos, enquanto que 20 l pode ser injetado em linfonodos do mais velho ou camundongos já vacinadas, que têm nódulos linfáticos maiores. A incisão pode ser fechada com um único ponto com suturas cirúrgicas. Por este método, os ratos foram vacinados com plasmídeo de DNA de 2,3, o RNA mensageiro 4, 1,3,5,6 péptido, proteína 7-10, as partículas 11, 12 bactérias, bem como adjuvantes de 7,13, e uma forte melhoria da imunitário respostas contra todos os tipos de vacinas têm sido observados. O método intralinfática da vacinação é especialmente adequada em situações onde a vacinação convencional produz imunidade insuficiente, ou quando a quantidade de vacina disponível é limitado ou very dispendioso. Em humanos, o método intralinfática de imunização foi aplicada a pacientes alérgicos 14,15 ou para pacientes com cancro 16-21. Embora a noção corrente de que o método é intralinfática é mais invasiva do que outros métodos de injectáveis, tais como injecções intramusculares e subcutâneas, a percepção da dor não é maior do que após a punção venosa de 15. Espera-se que a vacinação intralinfática vai se tornar uma alternativa ou complemento a outros métodos de vacinas profiláticas e terapêuticas, especialmente. Este artigo descreve em pormenor a forma como o processo de vacinação intralinfática é realizada em ratinhos. Todos os procedimentos descritos, foram aprovados pela Agência Veterinária Cantonal de Zurique e realizada de acordo com as diretrizes federais suíços e directivas relativas à protecção dos animais utilizados para fins científicos.

Protocolo

1. Anestesia dos Ratos

  1. Prepare os anestésicos pela mistura de quetamina (anestésico dissociativo) e xilazina (sedativo e analgésico) em salina. As concentrações de cetamina e xilazina na solução final é de 12,5 e 2 mg / ml, respectivamente.
  2. Injectar os anestésicos para a ratinhos por via intraperitoneal usando uma seringa com uma agulha G 25-30. Use 0,1 ml/10 g de peso corporal.
  3. Aplique uma pomada oftálmica para os olhos dos ratos, a fim de evitar que resseque das córneas.
  4. Assegurar que o mouse é suficientemente anestesiados por beliscar o seu pé ou dedo do pé com a pinça. Se o rato não reage com reflexos para o aperto, proceder à cirurgia. Se o rato reage ao beliscão com reflexos ou contrações musculares, espere 1-2 minutos e repita o teste de pressão. Se o mouse ainda reage, substituir o mouse com um novo animal e repita os procedimentos a partir do passo 1.2 em diante.

2. Eu Surgicalncision da região inguinal do Rato

  1. Posicione o mouse sobre as suas costas.
  2. Molhar uma região inguinal com etanol desinfecção (70%). Para proporcionar uma melhor desinfecção, a região inguinal podem ser raspada para remover pele desinfecção prévia com etanol.
  3. Pegue a perna e dobrar a articulação do quadril para produzir um ângulo de aproximadamente 90 ° da articulação do quadril.
  4. Usando um fórceps curvos microdissecting, tirar a pele do rato na área inguinal, onde a articulação do quadril é dobrado e puxe a pele molhada ligeiramente.
  5. Enquanto mantém a pele com a pinça, corte uma pequena incisão (<5 mm) através da pele utilizando uma tesoura cirúrgica.
  6. Coloque a ponta da tesoura fechados na incisão e abrir ainda mais a incisão, abrindo a tesoura, mantendo-o dentro da incisão. Isto fará com que a pele se rasgar e deve produzir um diâmetro de menos de 10 mm. Nota: A fonte de luz fria, com guias de luz são flexíveis e podem ser utilizados para melhorar a visibilidade. Em mais velhosratinhos, especialmente do sexo masculino, a identificação do nó de linfa pode ser difícil devido à muito tecido adiposo na região inguinal.

3. Injeção intralinfática

  1. Prepara-se uma seringa (0,5 ml ou menos) com uma agulha hipodérmica de 28-30 G; bisel curto pode ser preferível a um bisel longo. Aspirar 10 mL da vacina a ser injectado e garantir que a seringa é livre de ar.
  2. Localizar o nó de linfa inguinal com a ajuda da pinça curvos e a ponta da tesoura fechada. O linfonodo aparecerá acinzentado dentro do tecido adiposo mais esbranquiçada e pode ser ainda identificados através de aferentes e eferentes capilares que entram e saem do linfonodo.
  3. Imobilizar o linfonodo, segurando-o entre os ramos das pinças curvas.
  4. Pegue na seringa e insira a agulha no nódulo linfático com o bisel virado para cima, certificando-se de todo o bisel entra no linfonodo.
  5. Injectar a vacina (10 ul). Se o aceno linfae é o inchaço (explodir), a injecção pode ser assumida de sucesso. Se a agulha não está colocada a uma profundidade suficiente para o linfonodo, alguns ou toda a vacina pode sair e não entrar no linfonodo. Se a agulha é inserida muito profundo, a vacina injetada será lançado via subcutânea abaixo do nó de linfa. Em caso deste último, repetir a injecção ou substituir o rato com uma nova rato não tratado.

4. Fechando a incisão com sutura

  1. Abrir um pacote de sutura cirúrgica estéril.
  2. Segure a agulha de sutura com um suporte de agulha na porção distal do corpo da agulha. Apertar o suporte de agulha, apertando-o até que as primeiras capturas de roquete.
  3. Segure a pele de um dos lados da incisão com a pinça (dependendo da preferência do cirurgião, dentada ou un-dentes fórceps ou ganchos na pele pode ser usado). Inserir a agulha de ca. 2-3 mm a partir da borda da incisão, que entra a partir do lado de fora da pele.
  4. Loosen preensão da pele com a pinça e agarrar o lado contrário ao da incisão com a pinça. Inserir a agulha de ca. 2-3 mm a partir da borda da incisão, que entra a partir do interior da pele.
  5. Soltar o suporte de agulha e agarrar a ponta da agulha com a pinça. Puxe a agulha com o piso através da pele, deixando um comprimento conveniente da banda de rodagem do lado de fora do primeiro ponto de agulha de inserção (se vários ratos estão a ser tratados, deixe uma extremidade mais curta; 5-10 camundongos pode ser operado com uma agulha de sutura / pisar).
  6. Fazer o nó preferido de acordo com protocolos padrão cirurgião. Um ponto é suficiente se a incisão não é maior do que 10 mm. Para incisões maiores, fazer um segundo ponto.

5. Tratamento Pós-operacional

  1. Posicione o mouse na gaiola e cubra com tecidos para manter aquecido. Ao tratar vários mouses, coloque-os próximos uns dos outros para se manter aquecido. Alternativamente, coloque os ratos em uma almofada quente até que tenham acordadopara cima.
  2. Observe os ratos até que eles acordam.
  3. Observe os ratos diariamente com relação à cicatrização de feridas, bem como outros sintomas clínicos, tais como infecções de feridas. A ferida é geralmente suficientemente fechado dentro de dois dias e curado dentro de sete dias do procedimento.

Resultados

O procedimento de injeções intralinfática em ratos, apesar da natureza cirúrgica, é direto e relativamente rápido. Uma pessoa treinada pode realizar o procedimento em 3-4 min. A incisão que é fechada com um ponto de cura normalmente dentro de dois dias (Figura 1)

Intralinfática vacinação ou imunização foi realizada com o ARNm, ADN plasmídeo, peptídeos, proteínas, vírus e bactérias. Figura 2 ilustra a produção de anticorpos após a imuniza...

Discussão

Imunização intralinfática e imunoterapia demonstraram ser apropriados para a estimulação de ambas as respostas de anticorpos e respostas de células-T. Como demonstrado neste vídeo-artigo, o procedimento de vacinação é intralinfática um método rápido e fácil para estimular fortes respostas imunitárias em ratinhos. Um cirurgião treinado pode realizar o procedimento durante 3-4 min. A sessão também pode ser compartilhada entre dois cirurgiões onde normalmente é fazer a anestesia ea sutura eo segundo cir...

Divulgações

TMK é apontado como inventor de patentes relacionadas com a imunoterapia intralinfática no homem. TMK foi consultor científico e recebeu as despesas de viagem de ImVisioN GmbH, Cytos Biotechnology, MannKind Corporation, e XBiotech EUA Inc. PJ não tem interesse conflito de divulgar.

Agradecimentos

Os autores são gratos pela ajuda experimental no desenvolvimento do método de imunização em camundongos intralinfática de Iris Erdmann, Barbara von Beust, e Julia Maria Martínez-Gómez. Obrigado também a Maggy Arras e Nikola Cesarovic por nos deixar usar seu teatro cirúrgico para esta produção de vídeo.

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Ketamine (Ketasol-100)Graeub AG, SwitzerlandAnesthetics
Xylazine (Rompun)Bayer, GermanyAnesthetics
Viscotears Eye-GelNovartis, SwitzerlandTo keep eyes from drying out during anesthesia.
BD Micro-Fine 0.5 mlBD Medical, France29 G Insulin syringes with permanently attached needles
6-0 Dermalon Monofilament nylonCovidien, MA, USAFor sutures (0.7 metric, 18G, 45 cm, Blue)
Curved forceps, 4.5 inchPolymed, SwitzerlandFor incision and holding of lymph node
Straight surgical scissors, 4.5 inchPolymed, SwitzerlandFor incision
Needle holder, 5.5 inchPolymed, SwitzerlandTo close incision with suture

Referências

  1. Johansen, P., et al. Direct intralymphatic injection of peptide vaccines enhances immunogenicity. Eur. J. Immunol. 35, 568-574 (2005).
  2. Maloy, K. J., et al. Intralymphatic immunization enhances DNA vaccination. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 98, 3299-3303 (2001).
  3. Smith, K. A., et al. Enhancing DNA vaccination by sequential injection of lymph nodes with plasmid vectors and peptides. Vaccine. 27, 2603-2615 (2009).
  4. Kreiter, S., et al. Intranodal vaccination with naked antigen-encoding RNA elicits potent prophylactic and therapeutic antitumoral immunity. Cancer Res. 70, 9031-9040 (2010).
  5. Johansen, P., et al. Antigen kinetics determines immune reactivity. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 5189-5194 (2008).
  6. Smith, K. A., et al. Lymph node-targeted immunotherapy mediates potent immunity resulting in regression of isolated or metastatic human papillomavirus-transformed tumors. Clin. Cancer Res. 15, 6167-6176 (2009).
  7. Johansen, P., et al. Toll-like receptor ligands as adjuvants in allergen-specific immunotherapy. Clin. Exp. Allergy. 35, 1591-1598 (2005).
  8. Johansen, P., et al. Heat denaturation, a simple method to improve the immunotherapeutic potential of allergens. Eur. J. Immunol. 35, 3591-3598 (2005).
  9. Martinez-Gomez, J. M., et al. Intralymphatic injections as a new administration route for allergen-specific immunotherapy. Int. Arch. Allergy Immunol. 150, 59-65 (2009).
  10. Martinez-Gomez, J. M., et al. Targeting the MHC class II pathway of antigen presentation enhances immunogenicity and safety of allergen immunotherapy. Allergy. 64, 172-178 (2009).
  11. Mohanan, D., et al. Administration routes affect the quality of immune responses: A cross-sectional evaluation of particulate antigen-delivery systems. J. Control Release. 147, 342-349 (2010).
  12. Waeckerle-Men, Y., et al. Lymph node targeting of BCG vaccines amplifies CD4 and CD8 T-cell responses and protection against Mycobacterium tuberculosis. Vaccine. 31, 1057-1064 (2013).
  13. von Beust, B. R., et al. Improving the therapeutic index of CpG oligodeoxynucleotides by intralymphatic administration. Eur. J. Immunol. 35, 1869-1876 (2005).
  14. Senti, G., et al. Intralymphatic immunotherapy for cat allergy induces tolerance after only 3 injections. J. Allergy Clin. Immunol. 129, 1290-1296 (2012).
  15. Senti, G., et al. Intralymphatic allergen administration renders specific immunotherapy faster and safer: a randomized controlled trial. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 17908-17912 (2008).
  16. Lesterhuis, W. J., et al. Route of administration modulates the induction of dendritic cell vaccine-induced antigen-specific T cells in advanced melanoma patients. Clin. Cancer Res. 17, 5725-5735 (2011).
  17. Fadul, C. E., et al. Immune response in patients with newly diagnosed glioblastoma multiforme treated with intranodal autologous tumor lysate-dendritic cell vaccination after radiation chemotherapy. J. Immunother. 34, 382-389 (2011).
  18. Eizenberg, P., et al. Acceptance of Intanza(R) 9 mug intradermal influenza vaccine in routine clinical practice in Australia and Argentina. Adv. Ther. 28, 640-649 (2011).
  19. Durando, P., et al. Adjuvants and alternative routes of administration towards the development of the ideal influenza vaccine. Hum. Vaccin. 7, 29-40 (2011).
  20. Barth, R. J., et al. A randomized trial of ex vivo CD40L activation of a dendritic cell vaccine in colorectal cancer patients: tumor-specific immune responses are associated with improved survival. Clin. Cancer Res. 16, 5548-5556 (2010).
  21. Schwaab, T., et al. Clinical and immunologic effects of intranodal autologous tumor lysate-dendritic cell vaccine with Aldesleukin (Interleukin 2) and IFN-{alpha}2a therapy in metastatic renal cell carcinoma patients. Clin. Cancer Res. 15, 4986-4992 (2009).
  22. Senti, G., Johansen, P., Kundig, T. M. Intralymphatic immunotherapy. Curr. Opin. Allergy Clin. Immunol. 9, 537-543 (2009).
  23. Catron, D. M., Itano, A. A., Pape, K. A., Mueller, D. L., Jenkins, M. K. Visualizing the first 50 hr of the primary immune response to a soluble antigen. Immunity. 21, 341-347 (2004).
  24. Itano, A. A., Jenkins, M. K. Antigen presentation to naive CD4 T cells in the lymph node. Nat. Immunol. 4, 733-739 (2003).
  25. Johansen, P., Mohanan, D., Martinez-Gomez, J. M., Kundig, T. M., Gander, B. Lympho-geographical concepts in vaccine delivery. J. Control Release. 148, 56-62 (2010).
  26. Johansen, P., von Moos, S., Mohanan, D., Kundig, T. M., Senti, G. New routes for allergen immunotherapy. Hum. Vacc. Immunother. 8, 1525-1533 (2012).
  27. Senti, G., Johansen, P., Kundig, T. M. Intralymphatic immunotherapy: from the rationale to human applications. Curr. Top. Microbiol. Immunol. 352, 71-84 (2011).
  28. Duthie, M. S., Windish, H. P., Fox, C. B., Reed, S. G. Use of defined TLR ligands as adjuvants within human vaccines. Immunol. Rev. 239, 178-196 (2011).
  29. Ribas, A., et al. Intra-lymph node prime-boost vaccination against Melan A and tyrosinase for the treatment of metastatic melanoma: results of a phase 1 clinical trial. Clin. Cancer Res. 17, 2987-2996 (2011).
  30. Bedrosian, I., et al. Intranodal administration of peptide-pulsed mature dendritic cell vaccines results in superior CD8+ T-cell function in melanoma patients. J. Clin. Oncol. 21, 3826-3835 (2003).
  31. Lesimple, T., et al. Injection by various routes of melanoma antigen-associated macrophages: biodistribution and clinical effects. Cancer Immunol. Immunother. 52, 438-444 (2003).
  32. Brown, K., et al. Adenovirus-transduced dendritic cells injected into skin or lymph node prime potent simian immunodeficiency virus-specific T cell immunity in monkeys. J. Immunol. 171, 6875-6882 (2003).
  33. Fong, L., Brockstedt, D., Benike, C., Wu, L., Engleman, E. G. Dendritic cells injected via different routes induce immunity in cancer patients. J. Immunol. 166, 4254-4259 (2001).

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