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Os métodos de produção de nanopartículas lipídicas à base de microfluídica (LNP) têm atraído atenção em sistemas de entrega de medicamentos (DDSs), incluindo a entrega de RNA. Este protocolo descreve os processos de fabricação, produção de LNP (LNP carregado de siRNA) e processos de avaliação do LNP usando nosso dispositivo microfluido original chamado iLiNP.
O desenvolvimento de nanopartículas lipídicas funcionais (LNPs) é um dos grandes desafios no campo dos sistemas de entrega de medicamentos (DDS). Recentemente, os sistemas de entrega de RNA baseados em LNP, ou seja, LNPs carregados de RNA têm atraído atenção para a terapia de RNA. Em particular, as vacinas LNP carregadas de mRNA foram aprovadas para prevenir o COVID-19, levando assim à mudança de paradigma para o desenvolvimento de nanomedicinas de próxima geração. Para as nanomedicinas baseadas no LNP, o tamanho do LNP é um fator significativo no controle da biodistribução do LNP e do desempenho do LNP. Portanto, uma técnica precisa de controle de tamanho do LNP é indispensável para o processo de produção do LNP. Aqui, relatamos um protocolo para a produção de LNP controlado por tamanho usando um dispositivo microfluido, chamado iLiNP. LNPs carregados de siRNA também são produzidos usando o dispositivo iLiNP e avaliados por experimento in vitro . Os resultados representativos são mostrados para o tamanho do LNP, incluindo LNPs carregados de siRNA, potencial Z, eficiência de encapsulamento de siRNA, citotoxicidade e atividade de silenciamento genético alvo.
A nanopartícula lipídica (LNP) é um dos nanocarriers mais utilizados para sistemas de entrega de RNA. Recentemente, os LNPs carregados de mRNA foram aprovados como vacinas para a prevenção do COVID-191,2,3. Geralmente, o tamanho do LNP desempenha um papel crucial no desempenho dos sistemas de biodistribuição e distribuição de medicamentos (DDS), incluindo silenciamento genético ou expressão proteica4,5,6. Portanto, é necessário um método preciso de controle de tamanho do LNP para o processo de produção do LNP.
Para a produção de LNPs controlados de tamanho, dispositivos microfluidos têm atraído atenção ao longo dos anos7. Em 2018, a primeira LNPs de SiRNA com siRNA (por exemplo, Onpattro) aprovada pela Food and Drug Administration (FDA) foi desenvolvida usando o dispositivo microfluido8,9. No método de produção de LNP baseado em microfluidic, uma solução lipídica e uma solução aquosa são introduzidas separadamente no dispositivo microfluido e, em seguida, misturadas no microcanal. Para aumentar a eficiência da mistura, o dispositivo de misturador caótico tem sido usado para a produção do LNP10,11,12. O dispositivo de misturador caótico permite produzir LNPs de tamanho específico.
Um simples dispositivo microfluido, chamado de produção invasiva de nanopartículas lipídicas (iLiNP), equipado com estruturas de defletor, foi desenvolvido para controlar o tamanho do LNP precisamente13,14. Em comparação com o dispositivo de misturador caótico, o dispositivo iLiNP foi capaz de controlar o tamanho do LNP variou de 20 a 100 nm em intervalos de 10 nm. Além disso, o dispositivo iLiNP produziu LNPs6 carregados de siRNA, LNPs 15 carregados de mRNA, LNPs 16 carregados de ribonucleoproteína e LNPs17 exossomo. O objetivo deste artigo é introduzir o processo de produção de LNP carregado de iLiNP e descrever o processo de avaliação do LNP produzido pelo dispositivo iLiNP.
1. Fabricação do dispositivo iLiNP
NOTA: O dispositivo iLiNP é fabricado usando o método de litografia suave padrão18. O protocolo de fabricação detalhado foi relatado anteriormente10,13.
2. Preparação de soluções lipídicas
3. Preparação de soluções aquosas
4. Preparação da solução siRNA/tampão
5. Configuração do dispositivo iLiNP e produção de LNPs
NOTA: Consulte a Figura 1 para os esquemas.
6. Diálise da suspensão do LNP e medição do tamanho do LNP
7. Medição do potencial Z do LNP
NOTA: Para a medição do potencial Z, foi utilizado um analisador de partículas (ver Tabela de Materiais) seguindo a instrução do fabricante.
8. eficiência de encapsulamento siRNA por ensaio RiboGreen
NOTA: O ensaio ribogreen é realizado para avaliar o encapsulamento de siRNA em LNPs19. O ensaio ribogreen pode medir a quantidade de RNAs dentro e fora de LNPs com/sem um surfactante (por exemplo, TritonX-100).
9. Cultura celular
10. Ensaio de viabilidade celular
11. Ensaio de knockdown genético luciferase
A Figura 2A,B mostra a distribuição do tamanho do LNP POPC produzida em diferentes condições de fluxo. O método de preparação do LNP baseado em microfluidic pode controlar o tamanho dos LNPs pelas condições de fluxo, como a taxa de fluxo total (TFR) e a FRR. Comparado com os dispositivos microfluidos típicos, incluindo o dispositivo de misturador caótico e o dispositivo microfluido com foco de fluxo, o dispositivo iLiNP permitiu um controle preciso do tamanho do LNP variando de 20 a 100 nm (Figura 2). LNPs de pequeno porte formados em altas condições de fluxo total. Além disso, os tamanhos do LNP formados na RR de 5 foram menores do que os da RSR de 3, independentemente da taxa de fluxo total13.
LNPs carregados de siRNA também foram preparados usando o dispositivo iLiNP (Figura 3A). Para a preparação do LNP carregado de siRNA, DOTAP, um lipídio cônico, foi usado para encapsular o siRNA nos LNPs efetivamente. O dispositivo iLiNP produziu LNPs casáticos carregados de siRNA de 90 nm com distribuição estreita (Figura 3A,B). A eficiência de encapsulamento do siRNA foi de 95% devido à interação eletrostática entre o lipídico tóctico e siRNAs carregados negativamente (Figura 3C).
A citotoxicidade e a atividade de silenciamento genético de LNPs carregados de siRNA de 90 nm foram avaliados como mostrados na Figura 4 e Figura 5. LNPs carregados de siRNA mostraram citotoxicidade em uma dose de 10 e 100 nM siRNA. Também confirmamos que o nível de expressão da luciferase foi diminuído dependendo da concentração de sirna. Os LNPs carregados de siRNA suprimiram 80% de expressão de luciferase em uma dose de siRNA de 100 nM. O efeito do tamanho do LNP na atividade de silenciamento genético foi relatado anteriormente6,13,17.
Figura 1: (A) Ilustração esquemática e (B) fotografia do dispositivo iLiNP. O dispositivo iLiNP é composto por PDMS e substratos de vidro. O dispositivo iLiNP está conectado aos capilares PEEK com uma supercola. As soluções lipídicas e siRNA/buffer são introduzidas separadamente no dispositivo iLiNP usando bombas de seringa. A suspensão do LNP é coletada em um microtubo. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 2: Distribuições de tamanho POPC LNP produzidas pelo dispositivo iLiNP nas diferentes taxas de fluxo (FRR). O tamanho do LNP POPC é medido pela dispersão dinâmica de luz (DLS). Os LNPs POPC são preparados alterando a taxa de fluxo total e a FRR: (A) 3 FRR e (B) 5 FRR. Os LNPs de pequeno porte são formados em altas condições de fluxo total. Além disso, os tamanhos do LNP formados na RS foram menores do que os da RS 3. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 3: Caracterização dos LNPs carregados de siRNA. (A) A distribuição de tamanho dos LNPs carregados de siRNA. siRNAs (siGL4) são encapsulados nos LNPs por interação eletrostática entre o lipídio cationico (DOTAP) e siRNAs carregados negativamente. (B) Potencial Z dos LNPs carregados de siRNA. A suspensão do LNP foi diluída com tampão HEPES de 10 mM (pH 7.4) antes da medição. Os dados são representados como ± média SD (Desvio Padrão). n = 3. (C) eficiência de encapsulamento siRNA dos LNPs baseados em DOTAP. A eficiência de encapsulamento foi determinada pelo ensaio RiboGreen. Os dados são representados como média ± SD. n = 3. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 4: Citotoxicidade dos LNPs carregados de siRNA. Os LNPs carregados de siRNA foram diluídos com DMEM (-)) para obter as concentrações siGL4 de 10 e 100 nM. As suspensões do LNP são adicionadas às células HeLa-dLuc e incubadas por 4 h a 37 °C em uma incubadora de CO2 de 5%. N.T.: Não tratado (D-PBS(-)). Os dados são representados como a média ± SD. n = 3. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
Figura 5: A atividade de knockdown genético luciferase tratada com LNPs carregados de siRNA. LNPs carregados de siRNA são preparados da mesma forma que o ensaio de viabilidade celular. O nível de expressão da luciferase é medido usando o Sistema de Ensaio Luciferase Dual-Glo. N.T.: Não tratado (D-PBS(-)). Os dados são representados como média ± SD. n = 3. Clique aqui para ver uma versão maior desta figura.
O tamanho do LNP afeta a biodistribução do LNP, o efeito anti-tumor e o desempenho do silenciamento genético. Portanto, o método de controle de tamanho lnp é uma técnica significativa para a produção de nanomedicinas DDS, incluindo sistemas de entrega de RNA. O objetivo deste artigo é introduzir o dispositivo iLiNP para ajuste de tamanho preciso de LNPs e sua aplicação à produção de LNPs carregados de siRNA. O dispositivo iLiNP foi capaz de controlar o tamanho do LNP que variou de 20 a 100 nm (Figura 2)13. Quando as condições de fluxo, como a taxa de fluxo total e a FRR são alteradas para controlar o tamanho do LNP, a suspensão do LNP deve ser coletada após cerca de 5 a 10 s para estabilizar o fluxo da solução. A suspensão do LNP coletada da tomada do dispositivo iLiNP foi diátria imediatamente contra a solução tampão para remover o etanol e evitar a agregação do LNP.
O controle de tamanho do LNP é um dos grandes desafios no campo do DDS. Geralmente, o processo convencional de produção do LNP, como o método de hidratação de filme lipídeído, precisa de um processo de ajuste de tamanho após a produção do LNP20. Por outro lado, o método de produção de LNPs baseado em microfluidic pode produzir os LNPs controlados pelo tamanho, introduzindo as soluções lipídicas e aquosas no dispositivo microfluido6,11,13. Embora o processo de diálise seja necessário para remover o etanol da suspensão do LNP, um processo contínuo pelo dispositivo microfluido aliado ao sistema de fluxo tangencial promete a automação do processo de produção do LNP14. De acordo com a literatura, os tamanhos do POPC LNP foram de 50-60 nm e 30-60 nm, para o dispositivo microfluido com foco de fluxo21 e o dispositivo de batedeira caótico, respectivamente10. Comparado com outros dispositivos microfluidos, o dispositivo iLiNP permite o controle de tamanho popc LNP em uma ampla gama de 20 a 100 nm.
O processo de fabricação do dispositivo iLiNP empregado foi a litografia suave padrão. Assim, o dispositivo iLiNP pode ser produzido em massa pela técnica de prototipagem rápida e evitar a contaminação cruzada de soluções usando um dispositivo descartável. O dispositivo iLiNP pode produzir LNPs carregados de siRNA da mesma forma que o método de produção do POPC LNP. Para o método de produção do LNP usando o dispositivo iLiNP, o usuário não requer procedimentos complicados. Por essas razões, espera-se que o método de produção de LNP baseado em microfluidic, incluindo o dispositivo iLiNP, seja empregado como o método padrão de produção do LNP. O protocolo deste artigo pode ser adaptado a outros dispositivos microfluidos para produção de LNP. Além disso, a produção de LNPs carregados de mRNA também é habilitada alterando a solução siRNA/buffer para uma solução tampão contendo mRNAs.
Os autores não têm nada a revelar.
Este trabalho foi apoiado pelo JST, CREST Grant Number JPMJCR17H1, Japão, JST, PRESTO Grant Number JPMJPR19K8, Japão, JST, SCORE, Japan, the Special Education and Research Expenses do Ministério da Educação, Cultura, Esportes, Ciência e Tecnologia, JSPS KAKENHI Grant Number JP19KK0140, e Iketani Science and Technology Foundation.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
1-palmitoyl-2-oleoyl-sn-glycero-3-phosphocholine (POPC) | NOF Corp. | MC-6081 | |
1,2-dimyristoyl-rac-glycero-3-methoxypolyethylene glycol-2000 (DMG-PEG2K) | NOF Corp. | GM-020 | |
1,2-dioleoyloxy-3-trimethylammonium propane (DOTAP) | NOF Corp. | CL-8181TA | |
1,2-Distearoyl-sn-glycero-3-phosphocholinev (DSPC) | NOF Corp. | MC-8080 | |
10 x D-PBS (-) | FUJIFILM Wako Pure Chemical Corp. | 048-29805 | |
Acetic acid | FUJIFILM Wako Pure Chemical Corp. | 017-00251 | |
CellTiter-Blue Cell Viability Assay | Promega | G8081 | |
cholesterol | Sigma-Aldrich | C8667-5G | |
Desktop maskless lithography system | NEOARK CORPORATION | DDB-701-DL4 | |
Dialysis membrane | Repligen | 132697 | |
Dual-Glo Luciferase Assay System | Promega | E2940 | |
Fetal bovine serum (FBS) | Thermo Fisher Scientific | Lot: 42G6587K | |
G418 | Nacalai Tesque | 08973-14 | |
Glass substrate | Matsunami Glass Ind., Ltd. | S1111 | |
Glass syringe | Hamilton | GASSTIGHT 1002 | |
HeLa cell | HeLa-dluc cells were provided from Dr. Yusuke Sato at Hokkaido University | ||
HEPES | FUJIFILM Wako Pure Chemical Corp. | 342-01375 | |
Low-glucose Dulbecco’s modified Eagle medium (DMEM) | Sigma-Aldrich | D6046-500ML | |
Oxygen plasma cleaner | Femto Science | CUTE-1MP/R | |
Penicillin–streptomycin, trypsin (2.5%) | Thermo Fisher Scientific | 15140122 | |
Quant-iT RiboGreen RNA Reagent | Thermo Fisher Scientific | R11491 | |
siGL4 | Hokkaido System Science Co., Ltd | The sense and antisense strand sequences of siGL4 are 5'-CCGUCGUAUUCGUGAGCAATsT -3' and 5'-UUGCUCACGAAUACGACGGTsT -3', respectively. | |
Silicon wafer | GTC | ||
SILPOT 184 W/C (PDMS) | Dow Corning Toray Co., Ltd. | silicone base and curing agent are included | |
Sodium acetate | FUJIFILM Wako Pure Chemical Corp. | 192-01075 | |
Sodium chloride | FUJIFILM Wako Pure Chemical Corp. | 191-01665 | |
SU-8 3050 | Nippon Kyaku Co., Ltd. | ||
Syringe connector | Institute of microchemical Technology Co., Ltd. | ISC-011 | |
Syringe pump | Chemyx | CX07200 | |
trichloro(1H,1H,2H,2H-perfluorooctyl)silane | Sigma-Aldrich | 448931-10G | |
TritonX-100 | Nacalai Tesque | 35501-15 | |
UltraPure DNase/RNase-Free Distilled Water | Thermo Fisher Scientific | 10977015 | |
Zetasizer Nano ZS | Malvern Instruments | ZEN3600 |
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