É necessária uma assinatura da JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou comece sua avaliação gratuita.
Method Article
Este protocolo descreve a geração de uma explanta de fáscia de pele chamada "SCar like tissue in A Dish" ou SCAD. Este modelo permite uma visualização sem precedentes de fibroblastos únicos durante a formação da cicatriz.
A resposta global dos mamíferos à vedação de feridas profundas de tecido é através da formação de cicatrizes e contração tecidual, mediada por fibroblastos especializados de fáscia. Apesar da significância clínica da formação da cicatriz e da cicatrização prejudicada da ferida, nossa compreensão da dinâmica do fibroblasto de fáscia na cicatrização das feridas é superficial devido à falta de ensaios relevantes que possibilitem a visualização direta da coreografia e dinâmica do fibroblasto em ambientes complexos, como nas feridas da pele. Este artigo apresenta um protocolo para gerar cicatrizes de pele ex-situ usando SCAD ou "Tecido semelhante a SCar em Um Prato" que emulam o ambiente complexo de feridas cutâneas. Neste ensaio, a pele de 2 mm de espessura total é extirpada e cultivada de cabeça para baixo na mídia por 5 dias, durante os quais cicatrizes e contraturas de pele se desenvolvem uniformemente. Essa metodologia, aliada aos modelos específicos de camundongos transgênicos da linhagem do fibroblasto, permite a visualização de linhagens individuais de fibroblasto em todo o processo de reparação da ferida. No geral, esse protocolo auxilia os pesquisadores na compreensão de processos fundamentais e mecanismos de reparação de feridas, explorando diretamente os efeitos dos moduladores nos desfechos de cicatrização de feridas.
A cicatrização de feridas é um processo de restauração de feridas violadas. Lesões teciduais em invertebrados resultam em regeneração parcial ou completa. Em contraste, os mamíferos respondem a ferimentos profundos por cicatrizes, um processo adaptado para selar rapidamente feridas com densas fibras matriciais que minimizam a área rompida e, ao mesmo tempo, deformam permanentemente o localferido 1,2,3. Queimaduras de pele grandes ou feridas profundas abertas em mamíferos resultam em fenótipos patológicos, como cicatrizes hipertróficas ou queloides 4,5. Essas cicatrizes exuberantes causam um enorme fardo nos sistemas de saúde clínicos e globais. Só nos EUA, a gestão de cicatrizes custa cerca de US$ 10 bilhões por ano 6,7. Portanto, o desenvolvimento de metodologias relevantes é necessário para entender melhor os processos e mecanismos de fundemental envolvidos na formação de cicatrizes.
Nos últimos anos, uma ampla gama de estudos em camundongos revelou populações fibroblastos heterogêneas com potências funcionais distintas com base em suas origens em certos locais de pele 8,9,10. Na pele traseira, Rinkevich et al., 2015, identificaram que uma população específica de fibroblasto com uma expressão embrionária precoce de Engrailed-1 (En1), denominada EPF (Engrailed positive fibroblast) contribui para cicatrizes cutâneas ao ferir. Por outro lado, outra linhagem fibroblasto sem histórico de expressão engrida, o fibroblasto negativo Engrailed (ENF), não contribui para a formação da cicatriz8. O mapeamento do destino dessas linhagens En1 usando linhas de mouse transgênicas orientadas por Cre cruzadas para linhas de mouse repórter fluorescência, como R26mTmG (En1Cre x R26mTmG) permite a visualização de populações de EPF e ENF.
Estudar a migração do fibroblasto in vivo ao longo de vários dias é limitado por restrições éticas e técnicas. Além disso, telas de biblioteca de anticorpos compostos, virais e neutralizantes para modular caminhos envolvidos em cicatrizes é tecnicamente desafiador. Modelos in vitro ou ex vivo anteriormente utilizados não têm a capacidade de visualizar a migração de fibroblastos e a formação de cicatrizes em microambientes genuínos da pele, uniformidade no desenvolvimento de cicatrizes, bem como complexidade tecidual que emula ambientes de pele in vivo 11,12. Para superar as limitações acima, desenvolvemos um ensaio de cicatrização ex vivo denominado SCAD (tecido semelhante a SCar em Um Prato)13,14. Este ensaio simples pode ser realizado excisando a pele de 2 mm de espessura total contendo a epiderme, a derme e as regiões de fáscia subcutânea e culturando-as em mídia DMSO suplementada por soro por até 5 dias. Cicatrizes geradas a partir de SCAD replicam de forma confiável marcas transcriômicas e proteômicas de cicatrizes in vivo. Além disso, SCADs gerados a partir de linhas de camundongos transgênicos relevantes (por exemplo, ratos En1) cruzadas com linhas de mouse repórter fluorescente permitem a visualização da dinâmica de migração do fibroblasto e desenvolvimento de cicatrizes em uma resolução sem precedentes. Além disso, este modelo pode ser facilmente adaptado para quaisquer aplicações de alto rendimento (por exemplo, biblioteca composta, biblioteca de anticorpos ou triagem viral)13,14. Neste artigo, descrevemos um protocolo otimizado para gerar SCADs e subsequentes aplicações de processamento a jusante para estudar a dinâmica celular e matricial no desenvolvimento de cicatrizes.
O modelo apresentado abaixo fornece uma descrição detalhada passo a passo da geração de ensaio SCAD, conforme descrito brevemente em Jiang et al., 202013. Os preparativos da amostra SCAD foram realizados após o sacrifício dos animais, de acordo com as diretrizes internacionais e do Governo da Alta Baviera. Os animais estavam alojados na instalação de animais do Centro Helmholtz de Munique. Os quartos foram mantidos com umidade ideal e temperatura constante com ciclo de luz de 12 horas. Os animais eram abastecidos com comida e água ad libitum.
1. Preparação do tecido SCAD
2. SCAD - Cultura tecidual
3. Imagem ao vivo de SCADs
4. Colheita de tecidos e coloração de imunofluorescência 2D/3D
A geração de SCADs pode ser separada em três etapas essenciais: a colheita da pele de volta de camundongos P0-P1, gerando socos de biópsia de espessura total, e cultura subsequente de scads individuais até 5 dias em placas de 96 poços. Como leitura, este ensaio pode ser aplicado ainda para analisar os aspectos espaciais e temporais das cicatrizes. A análise espacial utiliza rotulagem imune 2D e 3D de tecidos para estudar a localização espacial de componentes celulares e maticiais dentro do tecido cicatricial em ...
Vários modelos já foram desenvolvidos para entender a formação da cicatriz após lesão. Embora muitos avanços tenham sido apresentados a este respeito, mas, os mecanismos reais ainda não estão claros. Em contraste com a técnica anterior, o modelo SCAD incorpora todos os tipos de células e camadas cutâneas, mantendo assim a complexidade da pele nativa 18,19. Essa metodologia é capaz de gerar conjuntos de dados fundamentais que são importantes na compr...
Todos os autores declaram que não há interesses concorrentes.
Reconhecemos todos os coautores de Jiang et al. 2020 por contribuir para o desenvolvimento da metodologia SCAD13. Agradecemos ao Dr. Steffen Dietzel e à instalação do núcleo de bioimagem da Ludwig-Maximilans-Universität pelo acesso ao sistema Multifotônio. Y.R. foi apoiado pelo Else-Kröner-Fresenius-Stiftung (2016_A21), pelo European Research Council Consolidator Grant (ERC-CoG 819933) e pela FUNDAÇÃO LEO (LF-OC-21-000835).
Name | Company | Catalog Number | Comments |
10% Tween 20, Nonionic Detergent | Biorad Laboratories | 1610781 | |
Bovine serum albumin, Cold ethanol fract | Sigma | A4503-50G | |
DMEM/F-12, HEPES, no phenol red-500 mL | LIFE Technologies | 11039021 | |
DPBS, no calcium, no magnesium | Gibco | 14190169 | |
Epredia Cryostar NX70 Cryostat | Thermo Scientific | ||
Epredia SuperFrost Plus Adhesion slides | Fisher scientific | J1800AMNZ | Adhesion slides |
Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated, E.U.-approved, South America Origin-500 mL | LIFE Technologies | 10500064 | |
Fluoromount-G with DAPI | Life Technologies | 00 4959 52 | Mounting medium with DAPI |
Forceps curved with fine points with guidepinstainless steel(tweezers)125 mm length | Fisher Scientific | 12381369 | |
Gelatin from porcine skin | Sigma | G2500-100G | |
GlutaMAX Supplement-100 mL | LIFE Technologies | 35050038 | |
HBSS, calcium, magnesium, no phenol red-500 mL | LIFE Technologies | 14025092 | |
Ibidi Gas incubation system for CO2 and O2 | Ibidi | 11922 | |
Ibidi Heating system | Ibidi | 10915 | |
Leica SP8 upright microscope - Multiphoton excitation 680–1300 nm | Leica | Equipped with a 25x water-dipping objective (HC IRAPO L 25x/1.00 W) in combination with a tunable laser (Spectra-Physics, InSight DS + Single) | |
Non Essential Amino Acids | LIFE Technologies | 11140035 | |
NuSieve GTG Agarose ,25 g | Biozym /Lonza | 859081 | |
OCT Embedding Matrix | Carlroth | 6478.1 | |
Paraformaldehyde, 16% W/V AQ. 10 x10 mL | VWR International | 43368.9M | |
Pen-Strep | Gibco | 15140122 | |
Stiefel Biopsy-Punch 2 mm | Stiefel | 270130 | |
Straight Sharp/Sharp Dissecting Scissors 11.4 cm | Fisher Scientific | 15654444 | |
Thimerosal Bioxtra, 97%–101% | Sigma-Aldrich | T8784-1G | |
Zeiss Axioimager M2 upright microscope | Zeiss |
Solicitar permissão para reutilizar o texto ou figuras deste artigo JoVE
Solicitar PermissãoThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos os direitos reservados