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Resumo

O espalhamento dinâmico de luz (DLS) surgiu como um ensaio adequado para avaliar o tamanho de partículas e a distribuição de complexos ferro-carboidratos administrados por via intravenosa. No entanto, os protocolos carecem de padronização e precisam ser modificados para cada complexo ferro-carboidrato analisado. O presente protocolo descreve a aplicação e considerações especiais para a análise da sacarose ferrosa.

Resumo

Complexos de nanopartículas ferro-carboidrato administrados por via intravenosa são amplamente utilizados para tratar a deficiência de ferro. Esta classe inclui vários complexos de nanopartículas estruturalmente heterogêneos, que exibem sensibilidade variável às condições requeridas para as metodologias disponíveis para caracterizar físico-quimicamente esses agentes. Atualmente, os atributos críticos de qualidade dos complexos ferro-carboidrato ainda não estão totalmente estabelecidos. O espalhamento dinâmico de luz (DLS) surgiu como um método fundamental para determinar o tamanho e a distribuição de partículas intactas. No entanto, ainda existem desafios em relação à padronização de metodologias entre laboratórios, modificações específicas necessárias para produtos individuais de ferro-carboidrato e como a distribuição de tamanho pode ser melhor descrita. É importante ressaltar que o diluente e as diluições seriadas utilizadas devem ser padronizados. A grande variância nas abordagens para preparação de amostras e relato de dados limita o uso de DLS para a comparação de agentes ferro-carboidratos. Neste artigo, detalhamos um protocolo robusto e facilmente reprodutível para medir o tamanho e a distribuição de tamanho do complexo ferro-carboidrato, a sacarose de ferro, usando a média Z e o índice de polidispersidade.

Introdução

Sacarose de ferro (IS) é uma solução coloidal composta por nanopartículas consistindo de um complexo de um núcleo polinuclear de ferro-oxihidróxido e sacarose. O SI é amplamente empregado para tratar a deficiência de ferro entre pacientes com uma ampla variedade de estados patológicos subjacentes que não toleram a suplementação oral de ferro ou para os quais o ferro oral não é eficaz1. O SI pertence à classe de fármacos complexos definida pela Food and Drug Administration (FDA), que é uma classe de fármacos com química complexa compatível com os biológicos2. A avaliação regulatória de fármacos complexos pode requerer métodos físico-químicos ortogonais adicionais e/ou estudos pré-clínicos ou clínicos para comparar com precisão os fármacos complexos de follow-on 3,4. Isso é importante porque vários estudos relataram que o uso de SI versus um produto de SI de acompanhamento não produz os mesmos desfechos clínicos. Isso ressalta a criticidade do uso de técnicas de caracterização novas e ortogonais adequadas para detectar diferenças nas propriedades físico-químicas entre os produtos de SI 5,6.

A elucidação precisa do tamanho e da distribuição de tamanho do SI é de importância clínica, uma vez que o tamanho das partículas é um importante fator influente na taxa e extensão da opsonização, o primeiro passo crítico na biodistribuição desses complexos fármacos 7,8. Mesmo pequenas variações no tamanho de partículas e distribuição de tamanho de partículas têm sido relacionadas a mudanças no perfil farmacocinético de complexos nanoparticulados de óxido de ferro 9,10. Um estudo recente de Brandis e col. mostrou que o tamanho das partículas medidas pela DLS foi significativamente diferente (14,9 nm ± 0,1 nm vs. 10,1 nm ± 0,1 nm, p < 0,001) quando comparados um medicamento de referência listado e um produto genérico de gluconato férrico de sódio, respectivamente11. A qualidade, a segurança e a eficácia consistentes de lote a lote dos produtos de carboidrato de ferro dependem inteiramente do aumento da escala do processo de fabricação, e a possível deriva de fabricação deve ser cuidadosamente considerada9. O processo de fabricação pode resultar em sacarose residual, que varia de acordo com o fabricante12. Quaisquer modificações nas variáveis do processo de fabricação podem levar a mudanças significativas no produto final do fármaco complexo no que diz respeito à estrutura, estabilidade complexa e disposição in vivo 9.

Para avaliar a consistência do fármaco e predizer o comportamento in vivo do fármaco, metodologias analíticas ortogonais contemporâneas são necessárias para determinar as propriedades físico-químicas de nanomedicamentos complexos. No entanto, há falta de padronização das metodologias, o que pode resultar em um alto grau de variação interlaboratorial no relato dos resultados13. Apesar do reconhecimento desses desafios pelas autoridades regulatórias globais e pela comunidade científica14, a maioria das características físico-químicas dos SI permanece pouco definida, e o complemento completo dos atributos críticos de qualidade no contexto dos documentos de orientação regulatória disponíveis não foi definido15. Os rascunhos de documentos de orientação específicos de produtos emitidos pelo FDA para complexos ferro-carboidrato sugerem a DLS como um procedimento para avaliar o tamanho e a distribuição de tamanho dos produtos de follow-on16,17.

Várias publicações têm detalhado protocolos de DLS estabelecidos para determinar as dimensões das nanopartículas deSI13,18. No entanto, como a preparação da amostra, as condições do procedimento, a instrumentação e os parâmetros de ajuste da instrumentação são diferentes entre os métodos publicados, os resultados do DLS não podem ser diretamente comparados na ausência de um método padronizado para interpretar os resultados13,18. A diversidade de metodologias e abordagens de relato de dados limita a avaliação adequada dessas características para fins comparativos19. É importante ressaltar que muitos dos protocolos de DLS publicados anteriormente para avaliar o SI não explicam o efeito da difusão da sacarose na suspensão devido à presença de sacarose livre, que demonstrou elevar espuriosamente os raios hidrodinâmicos calculados pela média Z das nanopartículas em soluções coloidais13,18. O presente protocolo visa padronizar a metodologia para a medição do tamanho de partícula e distribuição do SI. O método foi desenvolvido e validado para este fim.

Protocolo

1. Operação da máquina

  1. Iniciando a máquina e o software
    NOTA: A Figura Suplementar S1A-D descreve as etapas para iniciar a máquina e o software.
    1. Ligue o instrumento pelo menos 30 minutos antes de iniciar as medições e, em seguida, ligue o PC.
    2. Clique duas vezes no ícone do software do instrumento para iniciar o programa.
    3. Digite o nome de usuário e a senha na janela de login. Certifique-se de que cada usuário tenha sua própria conta.
    4. Aguarde até que as três barras pretas no canto inferior direito acendam verde, indicando que a unidade está pronta para operação.
    5. No caso de longos períodos de inatividade, quando o usuário for desconectado automaticamente, em Segurança, clique em Login e digite novamente a senha.
  2. Criando um arquivo de medição
    NOTA: Um novo arquivo de medição é criado no início de cada dia de medição. Todas as medições são listadas e armazenadas no arquivo de medição. Para obter detalhes desse procedimento, consulte Figura suplementar S2A-B.
    1. Crie um novo arquivo de medição clicando em Arquivo | Novo | Arquivo de medição. Na janela aberta, selecione o local de armazenamento e nomeie o arquivo de medição. Confirme os detalhes clicando em Salvar.
    2. Para abrir um arquivo, clique em Arquivo | Aberto | Arquivo de medição. Selecione o arquivo de medição na janela aberta, confirme os detalhes clicando em Abrir, selecione o nome do arquivo e clique em Salvar.
  3. Imprimindo os resultados
    1. Imprimir ou guardar os resultados do teste de adequação do sistema (TSM) (ver passo 1.5) e o valor médio da medição da amostra de acordo com a Figura Suplementar S3.
    2. Marque a(s) medida(s) na Visualização de Registros do Arquivo de Medição.
    3. Clique com o botão direito do mouse em Batch Print e aguarde até que outra pequena janela seja aberta.
    4. Selecione o relatório de Intensidade PSD nas opções e confirme-o clicando em OK.
  4. Procedimento geral para iniciar uma medição
    NOTA: O procedimento para iniciar uma medição é descrito na Figura suplementar S4A-D. Siga o caminho descrito abaixo para o arquivo de parâmetro de unidade necessário (conhecido como SOP):
    1. Selecione o SOP necessário na lista suspensa. Como os POPs usados mais recentemente são exibidos na lista, se um SOP mais antigo for necessário, selecione Procurar SOP e confirme clicando na seta verde. Assim que o local de armazenamento dos POPs for aberto, prossiga com a etapa 1.4.2.
      NOTA: Para obter detalhes sobre os parâmetros importantes do sistema específicos para a sacarose de ferro (por exemplo, tempo de equilíbrio de um atenuador), consulte a Tabela 1.
    2. Na janela aberta, faça as entradas necessárias em Nome do exemplo e Anotações. Confirme clicando em OK e aguarde até que a janela de medição seja aberta automaticamente.
    3. Inicie a medição clicando no botão verde Iniciar .
    4. Quando um sinal acústico soar no final da medição, feche a janela de medição .
  5. Medição do teste de adequação do sistema (TSM)
    NOTA: Não toque na parte inferior da cubeta (zona de medição). No início e no final da sequência, meça o padrão de partículas de 20 nm.
    1. Encha ~1 mL do padrão de partículas não diluídas em uma cubeta de poliestireno e feche com a tampa.
      NOTA: O padrão diluído preparado na etapa 1.5.1 pode ser usado por 1 mês.
    2. Após o enchimento, feche a cubeta e verifique se há bolhas de ar. Remova as bolhas de ar batendo levemente na cubeta.
    3. Coloque a cubeta no suporte da célula do instrumento com a marca de seta voltada para a frente e feche a tampa da câmara de medição.
    4. Carregue o parâmetro de unidade SOP e insira os seguintes dados na janela inicial:
      Nome da amostra: SST 20 nm padrão de partícula
      Em seguida, adicione uma observação: Número identificador e data de validade do padrão
    5. Inicie a medição.
    6. Após o término da medição, quando soar o sinal acústico, feche a janela de medição.
    7. Imprimir o relatório (ver ponto 1.1.3).
      NOTA: O SST é passado se o tamanho da partícula Z-média corresponde ao valor do certificado de análise ± 10%.
  6. Medição da solução de sacarose de ferro
    1. Pipetar 0,5 ml de uma solução de SI com um teor de ferro de 2% m/V para um balão volumétrico de 25 ml e encher até ao traço com água de baixas partículas (por exemplo, recém-desionizada e filtrada [tamanho dos poros 0,2 μm]); esta solução contém 0,4 mg Fe/ml.
      NOTA: A preparação da amostra na etapa 1.6.1. com esta diluição específica foi estabelecida durante o desenvolvimento do método, e esta foi determinada como a diluição ideal para este fim.
    2. Para limpeza preliminar, encha a cubeta de poliestireno aproximadamente 3/4 cheia com a solução de medição preparada, gire suavemente e, em seguida, esvazie o mais completamente possível.
      NOTA: Não toque na parte inferior da cubeta (zona de medição) e evite bolhas de ar não agitando a cubeta.
    3. Para a medição, pipetar 1 mL da solução de medição para a cubeta e colocar uma tampa.
    4. Verifique se há bolhas de ar na solução de medição na cubeta. Se houver bolhas de ar, remova-as batendo levemente na cubeta.
  7. Realizando a medição
    1. Coloque a cubeta de plástico com a solução de medição no dispositivo com a marca de seta virada para a frente e feche a tampa.
    2. Carregue o parâmetro SOP (consulte a etapa 1.4.1) e insira os seguintes dados na janela inicial:
      Nome da amostra: Número do lote
    3. Inicie a medição.
    4. Após o término da medição, quando o sinal acústico soar, feche a janela de medição .
    5. Calcular o valor médio das seis medidas individuais de acordo com a Figura Suplementar S5. Marque as medidas individuais na Exibição de Registros do Arquivo de Medição, clique com o botão direito do mouse em Criar Resultado Médio, adicione o nome do valor médio em Nome da Amostra e confirme clicando em OK.
    6. Aguarde até que o software crie um novo registro no final da lista e procure o nome inserido e o resultado médio nesse registro.
    7. Imprima o relatório (consulte a etapa 1.1.3).

Resultados

O método descrito foi validado de acordo com a ICH Q2(R1)20, que envolveu a medição de soluções de teste sob condições variadas. A precisão foi de apenas 0,5% RSD para o tamanho Z-médio, enquanto um máximo de 3,5% RSD foi calculado para o PDI. Os resultados médios dos diferentes analistas e dias diferiram apenas 0,4% para o tamanho médio Z e 1,5% para o PDI. As estatísticas foram calculadas a partir de 12 medições realizadas por dois analistas em dias variados. Nem as alterações n...

Discussão

A DLS tornou-se um ensaio fundamental para a determinação do tamanho e distribuição de tamanho de nanopartículas para aplicações no desenvolvimento de fármacos e avaliação regulatória. Apesar dos avanços nas técnicas de DLS, ainda existem desafios metodológicos em relação à seleção de diluentes e preparação de amostras, que são especialmente relevantes para complexos ferro-carboidrato em soluções coloidais. É importante ressaltar que os métodos DLS para nanomedicamentos ferro-carboidrato ainda n...

Divulgações

M.B., E.P., M.W. e A.B. são funcionários da Vifor Pharma. G.B. é consultor da Vifor Pharma.

Agradecimentos

Nenhum

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Equipment
Zetasizer Nano ZSMalvernNAequipped with Zetasizer software 7.12, Helium Neon laser (633 nm, max. 4 mW) and 173° backscattering geometry
Materials
Disposable plastic cuvettes 
LLG-Disposable plastic cellsLLG labwareLLG-Küvetten, Makro, PS; Order number 9.406011
low-particle water (The use of freshly deionized and filtered (pore size 0.2 μm) water is recommended).
Microlitre pipette
Venofer 100 mg/5 mLVifor Pharma
Volumetric flask 25 mL
NanosphereThermo3020AParticle Standard
Software
Origin Pro v.8.5 Origin Lab Corporation

Referências

  1. Auerbach, M., Gafter-Gvili, A., Macdougall, I. C. Intravenous iron: A framework for changing the management of iron deficiency. Lancet Haematology. 7 (4), e342-e350 (2020).
  2. Generic drugs: FDA should make public its plans to issue and revise guidance on nonbiological complex drugs. US Government Accountability Office Available from: https://www.gao.gov/products/gao-18-80 (2017)
  3. Klein, K., et al. The EU regulatory landscape of non-biological complex drugs (NBCDs) follow-on products: Observations and recommendations. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 133, 228-235 (2019).
  4. Astier, A., et al. How to select a nanosimilar. Annals of the New York Academy of Sciences. 1407 (1), 50-62 (2017).
  5. Rottembourg, J., Kadri, A., Leonard, E., Dansaert, A., Lafuma, A. Do two intravenous iron sucrose preparations have the same efficacy. Nephrology Dialysis Transplantation. 26 (10), 3262-3267 (2011).
  6. Aguera, M. L., et al. Efficiency of original versus generic intravenous iron formulations in patients on haemodialysis. PLoS One. 10 (8), e0135967 (2015).
  7. Alphandery, E. Iron oxide nanoparticles for therapeutic applications. Drug Discovery Today. 25 (1), 141-149 (2020).
  8. Arami, H., Khandhar, A., Liggitt, D., Krishnan, K. M. In vivo delivery, pharmacokinetics, biodistribution and toxicity of iron oxide nanoparticles. Chemical Society Reviews. 44 (23), 8576-8607 (2015).
  9. Nikravesh, N., et al. Factors influencing safety and efficacy of intravenous iron-carbohydrate nanomedicines: From production to clinical practice. Nanomedicine. 26, 102178 (2020).
  10. Pai, A. B., et al. In vitro and in vivo DFO-chelatable labile iron release profiles among commercially available intravenous iron nanoparticle formulations. Regulatory Toxicology and Pharmacology. 97, 17-23 (2018).
  11. Brandis, J. E. P., et al. Evaluation of the physicochemical properties of the iron nanoparticle drug products: Brand and generic sodium ferric gluconate. Molecular Pharmaceutics. 18 (4), 1544-1557 (2021).
  12. Di Francesco, T., Sublet, E., Borchard, G. Nanomedicines in clinical practice: Are colloidal iron sucrose ready-to-use intravenous solutions interchangeable. European Journal of Pharmaceutical Sciences. 131, 69-74 (2019).
  13. Di Francesco, T., Borchard, G. A robust and easily reproducible protocol for the determination of size and size distribution of iron sucrose using dynamic light scattering. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis. 152, 89-93 (2018).
  14. The Center for Research on Complex Generics. US Food and Drug Administration Available from: https://www.fda.gov/drugs/guidance-compliance-regulatory-information/center-research-complex-generics (2021)
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  19. Q2 (R1) Validation of analytical procedures: Text and methodology guidance for industry. FDA-2017-D-6821. US Food and Drug Administration Available from: https://www.fda.gov/regulatory-information/search-fda-guidance-documents/q2r1-validation-analytical-procedures-text-and-methodology-guidance-industry (2005)
  20. Reflection paper on the data requirements for intravenous iron-based nano-colloidal products developed with reference to an innovator medicinal product. European Medicines Agency Available from: https://www.ema.europe.eu/en/documents/scientific-guideline/reflection-paper-data-requirements-intravenous-iron-based-nano-colloidal-products-developed_en.pdf (2015)
  21. Fischer, K., Schmidt, M. Pitfalls and novel applications of particle sizing by dynamic light scattering. Biomaterials. 98, 79-91 (2016).
  22. Caputo, F., et al. Asymmetric-flow field-flow fractionation for measuring particle size, drug loading and (in)stability of nanopharmaceuticals. The joint view of European Union Nanomedicine Characterization Laboratory and National Cancer Institute - Nanotechnology Characterization Laboratory. Journal of Chromatography A. 1635, 461767 (2021).
  23. Yusa, S., Narain, R. Chapter 6 - Polymer characterization. Polymer Science and Nanotechnology. , 105-124 (2020).

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