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Descrevemos aqui o enriquecimento de pequenas vesículas extracelulares derivadas de tecido de câncer hepático através de um método otimizado de ultracentrifugação diferencial.
Pequenas vesículas extracelulares (EVs) derivadas do tecido podem refletir o estado funcional das células-fonte e as características do espaço intersticial do tecido. O enriquecimento eficiente desses sEVs é um pré-requisito importante para o estudo de sua função biológica e uma chave para o desenvolvimento de técnicas de detecção clínica e tecnologia de carreadores terapêuticos. É difícil isolar os sEVs do tecido porque eles geralmente estão fortemente contaminados. Este estudo fornece um método para o enriquecimento rápido de sEVs de alta qualidade do tecido do cancro do fígado. O método envolve um processo de quatro etapas: incubação de enzimas digestivas (colagenase D e DNase Ι) com tecido, filtração através de filtro celular de 70 μm, ultracentrifugação diferencial e filtração através de filtro de membrana de 0,22 μm. Devido à otimização da etapa de ultracentrifugação diferencial e à adição de uma etapa de filtração, a pureza dos sEVs obtidos por este método é maior do que a obtida pela ultracentrifugação diferencial clássica. Ele fornece uma metodologia importante e dados de apoio para o estudo de sEVs derivados de tecido.
Pequenas vesículas extracelulares (EVs) têm aproximadamente 30 nm a 150 nm de diâmetro e são secretadas por várias células1. Eles podem se comunicar com as células do tecido e regular o microambiente local ou distante, transportando moléculas biológicas importantes, como lipídios, proteínas, DNA e RNA para vários órgãos, tecidos, células e partes intracelulares. Assim, também podem alterar o comportamento das células receptoras 2,3. O isolamento e purificação de sEVs específicos é um pré-requisito essencial para estudar seu comportamento biológico durante o desenvolvimento e curso da do....
O tecido de câncer de fígado humano foi coletado de pacientes diagnosticados com malignidade hepática no Primeiro Hospital Afiliado da Universidade de Medicina de Gannan. Todos os pacientes assinaram um termo de consentimento livre e esclarecido, e a coleta de amostras de tecido humano foi aprovada pelo comitê de ética do First Affiliated Hospital of Gannan Medical University. Consulte a Tabela de Materiais para obter detalhes relacionados a todos os materiais, equipamentos e softwares usados neste protocolo.
1. Preparo
Os sEVs de tecidos de câncer de fígado humano têm desempenhado um papel crucial no diagnóstico, tratamento e prognóstico de pacientes com câncer de fígado. Este método usou instrumentos de laboratório comuns para isolar e purificar sEVs derivados de tecidos de câncer de fígado; isso pode fornecer suporte metodológico para o estudo de EVs. A Figura 2 ilustra o processo geral de enriquecimento de EVs de tecidos de câncer de fígado. Os sEVs nos espaços intercelulares dos tecidos .......
Este protocolo descreve um método repetível para extrair sEVs do tecido de câncer de fígado. Os sEVs de alta qualidade são obtidos por isolamento tecidual nítido, tratamento com enzimas digestivas, ultracentrifugação diferencial e filtração e purificação da membrana filtrante de 0,22 μm. Para a análise a jusante, é extremamente importante garantir a alta pureza dos sEVs. No processo de centrifugação diferencial, uma camada de substâncias brancas (composição desconhecida) aparecerá na superfície do s.......
Os autores não têm conflitos de interesse a declarar.
Os autores agradecem ao Primeiro Hospital Afiliado da Gannan Medical University por apoiar este trabalho. Este trabalho foi apoiado pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (número de bolsa 82260422).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.22 µm Membrane Filter Unit | Millex | SLGPR33RB | |
1 mL Sterile syringe | Hubei Xianming Medical Instrument Company | YL01329 | |
2% Uranyl Acetate | Electron Microscopy Sciences | 22400-2 | |
4.7 mL Centrifuge Tube | Beckman Coulter | 361621 | |
6-well Cell cuture plate | LABSELECT | 11110 | |
50 mL Beaker | Tianjin Kangyiheng Experimental Instrument Sales Company | CF2100800 | |
70 µm Cell strainer | Biosharp | BS-70-XBS | |
100 mm Cell culture dish | CELL TER | CS016-0128 | |
600 µL Centrifuge tube | Axygen | MCT060C | |
BCA protein quantification kit | Thermo Fisher | RJ240544 | |
Beckman Coulter Optima-Max-TL | Beckman | A95761 | |
BioRad Mini trans-blot | Bio-Rad | 1703930 | |
BioRad Mini-Protean | Bio-Rad | 1645050 | |
CD63 Antibody | Abcam | ab134045 | |
CD9 Antibody | Abcam | ab263019 | |
Centrifuge 5430R | Eppendorf | 5428HQ527333 | |
Cleaning Solution | NanoFCM | C1801 | |
Collagenase D | Roche | 11088866001 | |
Copper net | Henan Zhongjingkeyi Technology Company | DJZCM-15-N1 | |
Dry Thermostat | Hangzhou allsheng instruments company | AS-01030-00 | |
FITC Anti Human CD9 Antibody | Elabscience | E-AB-F1086C | |
Glycine | Solarbio | G8200 | |
Goat horseradish peroxidase (HRP)-coupled secondary anti-mouse antibody | Proteintech | SA00001-1 | |
Goat horseradish peroxidase (HRP)-coupled secondary anti-rabbit antibody | Proteintech | SA00001-2 | |
Methanol | Shanghai Zhenxing Chemical Company | ||
Nanoparticle flow cytometer | NanoFCM INC | FNAN30E20112368 | |
Phosphatase inhibitors(PhosSTOP) | Roche | 4906845001 | |
Phosphate Buffered Saline(PBS) | Servicebio | G4202 | |
Polyvinylidene Difluoride Membrane | Solarbio | ISEQ00010 | |
QC Beads | NanoFCM | QS2502 | |
RPMI-1640 basic medium | Biological Industries | C11875500BT | |
Scalpel | Guangzhou Kehua Trading Company | NN-0623-1 | |
Silica Nanospheres | NanoFCM | S16M-Exo | |
Transference Decoloring Shaker TS-8 | Kylin-Bell | E0018 | |
Transmission Electron Microscope | Thermo Scientific | Talos L120C | |
Tris | Solarbio | T8060 | |
TSG101 Antibody | Proteintech | 28283-1-AP | |
Tweezer | Guangzhou Lige Technology Company | LG01-105-4X |
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