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A função plaquetária sob fluxo pode ser avaliada e a ressuscitação hemostática simulada pode ser modelada usando um dispositivo microfluídico, que tem aplicações em trauma e medicina transfusional.
A microfluídica incorpora substratos e fluxos fisiologicamente relevantes que mimetizam a vasculatura e são, portanto, uma ferramenta valiosa para estudar aspectos de trombose e hemostasia. Em ambientes de alto cisalhamento simulando fluxo arterial, um ensaio microfluídico facilita o estudo da função plaquetária, pois trombos ricos em plaquetas se formam em uma região estenótica localizada de um canal de fluxo. A utilização de dispositivos que permitem um pequeno volume de amostra também pode ajudar na avaliação da função plaquetária sob fluxo de amostras de pacientes com volume limitado ou modelos animais. O estudo de amostras de pacientes com trauma ou amostras após transfusão de produtos plaquetários pode ajudar a direcionar estratégias terapêuticas para populações de pacientes nas quais a função plaquetária é crítica. Os efeitos da inibição plaquetária via agentes farmacológicos também podem ser estudados neste modelo. O objetivo deste protocolo é estabelecer uma plataforma microfluídica que incorpore fluxo fisiológico, superfícies biológicas e mecanismos hemostáticos relevantes para avaliar a função plaquetária com implicações para o estudo da coagulopatia induzida por trauma e medicina transfusional.
O trauma é uma das principais causas globais de morte e incapacidade. A lesão grave é frequentemente complicada por um distúrbio endógeno único de hemostasia e trombose, denominado coagulopatia induzida por trauma (TIC)1. As plaquetas desempenham um papel crítico na TIC e foram descritas como tendo funções adaptativas e desadaptativas2. Os mecanismos da disfunção plaquetária após a lesão permanecem obscuros, e há uma necessidade crítica de entender melhor a resposta celular para orientar o desenvolvimento de ressuscitação e terapia aprimoradas. Um problema adicional incômodo em relação à....
Todas as pesquisas foram realizadas de acordo com as diretrizes institucionais. A aprovação do Escritório de Proteção à Pesquisa Humana da Universidade de Pittsburgh foi obtida e o consentimento informado de voluntários humanos saudáveis foi obtido.
1. Preparação do dispositivo microfluídico
Experimentos microfluídicos após o uso deste método devem mostrar a formação de trombos ricos em plaquetas na região de estenose do canal de fluxo (Figura 1). A Figura 1A ilustra resultados representativos em que as plaquetas funcionais formaram um trombo na região estenótica do canal para bloquear o fluxo sanguíneo através do canal. As curvas de intensidade média de fluorescência (MFI) das imagens cinéticas obtidas.......
O protocolo acima tem algumas etapas críticas para garantir a confiabilidade e reprodutibilidade dos experimentos. Primeiro, os anticorpos fluorescentes devem ser cuidadosamente considerados. Os anticorpos usados para detectar plaquetas na amostra não devem bloquear a função do receptor plaquetário da glicoproteína Ib (GPIb). A correspondência de lotes, sempre que possível entre os experimentos, também é fundamental para garantir a reprodutibilidade do sinal fluorescente. Outra.......
Os autores não têm conflitos de interesse a declarar.
Os autores reconhecem e agradecem a todos os doadores de sangue que participaram, bem como aos flebotomistas do Laboratório de Pesquisa em Medicina Transfusional e Trauma e ao Centro de Pesquisa Clínica e Translacional UPMC Montefiore pela assistência nas coletas. O SMS é suportado pelo K25HL161401. O MDN é suportado por 1R01HL166944-01A1.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Equipments | |||
Axio Observer | Zeiss | 491917-0001-000 | |
Bel-Art Space Saver Vacuum Desiccators | Fisher Scientific | 08-594-15A | |
Fisherbrand Isotemp Digital Hotplate Stirrer | Fisher Scientific | FB30786161 | |
Nutating Mixer | Fischer Scientific | 88-861-043 | |
OHAUS Scout Balance Scale | Uline | H-5852 | |
Oven | Fisher Scientific | 15-103-0520 | |
Plasma cleaner | Harrick | PDC-32G (115V) | |
Syringe Pump (PHD ULTRA CP, I/W PROGRAMMABLE) | Harvard Apparatus | 883015 | |
Zen 3.4 | Zeiss | Blue edition | Software |
Material | |||
1/16 inch ID - Barbed Elbow Connectors | Qosina | 11691 | |
10 mL syringe | Fischer Scientific | 14-955-459 | |
2-Hydroxypropyl-β-cyclodextrin | Cayman Chemicals | 16169 | 30% Dissolved in Phosphate buffered saline |
40-micron filters | Fischer Scientific | NC1469671 | |
CD41 antibody | Novus Biologicals | NB100-2614 | 1:600 Ratio in Whole Blood |
Chrono-Par Collagen Reagent | Chrono Log Corporation | 385 | 1:5 Ratio in 0.9% Saline |
Electron Microscopy Sciences Miltex Biopsy Punch with Plunger, 3.0 mm | Fisher Scientific | NC0856599 | |
Eppendorf Snap-Cap Microcentrifuge SafeLock Tubes, 1.5 mL | Fisher Scientific | 05-402-25 | |
Essendant 121oz. Clorox Germicidal Bleach | Fischer Scientific | 50371500 | |
Ethanol | Fisher Scientific | 07-678-005 | 70% |
Falcon Safety Dust Off DPSXLRCP Compressed Gas | Supra | 1381978 | |
Human TruStain | Biolegend | 422302 | 1:600 Ratio in Whole Blood |
LevGo smartSpatula Disposable Polypropylene Spatula | Fisher Scientific | 18-001-017 | |
Microscope Slides | Fisher Scientific | 12-550-A3 | |
Phosphate buffered saline | Gibco | 10010-023 | |
Safety Scalpel | Fisher Scientific | 22-079-718 | |
Saline | Millipore | 567442 | 0.90% |
Sartorius Polystyrene Weighing Boats | Fisher Scientific | 13-735-744 | |
Superslip Cover Slips - Superslip No. 1.5 | Fisher Scientific | 12-541-055 | |
SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit | Fisher Scientific | NC9285739 | Polydimethylsiloxane (PDMS) |
Ticagrelor | Cayman Chemicals | 15425 | |
Tygon PVC Clear Tubing 1/16" ID, 1/8" OD, 50 ft length | McMaster-Carr | 6516T11 | |
Ultra-Machinable 360 Brass Bar | McMaster-Carr | 8954K721 | For master mold fabrication |
Vacutainers | BD | 363083 | |
World Precision Instrument Reusable Biopsy Punch, 1.5mm | Fisher Scientific | NC1215626 |
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