Agradecemos ao Dr. Patricia Manosalva para seus insights valiosos sobre o manuscrito. O financiamento foi fornecido pelo National Science Foundation Programa Genoma Plant, número prêmio DBI-0605059.

Parte 1: O material vegetal N. benthamiana plantas usadas para silenciar deve ser em torno de 2 ½ semanas de idade que é o momento em que os cotilédones e os primeiros 2 - 4 folhas verdadeiras têm surgido. Tomate (Solanum lycopersicum) plantas são usadas 7-8 dias pós-emergência, quando as folhas verdade ainda não apareceu. Parte 2: VIGS DIA 1 <ol><li> Para cada experimento, Agrobacterium tumefaciens abrigar pTRV1, pTRV2, pTRV2-PDS e pTRV2 host-gene-alvo são cultivadas em placas de LB ágar suplementado com 50 mg / mL de canamicina e 100 mcg / mL de rifampicina. A canamicina seleciona para o pTRV plasmídeo enquanto a rifampicina faz isso para a Agrobacterium. Incubar as placas a 30 ° C por 2 dias. Silenciamento de PDS fará as plantas para photobleach e é usado como um controle de eficiência silenciar. Além disso, os genes para ser downregulated deve ser clonado em um vetor pTRV2. Há um Gateway compatível pTRV2 vector que pode facilitar a clonagem e é descrito por Liu et al. (2002). </li></ol> DIA 3 <ol><li> Inocular um 2-3 cultura mL de líquido LB com os antibióticos acima mencionados para cada uma das cepas. Incubar por agitação a 30 ° C por 16-18 horas e 200 rpm </li></ol> DIA 4 <ol><li> Inocular a 1: 25 de diluição da cultura primária em um secundário líquido Mídia indução (IM) cultura IM com canamicina, rifampicina e 200 acetosyringone mM (Tabelas 1, 2 e 3). O acetosyringone é usado como um indutor dos genes vir de Agrobacterium que são necessários para T-DNA pode transferir para a planta 9, enquanto o IM imita o ambiente que esse patógeno encontra no apoplasto host. Incubar por agitação a 30 ° C por 20 - 24 horas e 200 rpm </li></ol> DIA 5 <ol><li> Colher as células por centrifugating por 10 minutos a 3000 x g. Ressuspender no mesmo volume que a cultura original tinha com 10 mM MgCl 2, 10 mM MES pH 5,5. Células podem ser suavemente agitadas para ressuspender-los. </li><li> Centrífuga as células novamente por 10 minutos a 3000 x g. Ressuspender em metade do volume da cultura original com 10 mM MgCl2, 10 mM MES pH 5,5. </li><li> Prepare uma suspensão bacteriana com um OD 600 de 0,3 para cada cultura bacteriana. Adicionar acetosyringone para uma concentração final de 400 mM para a cultura pTRV1. </li><li> Misture as culturas contendo o pTRV1 eo pTRV2 (ou o pTRV2 contendo o gene de interesse) em uma proporção de 1 para 1. Incluem também um controle pTRV2-PDS. Por favor, note que a concentração acetosyringone final é agora 200 mM e que cada cultura se encontra um OD 600 de 0,15. </li><li> Rótulo as mudas a ser infiltrada com o gene a ser silenciadas e da data do experimento. </li><li> Picar um furo em cada folha a ser infiltrada com uma agulha. Use uma seringa de 1 mL desnecessário para se infiltrar a suspensão bacteriana em mudas. Para tomate, infiltrar tanto cotilédones, enquanto para N. benthamiana, infiltrado maior das duas folhas verdadeiras. Cinco mL de cada mistura bacteriana deve ser suficiente para se infiltrar 15 N. benthamiana e 25 mudas de tomate. Evitar a contaminação cruzada, mudando de luvas entre infiltrações e por não regar as plantas até o dia seguinte após a inoculação. </li><li> As plantas são mantidas em 20-22 ° C em câmara de crescimento com um comprimento dias 16 horas e 50% de UR por pelo menos 3 semanas e meia antes de poderem ser utilizados para os ensaios. </li></ol> Parte 3: Os resultados representativos A Figura 1 mostra um experimento representativo, com N. benthamiana e plantas de tomate silenciados para PDS. Plantas mostrar o fenótipo característico fotobranqueamento observada em plantas com quantidades diminuídas de carotenóides. Para o PDS-silenciados plantas controle, começa a fotodegradação de ser visto, logo que 1 ½ semanas após a infiltração. <img src="/files/ftp_upload/1292/Figure 1A 1292.jpg" alt="Figura 1A" /><img src="/files/ftp_upload/1292/Figure 1B 1292.jpg" alt="figura 1b" /> Figura 1. Silenciamento do gene controle PDS causas fotobranqueamento em N. benthamiana (A) e (B) de tomate plantas. Fotografias foram tiradas três semanas e meia depois silenciar. Tabela 1. Preparação de meio de indução (IM). <table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"><tbody><tr><td> 400 mL </td><td> H 2 O destilada </td></tr><tr><td> 4,88 g </td><td> MES (2 - (4 morfolino) etano-sulfônico) </td></tr><tr><td> 2,5 g </td><td> Glicose </td></tr><tr><td> 0,12 g </td><td> NaH 2 PO 4 </td></tr></tbody></table> Trazer para um volume final de 475 mL com dH 2 O e ajustar o pH para 5,6. Autoclave. Depois que o meio tem arrefecido, adicione 25 ml de 20X sais AB. Tabela 2. Preparação de sais de AB. <table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"><tbody><tr><td> 20 g </td><td> NH 4 Cl </td></tr><tr><td> 6 g </td><td> MgSO 4 · 7H 2 O </td></tr><tr><td> 3 g </td><td> KCl </td></tr><tr><td> 0,2 g </td><td> CaCl 2 </td></tr><tr><td> 0,05 g </td><td> FeSO 4 · 7H 2 O </td></tr></tbody></table> Trazer para um volume final de 1 litro com água destilada. Autoclave. Esteja ciente de que os sais AB precipitar como um pó laranja. Apenas misture bem por agitação antes da sua utilização. Tabela 3. Preparação de 200 Acetosyringone mM. Por favor note que acetosyringone deve ser preparado no dia em que será usado. <table border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"><tbody><tr><td> 19,6 mg </td><td> Acetosyringone (3 &#39;, 5&#39;-dimetoxi-4&#39;-hidroxiacetofonona) </td></tr><tr><td> 500 mL </td><td> DMSO (Dimetil sulfóxido) </td></tr></tbody></table>

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Induzida por vírus silenciamento do gene é um método que permite rápida reverter telas genética. Ele evita a geração de T-DNA ou gene mediada transposon knock-outs, que só estão disponíveis em certas plantas, como Arabidopsis e de milho. Ele também contorna o processo demorado de transformação de plantas e permite o direcionamento de múltiplos genes, ao mesmo tempo, desde que tenham 10 ou homologia suficiente que as seqüências alvo diferentes de acolhimento são dispostos em tandem no...

virus-induced gene silencing (vigs) in nicotiana benthamiana and tomato

Interferência de RNA (RNAi) é um fenômeno altamente específico gene silenciando-desencadeada por dsRNA 1. Este mecanismo de silenciamento usa duas classes principais de reguladores de RNA: microRNAs, que são produzidos a partir de proteínas não-genes que codificam e curto RNAs de interferência (siRNAs). As plantas usam RNAi para controle transposons e exercer um controlo apertado sobre os processos de desenvolvimento como a formação de órgãos florais e desenvolvimento de folhas 2,3,4. Plantas também usar RNAi para se defender contra a infecção por vírus. Conseqüentemente, muitos vírus evoluíram de silenciamento de genes supressores de permitir sua colonização bem sucedida de seu hospedeiro 5. Induzida por vírus silenciamento gênico (VIGS) é um método que aproveita o mecanismo de defesa das plantas RNAi mediada antiviral. Em plantas infectadas com o vírus modificado o mecanismo é especificamente dirigidas contra o genoma viral. No entanto, com vetores de vírus carregando seqüências derivadas de genes do hospedeiro, o processo pode ser adicionalmente dirigidas contra o mRNAs de host correspondente. VIGS foi adaptado para high-throughput genômica funcional em plantas usando a planta patógeno Agrobacterium tumefaciens para oferecer, através da sua Ti plasmídeo, um vírus recombinante carregando toda ou parte da seqüência do gene alvo para silenciar. Propagação do vírus sistêmico e endógeno plantas RNAi máquinas cuidar do resto. dsRNAs correspondente ao gene-alvo são produzidas e depois clivado pela Dicer ribonuclease em siRNAs de 21 a 24 nucleotídeos de comprimento. Estes siRNAs em última análise, orientar a RNA induzida silenciamento complexos (RISC) para degradar a transcrição alvo 2. Diferentes vetores têm sido empregadas em VIGS e um dos mais utilizados é baseado em tabaco rattle vírus (TRV). TRV é um vírus bipartido e, como tal, A. dois diferentes cepas tumefaciens são usados ​​para VIGS. Um carrega pTRV1, que codifica as funções de replicação e movimento viral, enquanto o outro, pTRV2, abriga a capa protéica ea seqüência utilizada para VIGS 6,7. Nicotiana benthamiana inoculação de mudas de tomate e com uma mistura de ambas as linhagens resultados no silenciamento gênico. Silenciamento do gene endógeno fitoeno desaturase (PDS), que causa fotobranqueamento, é usado como um controle para a eficiência VIGS. Deve-se notar, no entanto, que o silenciamento em tomate é normalmente menos eficiente do que em N. benthamiana. RNA abundância transcrição do gene de interesse deve ser sempre medida para garantir que o gene-alvo tem sido eficiente para baixo-regulado. No entanto, seqüências de genes heterólogos a partir de N. benthamiana podem ser usadas para silenciar seus respectivos ortólogos no tomate e vice-versa 8.

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Virus-induced Gene Silencing VIGS in Nicotiana benthamiana and Tomato

Descrição de um vírus induzida silenciamento de genes método (VIGS) para knock-down da expressão gênica em<em&gt; Nicotiana benthamiana</em&gt; E tomate.

Induzida por vírus silenciamento gênico (VIGS) em Nicotiana benthamiana Tomate e

RNA interference (RNAi) is a highly specific gene-silencing phenomenon triggered by dsRNA1. This silencing mechanism uses two major classes of RNA ...

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Biology

Virus-induced Gene Silencing (VIGS) in Nicotiana benthamiana and Tomato

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