Comece cortando a muda de milho envelhecida desejada no tecido mesocótilo usando uma pequena faca ou tesoura. Limpe a muda com um pincel. Em seguida, segure o decapador de arame com as mandíbulas voltadas para a calha.
Posicione a calha no orifício selecionado e aperte as alças do stripper juntas. Deslize o stripper para longe da calha para aparar a parte superior das folhas. Use uma régua para medir o comprimento da ponta do primórdio até a base da calha.
Para iniciar a imagem do primórdio foliar, mantenha a calha firme em uma superfície lisa sob um microscópio estéreo com cerca de 0,8x de aumento. Usando uma lâmina de barbear ou bisturi, faça um corte inicial ligeiramente acima da região alvo para descartar a porção distal da calha. Em seguida, obter seções de cerca de 0,25 a 0,8 milímetros de espessura nos pontos desejados ao longo do comprimento do primórdio.
Uma vez feito, monte a seção da folha em uma lâmina de vidro limpa. Aplique algumas gotas de água diretamente na seção usando uma pipeta. E coloque uma tampa por cima.
Aplique mais algumas gotas através das bordas da tampa, se necessário. Coloque a lâmina no palco do microscópio de epifluorescência e ajuste as configurações para visualizar o fluoróforo. Usando este método, a amostragem de ressecção casual foi padronizada medindo-se os primórdios antes da secção.
Uma tendência foi descoberta mostrando que a borla dois tinha um primórdio mais largo e mais nervuras do que o normal, indicando que o defeito no mutante começou no início do desenvolvimento da folha. Este método também possibilitou o exame sistemático dos padrões de expressão de repórteres de proteínas fluorescentes de resposta hormonal nos primórdios foliares.
