The authors acknowledge funding sources from D&#8217;Youville College School of Pharmacy, Buffalo, NY.

1. Prepare os diferentes meios de comunicação e componentes adicionais <ol><li> Antes de testar, preparar meio consistindo de DMEM ou outros meios especificados com a adição de ambos os normais de FBS, carvão despojado de FBS, ou carvão despojado de FBS mais o componente a ser testado. Note-se que vários componentes podem ser testados em cada experiência. </li><li> Pesar e diluir as hormonas, factores de crescimento ou citocinas de forma adequada para ser dissolvidos no soro carvão despojado na concentração fisiológica. </li></ol> 2. Prepare a matriz de colágeno on Ice <ol><li> Prepare a 2 ml de colagénio I matriz de 2,2 mg / ml, adicionando as seguintes componentes filtradas estéreis em gelo: 200 ul 10x PBS (pH 7,4), 5,4 mL de NaOH 1 N, 600 uL de dupla H2O destilada e 1,2 ml de colagénio I (a 3,63 mg / ml). </li><li> Mantenha solução de colágeno I em gelo até que esteja pronto para a chapa. </li></ol> 3. Prepare Plates Migração / Invasão para Ensaio &lt;/ P&gt; <ol><li> Para cada linha celular a ser testada, utilizar uma placa da câmara de 24 poços na qual 12-poços contêm inserções. Use os mais 12 poços que não contêm inserções para adicionar a mídia quimioatractivas e transferindo as inserções para o arranjo experimental. NOTA: A matriz de colagénio em placas com uma membrana de polietileno teraftalato (PET) e de 8 um de tamanho de poro é óptima para as linhas de células de usar aqui. No entanto, uma matriz de matrigel, em placas pré-revestidas também podem ser substituídos com a diminuição do tamanho dos poros de acordo com a linha celular a ser investigado. </li><li> Identificam a placa, usando três poços por condição a ser analisados ​​(FBS migração, migração CS-FBS, invasão FBS, e invasão CS-FBS, bem como FBS-migração para um controle, linha de células não-invasiva). Ensaio de migração por circulação através de uma membrana de poros em PET, e invasão por ensaio de movimento através de uma matriz de colagénio ou de matrigel e, em seguida, através de poros na membrana. Use diferentes marcadores de cor para cada condição para uma célulaid no processo de revestimento. </li></ol> 4. Dispense a Matrix Invasion <ol><li> Cuidadosamente pipeta 75 ul da solução de matriz de colagénio nas inserções para ser utilizado para ensaios de invasão. Tenha cuidado para evitar bolhas. Dispersar as bolhas, aplicando uma ponta de pipeta invertido para a superfície. </li><li> Transferir a placa com as inserções revestidas com colagénio a uma temperatura de 37 ° C e 5% de CO2 durante 30 min para permitir que o gel solidifique. </li></ol> 5. Placa as células sobre a membrana ou Invasion Matrix <ol><li> Enquanto isso, Tripsinizar as células e adicionar meios com 10% de FBS. Células giram a 200 xg por 5 min em uma centrífuga de bancada e lavar 3x em meio livre de soro. </li><li> Ressuspender em meio livre de soro. Contagem de células com um hemocitômetro ou contador de fotos automática. Adicionar meio isento de soro para uma concentração final de 5 x 10 4 células / ml. </li><li> Quando a matriz de colágeno tem solidificado (após 30 min), adicione 700 mL de mídia com qualquer2% de FBS ou definidos carvão despojado-FBS a cada poço. Dos 12 pastilhas por placa: <ul><li> 3 inserções têm colágeno e poços com media + 2% FBS </li><li> 3 inserções têm colágeno e poços com media + 2% CS-FBS </li><li> 3 inserções não têm colágeno e poços com media + 2% FBS </li><li> 3 inserções não têm colágeno e poços com media + 2% CS-FBS </li></ul><ol><li> Utilizar placas adicionais, dependendo do número de factores a ser testado e com um controlo de colagénio sem correspondente a cada condição. </li></ol></li><li> Adicionar suspensão de células para as inserções em 5 x 10 4 células / ml, chapeamento de 500 células mL por inserir em todas as inserções de migração e invasão. </li><li> Incubar as células durante 22 h a 37 ° C. </li></ol> 6. quantificar o número de Migração e invadir as células <ol><li> Configure coloração de poços utilizando fixador metanol, eosina, e hemotoxilina, em poços separados. </li><li> Use cotonetes de algodão para remover as células e matriz de cada cavidade.Rrepeat com segunda aplicação swab para cada poço. </li><li> Com uma pinça, mergulhar cada inserção 5 vezes durante 1 segundo para cada uma das três soluções em sucessão. </li><li> Permitir inserções para secar S / N. </li><li> Ou i) remover filtros com um bisturi, cortando com cuidado em torno das bordas e montar em um slide com lamela e imersão em óleo, ou ii) permitir que as inserções para secar O / N invertido e usar as inserções diretamente para microscopia. </li><li> No dia seguinte, ver slides ou inserções sob um microscópio com objetiva de 20x e levar 5 imagens de diferentes regiões do filtro. Para melhorar a consistência, tome 4 campos externos e um centro. </li><li> Contar as células de todas as condições utilizando o software ImageJ e aplicam-se às fórmulas abaixo. </li><li> Determinar a invasão por cento da seguinte forma: A média de # de células invasoras através de colágeno I inserir = a A média de # de células que migram através de inserção de controle = b Invasão% = (a / b) * 100 </li><li> Determinar o Índice de Invasão em 2% de FBS como se segue: % Invasão de células a ser ensaiado (em 2% de FBS) c = % Invasão de controle de células não-invasivos em (2% FBS) = d Índice de invasão (FBS) = (c / d) </li><li> Determinar o Índice de Invasão em 2% de CS-FBS como se segue: % Invasão de células a ser ensaiado (em 2% de CS-FBS) = e % Invasão de controle de células não-invasivos em (2% CS-FBS) = f Índice de invasão (CS-FBS) = (E / F) </li></ol> 7. Repita protocolo experimental comparando Charcoal-despojado FBS para FBS Charcoal-despojado + X n com múltiplos fatores combinados <ol><li> Repetir o procedimento várias vezes como necessário, utilizando componentes diferentes para &quot;X&quot; ou uma combinação de componentes. </li><li> Aplicar os cálculos para determinar a contribuição de cada fator &quot;X&quot; para os efeitos da migração e invasão. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Metástase tumoral é um processo de múltiplos passos. As células devem romper a membrana basal, em intravasate ou do sistema linfático ou microvasos sanguíneos, na qual são transportadas para locais distantes. As células tumorais e, em seguida, de extravasamento em colonizar um macrometástase 12. Progressão através do epitélio para o mesenquimal (EMT), invasão tumoral e metástase tenha sido reforçada por hormônios esteróides 13,14, fatores de crescimento de 15-18, 19-21 e...

Um ensaio de invasão novo foi desenvolvido com o objectivo de identificar o envolvimento de hormonas específicas, citoquinas e / ou factores de crescimento como quimioatractores na invasão de células de cancro. A capacidade de células tumorais para invadir através da matriz extracelular (ECM) é uma característica marcante do fenótipo metastático 1-3. Invasão câmaras têm sido amplamente utilizados como ferramentas in vitro para estudar a invasão de células do cancro e da migração e pode proporcionar conhecimento sobre os mecanismos de invasão de tumores in vivo e metástase. As câmaras consistem em pastilhas cilíndricas de cultura de células aninhados dentro dos poços de placas de cultura de células. As partes inferiores das inserções são semi-permeáveis ​​de poliestireno ou de policarbonato de tamanho de poro das membranas definidos. No ensaio de invasão padrão, as células são semeadas sobre a membrana de inserção com meio isento de soro e colocadas em poços de cultura de células que são preenchidos com quimioatractores soro ou soro semelhante a set-se uma força quimioatratante. Isto dirige as células de força para mover através da membrana semi-permeável (migração) ou, em alternativa, através de um revestimento de matriz extracelular (invasão), que pode, então, ser marcadas utilizando corantes convencionais para detectar e quantificar o número de células. O número de células é então normalizados de acordo com a extensão da migração e invasão em uma linha de células não-invasiva. Este método permite que um investigador para avaliar o potencial invasivo de diferentes tipos de células sob uma variedade de condições, incluindo as manipulações genéticas. Hormonas, citocinas e factores de crescimento são componentes críticos de soro e estão cada vez mais a ser mostrado para ser associado com a condução do fenótipo invasivo 4. No entanto, a natureza, função e especificidade destas moléculas de soro quimioatratantes na mediação invasão ainda permanecem ainda desconhecidos. O desafio continua a determinar os fatores específicos em chemoattractants soro ou soro-like são responsáveis ​​pela conduçãoinvasão de células de cancro, bem como as moléculas que podem inibir o processo de invasão. Neste relatório, nós descrevemos uma metodologia para avaliar o potencial envolvimento de hormônios, citocinas e / ou fatores de crescimento presentes no soro, como moléculas de condução quimioatração e invasão das células cancerosas. Neste protocolo modificado proposto, carvão remoção é utilizado para remover hormonas, citocinas e factores de crescimento a partir de 2% de soro fetal bovino (FBS) para gerar 2% de carvão despojado de FBS (CS-FBS). Ambos 2% de FBS e 2% de CS-FBS são utilizados como agentes para ajustar-se a força quimioatratante para conduzir a invasão de células do cancro. Utilizando a 2% de CS-FBS como um agente quimioatratante em comparação com o normal 2% de FBS proporciona vários benefícios, incluindo em primeiro lugar, e mais importante ainda, a possibilidade de estudar o fenótipo de invasão do cancro no reduzido / relativa ausência de hormonas, citoquinas e factores de crescimento. Ele também permite que o investigador para avaliar se a remoção coletiva de hormônios, fatores de crescimento, e cytokines provoca um aumento ou uma diminuição no índice invasivo. O ensaio é concebido para, em seguida, determinar se a adição de um componente individual, designada como &quot;X&quot; pode inibir, aumento, diminuição, ou restaurar o índice invasivo para o seu valor original (ver Figuras 2 e 3). Embora esta metodologia é específico para alcançar os níveis fisiológicos de o componente que é removido a partir do soro durante a remoção do carvão vegetal, deve também notar-se que o carvão de decapagem pode também afectar vias de transdução de sinal. Por exemplo, foi relatado que o carvão de decapagem pode diminuir a actividade da fosfatase alcalina de células osteoprogenitoras e induzem adipogénese por meio de redução de activadores MAPK 5. Meios de carvão despojado estão disponíveis comercialmente e são baseados no protocolo delineado que combina com carvão dextrano e incubadas com soro fetal bovino O / N 6. Este ensaio foi desenvolvido em respoNSE a um resultado relatado por Zucker et al. 7 Os autores demonstraram que um fenótipo mutante afetando a comunicação junção gap demonstrou um aumento no índice de invasão ao migrar em direção a mídia com o normal FBS 2%. Este aumento foi eliminado, com a substituição do soro separado com carvão activado. A partir deste resultado, os autores concluíram que essa migração afetados mutante em direção a uma molécula lipofílica (mais especificamente, um hormônio, fator de crescimento, ou citocina) 7. É bem conhecido que as hormonas, factores de crescimento e citoquinas medeiam a sinalização de vias envolvidas na promoção de tumores e invasão 4. Assim, é importante para os investigadores científicos para determinar o factor de (s) a conduzir à invasão tumoral das suas células cancerosas particulares ou mutantes sob estudo. O ensaio é concebido para tratar o papel de componentes individuais na sua concentração fisiológica conforme determinado de acordo com a diferença entre a concentração do componente &amp;# 8220; X &quot;em SBF normal e o CS-FBS. Através do desenvolvimento deste ensaio, os investigadores podem ter mais conhecimento da via invasiva específica que regule seu sistema. As hormonas, factores de crescimento e citocinas têm sido muitas vezes classificadas como promotores de tumor 8. Alguns destes factores tais como EGF são usados ​​como fontes directas para quimioatractores em câmaras de invasão 9. Assim, parece provável que estes representam os principais componentes do soro que a invasão tumoral direta. Este protocolo propõe um método simples, mas significativa, a modificação do ensaio de invasão in vitro convencional, que permite que um investigador para avaliar o envolvimento das hormonas, factores de crescimento, citocinas e na mediação do potencial invasivo das células cancerosas. No entanto, o ensaio é concebido para proporcionar o investigador com uma resposta quanto ao facto de o processo será eficaz para o seu estudo em um passo inicial na análise, de modo a não usar o tempo precioso e recursos se for considerado desnecessário. Este método usa CS-FBS e baseia-se na discrição investigadores como para que as moléculas de prosseguir como chumbo candidatos que potencialmente medeiam invasão da célula cancerosa. Os resultados destas análises devem provar ser úteis na identificação de componentes do soro que servem como quimioatractores ou inibidores para a linha de células particular ou mutante a ser estudada. Além disso, esta abordagem pode ajudar a identificar o investigador principais vias de sinalização ou promover ou inibir a invasão de células de cancro; assim direcionando projeto futuro de drogas.

<table><tbody><tr><td>BioCoat Control Inserts with 8.0 &amp;micro;m PET membrane</td><td>Corning</td><td>354578</td><td>12 in each of two 24-well plates. PET = polyethylene teraphthalate</td></tr><tr><td>Collagen I, rat tail</td><td>Corning</td><td>354236</td><td>Source = rat tail tendon, purity = 90%</td></tr><tr><td>Fixative; Diff-Quick</td><td>Thermo Fisher Scientific</td><td>NC9844047</td><td>Methanol-based fixative, hematoxylin/eosin</td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>Life Technologies</td><td>16000</td><td>Designated as FBS</td></tr><tr><td>Charcoal stripped fetal bovine serum</td><td>Life Technologies</td><td>12676</td><td>Designated as CS-FBS</td></tr><tr><td>Fetal bovine serum</td><td>Thermo Scientific Hyclone</td><td>SH30070</td><td>Designated as FBS</td></tr><tr><td>Charcoal stripped fetal bovine serum</td><td>Thermo Scientific Hyclone</td><td>SH30068</td><td>Designated as CS-FBS</td></tr></tbody></table>

a modified in vitro invasion assay to determine the potential role of hormones, cytokines and/or growth factors in mediating cancer cell invasion

O soro sangüíneo serve como um chemoattractant para o qual as células cancerosas migrar e invadir, facilitando a sua intravasation em microvasos. No entanto, as moléculas de reais para o qual as células migram permanecem ainda desconhecidos. Este ensaio de invasão modificado tem sido desenvolvido para identificar alvos que conduzem a migração celular e invasão. Esta técnica compara o índice de invasão sob três condições para determinar se uma hormona específica, o factor de crescimento ou citoquina desempenha um papel na mediação do potencial invasivo de uma célula de cancro. Estas condições incluem i) soro de bovino fetal normal (FBS), ii) separado com carvão activado FBS (CS-FBS), que remove as hormonas, factores de crescimento e citoquinas e iii) CS-FBS + molécula (designada por &quot;X&quot;). Uma alteração significativa na invasão de células com CS-FBS em comparação com FBS, indica o envolvimento de hormonas, citoquinas ou factores de crescimento na mediação da mudança. Moléculas individuais podem então ser adicionado de volta ao CS-FBS para testar a sua capacidade de reverso ou resgatar o fenótipo invasão. Além disso, dois ou mais factores podem ser combinados para avaliar o efeito aditivo ou sinérgico de múltiplas moléculas de condução ou inibir a invasão. Em geral, este método permite ao investigador para determinar se hormonas, citoquinas, e / ou os factores de crescimento desempenham um papel na invasão de células por servir como quimioatractores ou inibidores de invasão para um tipo particular de célula de cancro ou um mutante específico. Através da identificação de agentes quimioatractivos e inibidores específicos, este ensaio de invasão modificado pode ajudar a elucidar as vias de sinalização que dirigem a invasão de células de cancro.

O índice de invasão é calculada para cada condição de acordo com a normalização de uma linha de células não-invasiva. Para as nossas experiências, que use a linha celular de melanoma 1205Lu e variantes estabelecido linhas celulares estáveis ​​como nossas linhas invasivos, bem como a variante não invasiva pré-malignas, WM793 a partir do qual as células foram derivadas 1205Lu 10, que serve como um controlo lógico. Nós também utilizar colagénio I, tal como a matriz de invasão porque é que...

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A Modified In vitro Invasion Assay to Determine the Potential Role of Hormones, Cytokines and/or Growth Factors in Mediating Cancer Cell Invasion

This video article describes a modified in vitro method to examine the role of hormones, cytokines and/or growth factors in driving cancer cell invasion.

A modificação<em&gt; In vitro</em&gt; Invasion Ensaio para determinar o possível papel dos hormônios, citocinas e / ou fatores de crescimento na Cancer Mediating Invasion celular

Blood serum serves as a chemoattractant towards which cancer cells migrate and invade, facilitating their intravasation into microvessels. However, the ...

a-modified-vitro-invasion-assay-to-determine-potential-role-hormones

Research

JoVE Journal

Medicine

A Modified In vitro Invasion Assay to Determine the Potential Role of Hormones, Cytokines and/or Growth Factors in Mediating Cancer Cell Invasion

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Vídeo: A Modified In vitro Invasion Assay to Determine the Potential Role of Hormones, Cytokines and/or Growth Factors in Mediating Cancer Cell Invasion

Moving Upwards: A Simple and Flexible In Vitro Three-dimensional Invasion Assay Protocol

Although 3D invasion assays have been developed, the challenge remains to study cells without affecting the integrity of their microenvironment. Traditional 3D assays such as the Boyden Chamber require that cells are displaced from the original culture location and moved to a new environment. Not only does this disrupt the cellular processes that are intrinsic to the microenvironment, but it often results in a loss of cells. These problems are especially challenging when dealing with cells that are either rare, or extremely sensitive to their microenvironment. Here, we describe the development of a 3D invasion assay that avoids both concerns. In this assay, cells are plated within a small well and an ECM matrix containing a chemoattractant is laid atop the cells. This requires no cell displacement, and allows the cells to invade upwards into the matrix. In this assay, cell invasion as well as cell morphology can be assessed within the collagen gel. Using this assay, we characterize the invasive capacity of rare and sensitive cells; the hybrid cells resulting from fusion between breast cancer cells MCF7 and mesenchymal/multipotent stem/stroma cells (MSCs).

Moving Upwards: A Simple and Flexible In Vitro Three-dimensional Invasion Assay Protocol

This protocol describes an inverted vertical invasion assay that could be used to quantify the migration and invasion capabilities of cells in a three-dimensional setting while preserving the cell microenvironment. This assay is suitable for rare and/or sensitive cells.

Se movendo para cima: Um simples e flexível em Vitro invasão tridimensional protocolo do ensaio

Although 3D invasion assays have been developed, the challenge remains to study cells without affecting the integrity of their microenvironment. ...

Pesquisa do câncer

Spheroid Assay to Measure TGF-&#946;-induced Invasion

TGF-&beta; has opposing roles in breast cancer progression by acting as a tumor suppressor in the initial phase, but stimulating invasion and metastasis at later stage1,2. Moreover, TGF-&beta; is frequently overexpressed in breast cancer and its expression correlates with poor prognosis and metastasis 3,4. The mechanisms by which TGF-&beta; induces invasion are not well understood.
TGF-&beta; elicits its cellular responses via TGF-&beta; type II (T&beta;RII) and type I (T&beta;RI) receptors. Upon TGF-&beta;-induced heteromeric complex formation, T&beta;RII phosphorylates the T&beta;RI. The activated T&beta;RI initiates its intracellular canonical signaling pathway by phosphorylating receptor Smads (R-Smads), i.e. Smad2 and Smad3. These activated R-Smads form heteromeric complexes with Smad4, which accumulate in the nucleus and regulate the transcription of target genes5. In addition to the previously described Smad pathway, receptor activation results in activation of several other non-Smad signaling pathways, for example Mitogen Activated Protein Kinase (MAPK) pathways6.
To study the role of TGF-&beta; in different stages of breast cancer, we made use of the MCF10A cell system. This system consists of spontaneously immortalized MCF10A1 (M1) breast epithelial cells7, the H-RAS transformed M1-derivative MCF10AneoT (M2), which produces premalignant lesions in mice8, and the M2-derivative MCF10CA1a (M4), which was established from M2 xenografts and forms high grade carcinomas with the ability to metastasize to the lung9. This MCF10A series offers the possibility to study the responses of cells with different grades of malignancy that are not biased by a different genetic background.
For the analysis of TGF-&beta;-induced invasion, we generated homotypic MCF10A spheroid cell cultures embedded in a 3D collagen matrix in vitro (Fig 1). Such models closely resemble human tumors in vivo by establishing a gradient of oxygen and nutrients, resulting in active and invasive cells on the outside and quiescent or even necrotic cells in the inside of the spheroid10. Spheroid based assays have also been shown to better recapitulate drug resistance than monolayer cultures11. This MCF10 3D model system allowed us to investigate the impact of TGF-&beta; signaling on the invasive properties of breast cells in different stages of malignancy.

An assay to quantitatively measure Transforming Growth Factor (TGF)-&#x03B2;-induced invasion in 3-dimensional collagen gels is described. This assay takes advantage of the MCF10A series of cell lines, which represent different stages of breast cancer development. This method can be adopted to be used with other cell lines and might be used to investigate other potential activators or inhibitors of invasion.

Ensaio esferóide para TGF-β Medida induzida Invasion

TGF-&beta; has opposing roles in breast cancer progression by acting as a tumor suppressor in the initial phase, but stimulating invasion and metastasis ...

Medicina

The Use of Mouse Mammary Tumor Cells in an In Vitro Invasion Assay as a Measure of Oncogenic Cell Behavior

The in vitro invasion assay uses a protein-rich matrix in a Boyden chamber to measure the ability of cultured cells to pass through the matrix and a porous membrane in a process analogous to the initial steps of cancer cell metastasis. The tested cells can be altered for the gene expression or treated with inhibitors to test for changes in the invasion potential. This experiment tests the aggressive phenotype of the mouse mammary tumor cells to discover and characterize the potential oncogenes that promote cell invasion. This technique, however, can be versatile and adapted to many different applications. The experiment itself can be done in one day and the results are acquired by light microscopy in less than a day. The results include counts of the number of invading cells for comparison and analysis. The in vitro invasion assay is a rapid, inexpensive, and clear-cut method for determining cell behavior in a culture that can be used as an initial assessment before more involved in vivo assays.

The in vitro cell invasion assay is used to measure the potential of cancer metastasis by quantifying the cellular potential for invasion and migration using cell culture inserts containing protein matrix. Cells are challenged to migrate through the protein matrix and a porous membrane, towards a chemoattractant, and then quantified by light microscopy.

O uso de células tumorais do rato mamário em um ensaio de invasão in vitro como medida de comportamento de células oncogênicas

The in vitro invasion assay uses a protein-rich matrix in a Boyden chamber to measure the ability of cultured cells to pass through the matrix and a ...

Genética

Monitoring Cancer Cell Invasion and T-Cell Cytotoxicity in 3D Culture

Significant progress has been made in treating cancer with immunotherapy, although a large number of cancers remain resistant to treatment. A limited number of assays allow for direct monitoring and mechanistic insights into the interactions between tumor and immune cells, amongst which, T-cells play a significant role in executing the cytotoxic response of the adaptive immune system to cancer cells. Most assays are based on two-dimensional (2D) co-culture of cells due to the relative ease of use but with limited representation of the invasive growth phenotype, one of the hallmarks of cancer cells. Current three-dimensional (3D) co-culture systems either require special equipment or separate monitoring for invasion of co-cultured cancer cells and interacting T-cells.
Here we describe an approach to simultaneously monitor the invasive behavior in 3D of cancer cell spheroids and T-cell cytotoxicity in co-culture. Spheroid formation is driven by enhanced cell-cell interactions in scaffold-free agarose microwell casts with U-shaped bottoms. Both T-cell co-culture and cancer cell invasion into type I collagen matrix are performed within the microwells of the agarose casts without the need to transfer the cells, thus maintaining an intact 3D co-culture system throughout the assay. The collagen matrix can be separated from the agarose cast, allowing for immunofluorescence (IF) staining and for confocal imaging of cells. Also, cells can be isolated for further growth or subjected to analyses such as for gene expression or fluorescence activated cell sorting (FACS). Finally, the 3D co-culture can be analyzed by immunohistochemistry (IHC) after embedding and sectioning. Possible modifications of the assay include altered compositions of the extracellular matrix (ECM) as well as the inclusion of different stromal or immune cells with the cancer cells.

The presented approach simultaneously evaluates cancer cell invasion in 3D spheroid assays and T-cell cytotoxicity. Spheroids are generated in a scaffold-free agarose multi-microwell cast. Co-culture and embedding in type I collagen matrix are performed within the same device which allows to monitor cancer cell invasion and T-cell mediated cytotoxicity.

Monitoramento da invasão celular cancerígena e citotoxicidade de células T na cultura 3D

Significant progress has been made in treating cancer with immunotherapy, although a large number of cancers remain resistant to treatment. A limited ...

Assessment of Ovarian Cancer Spheroid Attachment and Invasion of Mesothelial Cells in Real Time

Ovarian cancers metastasize by shedding into the peritoneal fluid and dispersing to distal sites within the peritoneum. Monolayer cultures do not accurately model the behaviors of cancer cells within a nonadherent environment, as cancer cells inherently aggregate into multicellular structures which contribute to the metastatic process by attaching to and invading the peritoneal lining to form secondary tumors. To model this important stage of ovarian cancer metastasis, multicellular aggregates, or spheroids, can be generated from established ovarian cancer cell lines maintained under nonadherent conditions. To mimic the peritoneal microenvironment encountered by tumor cells in vivo, a spheroid-mesothelial co-culture model was established in which preformed spheroids are plated on top of a human mesothelial cell monolayer, formed over an extracellular matrix barrier. Methods were then developed using a real-time cell analyzer to conduct quantitative real time measurements of the invasive capacity of different ovarian cancer cell lines grown as spheroids. This approach allows for the continuous measurement of invasion over long periods of time, which has several advantages over traditional endpoint assays and more laborious real time microscopy image analyses. In short, this method enables a rapid, determination of factors which regulate the interactions between ovarian cancer spheroid cells invading through mesothelial and matrix barriers over time.

Ovarian cancer cell invasion into the mesothelial lining of the peritoneum is a dynamic process over time. Utilizing a real time analyzer, the invasive capacity of ovarian cancer cells in a spheroid-mesothelial cell co-culture model can be quantified over prolonged time periods, providing insights into factors regulating the metastatic process.

Avaliação do cancro do ovário esferóide Apego e invasão de células mesoteliais em Tempo real

Ovarian cancers metastasize by shedding into the peritoneal fluid and dispersing to distal sites within the peritoneum. Monolayer cultures do not ...

Modelos 3D em Biologia do Câncer: Dinâmica de Invasão em Heterosferóides

Alternative Strategy to Analyze In Vitro Cell Invasion of 3D Cultures

Spheroid culture is a 3D model that provides an improved replication of the in vivo microenvironment compared to traditional two-dimensional (2D) cultures. Invasion is a cellular outcome of utmost interest in cancer biology. In this protocol, we have devised an alternative strategy for evaluating cancer cell invasion in vitro, employing heterospheroids comprised of oral squamous cell carcinoma (OSCC), cancer-associated fibroblasts (CAF), and monocytes. These heterospheroids aim to mimic the tumor microenvironment (TME), including two relevant non-neoplastic cell types alongside the cancer cells. Each cell type was labeled with vital fluorescent markers emitting in distinct wavelengths before spheroid formation. Once formed, heterospheroids were seeded onto a layer of human leiomyoma-derived extracellular matrix in the upper compartment of a microporous membrane. Invasion was assessed in the z-axis using confocal microscopy. Digital images were obtained in the corresponding fluorescent channels at 10 &#181;m intervals, covering a depth of 90 &#181;m in the z-axis. Analysis was performed using freeware image software by calculating the integrated fluorescence intensity in each image and fluorescence channel. This approach enables a more dynamic analysis of cell invasion patterns in a multilayered context, as well as the examination of spatial co-localization of different cell types during invasion.

Autor em destaque: decifrando a diafonia entre câncer e células imunológicas durante a progressão do câncer de cabeça e pescoço

Invasion is a major biological phenomenon in the development and progression of cancer. This process is influenced by non-neoplastic cells and components of the tumor microenvironment. The purpose of this study is to describe an alternative method for analyzing tumor cell invasion in vitro using three-dimensional (3D) cultures.

Estratégia alternativa para analisar a invasão celular in vitro de culturas 3D

Spheroid culture is a 3D model that provides an improved replication of the in vivo microenvironment compared to traditional two-dimensional (2D) ...

Three-Dimensional (3D) Tumor Spheroid Invasion Assay

Invasion of surrounding normal tissues is generally considered to be a key hallmark of malignant (as opposed to benign) tumors. For some cancers in particular (e.g., brain tumors such as glioblastoma multiforme and squamous cell carcinoma of the head and neck &#8211; SCCHN) it is a cause of severe morbidity and can be life-threatening even in the absence of distant metastases. In addition, cancers which have relapsed following treatment unfortunately often present with a more aggressive phenotype. Therefore, there is an opportunity to target the process of invasion to provide novel therapies that could be complementary to standard anti-proliferative agents. Until now, this strategy has been hampered by the lack of robust, reproducible assays suitable for a detailed analysis of invasion and for drug screening. Here we provide a simple micro-plate method (based on uniform, self-assembling 3D tumor spheroids) which has great potential for such studies. We exemplify the assay platform using a human glioblastoma cell line and also an SCCHN model where the development of resistance against targeted epidermal growth factor receptor (EGFR) inhibitors is associated with enhanced matrix-invasive potential. We also provide two alternative methods of semi-automated quantification: one using an imaging cytometer and a second which simply requires standard microscopy and image capture with digital image analysis.

Three-Dimensional 3D Tumor Spheroid Invasion Assay

Invasion of surrounding normal tissues is a defining characteristic of malignant tumors. We provide here a simple, semi-automated micro-plate assay of invasion into a natural 3D biomatrix that has been exemplified with a number of models of advanced human cancers.

Tridimensional (3D) Tumor Esferóide Invasion Assay

Invasion of surrounding normal tissues is generally considered to be a key hallmark of malignant (as opposed to benign) tumors. For some cancers in ...

Chick Heart Invasion Assay for Testing the Invasiveness of Cancer Cells and the Activity of Potentially Anti-invasive Compounds

The goal of the chick heart assay is to offer a relevant organ culture method to study tumor invasion in three dimensions. The assay can distinguish between invasive and non-invasive cells, and enables study of the effects of test compounds on tumor invasion. Cancer cells - either as aggregates or single cells - are confronted with fragments of embryonic chick heart. After organ culture in suspension for a few days or weeks the confronting cultures are fixed and embedded in paraffin for histological analysis. The three-dimensional interaction between the cancer cells and the normal tissue is then reconstructed from serial sections stained with hematoxylin-eosin or after immunohistochemical staining for epitopes in the heart tissue or the confronting cancer cells. The assay is consistent with the recent concept that cancer invasion is the result of molecular interactions between the cancer cells and their neighbouring stromal host elements (myofibroblasts, endothelial cells, extracellular matrix components, etc.). Here, this stromal environment is offered to the cancer cells as a living tissue fragment. Supporting aspects to the relevance of the assay are multiple. Invasion in the assay is in accordance with the criteria of cancer invasion: progressive occupation and replacement in time and space of the host tissue, and invasiveness and non-invasiveness in vivo of the confronting cells generally correlates with the outcome of the assay. Furthermore, the invasion pattern of cells in vivo, as defined by pathologists, is reflected in the histological images in the assay. Quantitative structure-activity relation (QSAR) analysis of the results obtained with numerous potentially anti-invasive organic congener compounds allowed the study of structure-activity relations for flavonoids and chalcones, and known anti-metastatic drugs used in the clinic (e.g., microtubule inhibitors) inhibit invasion in the assay as well. However, the assay does not take into account immunological contributions to cancer invasion.

Here, we present a protocol to study the invasion of tumor cells into living normal tissue fragments in three dimensions. This organ culture technique is mainly applied to test potentially anti-invasive drugs in vitro.

Pintainho Coração Invasion Ensaio para testar a invasão das células neoplásicas e da Actividade de compostos potencialmente anti-invasivos

The goal of the chick heart assay is to offer a relevant organ culture method to study tumor invasion in three dimensions. The assay can distinguish ...

A modificação

Resumo

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Se movendo para cima: Um simples e flexível em Vitro invasão tridimensional protocolo do ensaio

Ensaio esferóide para TGF-β Medida induzida Invasion

O uso de células tumorais do rato mamário em um ensaio de invasão in vitro como medida de comportamento de células oncogênicas

Monitoramento da invasão celular cancerígena e citotoxicidade de células T na cultura 3D

Avaliação do cancro do ovário esferóide Apego e invasão de células mesoteliais em Tempo real

Estratégia alternativa para analisar a invasão celular in vitro de culturas 3D

Estratégia alternativa para analisar a invasão celular in vitro de culturas 3D

Estratégia alternativa para analisar a invasão celular in vitro de culturas 3D

Tridimensional (3D) Tumor Esferóide Invasion Assay

Pintainho Coração Invasion Ensaio para testar a invasão das células neoplásicas e da Actividade de compostos potencialmente anti-invasivos