Os autores agradecem Alex Schier para gentilmente compartilhar a linhagem transgênica Zebrabow-M, Geoffrey Burns, para o vetor pDEST e Renee Ethier-Daigle para excelente atendimento das instalações e linhas de peixe. FINANCIAMENTO: Estamos gratos pelo apoio generoso financiamento do NIDCR RO3DE024490 e Shriners Hospitals for Children (ECL) e bolsas de formação pós-doutoramento do Shriners Hospitals for Children (LR e YK).

Cuidado e Uso Comitê Massachusetts General Hospital Institucional Animal (IACUC) aprovou todas as operações sob o protocolo de número # 2010N000106. Isso está em conformidade com a Associação de Avaliação e Acreditação do Laboratório Animal Care International (AAALAC) orientações. 1. Os reagentes e materiais de preparação <ol><li> Prepare 1 L de 50X meio de embrião E3 (Ver Tabela 1) e preparar-se 1 L de meio de embrião E3 1X (Ver Tabela 2). </li><li> Prepare meio embrião E3 com N-feniltioureia (PTU) por adição de 30 mg de PTU a 1 L de 1X E3. Agitar O / N para assegurar que o PTU se ter dissolvido completamente. Armazenar à temperatura ambiente. </li><li> Para preparar a solução de pronase, diluir 150 uL de pronase (0,5 mg / ml) com 15 ml de 1X E3. Este montante é suficiente para uma placa de Petri. Utilizar imediatamente. </li><li> Prepare solução de metilcelulose. <ol><li> Preparar a solução E3-tricaina por mistura de 75 ml de 0,2% com 25 ml tricaina1X da E3. Ferver 3 g de metilcelulose em 75 ml de solução E3-tricaina. </li><li> Completar o volume final de 100 ml com solução E3-tricaina. A solução final metilcelulose é viscosa e opaco com uma tonalidade amarelada. Armazenamento: RT protegido contra a luz. </li></ol></li><li> Estoque Tamoxifen e solução de indução <ol><li> Prepare 5 mM de solução stock de tamoxifeno por dissolução de 4-hidroxitamoxifeno em etanol a 100%. Estoque armazenar a -80 ° C. </li><li> Preparar fresco diluição de Tamoxifen à concentração desejo em 1X E3 para obter a solução de indução. CUIDADO! Por favor, consultar o MSDS, antes de usar. </li></ol></li><li> Prepare 1 L de 0,2% tricaina conforme indicado na Tabela 3. </li><li> Obter lâminas confocal. Cole quatro lamela (18 x 18) em conjunto para formar um bloco, em seguida, colocá-2 em blocos de 24 x 60 cm de distância lamela 2 para permitir a montagem do embrião no meio. </li></ol> 2. Preparação de Embriões <ol><li> Linhagens transgênicas. <br/&gt; NOTA: Zebrabow-M foi uma oferta generosa do laboratório de Alex Schier. </li><li> SOX10: ERT2-Cre NOTA: Gerar o vector alvo pDestTol2- SOX10: ERT2-Cre usando métodos de clonagem molecular padrão e comercialmente obtido recombinação tecnologia de clonagem. <ol><li> Combinar 5 &#39;clone de entrada (pENTR5&#39;- sox10p) contendo o promotor de 7.2Kb SOX10, um clone meio Gateway (PME-ERT2-Cre), e uma 3&#39; do clone de entrada (pENTR3&#39;-poliA) numa reacção com LR destino lente vetor pDestTol2- α-cristalina: YFP. </li><li> Purificar construto pDestTol2- SOX10: ERT2-Cre. A co-injectar o construto purificado (100 ng / ul) com Tol2 ARNm da transposase (50 ng / ul) em embriões de WT (F0) no estádio de uma célula. </li><li> Tela fundadores F0 adultos para a transmissão da linha germinal com base na forte fluorescência amarela em embriões de F1. </li></ol></li><li> SOX10: ERT2-Cre; Zebrabow-M <ol><li> Outcross o Zebrabow-Mline (2.1.1) com a SOX10: linhagem transgênica ERT2-Cre. </li><li> Selecionar embriões que apresentam uma forte expressão RFP onipresente e marcador lente YFP e cultivá-las até adultos. </li></ol></li></ol> Coleção 3. Embryo <ol><li> Configure vários pares de SOX10: ERT2-Cre; Zebrabow-M peixes-zebra transgénicos cinco horas - seis horas no Dia 1. </li><li> No dia seguinte, retire os divisores de manhã e recolher os ovos em torno de meio-dia. </li><li> Transferi-los para placas de petri e adicionar 15 ml da solução de pronase a dechorionate os embriões. </li><li> Incubar os embriões de 1 a 5 min, até cerca de 60% dos embriões foram dechorionated. Parar a reacção por decantação da solução de pronase e lavar os embriões 3-4 vezes com meio fresco E3. </li><li> Incubar os embriões dechorionated na E3 na RT O / N e deixá-los a desenvolver para chegar à fase 10 somitos. Incubar 50-60 embriões por embreagem para evitar o crescimento de desenvolvimento diferente. </li></ol&gt; 4. Tratamento <ol><li> Verifique estágio de desenvolvimento dos embriões no âmbito de um campo de microscópio de luz para garantir que eles estão em fase de 10 somitos. </li><li> Usando um microscópio de fluorescência com uma proteína fluorescente (RFP) filtro vermelho, isolar os embriões vermelhos brilhantes. </li><li> Proceda à indução da Cre-recombinação pela adição de 10 uM de solução hidroxitamoxifeno numa placa de Petri e incubou-se os embriões isolados a 28,5 ° C durante 3 h. </li><li> Decantar a solução tamoxifeno e lavar os embriões várias vezes com E3. CUIDADO! descartar a solução tamoxifeno em um recipiente especial resíduos biológicos. </li><li> Incubar os embriões a 28,5 ° CO / N. </li><li> Quando os embriões são aproximadamente a 28-29 fase somites (cerca de 24 horas após a fertilização), incubar os embriões a 28,5 ° C na E3-PTU solução a seguir. NOTA: o PTU é aqui utilizado para inibir a formação de melanóforos nos embriões em desenvolvimento. Este tratamento é necessárioevitar a distorção do sinal de fluorescência por melanóforos auto-fluorescente. </li><li> Incubar os embriões a 28,5 ° C </li></ol> 5. Seleção de Embriões <ol><li> Para visualizar as estruturas craniofaciais totalmente desenvolvidas, seleccionar os embriões em 4 dias após a fertilização para a intensidade do sinal vermelho e Cre marcador expressão positividade (amarelo na retina). </li><li> Anestesiar os embriões com uma solução de E3 / 0,015% tricaina. A anestesia é confirmado quando há movimentos ativos ou atividade fin é observado quando cutucando delicadamente o embrião. </li></ol> 6. Montagem do embrião em metilcelulose <ol><li> Transferir o embrião seleccionado para a imagem latente numa placa de Petri contendo uma gota de metilcelulose e embalsamar suavemente o embrião com metilcelulose. </li><li> Em um slide confocal limpo, coloque uma gota de metilcelulose fresco e montar o seu embrião dentro da gota utilizando uma ponta microloader. Posição embrião dorsal tomando cuidado para não tocaro embrião directamente. </li><li> Cobrir o embrião montadas com uma lamela de 25 x 25 e ajustar a posição do embrião, se necessário através da manipulação da lamela. </li><li> O embrião está agora pronto para a imagem. </li></ol> 7. Análise por Microscopia de Fluorescência <ol><li> Use a objetiva de 20x lente seca (abertura numérica 0,75; tamanho pinhole 2,0 mm) para focar o embrião. </li><li> Pressione o botão L100 no microscópio e selecionar os canais do software. </li><li> Selecione o botão de configuração confocal e clicar em &#39;auto&#39; e selecionar as seguintes canais antes de fechar a janela: Ch1: PCP, Ch2: GFP, Ch3: RFP ou mCherry </li><li> Ligue CH2 e CH3 antes de clicar no botão &quot;remover interlock&quot;. Clique em &#39;play&#39; para iniciar a digitalização. </li><li> Concentre-se em estrutura de interesse, que é o melhor feito por começando com moldura ½ / seg e alta tensão (HV) 150 e, em seguida, ajustar as configurações de acordo até a qualidade de imagem desejada é achieved. A RFP seria mais brilhante do que as outras cores, por conseguinte, ajustar o HV. Mude a posição Z para encontrar tanto YFP e células positivas RFP. </li><li> Uma vez definido com as configurações, capturar a imagem de seu embrião. Salvar a imagem no formato confocal formato de software de imagem e TIFF para processamento de imagem em cada canal de divisão. </li><li> Em seguida, para a imagem latente PCP, desligue CH2 e CH3 e ligue Ch1. Re-ajustar as configurações como no passo 5 sem mudar a área de foco. NOTA: PCP pode ser muito difícil de detectar devido ao sinal de fundo em azul canal que pode ser contornado, ajustando o tamanho pinhole. Um tamanho maior pinhole permite uma melhor detecção de fluorescência, reduzindo ruído / sinal de fundo. No entanto, uma pinhole maiores reduzirá efeito confocal, comprometer a qualidade da imagem. Portanto, é necessário um ajuste cuidadoso das configurações para obter a qualidade de imagem desejada e intensidade. </li><li> Capturar a imagem e salvá-lo no formato de ambos (software confocal e TIFF) para processamento de imagens. As imagens podem então ser processados ​​usando software de processamento de imagem comum para mesclar camadas e melhorar as configurações de cores como descrito por Pan e colegas 8. </li></ol>

<ol>
	<li>Dougherty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Distinct+requirements+for+wnt9a+and+irf6+in+extension+and+integration+mechanisms+during+zebrafish+palate+morphogenesis.">Distinct requirements for wnt9a and irf6 in extension and integration mechanisms during zebrafish palate morphogenesis.</a> Development. 140, 76-81 (2013).</li><li>Dougherty, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Embryonic+fate+map+of+first+pharyngeal+arch+structures+in+the+sox10:+kaede+zebrafish+transgenic+model.">Embryonic fate map of first pharyngeal arch structures in the sox10: kaede zebrafish transgenic model.</a> The Journal of craniofacial surgery. 23, 1333-1337 (2012).</li><li>Eberhart, J. K., Swartz, M. E., Crump, J. G., Kimmel, C. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Early+Hedgehog+signaling+from+neural+to+oral+epithelium+organizes+anterior+craniofacial+development.">Early Hedgehog signaling from neural to oral epithelium organizes anterior craniofacial development.</a> Development. 133, 1069-1077 (2006).</li><li>Dixon, M. J., Marazita, M. L., Beaty, T. H., Murray, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cleft+lip+and+palate:+understanding+genetic+and+environmental+influences.">Cleft lip and palate: understanding genetic and environmental influences.</a> Nature reviews Genetics. 12, 167-178 (2011).</li><li>Gfrerer, L., Dougherty, M., Liao, E. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualization+of+craniofacial+development+in+the+sox10:+kaede+transgenic+zebrafish+line+using+time-lapse+confocal+microscopy.">Visualization of craniofacial development in the sox10: kaede transgenic zebrafish line using time-lapse confocal microscopy.</a> Journal of visualized experiments : JoVE. , e50525 (2013).</li><li>McCollum, C. W., Ducharme, N. A., Bondesson, M., Gustafsson, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Developmental+toxicity+screening+in+zebrafish.+Birth+defects+research.">Developmental toxicity screening in zebrafish. Birth defects research.</a> Part C, Embryo today : reviews. 93, 67-114 (2011).</li><li>Mossey, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dental+education+and+CPD:+are+you+being+served.">Dental education and CPD: are you being served.</a> British dental journal. Suppl, 3-4 (2002).</li><li>Pan, Y. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Zebrabow:+multispectral+cell+labeling+for+cell+tracing+and+lineage+analysis+in+zebrafish.">Zebrabow: multispectral cell labeling for cell tracing and lineage analysis in zebrafish.</a> Development. 140, 2835-2846 (2013).</li><li>Vieira, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Journal of dental research. 87, 119-125 (2008).</li><li>Le Pabic, P., Ng, C., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fat-Dachsous+Signaling+Coordinates+Cartilage+Differentiation+and+Polarity+during+Craniofacial+Development.">Fat-Dachsous Signaling Coordinates Cartilage Differentiation and Polarity during Craniofacial Development.</a> PLoS genetics. 10, e1004726 (2014).</li><li>Ricks, J. E., Ryder, V. M., Bridgewater, L. C., Schaalje, B., Seegmiller, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Altered+mandibular+development+precedes+the+time+of+palate+closure+in+mice+homozygous+for+disproportionate+micromelia:+an+oral+clefting+model+supporting+the+Pierre-Robin+sequence.">Altered mandibular development precedes the time of palate closure in mice homozygous for disproportionate micromelia: an oral clefting model supporting the Pierre-Robin sequence.</a> Teratology. 65, 116-120 (2002).</li><li>Javidan, Y., Schilling, T. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+cartilage+and+bone.">Development of cartilage and bone.</a> Methods in cell biology. 76, 415-436 (2004).</li><li>McCarthy, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pdgfra+protects+against+ethanol-induced+craniofacial+defects+in+a+zebrafish+model+of+FASD.">Pdgfra protects against ethanol-induced craniofacial defects in a zebrafish model of FASD.</a> Development. 140, 3254-3265 (2013).</li></ol>

The authors declare that they have no competing financial interests.

Linhas transgénicas e azul Alcian photoconvertible como descrito acima complementa uns aos outros para definir o processo complicado de cartilagem e desenvolvimento ósseo. No entanto, a migração celular ao vivo e organização durante a organogénese tem sido a hipótese e, indiretamente, mas nunca demonstrou visualizado. A linha transgénica Zebrabow-H acoplado com uma cartilagem Cre específica permite a observação vivo simultânea de todos estes eventos distintas envolvidas na formação do osso e cartilagem. E...

Desenvolvimento craniofacial requer, interacções celulares e teciduais moleculares complexas para conduzir a proliferação celular, migração e diferenciação 1,2, 3. Este processo bem regulado e complexo está sujeito a perturbações genéticas e ambientais, de tal forma que deformidades craniofaciais estão entre as malformações congénitas mais comuns 1-9. Enquanto intervenções cirúrgicas continuam a ser a base do tratamento para anomalias craniofaciais, compreender a base de desenvolvimento é essencial para inovar futuras terapias. Portanto, estudar a morfogênese e os mecanismos para a convergência e extensão e integração de células proporciona novos insights sobre a formação do esqueleto craniofacial 1. Cranial migração e de crista neural preencher o primeiro arco faríngeo, processos mandibulares então formar pares que se estendem para formar cartilagem de Meckel, o que prefigura a mandíbula. Morfogênese of cartilagem de Meckel exige organização dos condrócitos via proliferação direcional, polarização e diferenciação celular 1,10. No entanto, a complexidade da organização dos condrócitos no crescimento e extensão da cartilagem de Meckel permanece obscuro. Entender o comportamento de células dinâmica é fundamental para compreender malformações congênitas que afetam o tamanho da mandíbula, como fenótipos mandibulares hipoplásicos 11. Zebrafish embriões oferecem muitas vantagens de desenvolvimento e genéticos para estudo detalhado da cartilagem de Meckel morfogênese. Sua rastreabilidade genética, transparência, ex vivo e rápido desenvolvimento são vantagens poderosas emprestando-lhe bem para observação do movimento celular e organização de imagens ao vivo 6. Usando ferramentas de rastreamento de linhagem, tais como: SOX10 linhagem transgênica kaede, nós e outros delinearam as origens da crista neural do esqueleto craniofacial embrionário 1,5. Using a SOX10: ERT2-Cre com o ubi: linhagem transgênica Zebrabow-M, é agora possível explorar detalhes de movimentos celulares durante o desenvolvimento craniofacial. O Zebrabow-H, é uma linha transgénica desenvolvida com o promotor da ubiquitina que conduz a expressão de fluoróforos diferentes, cada um flanqueado por locais lox 8. O fluoróforo padrão Zebrabow-M é Vermelho, expressando RFP. Após indução da expressão de Cre, o Zebrabow-H construir recombina e células expressam uma combinação de diferentes fluoróforos (RFP, CFP e YFP), criando expressão multi-espectral no embrião. Todas as células filhas que dividem a partir das células marcadas após o evento de recombinação são então clonalmente marcado, de modo que as populações de células que derivam de diferentes progenitoras justapostas são clonalmente marcado. Por esta marcação celular clonagem, células proliferação e migração com resolução clonal pode ser seguido (Figura 1 e 2).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Pronase</td>
			<td>Roche Life Sciences</td>
			<td>10165921001</td>
			<td>Prepare 500 &#956;L stock aliquots at 50mg/mL</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methylcellulose</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M0262</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>PTU (N-Phenylthiourea)</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>P7619</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tricaine</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>E10521</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>4-HydoxyTamoxifen</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T176</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>24 x 60 coverslips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-548-5P</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>18 x 18 coverslips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-540A</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>25 x 25 coverslips</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>12-540C</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pENTR5&#39;-TOPO TA Cloning Kit</td>
			<td>Life technologies&#160;</td>
			<td>K591-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pENTR/D-TOPO Cloning Kit&#160;</td>
			<td>Life Technologies</td>
			<td>K2400-20</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pENTR3&#39;-pA</td>
			<td>Tol2Kit</td>
			<td>302</td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>pDEST</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td>Gift from Geoffrey Burns labs</td>
		</tr>
		<tr>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Equipments</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Bright field microscope&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fluorescent microscope&#160;</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Confocal microscope</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Image processing software</td>
			<td></td>
			<td></td>
			<td></td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

visualization of chondrocyte intercalation and directional proliferation via zebrabow clonal cell analysis in the embryonic meckel&#8217;s cartilage

Desenvolvimento das estruturas craniofaciais vertebrados requer uma coordenação precisa de migração celular, a proliferação, a adesão e a diferenciação. Padronização da cartilagem de Meckel, um primeiro arco derivado da faringe, envolve a migração das células da crista neural cranial (CNC) e do particionamento progressiva, proliferação e organização dos condrócitos diferenciados. Vários estudos têm descrito a migração CNC durante inferior morfogênese mandíbula, mas os detalhes de como alcançar os condrócitos organização no crescimento e extensão da cartilagem de Meckel permanece obscuro. O SOX10 restrito e Cre recombinase mediada por recombinação induzida quimicamente gera permutações de proteínas fluorescentes diferentes (RFP, YFP e PCP), criando, assim, um rótulo multi-espectral de células progenitoras e a sua descendência, que reflecte as populações clonais distintos. Usando fotografia confocal time-lapse, é possível observar os condrócitos behaviou durante o desenvolvimento da cartilagem do peixe-zebra de Meckel. Rotulagem célula Multispectral permite aos cientistas demonstrar extensão de condrócitos de Meckel. Durante a fase de extensão da cartilagem de Meckel, o que prefigura a mandíbula, condrócitos intercalar para efetuar extensão como eles se comportam em uma fileira em camadas de uma única célula organizada. A falha deste processo de intercalação organizado para mediar extensão célula fornece a explicação mecanicista celular para mandíbula hipoplásica que observamos em malformações mandibulares.

Visualização cartilagem tradicional pela montagem Alcian manchas azuis inteiras tem sido inestimável para observar o desenvolvimento da cartilagem de Meckel e comumente usado para visualizar celular organização 12 (Figura 1A) final. Para analisar melhor os condrócitos em desenvolvimento horas extras, linhagem rastreamento usando SOX10: linhagens transgênicas Kaede nos permitiu estudar a migração de células, a convergência ea extensão em embriões vivos 2,12 <st...

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Visualization of Chondrocyte Intercalation and Directional Proliferation via Zebrabow Clonal Cell Analysis in the Embryonic Meckel&amp;#8217;s Cartilage

Organização celular dos ossos craniofaciais tem sido a hipótese, mas nunca diretamente visualizado. Rotulagem célula multi-espectral e in vivo ao vivo imaging permite a visualização do comportamento das células dinâmica no peixe-zebra maxilar inferior. Aqui, nós detalhe o protocolo para manipular Zebrabow peixes transgénicos e observar diretamente intercalação celular e alterações morfológicas de condrócitos na cartilagem de Meckel.

Visualização de condrócitos Intercalation e Direcional Proliferação via Zebrabow Análise celular clonal na cartilagem de Meckel o Embryonic

Development of the vertebrate craniofacial structures requires precise coordination of cell migration, proliferation, adhesion and differentiation. ...

visualization-chondrocyte-intercalation-directional-proliferation-via

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Visualization of Chondrocyte Intercalation and Directional Proliferation via Zebrabow Clonal Cell Analysis in the Embryonic Meckel&#8217;s Cartilage

9.0K visualizações.  Harvard Medical School.  Organização celular dos ossos craniofaciais tem sido a hipótese, mas nunca diretamente visualizado. Rotulagem célula multi-espectral e in vivo ao vivo imaging permite a visualização do comportamento das células dinâmica no peixe-zebra maxilar inferior. Aqui, nós detalhe o protocolo para manipular Zebrabow peixes transgénicos e observar diretamente intercalação celular e alterações morfológicas de condrócitos na cartilagem de Meckel. 

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