We thank Wendy Zhang, Austin Tom, Jacquie Janney, Erin Lemley, and Brittany Janney for assistance with plant growth and extractions, Dr. Anatoli Lygin for assistance with chromatographic analyses, and Syngenta Crop Protection for funding.

1. Planta Material, condições de crescimento, e vegetativo Clonagem Nota: Três populações waterhemp foram investigados nesta pesquisa: MCR (do Condado de McLean, IL), ACR (a partir de Adams County, IL), e WCS (a partir de Wayne County, IL) (Tabela 1). <ol><li> Coletar e suspender sementes waterhemp em 0,1 g L -1 de ágar: solução de água a 4 ° C durante pelo menos 30 dias para melhorar a germinação. Nota: Algumas populações waterhemp estão dormentes, mas este passo ajuda a superar a dormência de sementes e fazer germinar mais uniformemente. </li><li> Germinar sementes de cada população waterhemp (como na Tabela 1) em 12 x 12 cm tabuleiros contendo um meio de envasamento em estufa. <ol><li> Manter condições de estufa em 28/22 ° C temperaturas dia / noite dentro de um fotoperíodo 16/8 hr 12. </li><li> Suplemento de luz natural da estufa com luz de lâmpadas de halogeneto de mercúrio para fornecer um mínimo de 500 umol m -2 </sup&gt; fluxo seg1 fóton no nível da planta dossel. </li></ol></li><li> Transplante mudas surgiu quando eles são 2 cm de altura em 80 cm 3 vasos em casa de vegetação. </li><li> O transplante das plântulas em 950 cm 3 vasos contendo uma mistura 3: 1 de mistura de envasamento:: 1: 1 de solo: areia de turfa: quando mudas são 4 cm de altura. Adicionar 5 g de grânulos de libertação lenta de fertilizantes para cada vaso e misturar esta mistura com o solo. </li><li> Cortar e remover o meristema apical contendo as três folhas mais novas a partir de 7 cm plantas altas para eliminar dominância apical. Nota: Esta etapa garante que cada planta vai crescer o suficiente tiros três centímetros axilares para clonar. </li><li> Especiais de Consumo cinco rebentos axilares (3 cm de comprimento), quando mudas são cerca de 14 cm de altura de cada população waterhemp (como na Tabela 1). Remover a maior parte das folhas de rebentos axilares desses para diminuir a perda de água após a subsequente manuseamento, mas mantêm as duas folhas mais jovens para permitir um maior crescimento em cima do transplante. <br/&gt; Nota: Manusear com cuidado e tentar não danificar os rebentos quando a remoção das folhas. Etiquetar cada planta com uma estaca. </li><li> Transplante axilar atira em 80 cm 3 vasos (uma de mudas por vaso) em substrato, que é o mesmo meio utilizado para a germinação. Substrato deve ser saturado inicialmente até formar raízes na câmara de crescimento, em seguida, manter a umidade e coloque panelas constantes na câmara de crescimento durante 7 dias para estabelecer raízes. Nota: As plantas são muito sensíveis, neste ponto e não deve ser salientado. <ol><li> Manter o crescimento em condições de câmara 28/22 ° C temperaturas dia / noite dentro de um fotoperíodo 16/8 hr 12. </li><li> Uma combinação de lâmpadas incandescentes e fluorescentes pode ser utilizada para fornecer a luz na câmara de crescimento e deve fornecer, pelo menos, 550? Mol m -2 s -1 fluxo de fotões em planta nível calote 12. </li></ol></li><li> Transplante de novo em 950 cm 3 potes (uma muda por vaso) containing uma mistura 3: 1 de mistura de envasamento:: 1: 1 de solo: turfa: areia (também incluem 5 g de liberação lenta grânulos de fertilizantes) quando as plantas clonadas são 4 cm de altura, em seguida, transferir de volta para o efeito estufa. </li><li> Clonar as plantas uma segunda vez usando o mesmo método descrito acima (ou seja, repetir as etapas 1,5-1,8, e, em seguida, vá para o passo 2.1). Para um estudo típico curso de tempo, gerar clones a partir de, pelo menos, seis usinas independentes de cada população waterhemp e gravá-los como linhas MCR 1-6, 1-6 e ACR WCS 1-6. <ol><li> Estabelecer pelo menos seis &quot;pai&quot; linhas clonais distintos, a fim de repetir a experiência e adequadamente representar a variabilidade genética dentro de cada população waterhemp. </li><li> Dependendo de quantos pontos serão analisados ​​tempo, gerar sub-clones suficientes de cada um &quot;pai&quot; linha clonal para realizar um estudo curso de tempo. </li></ol></li></ol> 2. Realização de um estudo de metabolismo com extirpado Waterhemp Leaves <ol><li> Extirpar o terceiro mais jovens folhas (2 a 3 cm de comprimento; incluem 0,5 cm de pecíolo ligado) quando as plantas waterhemp clonados são de 10 a 12 cm de altura para o metabolismo do herbicida ea DT 50 análise. </li><li> Pecíolos Cut folha de cada planta waterhemp uma segunda vez (assegurando que 0,3 cm de pecíolo permanece) sob a água, e coloque estas extremidades cortadas em 1,5 ml frascos de plástico (uma folha por frasco) 15. Nota: Cortando uma segunda vez sob a água impede a formação de bolhas de ar e conectar vasos do xilema. <ol><li> Em primeiro lugar, submergir parcialmente folhas excisadas com corte pecíolo em tampão de pré-incubação (200 ul) de 0,1 M de Tris-HCl (pH 6) durante 1 h. </li><li> Em segundo lugar, cada folha se mover para um novo frasco contendo 1,5 ml de um tampão de incubação (200 ul) de 0,1 M de Tris-HCl (pH 6), além de 150 fiM [URL-14 C] herbicida, e incuba-se a 28 ° C durante 1 h para permitir a absorção do herbicida nas folhas. Nota: A C-14 e mesotriona <sup&gt; 14 C-primisulfurão-metil foram utilizados em nossos estudos em actividades específicas de cerca de 20 mCi mmol -1. Ambos difusão e absorção através da corrente xilema transpiração contribuem para a quantidade de herbicida retomado por folha. Nota: O efeito de inibidores metabólicos sobre o metabolismo do herbicida pode ser determinada, modificando passos 2.2.1 e 2.2.2. Adicionar 100 uM do inibidor para o tampão de pré-incubação e deixar incubar durante 2 horas, em seguida, transferir para tampão de incubação com o herbicida e adicionar novamente 100 uM de inibidor. Por exemplo, malathion e tetcyclacis inibir certas actividades do citocromo P450 em plantas 15-17. </li><li> Lave a parte imersa das folhas excisadas com água deionizada e transferir folhas excisadas para um quarto de força Murashige e Skoog (MS) solução sais (500 mL) para 0 h, 5 h, 11 h, 23 h, ou 35 horas, respectivamente, na câmara de crescimento durante o estudo do metabolismo curso de tempo. </li></ol></li><li> Colheita removendo licenças a partir da solução de incubação no ponto de tempo apropriado e moer manualmente cada folha do tecido em azoto líquido usando um tubo de polipropileno (15 ml) e pilão de vidro. </li><li> Extrair herbicida marcado radioactivamente e os seus metabolitos de cada folha com 7 ml de acetona a 90% com um homogeneizador de tecidos laboratorial no mesmo tubo de polipropileno como acima. Lavar homogeneizador de tecidos com um adicional de 7 ml de 90% de acetona, e continuar a homogeneizar até que o tecido está completamente pulverizado (geralmente cerca de 2 min). Nota: 90% de acetona pode ser utilizado para a extracção da maior parte dos herbicidas a partir de tecidos de plantas. No entanto, se este método é possível extrair mais do que 90% dos compostos radiomarcados absorvidas, em seguida, 90% de metanol ou 90% de acetonitrilo pode ser substituído, tal como o solvente de extracção. </li><li> Etiqueta 90% extractos de acetona (14 mL no total) e armazenar a 4 ° C durante 16 horas para permitir a extracção adicional para ocorrer. Nota: Após esta extração de folhas tratadas, a quantidade de rad extraívelioactivity é tipicamente pelo menos 98% de compostos radiomarcados absorvidos pela folha tratada. Radioactividade não extractável (resíduos ligados) em folhas excisadas em média apenas 0,3% em todos os pontos de tempo no nosso estudo anterior 12, mas esta quantidade pode variar de acordo com o herbicida utilizado e ponto de tempo examinado. </li><li> Centrifugar as amostras a 5000 xg durante 10 min e concentrar-se os sobrenadantes a 40 ° C com um evaporador rotativo até um volume final de 0,5 ml é obtida. Transfira este volume para um tubo de plástico de 2,0 ml. </li><li> Adicionar acetonitrilo: água (1: 1, por volume) para ajustar o volume final da planta extrai a 1,25 ml e re-centrifugar a 10000 xg durante 10 minutos para remover quaisquer partículas. </li><li> Medir radioactividade total em uma alíquota de cada amostra (dpm ul -1) por espectroscopia de cintilação líquida (LSS) 12 e normalizar valores de [marcado com 14 C] compostos injectados para análise por HPLC (por exemplo, 10,000 total de dpm / amostra / run) para y-eixos será uniforme entre as amostras ao representar graficamente os resultados. </li></ol> 3. HPLC Análise do herbicida nas folhas excisadas Metabolismo Nota: Resolva radioatividade extraível total de herbicidas em pai e herbicidas metabólitos utilizando as seguintes condições RP-HPLC 12. <ol><li> Realizar RP-HPLC com uma coluna C 18 (4,6 x 250 mm, 5 um de tamanho de partícula, por HPLC analítica) com um caudal de 1 ml min -1 para a maioria dos herbicidas não-polares. Nota: as colunas C 4 ou C 12 de RP-HPLC pode também ser utilizado para optimizar a separação do herbicida parente de seus metabolitos. Um filtro pré-coluna e / ou pré-coluna também pode ser usado para proteger e aumentar a vida útil da coluna RP. <ol><li> Utilize a seguinte fase móvel para RP-HPLC: Eluente A, 0,1% de ácido fórmico (v / v) em água, e Eluente B 100% de acetonitrilo de grau HPLC. Nota: metanol de grau HPLC, também pode ser utilizado como Elafluente B para a resolução de compostos mais polares e metabolitos, mas esteja ciente de que os tempos de retenção também pode mudar. Nota: O perfil de eluição usado para resolver a mesotriona ou primi sul furão-metilo a partir dos seus metabolitos polares em nossa pesquisa 12 é a seguinte: Etapa 1, A: B (4: 1, v / v) a A: B (3: 2, v / v ) num gradiente linear (12 min); Passo 2, A: B (3: 2, v / v) a A: B (3: 7, v / v) num gradiente linear (5 min); Passo 3, A: B (3: 7, v / v) a A: B (1: 9, v / v) em um gradiente linear durante 2 minutos (num total de 19 min). Nota: Gradientes isocráticas e passos podem ter de ser ajustadas com base nas propriedades físicas do material de origem, de modo a optimizar a resolução. </li><li> Seguir os passos de gradiente linear acima, com A: B (1: 9, v / v) A: B (4: 1, v / v) num gradiente linear (3 min) e A: B (4: 1, v / v) passo isocrático (durante pelo menos 2 min) para re-equilibrar a coluna RP antes de injectar o seguinte extracto 12. </li></ol></li><li> Detectar e visualizar compostos radiomarcados com um fluxo Scintillation Analyzer. Registar a quantidade de herbicida-mãe restante em cada amostra como uma percentagem da radioactividade total em cada amostra (detectados e quantificados pelo fluxo de cintilação Analisador de acordo com as instruções do fabricante) para determinar as taxas de metabolismo herbicida em cada população waterhemp durante o curso do tempo. </li></ol> 4. Procedimentos Estatísticos <ol><li> Organizar tratamentos em um delineamento inteiramente ao acaso (ou outro arranjo adequado para análise estatística). </li><li> Realizar duas experiências independentes com cada tratamento, composta de três réplicas biológicas para cada experimento. Os dois experimentos independentes incluem seis repetições biológicas no total. Se o efeito de experiência não é significativa (α = 0,05), combinar e analisar os dados de cada experiência independente. Se o efeito experimento é significativo, em seguida, analisar cada experiência em separado. Nota: Inclua os primeiros três repetições biológicas in Experimento 1 e os próximos três repetições biológicas no Experimento 2. Cada repetição biológica representa um &quot;pai&quot; distinta linha clonal derivada de cada população (MCR 1-6, 1-6 ACR, e WCS 1-6), de modo que cada tempo- Curso de Análise utiliza plantas geneticamente idênticas. Os dois experimentos independentes incluem seis repetições biológicas no total, o que permite uma representação adequada da variabilidade genética ea determinação de um mediano DT 50 para cada população waterhemp. </li><li> Analisar os dados com análise não linear de regressão dos mínimos quadrados e encaixá-los com uma curva simples de primeira ordem, a fim de estimar a DT 50 s. A equação abaixo descreve o modelo: <img alt="Equação 1" src="/files/ftp_upload/53236/53236eq1.jpg" /></li><li> onde, neste modelo de Y representa a percentagem de herbicida-mãe remanescente no tempo t, μ i é a DT para cada 50waterhemp população i, eo parâmetro C 0 é o valor estimado do pai herbicida presente em t = 0 12. </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

O método extirpado-leaf aqui descrito foi usado anteriormente em pesquisar metabolismo primisulfurão no milho deixa 15, mas os nossos resultados demonstram que este protocolo é igualmente eficaz, preciso e reprodutível para medir o metabolismo do herbicida em um dicot 12 espécies de plantas daninhas. Uma grande vantagem da técnica de folha excisada em comparação com os estudos da planta inteira de uma folha que é excisada é independente de padrões de translocação da planta inteira de p...

Resistência a herbicidas em ervas daninhas apresenta uma séria ameaça para a produção mundial de alimentos e fibras 1,2. Atualmente, milhares de populações resistentes e biótipos de mais de cem espécies de plantas daninhas em todo o mundo têm sido documentadas e estudadas 3. Um importante mecanismo que confere resistência a herbicida em plantas, é a alteração de herbicidas genes e proteínas do local-alvo, incluindo as mutações genéticas que afectam a cinética de ligação proteína-herbicida ou amplificação do gene-alvo local 2. Desintoxicação metabólica via actividades elevados de mono-oxigenase citocromo P450 (P450) ou glutationa S -transferase (GST) enzimas é outro mecanismo que confere resistência a herbicidas em ervas daninhas, que é distinto de várias formas de mecanismos baseados em local de destino 2. Resistência à base metabólica tem ramificações significativas para se os custos de fitness planta (aka sanções aptidão) pode resultar dos mechanis de resistência ao herbicidam, bem como em relação ao potencial para um único mecanismo de desintoxicação para conferir resistência cruzada ou de vários herbicidas em populações de plantas daninhas 1,2,4. Geralmente, o metabolismo do herbicida em plantas pode ser dividida em três fases distintas 5. Fase I envolve a conversão herbicida ou de activação tal como hidroxilação P450-mediada de anéis aromáticos ou grupos alquilo, ou por N - ou reacções de desalquilação O-, levando ao aumento da polaridade e herbicida parcial desintoxicação 5,6. Recentemente introduzido grupos funcionais na Fase I podem proporcionar sítios de ligação para conjugação de glutationa reduzida por GSTs ou para glicose pelo glicosiltransferases UDP-dependentes na Fase II 5,7. Por exemplo, o principal metabolito inicial de primi sul furão-metilo no milho é hidroxi-primi sul furão-metilo 8, que pode ser posteriormente metabolizado para hidroxi-primisulfurão-glucósido (Fase II) e, em seguida, transportados para o vacúolo para armazenamento a longo prazo ou mais metabólica prócessamento 5,6 (Fase III). Waterhemp (Amaranthus tuberculatus) é uma de difícil controle, dicot espécies de plantas daninhas anuais que dificulta a produção de milho (Zea mays), soja (Glycine max) e algodão (Gossypium hirsutum) nos Estados Unidos. O alto grau de diversidade genética de waterhemp é facilitada pela sua biologia dióico e de longa distância vento polinização, e uma única planta waterhemp fêmea pode produzir até um milhão de sementes 9. Estas sementes são pequenas e facilmente se espalhar, o que naturalmente dotar waterhemp com um mecanismo de dispersão eficaz. Waterhemp exibe germinação contínua durante todo o período de crescimento 9, e suas sementes são capazes de germinar após vários anos de dormência. Waterhemp é uma planta C 4 que possui uma taxa de crescimento mais elevada do que a maioria das ervas daninhas de folha larga em sistemas de culturas arvenses 10. Além disso, numerosas populações waterhemp são resistentes a múltiplos famílias de herbicidas 3. Uma população de waterhemp (designado MCR) de Illinois é resistente à 4-hidroxi-fenilpiruvato dioxigenase (HPPD) herbicidas -inhibiting 11, tais como a mesotriona, bem como a atrazina e acetolactato sintase (ALS) -inhibiting herbicidas, incluindo primi sul furão-metilo , devido à não-alvo do local mecanismos baseados 12,13. Uma população diferente de waterhemp designado ACR 14, que é-primi sul furão-metilo resistentes (devido a uma mutação no gene de ALS) e atrazina-resistentes, mas sensível a mesotriona, e uma população waterhemp designado WCS 14 que é sensível à primi sul furão-metilo, mesotriona, atrazina e foram usadas em comparação com MCR na nossa pesquisa anterior 12 e experiências actuais (resumidas na Tabela 1). Estudos iniciais não detectaram alterações nos níveis de sequências genéticas HPPD ou expressão, ou reduzida absorção mesotriona, no MCRpopulação quando comparados com populações sensíveis à mesotriona 12. No entanto, estudos de metabolismo com plantas inteiras mostraram níveis significativamente mais baixos de pai mesotriona herbicida em comparação com o ACR MCR e WCS, o que se correlacionou com respostas fenotípicas anteriores para mesotrione 11,12. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Waterhemp População </td><td> Abreviatura </td><td> Fenótipo para Mesotriona </td><td> Mecanismo de resistência mesotriona </td><td> Fenótipo para primisulfurão </td><td> Mecanismo de resistência primisulfurão </td></tr><tr><td> O Condado de McLean-Resistant </td><td> MCR </td><td> Resistente </td><td> Metabolismo * </td><td> Resistente </td><td> Metabolismo </td></tr><tr><td> Adams County-Resistant </td><td> ACR </td><td> Sensitive </td><td> - </td><td> Resistente </td><td> Mutação alvo local em ALS 14 </td></tr><tr><td> Wayne County-Sensitive </td><td> WCS </td><td> Sensível </td><td> - </td><td> Sensível </td><td> - </td></tr></tbody></table> * Mecanismos de resistência não-alvo do local, com excepção metabolismo reforçada, também podem conferir resistência mesotriona na população MCR 12. Tabela 1: Descrição das populações waterhemp de Illinois utilizados neste estudo. Além de determinar as taxas de metabolismo herbicida em plântulas waterhemp intactas, uma abordagem experimental diferente foi desenvolvido e utilizado na nossa investigação anterior para investigar o metabolismo usando um ensaio excisado waterhemp folha 12, bem como vários inibidores de P450 (por exemplo, tetcyclacis e malatião). Este método foi adaptado especificamente para waterhemp de um PREVIinvestigação ous do metabolismo primisulfurão-metil em milho extirpado deixa 15, uma vez que o ensaio de folha excisada ainda não haviam sido notificados para a realização de pesquisas metabolismo herbicida numa planta dicotiledônea. O inseticida malathion organophophosate tem sido frequentemente utilizado para in vivo e em pesquisa herbicida metabolismo vitro para indicar envolvimento P450 16. Por exemplo, a tolerância eo metabolismo rápido de mesotriona no milho são devido a hidroxilação do anel P450 catalisada, o que foi verificado quando malathion aumento da sensibilidade do milho para mesotriona 17. Da mesma forma, malatião inibiu o metabolismo do inibidor de primi sul furão-metilo ALS de milho em folhas excisadas 15. Uma grande vantagem da técnica de folha excisada é que os dados gerados são independentes de padrões de translocação da planta inteira de, um factor importante a considerar quando se avalia o metabolismo de sistémicas, herbicidas pós-emergentes em plantas. Por conseguinte, este método permite que quantitativa emetabólica análises qualitativas para se concentrar em uma única folha tratada 12. Uma estratégia de clonagem vegetativo, em combinação com o protocolo de folha excisada, foi previamente utilizado em waterhemp para conduzir estudos de metabolismo 12. Devido à natureza de cruzamento de waterhemp (plantas masculinas e femininas separadas), e elevado grau de diversidade genética dentro das espécies Amaranthus dióicas 9, este protocolo assegurado que waterhemp mudas geneticamente idênticas foram analisadas dentro dos experimentos longo do tempo. Este artigo demonstra a utilidade do método para a medição de folha excisada taxas de metabolismo herbicida em plantas daninhas dicotiledóneas um (waterhemp). A quantidade de herbicida-mãe remanescente foi determinada em cada ponto de tempo (Figura 1) por análise não linear de regressão dos mínimos quadrados, e foi adequado com uma curva de primeira ordem simples, a fim de estimar o tempo para 50% de herbicida absorvida para degradar ( DT 50). Representantecromatogramas da cromatograf ia líquida de alta eficiência de fase inversa (RP-HPLC) são exibidos para ALS-resistentes e sensíveis ao waterhemp populações, que indicam o desaparecimento de herbicida-mãe e formação concomitante de metabolito polar (s) durante um estudo de tempo-curso (figura 2). O foco do nosso artigo é descrever e demonstrar a utilidade do ensaio da folha excisada em combinação com um método de clonagem vegetativa para determinar as taxas precisas e reprodutíveis do metabolismo de herbicidas em plantas dicotiledôneas, utilizando anel marcado (URL-14 C) herbicidas de maneira uniforme em três populações waterhemp que diferem nas suas respostas a planta inteira de HPPD- e inibidores da ALS herbicidas (Tabela 1).

<table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Agar</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>A1296</td>
			<td>for pre-germinating seeds</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Potting medium</td>
			<td>Sun Gro Horticulture</td>
			<td>49040233</td>
			<td>for plant growth</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Nutricote</td>
			<td>Agrivert&#160;</td>
			<td>TOTAL BLEND 13-13-13 T100</td>
			<td>slow-release fertilizer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Growth chamber E15</td>
			<td>Controlled Environments Limited</td>
			<td>20207</td>
			<td>plant culturing</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Tris base</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>BP152-500</td>
			<td>buffer for excised leaves</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>HCl (concentrated)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A144500</td>
			<td>adjust pH of buffer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Murashige and Skoog (MS) salts&#160;</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>M0404</td>
			<td>incubation of excised leaves</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Methanol</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>A452-4</td>
			<td>leaf washes after incubation</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetone</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>179124</td>
			<td>plant extractions</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Acetonitrile (HPLC grade)</td>
			<td>Macron Fine Chemicals</td>
			<td>MKH07610</td>
			<td>HPLC mobile phase</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Formic acid&#160;</td>
			<td>Mallinckrodt Analytical</td>
			<td>MK259205</td>
			<td>acidify mobile phase pH</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Micro-centrifuge</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5417R</td>
			<td>1.5 or 2.0 mL tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Centrifuge (temperature controlled)</td>
			<td>Eppendorf</td>
			<td>5810R</td>
			<td>15 or 50 mL tubes</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Polypropylene centrifuge tube</td>
			<td>Corning Inc.</td>
			<td>430790</td>
			<td>15 mL, sterile</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Rotary evaporator</td>
			<td>B&#220;CHI</td>
			<td>R200</td>
			<td>concentrate plant samples</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Liquid scintillation spectrometry (LSS)</td>
			<td>Packard Instruments</td>
			<td>104470</td>
			<td>quantify 14C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>High-performance liquid chromatography</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>N2910401</td>
			<td>resolve herbicide metabolites</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Flow scintillation analyzer&#160;</td>
			<td>LabLogic System</td>
			<td>1103303</td>
			<td>for HPLC analysis of 14C</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Hypersil Gold C18 column&#160;</td>
			<td>Thermo-Scientific</td>
			<td>03-050-522&#160;</td>
			<td>reversed phase</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ultima-Flo M cocktail</td>
			<td>Perkin Elmer</td>
			<td>6013579</td>
			<td>for Flow-scintillation analyzer</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scintillation Cocktail (ScintiVerse BD)</td>
			<td>Fisher Scientific</td>
			<td>SX18</td>
			<td>for LSS; biodegradable</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Laboratory homogenizer</td>
			<td>Kinematica</td>
			<td>CH-6010&#160;</td>
			<td>homogenize leaf samples</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

measuring rates of herbicide metabolism in dicot weeds with an excised leaf assay

In order to isolate and accurately determine rates of herbicide metabolism in an obligate-outcrossing dicot weed, waterhemp (Amaranthus tuberculatus), we developed an excised leaf assay combined with a vegetative cloning strategy to normalize herbicide uptake and remove translocation as contributing factors in herbicide-resistant (R) and &#8211;sensitive (S) waterhemp populations. Biokinetic analyses of organic pesticides in plants typically include the determination of uptake, translocation (delivery to the target site), metabolic fate, and interactions with the target site. Herbicide metabolism is an important parameter to measure in herbicide-resistant weeds and herbicide-tolerant crops, and is typically accomplished with whole-plant tests using radiolabeled herbicides. However, one difficulty with interpreting biokinetic parameters derived from whole-plant methods is that translocation is often affected by rates of herbicide metabolism, since polar metabolites are usually not mobile within the plant following herbicide detoxification reactions. Advantages of the protocol described in this manuscript include reproducible, accurate, and rapid determination of herbicide degradation rates in R and S populations, a substantial decrease in the amount of radiolabeled herbicide consumed, a large reduction in radiolabeled plant materials requiring further handling and disposal, and the ability to perform radiolabeled herbicide experiments in the lab or growth chamber instead of a greenhouse. As herbicide resistance continues to develop and spread in dicot weed populations worldwide, the excised leaf assay method developed and described herein will provide an invaluable technique for investigating non-target site-based resistance due to enhanced rates of herbicide metabolism and detoxification.

Foram detectadas grandes diferenças nas taxas de metabolismo mesotriona entre qualquer WCS ou ACR e MCR (Figura 1). Em cada ponto de tempo, MCR tinha metabolizado mesotriona mais rapidamente do que as duas populações sensíveis à mesotriona, WCS e ACR, que se correlaciona com a planta inteira de respostas fenotípicas anteriores 11. Ao clonar plantas suficientes a partir de uma única planta parental de cada população, análises de curso-tempo do metabolismo dos herbicidas estão unifor...

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Measuring Rates of Herbicide Metabolism in Dicot Weeds with an Excised Leaf Assay

This manuscript describes how herbicide metabolism rates can be effectively quantified with excised leaves from a dicot weed, thereby reducing variability and removing any possible confounding effects of herbicide uptake or translocation typically observed in whole-plant assays.

Medindo Taxas de Herbicida Metabolismo em Dicot Weeds com um ensaio extirpado Folha

In order to isolate and accurately determine rates of herbicide metabolism in an obligate-outcrossing dicot weed, waterhemp (Amaranthus tuberculatus), we ...

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