As cianobactérias são um importante filo de micróbios fotossintéticos que são cada vez mais reconhecidos como plataformas úteis para biologia sintética e aplicações de biotecnologia renovável. Assim, desenvolver técnicas robustas para simplificar o design, clonagem e introdução de DNA heterólogo em diferentes espécies cianobacterianas é importante. Assim, esta técnica demonstra um método bem estabelecido chamado conjugação ou acasalamento triparental para introduzir DNA em espécies cianobacterianas que não são naturalmente transformáveis.
A conjugação tem sido realizada com sucesso em uma ampla gama de cepas cianobacterianas de células únicas a espécies filamentous multicelulares. Se você está tentando esta técnica pela primeira vez, por favor, tome cuidado para lidar tanto com suas cepas cianobacterianas quanto suas cepas de E.coli com cuidado. Por exemplo, não centrifugar acima dos valores dados no protocolo e não vórtice.
Misturar bactérias e cianobactérias pode parecer estranho para usuários iniciantes. Esperamos que, demonstrando o processo de conjugação, ajudemos a esclarecer isso. Após a construção de montagens de nível um, escolha um vetor de aceitação de nível T apropriado.
Escolha um link final apropriado para ligar a extremidade três prime do conjunto de nível um final para a espinha dorsal nível T. Para montar um ou mais conjuntos de nível um no nível T, prepare uma mistura de reação com PBI1 e o vetor de link final necessário. Configure o programa de cicloviário térmico e prossiga de acordo com o manuscrito.
No primeiro dia, cresça a cultura cianobacteriana criando uma nova cultura de Synechocystis PCC 6803 ou Synechococcus elongatus UTEX 2973. Com um laço estéril térmico, raspe as células da placa de ágar BG-11 axenic e coloque em um frasco cônico de 100 mililitros cheio de 50 mililitros de médio BG-11 fresco para inoculado. Coloque o frasco em uma incubadora agitada com iluminação para cultivar as culturas celulares Synechocystis PCC 6803 a 30 graus Celsius a 100 RPM.
Para Synechococcus elongatus UTEX 2973, cresça as culturas celulares a 40 graus Celsius a 100 RPM. Após um a dois dias, desenhe um milímetro da cultura celular e meça em um espectrômetro. A absorvância em OD 750 atinge 0,5 a 1,5.
No segundo dia, inocular uma cepa de ajudante MC1061 E.coli contendo vetores PRK24 e PRL528 em cinco mililitros de meio LB com ampicillina a uma concentração de 100 microgramas por mililiter e clorograma a uma concentração de 25 microgramas por mililitro. Cresça a 37 graus Celsius durante a noite a 225 RPM em uma incubadora de agitação. Em seguida, inocular cinco mililitros de meio LB contendo antibióticos apropriados com a cultura E.coli carregando o vetor de carga nível T.
Cresça a cultura a 37 graus Celsius durante a noite a 225 RPM em uma incubadora agitada. No terceiro dia, centrifugar o ajudante e a carga E.coli durante a noite culturas a 3.000 g por 10 minutos em temperatura ambiente. Descarte o supernatante sem perturbar a pelota celular.
Lave as pelotas adicionando cinco mililitros de meio LB fresco sem antibióticos. Resuspenque a pelota tubondo suavemente para cima e para baixo e centrífuga para remover o supernatante. Repita esta etapa de lavagem três vezes para remover antibióticos residuais da cultura da noite para o dia.
Após a última lavagem, resuspenja a pelota celular pela metade do volume do meio LB do volume de cultura inicial. Em seguida, combine 450 microliters da cepa auxiliar com 450 microliters da cepa de carga em um tubo de dois mililitros e deixe em temperatura ambiente. Em seguida, prepare a cultura cianobacteriana centrifugando um mililitro da cultura cianobacteriana a 1.500 g por 10 minutos em temperatura ambiente.
Em seguida, descarte o supernatante cuidadosamente sem perturbar a pelota celular. Lave a pelota quatro vezes adicionando um novo meio BG-11 do mesmo volume inicial. Adicione 900 microliters da cultura cianobacteriana lavada a 900 microliters das cepas combinadas de E.coli em um tubo de dois mililitros.
Misture as culturas gentilmente se esforçando para cima e para baixo. Incubar a mistura em temperatura ambiente por 30 minutos para Synechocystis PCC 6803 ou duas horas para Synechococcus elongatus UTEX 2973. Centrifugar a mistura a 1.500 g durante 10 minutos em temperatura ambiente.
Remova 1,6 mililitros do supernasce e resuspense a pelota no restante do supernatante. Coloque um filtro de membrana de 0,45 mícria em uma placa de ágar LB BG-11 sem antibióticos. Espalhe cuidadosamente 200 microlitadores da mistura de cultura E.coli/cianobacteriana na membrana com um espalhador estéril ou uma ponta dobrada estéril.
Sele a placa com filme de parafina e coloque a placa em uma incubadora iluminada por 24 horas. Após 24 horas, transfira cuidadosamente a membrana usando fórceps esterilizados por chama para uma placa de ágar BG-11 fresca contendo antibióticos apropriados para selecionar para o vetor de carga. Sele a placa com filme de parafina e incubar sob as mesmas condições anteriormente até que as colônias apareçam.
Colônias normalmente aparecem após 7-14 dias para Synechocystis PCC 6803 e 3-7 dias para Synechococcus elongatus UTEX 2973. Para selecionar conjugantes, usando uma haste inoculante estéril de calor, selecione pelo menos duas colônias individuais da membrana e listrada em uma nova placa de ágar BG-11 contendo antibióticos apropriados. Em seguida, inocular uma raia de cultura cianobacteriana em um tubo de centrífuga de 15 mililitros contendo cinco mililitros de meio LB e incubar a 37 graus Celsius durante a noite a 225 RPM em uma incubadora de agitação.
A cultura clara confirma a ausência de contaminação por E.coli. Após um período de crescimento suficiente de sete dias, escolha colônias axenic individuais para criar culturas líquidas para armazenamento criogeno de longo prazo ou experimentação subsequente. Neste estudo, foi demonstrado o fluxo de trabalho de montagem do Golden Gate.
Após a transformação da reação da assembleia, foram identificadas assembleias bem sucedidas utilizando-se de triagem branca azul padrão das colônias E.coli. O de expressão eYFP no vetor nível um e no vetor de link final um vetor foram então montados em um vetor de aceitação nível T para dar ao vetor cpcBA-eYFP. O vetor cpcBA-eYFP montado foi verificado por restrição de digestão.
A transferência conjugal bem sucedida do cpcBA-eYFP ou do vetor pPMQAK1-T resultou no crescimento de até várias centenas de colônias na membrana para synechocystis PCC 6803 e Synechococcus elongatus UTEX 2973. Como esperado para o forte promotor Pcpc560, os valores para fluorescência eYFP normalizada do leitor de placas e fluorescência eYFP por célula do citômetro de fluxo foram elevados em comparação com o controle negativo. Tanto com o leitor de placas quanto com o citómetro de fluxo, os valores de fluorescência foram mais elevados em Synechococcus elongatus UTEX 2973 do que em Synechocystis PCC 6803.
Certifique-se de incubar pelo tempo mínimo de acordo com qual cepa você está conjugando.
