JoVE Logo

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

An optimized testing protocol is presented in this paper for the Rotarod performance test, used for measuring progressive neurological disability in TMEV-infected mice.

Аннотация

After intracerebral infection with the Theiler's Murine Encephalomyelitis Virus (TMEV), susceptible SJL mice develop a chronic-progressive demyelinating disease, with clinical features similar to the progressive forms of multiple sclerosis (MS). The mice show progressive disability with loss of motor and sensory functions, which can be assessed with multiple apparatuses and protocols. Among them, the Rotarod performance test is a very common behavioral test, its advantage being that it provides objective measurements, but it is often used assuming that it is straightforward and simple. In contrast to visual scoring systems used in some models of MS, which are highly subjective, the Rotarod test generates an objective, measurable, continuous variable (i.e., length of time), allowing almost perfect inter-rater concordances. However, inter-laboratory reliability is only achieved if the various testing parameters are replicated. In this manuscript, recommendations of specific testing parameters, such as size, speed, and acceleration of the rod; amount of training given to the animals; and data processing, are presented for the Rotarod test.

Введение

Theiler в Мышиные энцефаломиелит Вирус (TMEV) является нейротропные одноцепочечной РНК-содержащий вирус, который заражает упорно мышиный центральную нервную систему (ЦНС). У восприимчивых мышей, инфекция с TMEV вызывает иммунный опосредованной, хронический прогрессирующий демиелинизирующее заболевание, известное как TMEV индуцированных демиелинизирующих заболеваний (TMEV-йодной). Экспериментальное заражение мышей происходит течения заболевания, напоминающего, что видели в прогрессивных форм рассеянного склероза (РС). TMEV-IDD характеризуется двумя различными фазами: острой фазе и хронической фазе. Острая фаза представляет собой мягкий, обычно субклинический энцефалит 1,2. Во - вторых, хроническая фаза, начиная примерно через месяц после заражения, состоит из медленно прогрессирующей инвалидности характеризуется демиелинизации, воспаление и повреждение аксонов 1,2. Слабость наблюдается у мышей связано с спастичности, а иногда и тяжелые тонических спазмов.

Потому что на данный момент нет medicatioнс для улучшения прогрессивной инвалидности у больных, исследователи особенно привлекает TMEV-йодной, которая представляет собой оптимальную модель животных для мониторинга воздействия модификации болезни препаратов на прогрессирование заболевания. Тем не менее, у мышей, а также у больных с МС, мониторинг прогрессии инвалидности требует непрерывного клиническое наблюдение в течение продолжительных периодов времени. У мышей, долгосрочный мониторинг прогрессирования инвалидности может быть выполнена с помощью теста производительности Rotarod.

Тест производительности Rotarod является стандартным поведенческий тест, который оценивает двигательные-ассоциированные функции, такие как координация, баланс, и усталость у грызунов. Мыши должны держать свой баланс на токарном стержень, который вращается под постоянным ускорением; время латентности падать от этого стержня записывается. Животные с неврологической дисфункции не в состоянии оставаться на вращающемся стержне до тех пор, как элементы управления, и они обычно уходят, когда скорость вращения превышает ихмощность двигателя. Чем больше неврологические нарушения у животных, тем быстрее они падают стержня, и тем короче время латентность.

Преимущество теста Rotarod над традиционными визуальных систем оценки является то , что она создает объективную, измеримой переменной время задержкам , которые в конечном счете могут быть использованы для статистического анализа для количественной оценки последствий лечения и экспериментальных процедур 3.

В лаборатории нейроиммунология (Лони) в Дартмуте, мышей подвергаются протоколу адаптации, где они испытаны до TMEV инфекции с целью ознакомления их с машиной и оценить их нормальную "базовый" баланс координации и управления двигателем 4, 5. После того, как исходный уровень установлен и мышей заражают TMEV, они проверяются один раз или два раза в неделю в течение нескольких месяцев. Фактический протокол тестирования длится в среднем 150 дней, что позволяет провести оценкуснижение баланса, координации и управления двигателем на всем протяжении болезни демиелинизации.

Несколько сотен TMEV-междугородний и имитацией мышей, обработанных были протестированы до сих пор для неврологической дисфункции в Дартмуте. Эти мыши получали различные иммуномодулирующие методы лечения, но ни один фармакологический агент не был признан эффективным в улучшении прогрессии инвалидности 6,7. Настоящая статья и соответствующий протокол описывают, каким образом характеризовать прогрессивную неврологические нарушения, отображаемый мышей TMEV-ЙДЗ. В частности, протокол предлагает рекомендации конкретных параметров тестирования как считается, как правило, пригодны для изучения неврологического инвалидности у мышей TMEV-ЙДЗ с помощью теста Rotarod. Эта процедура обеспечивает основу против которой можно оценить (1) актуальность этой модели мыши с прогрессирующим рассеянным склерозом и (2) его полезность для тестирования методов лечения, направленных на лечение прогрессивных неврологических заболеваний, таких как MS. Очевидно, чтоRotarod тест производительности и текущий Оптимизированные параметры тестирования и протокол не полезны только при обнаружении прогрессирующее неврологическое инвалидности в мышиной модели TMEV-IDD, но также могут быть использованы в раскрытии ухудшений в других вирусиндуцированного и / или генетической мышиных моделях нейродегенеративных заболеваний.

протокол

Все животное работа использует протоколы рассматриваются и утверждаются по уходу и использованию комитета Institutional животных (IACUC) в GEISEL Медицинской школе в Дартмуте путем.

1. Модель мыши

  1. Индукция TMEV-индуцированной демиелинизирующих заболеваний
    1. Перемещение клетки, содержащие от 4 до 6-недельного возраста самка SJL / Jhan мышей от стойки до комфортного рабочего пространства. Отметьте мышей (например, с тегом уха или ушной удар) , чтобы для индивидуальной оценки клинического и гистологического заболевания.
    2. Draw 30 мкл TMEV инфицирующего запаса (2 х 10 6 бляшек единиц , образующих; БОЕ) в PBS в шприц инсулина 29- го калибра и иглы.
    3. Подготовить машину анестезии газа: проверить систему, чтобы обеспечить наличие достаточного количества кислорода и изофлуран для длительности процедуры.
    4. Включите расходомер до 1 л / мин. Поместите животное в индукционную камеру и герметизировать верхнюю часть. Включите ваporizer до 3,5% и контролировать животное до лежачие.
    5. Удалить животное из камеры и протестировать мышь, зажимая в подушечку лапы, чтобы обеспечить адекватную анестезию. Отсутствие реакции на сильный крайнем случае указывает на адекватную анестезию.
    6. Очистите место инъекции 70% изопропилового спирта.
    7. Впрыскивать 30 мкл TMEV вдувания запаса в правое полушарие головного мозга путем инъекции ( от руки рисунок 1). Место инъекции находится примерно на полпути между глаз и ушей линии и в непосредственной близости от средней линии.
    8. Возвращает мышь, чтобы его проведения клетки после полного оповещения и мобильный (обычно 3 - 5 мин).
    9. Эвтаназии мышей от обескровливания или сердечной перфузии от 3 до 6 месяцев после того, как TMEV инфекции, в зависимости от быстроты развития заболевания.

2. Анализ Rotarod

  1. Аппарат Rotarod
    1. Тестовые мышей до TMEV к инфекции, чтобы ознакомить их смашины и оценить их нормальный базовый баланс координации и управления электродвигателями.
    2. Запустите протокол адаптации на -5 дней после заражения (точек на дюйм, то есть за 5 дней до TMEV инфекции).
    3. Разрешить мышей, чтобы акклиматизироваться в комнату тестирования по крайней мере за 30 минут до Rotarod тестирования, для того, чтобы дать им возможность приспособиться к окружающей среде.
    4. Убедитесь , что как блок Rotarod и компьютер подключен к сети и друг с другом (рис 2).
    5. Предварительно установите Rotarod с -5 точек на дюйм параметров протокола обучения, как описано в таблице 1.
    6. Сохраните файл работы с информацией о дате и идентификации.
    7. Переместить клетку, содержащую команду для тестирования от стойки к столу, примыкающей к Rotarod. Мыши, как правило, проходят в дружин 4.
    8. Возьмите мышь за хвост и поместите его на стержне, обращенный в сторону от оператора. Повторите эти действия для второго по четвертый мыши. Если в FAL мышиLs или прыгает, поместить его обратно в свою полосу на Rotarod, пока все мыши не находятся в положении. Не обращайте внимания, если какие-либо мышей повернуться лицом к оператору.
    9. После загрузки всех мышей, нажмите кнопку "Enter", чтобы начать эксперимент. Соблюдайте таймеры запускаются автоматически и оборотов в мин (оборотов в минуту) на дисплее для каждой полосы движения.
      1. Поскольку каждое животное падает из стержня, записывать скорость стержня в момент падения, а также продолжительность времени животное оставалось на стержне. Стержень будет продолжать вращаться, пока последнее животное не упало с узла стержня.
    10. После того, как все мыши пали, использовать ткань, чтобы удалить любые фекальные Boli и мочи из стержня. Присутствие мочи и фекалий может повлиять на способность мышей для захвата стержня.
      1. После 3-минутного отдыха, дают мышей второй, а затем третий судебный процесс. Максимальное время на одном испытании составляет 240 сек. Администрирование в общей сложности 3 испытаний в течение каждого испытательного дня.
    11. Вернуть мышей в родную клетку и вернуть их обратно в стойку. По окончании экспериментального сеанса, очистить Rotarod с мылом и водой, чтобы удалить все фекалии от машины.
    12. Протирать плиту основания с этанолом 70%. Спрей вниз всю машину с диоксидом хлора для дезинфекции.
    13. В дни - 4, - 3, - 2 и 1 - пи, предварительно установить Rotarod с соответствующими параметрами протокола обучения, как описано в таблице 1, и повторите шаги 2.1.2 2.1.12.
    14. После получения базовых мер, заразить мышей с TMEV. Разрешить 6-дневный период восстановления пи.
протокол День тестирования частота Скорость Запуск двигателя (оборотов в минуту) МаксимумСкорость (оборотов в минуту) ускорение Испытания ITI
(оборотов в минуту / сек) (N х сек) (мин)
Обучение - 5 точек на дюйм 1 день 1 12 01/03 3x240 сек 3
- 4 точек на дюйм 1 день 1 13 01/03 3x240 сек 3
- 3 точек на дюйм 1 день 1 14 01/03 3x240 сек 3
- 2; - 1 дюйм 1 день 5 40 01/03 3x240 сек 3
экспериментальный От +7 до +50 точек на дюйм 2 недели 5 40 05/30 3x240 сек 3
От +51 до +150 точек на дюйм 1 неделя 5 40 05/30 3x240 сек 3

Таблица 1: Rotarod Параметры в тренировочных и экспериментальных протоколов.

  1. Экспериментальный протокол Rotarod
    1. На +7 точек на дюйм, предварительно установить Rotarod с соответствующими параметрами протокола эксперимента, как описано в таблице 1. Повторите шаги 2.1.2 2.1.10.
    2. В конце пробного # 3, взвесить каждую мышь и запишите вес тела на листе данных. Чистый и дезинфицировать Rotarod в соответствии с шагами 2.1.11 и 2.1.12.
    3. Испытание мышей два раза в неделю в течение последующих 6 недель, как описано выше. Через 6 недель (в которых мышей , вероятно , достигала фазы плато) 8,9, тест на мышей один раз в неделю с той же experimentaл протокол. Фактический протокол тестирования длится в среднем 150 дней, в зависимости от конкретного течения заболевания.
  2. Неврологическое Функциональный индекс
    1. Экспорт необработанных данных в файл электронной таблицы и анализировать результаты.
    2. Экспресс - данные , как время работы (рисунок 3А): это нормальное время работы плюс пассивное время вращения минус время задержки вращения (Таблица 2) 10. Вычислить среднее время работы трех испытаний в день.
    3. Экспресс данные в виде неврологического функционального индекса (НИЛ; фигура 3В).
      1. Вычислить эпидемический порог производительности каждой отдельной мыши. Порог базовой производительности определяется как среднее всех запущенных время от дня + 15 до + 45 пи 6,7.
      2. Вычислить НИЛ как среднее из трех самых последних средних времени работы , деленное на пороге базовых характеристик этого 6,7 конкретных мыши </ SUP>.
        ПРИМЕЧАНИЕ: Если тестируемый продолжительности работы для мыши в день + 72, + 76 и + 79 пи на 55 сек, 45 сек, 50 сек, а базовое время для той же мыши составляет 135 сек, NFI для этой мыши на +79 точек на дюйм будет [(45 + 50 + 55) / 3] / 135 или 0,37.
    4. Экспресс данные как скорректированная NFI (adjNFI; Рисунок 3C): скорректировать данные NFI значением населения для одного эксперимента.
      1. Вычислить adjNFI путем деления значения NFI на среднее NFI, полученный мнимого группой, обработанной в этот конкретный день.
Срок Определение
Обычное время работы Общее время мышь тратит активно работает на вращающемся стержне, то есть задержка падать.
Пассивная время вращения крепление времени мышь остается на стержне в режиме пассивного вращения.
Вращение время задержки Количество времени, курсор остается на стержне в режиме пассивного вращения
Пассивный режим вращения Когда мышь захватывает стержень и вращается без необходимости передвигаться.
Общее время сеанса Общее количество времени, курсор остается на вращающемся стержне в течение сеанса.
Базовый уровень производительности Предварительно ущерб производительности двигателя оценивается для определения минимального порога производительности.
Неврологическое индекс функции (НИЛ) Клинический показатель, который сравнивает каждую двигательную мыши, то есть, время работы, в любое время до его пиковой производительности.
Скорректированный индекс неврологической функции (adjNFI) Когда процесс нормализации применяется для корректировки данных NFI значением для населенияединственный эксперимент.
значение населения Среднее значение ИЯС полученный мнимого группой, обработанной в определенный день.

Таблица 2: Определения параметров Rotarod Принят к Количественно неврологическими нарушениями.

Результаты

Цель этого репрезентативного эксперимента было сравнение неврологическую инвалидность, вызванную Daniels (DA) штамма и штамма боб TMEV. Для целей настоящего исследования, группа из 32 самок мышей SJL были инфицированы интракрани- с TMEV, либо штамм DA (n = 16) или штамм Bean (п = 16), и их к...

Обсуждение

Несмотря на некоторые ограничения, тест производительности Rotarod представляет собой важный инструмент для оценки двигательной функции и дисфункции в TMEV-йодной, а также влияние фармакологических вмешательств на прогрессирование инвалидности у мышей.

Тест Rotarod был вперв...

Раскрытие информации

The authors have nothing to disclose.

Благодарности

The authors thank the staff of the Center for Comparative Medicine and Research (CCMR) at Dartmouth for their expert care of the mice used for these studies. The authors also acknowledge Emily Clough for her excellent administrative support.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
Mice SJL/JCrHsd 4 to 6 weeks oldEnvigo#052
TMEV virus stock
Isoflurane vaporizerHarvard Apparatus#340471
Insulin Syringes U- 100 29 g x 0.5 ccBD#328203
Rotamex-5 4 Lane Rota-Rod for Mice with RS-232 and SoftwareColumbus Instruments#0890M

Ссылки

  1. Lipton, H. L. Theiler's virus infection in mice: an unusual biphasic disease process leading to demyelination. Infect Immun. 11, 1147-1155 (1975).
  2. Pachner, A. R. . A Primer of Neuroimmunological Disease. , (2012).
  3. Rustay, N. R., Wahlsten, D., Crabbe, J. C. Assessment of genetic susceptibility to ethanol intoxication in mice. Proc Natl Acad Sci U S A. 100, 2917-2922 (2003).
  4. McGavern, D. B., Zoecklein, L., Drescher, K. M., Rodriguez, M. Quantitative assessment of neurologic deficits in a chronic progressive murine model of CNS demyelination. Exp Neurol. 158, 171-181 (1999).
  5. Zoecklein, L. J., et al. Direct comparison of demyelinating disease induced by the Daniel's strain and BeAn strain of Theiler's murine encephalomyelitis virus. Brain Pathol. 13, 291-308 (2003).
  6. Gilli, F., Li, L., Campbell, S. J., Anthony, D. C., Pachner, A. R. The effect of B-cell depletion in the Theiler's model of multiple sclerosis. J Neurol Sci. 359, 40-47 (2015).
  7. Li, L., et al. The effect of FTY720 in the Theiler's virus model of multiple sclerosis. J Neurol Sci. 308, 41-48 (2011).
  8. Homanics, G. E., Quinlan, J. J., Firestone, L. L. Pharmacologic and behavioral responses of inbred C57BL/6J and strain 129/SvJ mouse lines. Pharmacol Biochem Be. 63, 21-26 (1999).
  9. Balkaya, M., Krober, J. M., Rex, A., Endres, M. Assessing post-stroke behavior in mouse models of focal ischemia. J Cerebr Blood F Met. 33, 330-338 (2013).
  10. . . Columbus Instruments Rotamex-5 Manual. , 1-33 (2005).
  11. Dunham, N. W., Miya, T. S. A note on a simple apparatus for detecting neurological deficit in rats and mice. J Am Pharm Ass. 46, 208-209 (1957).
  12. Ulrich, R., Kalkuhl, A., Deschl, U., Baumgartner, W. Machine learning approach identifies new pathways associated with demyelination in a viral model of multiple sclerosis. J Cell Mol Med. 14, 434-448 (2010).
  13. Lynch, J. L., Gallus, N. J., Ericson, M. E., Beitz, A. J. Analysis of nociception, sex and peripheral nerve innervation in the TMEV animal model of multiple sclerosis. Pain. 136, 293-304 (2008).
  14. Pirko, I., Johnson, A. J., Lohrey, A. K., Chen, Y., Ying, J. Deep gray matter T2 hypointensity correlates with disability in a murine model of MS. J Neurol Sci. 282, 34-38 (2009).
  15. Oleszak, E. L., Chang, J. R., Friedman, H., Katsetos, C. D., Platsoucas, C. D. Theiler's virus infection: a model for multiple sclerosis. Clin Microbiol Rev. 17, 174-207 (2004).
  16. McCarthy, D. P., Richards, M. H., Miller, S. D. Mouse models of multiple sclerosis: experimental autoimmune encephalomyelitis and Theiler's virus-induced demyelinating disease. Methods Mol Biol. 900, 381-401 (2012).
  17. . International Mouse Phenotyping Resource of Standardised Screens Available from: https://www.mousephenotype.org/impress/protocol/158/1 (2016)
  18. Bohlen, M., Cameron, A., Metten, P., Crabbe, J. C., Wahlsten, D. Calibration of rotational acceleration for the rotarod test of rodent motor coordination. J Neurosci Methods. 178, 10-14 (2009).
  19. Hopkins, M. E., Bucci, D. J. Interpreting the effects of exercise on fear conditioning: the influence of time of day. Behav Neurosci. 124, 868-872 (2010).

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

Neuroscience117TheilerRotarod

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Исследования

Образование

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены