Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.
Method Article
Здесь мы покажем , как анализировать дендритных маршрутизацию продолговатого мозга нейронов дрозофилы в столбцах и слоях. Технологический процесс включает в себя метод визуализации двойного просмотра для улучшения качества изображения и вычислительных средств для отслеживания, регистрации дендритные беседок в массив опорного столбца и для анализа дендритных структур в 3D-пространстве.
Во многих регионах центральной нервной системы, таких, как муха оптических роторами и позвоночного коры, синаптические контуры организованы в слои и столбцы для облегчения проводки мозга во время разработки и обработки информации в развитых животных. Постсинаптических нейроны сложные дендритов в моделях типа специфичные в определенных слоях для синапса с соответствующими пресинаптических окончаний. Муха мозговое нейропиля состоит из 10 слоев и около 750 колонн; каждый столбец иннервируют дендриты более 38 типов нейронов продолговатого мозга, которые соответствуют с аксонов терминалов некоторых 7 типов афферентов в моде типоспецифичной. В этом докладе подробно описываются процедуры для изображения и анализа дендритов нейронов продолговатого мозга. Технологический процесс включает в себя три раздела: (I) блок формирования изображения двойного зрения объединяет два конфокальной стеки изображений, собранных в ортогональных направлениях в высоком разрешении 3D изображения дендритов; (II) дендрит отслеживания и регистрации секции следы дендритнуюбеседок в 3D и регистрирует дендритные следы в массив опорного столбца; (III) в разделе дендритных анализ дендритных анализ моделей относительно столбцов и слоев, в том числе уровня конкретных терминации и плоской проекции направления дендритных беседок, и выводит оценки дендритных ветвлений и терминации частот. Протоколы используют пользовательские модули, построенные на открытым исходным кодом MIPAV (Medical Imaging обработки, анализа и визуализации) платформ и пользовательских панелей инструментов в матрице лабораторного языка. Вместе эти протоколы обеспечивают полный рабочий процесс для анализа дендритов маршрутизации продолговатого нейронов Drosophila в слоях и столбцов, чтобы идентифицировать типы клеток, а также для определения дефектов в мутантов.
Во время развития нейроны сложные дендритов в сложных, но стереотипных разветвленных моделей для формирования синапсы с их пресинаптических партнерами. Дендритные ветвящиеся структуры коррелируют с нейрональной идентичности и функций. Места дендритных беседок определяют тип пресинаптических входов, которые они получают, в то время как дендритные ветвления сложности и размеров поля определяют номер входа. Таким образом, дендритные морфологические свойства являются важнейшими факторами, определяющими для синаптической связности и нейронного вычисления. Во многих регионах сложных мозга, таких , как муха зрительных долей и сетчатки позвоночных, синаптические цепи организованы в виде столбцов и слоев для облегчения обработки информации 1, 2. В такой колонке и слой организации а, пресинаптические нейроны отчетливой аксонов модальность проекта, чтобы прекратить действие в определенном слое (так называемый слой-специфическое нацеливание) и сформировать упорядоченную двумерный массив (так каллеd топографическую карту), в то время как постсинаптические нейроны расширить дендритов соответствующих размеров в отдельных слоях, чтобы получить пресинаптические входы правильных типов и чисел. В то время как аксонов ориентации на слои и колонн были хорошо изучены 3, 4, гораздо меньше известно о том , как дендриты направляются на конкретные слои и расширения соответствующего размера рецептивные поля для формирования синаптических связей с правильными пресинаптических партнерами 5. Трудность визуализации и количественной оценки дендритные ориентации на слои и колонн затруднило изучение дендритных развития в столбчатых и слоистых структур мозга.
Дрозофилы нейроны мозгового слоя идеальной моделью для изучения дендритов маршрутизации и сборки схемы в столбцах и слоях. Муха мозговое нейропиля организована в виде 3D решетки 10 слоев и примерно 750 колонн. Каждый столбец иннервируют набором афферентов, в том числе рhotoreceptors R7 / R8 и ламинированным нейроны L1 - L5, чьи аксонов терминалы образуют топографические карты в моде 6 слоев конкретного. Около 38 типов нейронов продолговатого мозга присутствуют в каждом столбце продолговатом и сложные дендритов в определенных слоях и с соответствующими размерами поля , чтобы принимать входные сигналы от этих афферентов 7. В синаптические схемы в мозговом были реконструированы на микроскопическом уровне электронов; Таким образом, синаптические партнерства хорошо известны 7, 8. Кроме того, генетические инструменты для маркировки различных типов нейронов продолговатого мозга доступны 9, 10, 11. Изучив три типа transmedulla (Tm) нейронов (Tm2, ТМ9 и TM20), ранее мы определили два типа клеток специфических дендритных атрибуты: (I) Tm нейроны проецируются дендриты либо в переднем или заднем направлении (плоская ProjНаправление прогиб), в зависимости от типов клеток и (II) дендриты нейронов продолговатого мозга заканчиваются в определенных слоях продолговатого мозга в моде камерного типа специфических (окончание слоя конкретного) 12. Planar направление проекции и прекращение слоя конкретных достаточно, чтобы дифференцировать эти три типа Tm нейронов, в то время как мутации, которые нарушают Tm ответов на слой и столбцов киев влияют на различные аспекты этих атрибутов.
Здесь мы представляем полный рабочий процесс для изучения дендритов кучность продолговатого мозга нейронов дрозофилы в столбцах и слоях (рисунок 1). Во-первых, мы покажем способ визуализации двойного зрения, которая использует специализированное программное обеспечение, чтобы объединить два конфокальной изображения стеки для создания высококачественных изотропные изображения. Этот метод требует только обычные конфокальной микроскопии для создания высококачественных изображений, которые позволяют для надежного отслеживания дендритных ветвей, не прибегая к сверхвысокого разрешения микроскопии, такойs STED (стимулированное излучение Истощение) или структурное освещение. Во-вторых, мы представляем метод для отслеживания дендритные беседок и регистрации полученных следов аксонов в массив опорного столбца. В-третьих, мы покажем вычислительные методы для извлечения информации о направлении плоской проекции и окончания дендритов слоя конкретных, а также для получения оценок для дендритных ветвлений и терминации частот. Вместе эти методы позволяют для характеристики дендритных моделей в 3D, классификации типов клеток на основе дендритных морфологией, а также выявление потенциальных дефектов в мутантов.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Примечание: Протокол содержит три раздела: двойного просмотра изображений (разделы 1 - 3), дендритов трассировку и регистрацию (разделы 4 - 6) и дендритов анализ (разделы 7 - 9) (Рисунок 1). Коды и примеры файлов представлены в таблице материалов / оборудования.
1. Dual-Image Acquisition
Примечание: Этот шаг предназначен для получения двух изображений штабеля нейроне интерес в двух ортогональных (горизонтальной и фронтальной) ориентации.
2. Изображение Деконволюция
Примечание: шаг деконволюции использует программное обеспечение изображения деконволюции для восстановления полученных изображений, которые разлагаются путем размыванияи шум. Хотя этот шаг не является обязательным, он значительно улучшает качество изображения. Рекомендуется использовать деконволюции стеки изображения для регистрации изображений и комбинации в разделе 3.
3. Двойной вид изображения Комбинация
Примечание: Этот шаг объединяет два изображения стеки для создания высокого разрешения 3D-изображений с помощью программного обеспечения MIPAV.
4. нейритов Трассировка и реферирование Назначение
Примечание: Этот шаг должен проследить невриты (4.1) и назначить опорные точки для регистрации (4.2) с помощью программного обеспечения визуализации изображения.
5. твердого тела и TPS Нелинейная регистрации
Примечание: Этот шаг должен зарегистрировать следы нейритов (в формате IV) в массив опорного столбца и для создания зарегистрированного файла SWC с помощью программы MIPAV. В этом разделе необходимо следующие файлы: рекомбинировавши стека изображений (.ids) со стадии 3.3, точка отсчета файла (.csv), начиная с шага 4.2 и аксонов файл трассировки нити (.iv) с шага 4.1.
6. Стандартизация в правой вентральной Конфигурация
Примечание: Этот шаг заключается в преобразовании аксонов следы (в формате SWC) в стандартной конфигурации RV (правой вентральной) с помощью пользовательского сценария "RV_standardization.m." Здесь, сценарий был написан в матрицу лаборатории языка.Имена файлов SWC ввода должны быть в следующем формате: "NeuronName _ _ Номер конфигурации .swc" (например, Tm20_3_LV.swc).
7. Вычислить дендритных ветвлений и нагрузочного Частоты
Примечание: Этот шаг использует жесткое тело зарегистрировано SWC файлы для расчета оценок Каплана-Мейера для вероятности того, что дендритные сегмент достигнет заданной длины, не выключая. Этот скрипт использует два Dendritic_Tree_Toolbox функции: extractDendriticSegmentLengthDistribution и estimateDendriticSegmentLengthProbability.
8. Участок распределения слоя конкретной прекращении дендритных Беседки
Примечание: Этот шаг участков распределение дендритных терминалов в разных слоях мозгового вещества в виде гистограммы. Это может быть применен к одному нейрону, группа нейронов или групп нейронов. Скрипт использует функцию extractDistributionAlongAxis из Dendritic_Tree_Toolbox.
9. Участок планарной проекции Направление дендритов
Примечание: Этот шаг участков планарного направления проекции дендритов как полярный сюжет. Скрипт использует функцию extractAngularDistribution из Dendritic_Tree_Toolbox.
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Используя методику визуализации двойного просмотра, представленный здесь, муха мозг, содержащий скудно меченые нейроны TM20 изображался в двух ортогональных направлениях. До визуализации, мозг был окрашен с соответствующими первичными и вторичными антителами для виз...
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Здесь мы покажем , как образ и анализировать дендритные беседок из продолговатого мозга нейронов дрозофилы. Первая секция, двойного зрения формирования изображения, описывает деконволюции и комбинацию из двух стопок изображений в стек изображений с высоким разрешением. Второй р?...
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Авторы не имеют ничего раскрывать.
Эта работа была поддержана исследовательской программой Intramural Национальных институтов здравоохранения, Юнис Кеннеди Шрайвер Национального института здоровья ребенка и развития человека (грант HD008913 к С.-HL), и Центр информационных технологий (PGM, NP, ESM и ММ).
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Software | |||
Huygens Professional | Scientific Volume Imaging | version 16.05 | for image deconvolution (https://svi.nl). commercial software |
MIPAV | version 7.3.0 | for image recombination and registration (http://mipav.cit.nih.gov/); freeware | |
MIPAV plugin: PlugInDrosophila RetinalRegistration.class | freeware | ||
MIPAV plugin: PlugInDrosophilaStandard ColumnRegistration.class | freeware | ||
Imaris | Bitplane | for tracing neurites and assigning reference points for image registration (http://www.bitplane.com); commercial software | |
Vaa3D | for visualizing swc files (https://github.com/Vaa3D/release/releases/); freeware | ||
Matlab | Mathworks | R2014b | for morphometric analysis of dendrites (http://www.mathworks.com); commercial software |
Matlab toolbox: TREES1.14 | v1.14 | for analyzing dendritic morphometric parameters (http://www.treestoolbox.org/download.html); freeware | |
Matlab toolbox: Dendritic_Tree_Toolbox | v1.0 | For calculating morphometric parameters (https://science.nichd.nih.gov/confluence/display/snc/Data+collections+for+imagines+combination+and+standardize+column+registration). Freeware | |
Name | Company | Catalog number | Comments |
Sample files | |||
SWC file definition | http://www.neuronland.org/NLMorphologyConverter/MorphologyFormats/SWC/Spec.html | ||
The codes and sample files for image combination and registration | https://science.nichd.nih.gov/confluence/display/snc/Data+collections+for+imagines+combination+and+standardize+column+registration | ||
Reference point example | https://science.nichd.nih.gov/confluence/download/attachments/117216914/points.csv?version=1&modificationDate= 1471880596000&api=v2 | ||
Name | Company | Catalog number | Comments |
Computer system | |||
MS Windows Windows 7 x64 or Macintosh OS X 10.7 or later | 3GHz 64-bit quad-core processor, 16G RAM (minimal) | ||
Optional: Quadro4000 (or above) graphic card | Nvidia | for stereographic visualization of dendrites. | |
Optional: NVIDIA 3D vision2 | Nvidia | http://www.nvidia.com/object/3d-vision-main.html | |
Optional: 120 Hz LCD display for NVIDIA 3D vision2 | http://www.nvidia.com/object/3d-vision-system-requirements.html | ||
Name | Company | Catalog number | Comments |
Reagents for imaging | |||
24B10 antibody | The Developmental Studies Hybridoma Bank | 24B10 | |
GFP Tag Antibody | Thermofisher Scientific | G10362 | |
Goat anti-Rabbit (H+L), Alexa Fluor 488 | Thermofisher Scientific | A11034 | |
Goat anti-Mouse (H+L), Alexa Fluor 568 | Thermofisher Scientific | A21124 | |
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium | Vector Laboratories | H-1000 | |
Mounting Clay | Fisher | S04179 | |
70% glycerol in 1x PBS | |||
Cover glasses, high performance, D = 0.17 mm | Zeiss | 474030-9000-000 |
Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены