JoVE Logo
АВТОРЫ
СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

Войдите в систему

Для просмотра этого контента требуется подписка на Jove Войдите в систему или начните бесплатную пробную версию.

В этой статье

  • Резюме
  • Аннотация
  • Введение
  • протокол
  • Результаты
  • Обсуждение
  • Раскрытие информации
  • Благодарности
  • Материалы
  • Ссылки
  • Перепечатки и разрешения

Резюме

В статье описан протокол спасения эмбрионов для регенерации незрелых эмбрионов, полученных в результате межвидовой гибридизации Cucurbita pepo и Cucurbita moschata. Протокол может быть легко воспроизведен и станет важным ресурсом для программ разведения сквоша.

Аннотация

Межвидовая гибридизация в культурах Кукурбита (тыква) желательна для расширения генетической изменчивости и для интрогрессии полезных аллелей. Незрелые эмбрионы, полученные из этих широких скрещиваний, должны быть регенерированы с использованием соответствующих методов спасения эмбрионов. Хотя этот метод хорошо зарекомендовал себя для многих культур, подробное описание соответствующей методологии для кабачков, которая позволила бы его рутинное применение, отсутствует. Здесь мы опишем протокол спасения эмбрионов, полезный для межвидовой гибридизации C. pepo и C. moschata. Для выявления жизнеспособных комбинаций для спасения эмбрионов было выполнено 24 межвидовых скрещивания. Набор фруктов был получен из двадцати двух крестов, что указывает на 92% успеха. Однако большинство полученных плодов были партенокарпическими, с семенами, лишенными эмбрионов (пустые семена). Только одна перекрестная комбинация содержала незрелые эмбрионы, которые могли быть регенерированы с использованием базальных питательных сред растений. В общей сложности 10 эмбрионов были спасены из межвидового плода F1 , и показатель успеха спасения эмбрионов составил 80%. Разработанный здесь протокол спасения эмбрионов будет полезен для межвидовой гибридизации в программах разведения сквоша.

Введение

Cucurbita (2n = 40) является очень разнообразным родом в семействе Cucurbitaceae, который содержит 27 различных видов, из которых пять одомашнены1. Среди них Cucurbita moschata, C. pepo и C. maxima являются наиболее экономически важными во всем мире. В США C. moschata и C. pepo являются двумя наиболее важными видами в сельскохозяйственном производстве. C. pepo состоит из четырех подвидов (ovifera, pepo, fraternal и gumala), которые содержат как летние, так и зимние сортовые группы кабачков: кривошея, прямой шеи, желудя, гребешка, кокозель, кабачок, кабачки и тыква 2,3,4,5. C. moschata в основном состоит из зимних видов рынка кабачков, включая баттернат, Дикинсон и сыр группы1. Эти два вида морфологически и фенотипически разнообразны, причем C. pepo рассматривается за его урожайность, раннесть, привычку роста кустов и разнообразные признаки плодов, включая форму плода, размер плода, цвет мякоти и рисунок кожуры. С другой стороны, C. moschata ценится за адаптацию к теплу и влажности, а также устойчивость к болезням и вредителям 6,7. Межвидовая гибридизация между C. moschata и C. pepo является не только важной стратегией интрогрессии желательных характеристик между двумя видами, но и позволяет расширить генетическую базу в селекционных программах 7,8.

Ранние скрещивания между C. moschata и C. pepo были сделаны для определения их совместимости и/или таксономических барьеров 9,10,11, тогда как более поздние исследования в основном были сосредоточены на передаче желательных признаков 12,13,14. Межвидовая гибридизация между двумя видами была нацелена на передачу новых признаков, таких как привычка роста куста или полулеска и улучшение урожайности C. pepo наряду с устойчивостью к болезням, приспособляемостью к абиотическому стрессу и повышенной энергией от C. moschata 14,15,16. Например, специфические скрещивания между C. pepo (P5) и C. moschata (MO3) привели к повышению урожайности плодов13, в то время как C. moschata (нигерийские местные и menina) широко использовались в качестве основного источника устойчивости к потивирусам у культивируемых сортов C. pepo 17,18.

Предыдущие исследования показали, что гибридизация между C. moschata и C. pepo возможна, но затруднена 8,15. Межвидовые скрещивания могут привести к отсутствию плодового набора (аборт), партенокарпические плоды, лишенные жизнеспособных семян (пустые семена), бессемянные плоды, где незрелые эмбрионы не развиваются (стеноспермокарпия), или плоды с небольшим количеством незрелых эмбрионов, которые могут быть спасены в зрелые растения путем спасения эмбрионов15,16. Например, жизнеспособные семена не были получены путем скрещивания C. pepo (столовая матка, материнская) с C. moschata (крупный сыр, отцовский), однако реципрокное скрещивание дало 57 жизнеспособных семян из 134 опылений9. Хаясе получил жизнеспособные семена из скрещиваний C. moschata и C. pepo только тогда, когда кресты были сделаны в 04:00 утра с использованием пыльцы, хранящейся при 10 ° C в течение19 часов. Баггетт скрестил восемь различных сортов C. moschata с C. pepo (delicata) и сообщил, что из 103 общих опылений было получено 83 плода, которые казались нормальными, но ни один из них не содержал жизнеспособных семян8. В помеси C. pepo (S179) и C. moschata (NK) Zhang et al. получили 15 плодов с 2 994 семенами, но только 12 из этих семян были жизнеспособными, в то время как остальные демонстрировали только рудиментарное развитие. Эти исследования показывают, что, хотя межвидовое скрещивание между C. moschata и C. pepo очень полезно, получение плодов с жизнеспособными семенами из скрещиваний требует16.

Спасение эмбрионов было предложено в качестве подходящего метода для преодоления проблем, возникающих в результате раннего аборта или плохо развитых эмбрионов, и является одним из самых ранних и наиболее успешных методов культивирования in vitro для регенерации незрелых эмбрионов 16,20. Спасение эмбрионов включает в себя культуру in vitro недоразвитых/незрелых эмбрионов с последующим переносом в стерильную питательную среду для облегчения восстановления саженцев и, в конечном счете, зрелых растений21. Хотя спасение эмбрионов обычно используется в разведении сквоша, подробное описание соответствующей методологии, которая позволила бы его рутинное применение, отсутствует. Использование метода спасения эмбрионов для преодоления межвидовых барьеров гибридизации у видов Cucurbita было зарегистрировано еще в 1954году 22. Тем не менее, успех спасения эмбрионов в ранних исследованиях был либо незарегистрированным, либо очень низким. Metwally et al. сообщили о 10% успехе (регенерация в зрелые растения) среди 100 межвидовых гибридных эмбрионов, спасенных от скрещивания C. pepo и C. martinezii23. Sisko et al. сообщили о переменном уровне успеха регенерации эмбрионов среди эмбрионов, полученных из различных перекрестных комбинаций: скорость регенерации гибридов, полученных путем скрещивания C. maxima (Bos. Max) и C. pepo (Золотая лихорадка), составила 15,5%, для C. pepo (Zucchini) и C. moschata (Hokaido) составила 20%, в то время как для C. pepo (Золотая лихорадка) и C. moschata (Dolga) она составила 37,5%24. Помимо генотипа, среды и условия культивирования in vitro являются важными факторами успеха методики25,26. В текущем исследовании были протестированы различные перекрестные комбинации между C. moschata и C. pepo, и была разработана простая методология использования метода спасения эмбрионов в сквоше. Разработка простого и легко воспроизводимого метода спасения эмбрионов облегчит межвидовую гибридизацию и увеличение зародышевой плазмы в программах разведения сквоша.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

протокол

1. Посадка и опыление

ПРИМЕЧАНИЕ: Важно определить совместимые генотипы, гибридизация которых приведет к завязыванию плодов и производству жизнеспособных эмбрионов.

  1. Условия посадки и техническое обслуживание
    1. Получение семян генотипов кабачков (сортов/приращений) для гибридизации (табл. 1).
    2. Заполните 50-ячейковые стартовые плоскости (ширина 25 см x длина 50 см) горшечной средой, дополненной полным удобрением NPK, содержащим 1,38 г/кг N, 1,38 г/кг P и 1,38 г/кг K.
    3. Посейте семена на глубину, равную их длине, и засыпьте горшечной средой. Поливайте квартиры, не создавая стоячей воды. После этого держите носитель влажным, поливая его вручную один раз в день.
    4. На второй стадии пересаживают рассаду в горшки диаметром от 25 см до 30 см, дополненные полным удобрением NPK в 3 столовые ложки / горшок. Удобряйте растения один раз в неделю 500 мл /горшок жидкого удобрения, содержащего NPK 20:20:20, добавленного в концентрации 1 г на галлон воды.
    5. Поддерживайте растения в теплице при температуре 22-28 °C при естественном освещении. Для винных генотипов предусмотреть опорную шпалеру в теплице (рисунок 1).
  2. Выполнение опыления
    1. Как правило, цветение кабачков начинается на 6-8 неделе с момента посева в зависимости от сорта (рисунок 2А,В). Начните делать контролируемые гибридизации (скрещивания), как только растения начнут цвести. В тепличных условиях опыление может производиться круглогодично.
    2. Определите мужские и женские цветки сортов C. pepo и C. moschata , которые будут готовы к опылению на следующий день. Чтобы определить такие цветы, проверьте наличие цветов, лепестки которых имеют желтый оттенок, но не открыты. Аккуратно заклейте цветы, закрытые сверху, используя маскировочную ленту, чтобы предотвратить случайное опыление насекомыми (рисунок 2C, D).
    3. Утром следующего дня цветки готовы к опылению. Проводят опыление до 10:00 утра для улучшения скорости успеха гибридизации27.
    4. Откройте женские и мужские цветки, аккуратно удалив заклеенную верхнюю часть лепестков. Удалите лепестки с мужского цветка и перенесите пыльцу, аккуратно втирая пыльник в рыльце женского цветка (рисунок 3А).
    5. После опыления немедленно закройте опыленный женский цветок маскировочной лентой. Используйте метку, чтобы записать дату опыления и указать отцовских и материнских родителей, используемых в кресте (рисунок 3B).
    6. На успешное скрещивание указывает расширенный завязь, который быстро образует небольшой плод в течение 1 недели (рисунок 4А). Затем растение готово к сбору урожая через 45-55 дней после опыления28 (рисунок 4B).

2. Техника спасения эмбрионов

  1. Подготовка СМИ
    1. Подготовка запасов антибиотиков: Для цефотаксима (натриевой соли) растворите антибиотик в 4 мл деионизированной или дистиллированной воды, процедите через стерильный шприцевой фильтр 0,22 мкм и сделайте аликвоты 0,5 мл. Хранить при -20 °C. Полученный исходный раствор будет иметь концентрацию 250 мг/мл.
    2. Для ампициллина (натриевой соли) растворите порошок в 10 мл воды, процедите через стерильный шприцевой фильтр 0,22 мкм и аликвоту в запасе 1 мл с конечной концентрацией 100 мг/мл. Хранить при -20 °C.
    3. Сделайте среду Murashige и Skoog (MS), растворив 2,45 г среды (концентрация 4,91 г/л) в 500 мл дистиллированной воды в бутылке объемом 1 л. Добавить 1,5 г г геллановой камеди и автоклава при 121 °C в течение 20 мин. Геллановая камедь полностью растворяется во время автоклавирования.
    4. После автоклавирования охладите среду, поместив бутылку на водяную баню при температуре 50 °C. Извлеките запасы антибиотиков из морозильной камеры и разморозьте их в ламинарном проточном шкафу.
    5. Переложите среднюю бутылку на ламинарную вытяжку. Добавьте 0,6 мл раствора цефотаксима (250 мг/мл) и 0,25 мл запаса ампициллина (100 мг/мл) в средний флакон и хорошо перемешайте. Налейте около 7 мл среды в стерильную чашку Петри (60 мм х 15 мм).
    6. Дайте среде затвердеть в чашках Петри в течение примерно 15-20 минут. Закройте чашки Петри герметичной пленкой и поместите их в ящик для хранения. Хранить при комнатной температуре.
  2. Спасение эмбрионов
    1. Перед началом работы очистите и стерилизуйте ламинарно-воздушный шкаф 70% этиловым спиртом.
    2. Соберите плоды кабачков, разбив/отрезав их от основной лозы, и продезинфицируйте поверхность плодов, промыв жидким моющим средством (например, 0,3% хлороксиленола) в лабораторной раковине до тех пор, пока вся рыхлая грязь не будет удалена (рисунок 5А).
    3. Смойте достаточным количеством водопроводной воды. Высушите фрукты чистыми бумажными полотенцами. Переместите плоды в ламинарно-воздушный шкаф (рисунок 5В).
    4. Поверхностную стерилизацию плодов путем распыления 70% этанола на плоды в стерильном ламинарно-воздушном шкафу. Разделите плоды пополам стерильным ножом (рисунок 5С) и извлеките семена.
    5. Используйте стерильные щипцы, чтобы асептически вскрыть семенную оболочку и обнажить незрелые эмбрионы (рисунок 6). Осторожно поместите незрелые эмбрионы в чашку Петри, содержащую РС-среду, дополненную цефотаксимом и ампициллином (рисунок 7А). Закройте чашку Петри и запечатайте упаковочной пленкой.
      ПРИМЕЧАНИЕ: В зависимости от размера эмбриона, можно поместить пять или шесть эмбрионов в чашку Петри.
    6. Поместите запечатанные чашки Петри с эмбрионами в камеру роста под 16 ч фотопериода при 25 °C и относительной влажности 70%. Если происходит загрязнение, своевременно субкультурируйте незагрязненные эмбрионы в новую пластину с той же средой.
    7. Семядоли начнут расширяться через 4 дня и станут зелеными через 10 дней (рисунок 7B). На этом этапе, при необходимости, выполните субкультуру в новые пластины, содержащие ту же среду, чтобы обеспечить расширение ткани. Корни начнут появляться через 14 дней (рисунок 7C), а через 21 день растения будут иметь расширенные корни и семядоли (рисунок 7D).
      ПРИМЕЧАНИЕ: Культуральная среда, используемая в протоколе, подходит для дифференциации на побеги и корни без дополнительных регуляторов роста.
    8. На этом этапе выньте растения из посуды Петри и аккуратно смойте среду с корней водопроводной водой (рисунок 8). Поместите сухари в пластиковый контейнер (14 см х 9 см х 4 см) и накройте корни влажными бумажными полотенцами (рисунок 9А). Накройте контейнер и при необходимости смажьте бумажные полотенца.
    9. Храните контейнеры при комнатной температуре (25-28 °C) и с 16-часовым фотопериодом. Этот шаг позволит акклиматизировать растения. После акклиматизации в течение 7-10 дней в контейнере рассада будет примерно 3-4 в длину. В этот период смачивайте бумажные полотенца по мере необходимости.
    10. Переложите рассаду в 50-ячейковые стартовые квартиры (ширина 25 см х 50 см длины), дополненные удобрением, как описано ранее, и переместите их в теплицу (рисунок 9B). Не переувлажняйте рассаду во избежание гниения; добавляйте приблизительно 10-20 мл на ячейку по мере необходимости.
    11. На второй-третьей стадии пересаживают рассаду в горшки диаметром 30 см, заполненные горшечной средой, дополненной удобрением, как описано ранее (рисунок 10А). Обеспечить решетчатую поддержку для виноградных растений и выполнить контролируемую гибридизацию, когда растения начинают цвести, как описано ранее (рисунок 10B).
    12. Поддерживайте растения в теплице при температуре 22-28 °C при естественном освещении. Оцените растения по характеристикам плодов и семян.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Результаты

Набор плодов и жизнеспособность семян
Первоначальное испытание было проведено для определения набора плодов и жизнеспособности семян в различных перекрестных комбинациях. Всего было выбрано 15 генотипов кабачков, четыре C. pepo и 11 C. moschata (таблица 1). Из 24 попы...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Обсуждение

Существует два основных узких места для успешной межвидовой гибридизации между C. moschata и C. pepo: барьер перекрестной совместимости, который определяется реакцией генотипа на получение гибридных эмбрионов, и барьеры постоплодотворения, которые препятствуют развитию гибридных ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Раскрытие информации

Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

Благодарности

Эта работа была поддержана Национальным институтом продовольствия и сельского хозяйства Министерства сельского хозяйства США, проект NRS No. FLA-TRC-006176 и Институт пищевых и сельскохозяйственных наук Университета Флориды.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Материалы

NameCompanyCatalog NumberComments
ampicillinFisher ScientificBP1760-5
autoclaveSterisAMSCO LAB 250
balance
cefotaximeSigma AlfrichC 7039
centrifuge tubes (1.5 ml)Sigma AlfrichT9661
detergent
ethanol, 95%Decon Labs2805HC
forcepsVWR82027-408
gellan gumCaisson LaboratoriesG024
growth chamber or illuminated shelf
laminar hood / biosafety cabinetThe Baker Company, IncEdgegard
masking tapeUlineS-11735
media bottle
Murashige & Skoog MediumResearch Products InternationalM10200
NPK fertilizer (20-20-20)BWI Companies, Inc PR200
Osmocote Plus fertilizerBWI Companie,s IncOS90590
Parafilm MSigma AlfrichP7793
Petri dish (60 x 15 mm)USA Scientific, Inc8609-0160
plant potsBWI Companies, IncNP4000BXL
plastic food containers, reusedOscar Mayer4470003330
plastic hang tagsAmazonB07QTZRY6T
potting mixJolly GardenerPro-Line C/B
seedling starter traysBWI Companies IncGPPF128S4
syringe filter (0.22 um )ExtraGeneB25CA022-S
trellis supportThe Home Depot 2A060006
water bath

Ссылки

  1. Paris, H. S. Genetic Resources of Pumpkins and Squash, Cucurbita spp. Genetics and Genomics of Cucurbitaceae. Plant Genetics and Genomics: Crops and Models. Grumet, R., Katzir, N., Garcia-Mas, J. 20, (2016).
  2. Gong, L., Stift, G., Kofler, R., Pachner, M., Lelley, T. Microsatellites for the genus Cucurbita and an SSR-based genetic linkage map of Cucurbita pepo L. Theoretical and Applied Genetics. 117 (1), 37-48 (2008).
  3. Paris, H. S., et al. Assessment of genetic relationships in Cucurbita pepo (Cucurbitaceae) using DNA markers. Theoretical and Applied Genetics. 106 (6), 971-978 (2003).
  4. Robinson, R. W., Decker-Walters, D. S. Cucurbits. , CAB International. Wallingford, Oxon, UK. (1997).
  5. Teppner, H. Cucurbita pepo (Cucurbitaceae)-history, seed coat types, thin coated seeds and their genetics. Phyton (Horn). 40 (1), 1-42 (2000).
  6. Hazra, P., Mandal, A. K., Dutta, A. K., Ram, H. H. Breeding pumpkin (Cucurbita moschata Duch. Ex Poir.) for fruit yield and other characters. International Journal of Plant Breeding. 1 (1), 51-64 (2007).
  7. Paris, H. S. History of the cultivar-groups of Cucurbita pepo. Horticultural Reviews-Westport Then New York. 25, 71(2001).
  8. Baggett, J. R. Attempts to cross Cucurbita moschata (Duch.) Poir. 'Butternut and C. pepo L. 'Delicata'. The Cucurbit Genetics Cooperative. 2, 32-34 (1979).
  9. Erwin, A. T., Haber, E. S. Species and Varietal Crosses in Cucurbits. Agricultural Experiment Station, Iowa State College of Agriculture and Mechanical Arts. , (1929).
  10. Whitaker, T. W., Bohn, G. W. The taxonomy, genetics, production and uses of the cultivated species of Cucurbita. Economic Botany. 4 (1), 52-81 (1950).
  11. Bemis, W. P., Nelson, J. M. Interspecific hybridization within the genus Cucurbita I, fruit set, seed and embryo development. Journal of the Arizona Academy of Science. 2 (3), 104-107 (1963).
  12. Washek, R. L., Munger, H. M. Hybridization of Cucurbita pepo with disease resistant Cucurbita species. The Cucurbit Genetics Cooperative. 6, 92(1983).
  13. Davoodi, S., Olfati, J. A., Hamidoghli, Y., Sabouri, A. Standard heterosis in Cucurbita moschata and Cucurbita pepo interspecific hybrids. International Journal of Vegetable Science. 22 (4), 383-388 (2016).
  14. De Oliveira, A. C. B., Maluf, W. R., Pinto, J. E. B., Azevedo, S. M. Resistance to papaya ringspot virus in summer squash Cucurbita pepo L. introgressed from an interspecific C. pepo× C. moschata cross. Euphytica. 132 (2), 211-215 (2003).
  15. Rakha, M. T., Metwally, E. I., Moustafa, S. A., Etman, A. A., Dewir, Y. H. Production of Cucurbita interspecific hybrids through cross pollination and embryo rescue technique. World Applied Sciences Journal. 20 (10), 1366-1370 (2012).
  16. Zhang, Q. I., Yu, E., Medina, A. Development of advanced interspecific-bridge lines among Cucurbita pepo, C. maxima, and C. moschata. HortScience. 47 (4), 452-458 (2012).
  17. Brown, R. N., Bolanos-Herrera, A., Myers, J. R., Miller Jahn, M. Inheritance of resistance to four cucurbit viruses in Cucurbita moschata. Euphytica. 129 (3), 253-258 (2003).
  18. Pachner, M., Paris, H. S., Winkler, J., Lelley, T. Phenotypic and marker-assisted pyramiding of genes for resistance to zucchini yellow mosaic virus in oilseed pumpkin (Cucurbita pepo). Plant Breeding. 134 (1), 121-128 (2015).
  19. Hayase, H. Cucurbita-crosses. XV. Flower pollination at 4 am in the production of C. pepo x C. moschata F1 hybrids. Japanese Journal of Breeding. 13 (2), 76-82 (1963).
  20. Reed, S. Embryo rescue. Plant development and biotechnology. , 235-239 (2004).
  21. Sharma, D. R., Kaur, R., Kumar, K. Embryo rescue in plants-a review. Euphytica. 89 (3), 325-337 (1996).
  22. Wall, J. R. Interspecific hybrids of Cucurbita obtained by embryo culture. Proceedings of the American Society of Horticultural Science. 63, 427-430 (1954).
  23. Metwally, E. I., Haroun, S. A., El-Fadly, G. A. Interspecific cross between Cucurbita pepo L. and Cucurbita martinezii through in vitro embryo culture. Euphytica. 90 (1), 1-7 (1996).
  24. Sisko, M., Ivancic, A., Bohanec, B. Genome size analysis in the genus Cucurbita and its use for determination of interspecific hybrids obtained using the embryo-rescue technique. Plant Science. 165 (3), 663-669 (2003).
  25. Giancaspro, A., et al. Optimization of an in vitro embryo rescue protocol for breeding seedless table grapes (Vitis vinifera L.) in Italy. Horticulturae. 8 (2), 121(2022).
  26. Warchol, M., et al. The effect of genotype, media composition, pH and sugar concentrations on oat (Avena sativa L.) doubled haploid production through oat x maize crosses. Acta Physiologiae Plantarum. 40 (5), 1-10 (2018).
  27. Nepi, M., Pacini, E. Pollination, pollen viability and pistil receptivity in Cucurbita pepo. Annals of Botany. 72 (6), 527-536 (1993).
  28. Harvey, W. J., Grant, D. G., Lammerink, J. P. Physical and sensory changes during development and storage of buttercup squash. New Zealand Journal of Crop and Horticultural Science. 25 (4), 341-351 (1997).
  29. Moon, P., Meru, G. Embryo rescue of aged Cucurbita pepo seeds using squash rescue medium. Journal of Horticultural Science and Research. 2 (1), 62-69 (2018).
  30. Nuñez-Palenius, H. G., Ramírez-Malagón, R., Ochoa-Alejo, N. Muskmelon embryo rescue techniques using in vitro embryo culture. Plant Embryo Culture. , Humana Press. 107-115 (2011).
  31. Vining, K. J., Loy, J. B. Seed development and seed fill in hull-less seeded cultigens of pumpkin (Cucurbita pepo L). Cucurbitaceae 98: Evaluation and Enhancement of Cucurbit Germplasm. McCreight, J. M. , ASHS Press. Alexandria, VA. 64-69 (1998).
  32. Vining, K. J. Seed development in hull-less-seeded pumpkin (Cucurbita pepo L.). , University of New Hampshire. L.), Durham, NH. M.S. Thesis (1999).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Перепечатки и разрешения

Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи

Запросить разрешение

Смотреть дополнительные статьи

187

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Конфиденциальность

Условия эксплуатации

Политика

СВЯЖИТЕСЬ С НАМИ

РЕКОМЕНДОВАТЬ БИБЛИОТЕКЕ

НОВОСТИ JoVE

Исследования

Образование

АВТОРЫ

Библиотекарь

О JoVE

Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены